Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Immunology and Infection

Выделение Мышиный лимфатических узлов стромальных клеток

doi: 10.3791/51803 Published: August 19, 2014
* These authors contributed equally

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Лимфоузлы специализированные отсеки, где адаптивные иммунные реакции против иностранных и аутоантигены которые инициируются и скоординированные. Процедура, представленные здесь описаны короткий ферментативного расщепления в сочетании с автоматизированной механической пипетки, чтобы получить лимфатических узлов суспензию одной клетки и получить доступ к жизнеспособных лимфатических узлов стромальных клеток, которые поддерживают поверхностную экспрессию нескольких молекул.

Лимфатических узлов стромальных клеток образуют каркас из лимфатического узла и выполнить три основные функции: сначала они фильтровать жидкости тела, чтобы пробовать антигены, патогенные микроорганизмы и их патогенов, связанный молекулярную шаблон (PAMPs), а также цитокинов и опасность, связанная молекулярную шаблон (DAMPS) присутствует в организме. Во-вторых, они привлекают и поручить антиген представляющих клеток (АРС) и лимфоциты взаимодействовать и инициировать адаптивные иммунные реакции; и третье, они обеспечивают структурную среду для гомеостаза и дифференциации лимфоцитов 13. Во время воспаления лимфатических узлов стромальных клеток производить факторы роста, цитокинов и хемокинов, адаптироваться к набуханию тем самым организации взаимодействия дендритные клетки (ДК), T-и B- клетки. Оркестровка иммунных реакций возможно только за счет комплексной структурной архитектуры образованной различных популяций клеток стромы.

Лимфатических узлов стромальных клеток являются CD45 негативные клетки и можно отличить по выражению CD31 или gp38 в фибробластов и эндотелиальных клеток 1 -6. Gp38 + CD31 - определяет T зон ретикулярные клетки (TRC, также известный как FRC: фибробластические ретикулярные клетки), gp38 + CD31 + определяет лимфатические эндотелиальные клетки (LEC), gp38 - CD31 + определяет эндотелиальные клетки крови (БЭК). Кроме того, характеристика субпопуляций показали существование других стромальных клеток лимфатических узлов. В самом деле, небольшое перицитов, как клеточная популяция характеризовалась течениеgp38 - CD31 - население 7. Таким образом, адаптация процедуры выделения является выгодным для идентификации и характеризации функциональных свойств различных лимфатических узлов стромальных клеток.

До развития лимфатических узлов стромальных клеток пищеварения протоколы изучение лимфатических узлов стромальных клеток был ограничен наблюдений в точке с использованием тканей раздел и микроскопии. Тем не менее, структурные и функциональные исследования показали, важные характеристики лимфатических узлов стромальных клеток. Лимфатических узлов стромальные клетки, связанные с podoplanin, коллагена и внеклеточного матрикса (ECM) белков с образованием комплекса 3 размерную структуру, называемую систему трубопровода, который транспортирует лимфатические и связанные с низкой молекулярной массой белки из субкапсулярной синуса лимфатического узла с высоким эндотелием венул в Т-клетках зоне 8. ДК находятся в тесном контакте с клетками стромы и может наблюдаться выступающие в трубчатый ConСтруктура Duit пробовать жидкость и выявления антигенов 8. Взаимодействие лимфатических узлов стромальных клеток (УНЦ и LECS) с ДК опосредуется выпуска и презентации хемокинов CCL21 и CCL19 9,10. CCL19 и CCL21 признаны CCR7 рецептора облегчая ДК и Т-клетки мигрируют в лимфатические узлы зоне Т-клеток 4,11. Несмотря на использование подобных хемокинов, ДК и Т-клетки имеют разные пути миграции в лимфатические узлы 12. Позже, с помощью ферментативного переваривания лимфатического узла и выделения чистых лимфатических узлов стромальных клеток, функциональные исследования проводились на роли различных лимфатических узлов стромальных клеток и их способности взаимодействовать с ДК и Т / В-клеток 6,13. Во-первых, перекрестные помехи между IFN-γ, продуцирующих эффекторных Т-клеток в лимфатических узлах и стромальных клеток индуцирует продукцию метаболита оксида азота, показанной чтобы ослабить Т-клеточные реакции и пролиферации во вторичных лимфоидных органах, 14-16. Во-вторых, лимфатических нода стромальных клеток, как сообщается, поддерживает дифференциацию нормативных подмножеств постоянного тока по производству Ил-10 17, и модулировать наивное гомеостаза Т-клеток с помощью производства IL-7 6,18. В-третьих, TLR выражение в лимфоузлах стромальных клеток предполагает, что клетки стромы подвержены сигнала, полученного от инфекции или самоуправлений молекул выделяется при повреждении тканей. Действительно, лечение лимфатических узлов стромальных клеток с лиганда TLR3 поли (I: C) индуцирует скромную положительную регуляцию основных выражения комплекс гистосовместимости класса I и усилением активности со-ингибирующее молекула PD-L1, но не из костимуляторных молекул, в результате чего кардинальные изменения в периферических тканях антигены выражение 19. Несколько групп показали, лимфатических узлов стромальные клетки экспрессируют антигены периферических тканей и индуцировать толерантность самореактивным Т-клеток 19,21-27. Поэтому, понимания связей между лимфатических узлов стромальных клеток и другой миграционного и реSIDENT клетки лимфатических узлов поможет найти новые целевые молекулы, которые позволят активацию или подавление иммунных реакций при воспалении. Таким образом, осуществление опубликованной ферментативного разделения лимфатического узла не требуется.

Ранее опубликованные протоколы используют различные комбинации коллагеназы основе ферментативного расщепления с малой механической нагрузкой 6,19,20. Однако длинные инкубации с пищеварением ферментов или различным сочетанием пищеварения фермента может ухудшить различные поверхностные молекулы, необходимые для анализа состояния активации и определения новых лимфатических узлов стромальных клеток. В зависимости от типа анализа стромальных клеток, протоколы передачи или Fletcher протокол может быть более подходящим. В описанной выше процедуре, немного короче ферментативное расщепление в сочетании с автоматизированной механической дезагрегации, чтобы свести к минимуму деградацию поверхности маркера жизнеспособных лимфатического узла стромальных клеток. Эта процедура позволяет хорошо воспроизводимый изоляцию иРазличие лимфоузлов населения стромальных клеток с низкой изменчивости и более 95% жизнеспособность. В недавно выделенные стромальные клетки лимфатических узлов может быть непосредственно использован для поверхностного маркера экспрессии, анализа белка и транскрипции исследований, а также установление линий стромальных клеток для выполнения функциональных анализов в пробирке.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

В этом видео-публикации и протокола, все процедуры животных были проведены в соответствии с протоколом животных, утвержденной кантона администрации Базель-Штадт, Швейцария.

1 лимфатические узлы Подготовка и пищеварения

  1. Предварительного нагрева воды в химическом стакане до 37 ° С с помощью магнитной мешалки с нагревательной пластиной.
  2. Готовят щелочной среде следующим образом: DMEM среде (без пирувата), дополненной 2% FCS, 1,2 мМ CaCl 2 и ручка / Strep (100 единиц пенициллина, 100 мкг стрептомицина).
  3. Стерилизовать все рассечение инструментов перед использованием.
  4. Усыпить мышей лимфатических узлов доноров на CO 2 удушья и асептических рассекать лимфатические узлы. Не препарировать окружающую жира. ПРИМЕЧАНИЕ: Этот протокол оптимизирован для периферической кожи слива лимфатического узла (паховые, плечевой, подмышечной).
  5. Поместите лимфатические узлы в стерильную чашку Петри, содержащую 2 мл ледяной щелочной среде.
  6. Нарушить лимфатических узлов окpsule с помощью двух 25 G иглы, закрепленные на 1 мл шприц.
  7. Передача нарушенную ткани лимфатического узла в 5 мл полипропилена с круглым дном пробирку, содержащую 750 мкл щелочной среде с добавлением 1 мг / мл коллагеназы IV и 40 мкг / мл ДНКазы I.
  8. Добавьте одну стерильную магнитной мешалки в каждой пробирке.
  9. Место трубки в химическом стакане с 37 ° С предварительно нагревают воду и перемешивают в пробирки с медленной скоростью (1 раунд / сек) в течение 30 мин.
  10. Снимите трубку с магнитной мешалкой с нагревательной пластины и пусть фрагменты лимфатических узлов урегулировать.
  11. Осторожно удалите супернатант обогащенный "не-стромальных клеток". ПРИМЕЧАНИЕ: Если анализ Т, В, дендритных клеток и CD45 - gp38 - CD31 - предусматривается, спасти «не-стромальных клеток" фракции.
  12. Промывочный остальные ткани лимфатического узла один раз 750 мкл щелочной среде. ПРИМЕЧАНИЕ: Этот шаг необходим только при работе с иммунокомпетентных мышей.
  13. Давайте фрагменты лимфатических узлов урегулировать.
  14. Удалитьне-стромальных клеток-плавающей фракции.
  15. Добавить к фрагментам лимфатических узлов 750 мкл основной среде, дополненной 3,5 мг / мл коллагеназы D и 40 мкг / мл ДНКазы I.
  16. Место трубки обратно в химический стакан, содержащий 37 ° C предварительно нагревают воду.
  17. Дайджест ткани лимфатического узла в течение 5 мин, медленно помешивая.
  18. Разбивку лимфатические фрагменты узел ткани с помощью пипетки и смешивания 700 мкл для 10 циклов при максимальной скорости, используя автоматизированную многоканальную пипетку. ПРИМЕЧАНИЕ: Это нарушает ткани лимфатического узла для улучшения пищеварения.
  19. Поместите пробирку назад в стакан с 37 ° C разогретой водой.
  20. Дайджест фрагменты ткани лимфатического узла для еще 10 мин, помешивая.
  21. Обеспечить представление лимфатические фрагменты узел ткани с помощью пипетки и перемешивания в течение 99 циклов при максимальной скорости, используя автоматизированную многоканальную пипетку.
  22. Добавить 7,5 мкл 0,5 М ЭДТА, чтобы обеспечить поддержание суспензии отдельных клеток.
  23. Разбивку фрагменты ткани лимфатического узла по трубеПриступая и перемешивания в течение 99 циклов при максимальной скорости, используя автоматизированную многоканальную пипетку.
  24. Добавить 750 мкл щелочной среде и передать клетки через нейлоновое сито 70 мкм.
  25. Центрифуга клеточной суспензии 5 мин при 1500 х г, 4 ° С.
  26. Стромальных клеток теперь могут быть использованы для дальнейшего анализа.

2 Окрашивание лимфатических узлов стромальных клеток

  1. Использование комбинации анти-CD45, анти-podoplanin (gp38), анти-CD31 антителами успешно распознавать TRC, LEC, BEC и DN клетки.
  2. Выдержите переваривается ткани лимфатического узла с Live / Dead трекер, анти-CD45-FITC (1: 200), анти-gp38-PE (1: 200), анти-CD31-APC (1: 200) в 100 мкл HBSS, содержащий 2 % FCS в течение не менее 20 мин, 4 ° С, в темноте.
  3. Промывают клетки добавлением 500 мкл HBSS, содержащей 2% FCS
  4. Центрифуга клеточной суспензии 3 мин при 1500 х г, 4 ° С.
  5. Повторное приостановить в 100 мкл HBSS, содержащим 2% FCS.
  6. Запуск окрашенных клеток в проточной цитометрии equippред со следующими оптики: источник возбуждения до трех лазеров: синий (488 нм, с воздушным охлаждением, 20 мВт твердотельный), красный (633 нм, 17 мВт гелий-неоновый), и фиолетовый (405 нм, 30 мВт твердотельный) .
  7. Ворота CD45 - клетки, чтобы исключить кроветворных клеток.
  8. Gate фуфайки (FSC-W) и живые клетки (ОНЛАЙН / DEAD трекер), чтобы исключить дублеты и мертвые клетки.
  9. Участок gp38 против CD31 для визуализации TRC (gp38 + CD31 -), LEC (gp38 + CD31 +), BEC (gp38 - CD31 +) и DN (gp38 - CD31 -) клеток (рисунок 1).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Настоящий протокол является изменение протокола пищеварение опубликованные Ссылка др., 2007 6 с более коротким временем пищеварения (45 мин максимум) за счет механического разукрупнения с автоматизированной многоканальной пипетки. Кроме того, эта процедура более стандартизированной, минимизирует деградацию поверхностных маркеров на различных лимфатических узлов стромальных клеток и позволяет обработку более чем одного образца в то же время.

Коллагеназы IV и коллагеназы D в протокол 6 и ток протокола или коллагеназы P и диспаза Ссылки в Fletchers протокола 13 поддержания лимфатического узла стромальных клеток жизнеспособность и избавить переваривание нескольких поверхностных маркеров, включая CD45, gp38 и CD31. Чтобы проверить текущий протокол, подмышечные, плечевого и паховые лимфатические узлы были удалены и переваривается, чтобы изолировать их стромальных клеток. Анализ CD45, gp38 и CD31 выражения продемонстрировали присутствие TRC, LEC, BEC и DN клеток, выделенных из C57BL / 6 млед (Рисунок 1, стратегия стробирования).

Механическое напряжение может уменьшить жизнеспособность лимфатических узлов стромальных клеток в процессе пищеварения. Сравнение жизнеспособность изолированных субпопуляций стромальных клеток с использованием трех различных протоколов, было установлено, что жизнеспособность была выше, чем 95% в протоколе Fletcher, но ниже, и для текущего протокола и протоколы передачи (Фиг.2А), хотя Текущая передача протокола лучше выживание в субпопуляции БЭК Ссылка протокол. Всего клетки число восстановлены сообщению пищеварение из лимфатических узлов подмножеств клеток стромы была несколько выше в текущем протоколе по сравнению с протоколом Link и протокола Флетчер (Рисунок 2A). Эти результаты показывают, что текущий протокол поддерживает жизнеспособность лимфатических узлов стромальных клеток, подобных опубликованных протоколов. Основные различия между трех протоколов приведены в таблице 1.

Поверхностные маркеры Re требуется, чтобы охарактеризовать лимфатического узла стромальных клеток методом проточной цитометрии и изолировать их от сортировки клеток. TRCs и LECs выделяли Текущий, Link и Флетчер протоколы сравнивали по И.А. б, CD140a, CD80, PD-L1 и выражения CD40. После выделения стромальных клеток на всех трех протоколов, мы нашли выражение ИА б, CD80, CD140a, PD-L1, и CD40 была выше на пищеварение с CP и LP в обоих TRCs и МИК (Рисунок 2B). Эти результаты показывают, что деградация некоторых поверхностных молекул с коллагеназы IV и D менее прочны, чем с коллагеназной P и диспаза.

Взятые вместе, текущий протокол включает в себя краткий пищеварение в сочетании с автоматизированной механической дезагрегации минимизировать поверхности деградации маркером жизнеспособным лимфатических узлов стромальных клеток.

"/>
Рис.1 TRC, LEC, BEC, и DN клетки окрашивания, стробирующие и количественного. Лимфатических узлов мышей C57BL / 6 расщепляли следующие текущий протокол и окрашивали CD45, gp38 и CD31, Live / Dead определить TRC, LEC, BEC, и DN клетки методом проточной цитометрии. Данные показывают, репрезентативные результаты окрашивания. Кликните здесь, чтобы посмотреть увеличенное изображение.

Рисунок 2
Рисунок 2 Жизнеспособность и поверхность экспрессия маркеров лимфатических узлов стромальных клеток. Лимфатических узлов мышей C57BL / 6 расщепляли после Current (CP), Линка (LP) и протокол Флетчера (FP) и окрашивали CD45, gp38 и CD31 для определения TRC, LEC, BEC и DN клетки методом проточной цитометрии. A) Viabilность и общее количество клеток всех лимфатических узлов стромальных клеток субпопуляции после Live / Dead окрашивания (N ≥ 5, объединенные данные из 2 независимых экспериментов, бары представляют SEM). B) Анализ поверхностной экспрессии И.А. б (APC-Cy7), CD140a (PerCP-Cy5.5), CD80 (PerCP-Cy5.5), PD-L1 (PE-Cy7) и CD40 (PE-Cy7) на TRCs и МИК (п = 6 для FP и п = 11 для LP и CP , объединенные данные из 2 независимых экспериментов, бары представляют SEM). Геометрические МФО значения авто-флуоресценции для LEC-APC-Cy7: 324 ± 97, LEC-PECy7: 163 ± 82,5, LEC-PerCpCy5.5: 156 ± 36, ТРК-APC-Cy7: 349 ± 152, TRC-PECy7: 117 ± 54, TRC-PerCP-Cy5.5: 121 ± 45. Нажмите здесь, чтобы увеличить изображение.

Текущий протокол-Ферменты Текущий-протокол Ссылка протокола-ферменты Link-протокол FЛетчер протокола-ферменты Флетчер-протокол
Коллагеназы IV, ДНКазы я 30 мин, 37 ° С, перемешивание Коллагеназы IV, ДНКазы I 30 мин, 37 ° С Коллагеназу P, диспаза, ДНКазы I 20 мин, 37 ° C, инвертировать каждые 5 мин
Коллагеназы D, ДНКазы я 5 мин, 37 ° C, перемешивание, ресуспендируют Коллагеназы D, ДНКазы I 20 мин, 37 ° С Коллагеназу P, диспаза, ДНКазы I 10 мин, 37 ° С, 30 сек ресуспендируют
10 мин, 37 ° С, перемешивание Коллагеназы D, ДНКазы I 37 ° С, не ресуспендируют каждые 10 мин до полного переваривания Коллагеназу P, диспаза, ДНКазы I 37 ° С, не ресуспендируют каждые 5 мин до полного переваривания
автоматизированная механическая ресуспендирование

Таблица 1 Короткие резюме CP, LP, FP ферменты используются и протоколы.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Изучение лимфатических узлов стромальных клеток в последнее время стал фокус исследования в связи с развитием двух опубликованных протоколов пищеварения 6,13. Оба протокола являются достаточными, чтобы получить одного лимфатического узла стромальные клетки, но отличаются по применению ферментов пищеварения и время пищеварения. Поскольку клетки стромы и их поверхностные маркеры чувствительны к ферментативного расщепления и механических напряжений, оптимизированный протокол не требуется.

Выделение жизнеспособных лимфатических узлов стромальных клеток из свежего рассеченной лимфатического узла является первым шагом для выполнения фенотипические и функциональный анализ. Таким образом, важно, чтобы тщательно переварить с определенной концентрацией ферментов, при стабильной температуре и в течение указанного времени. Два протокола пищеварения были описаны 6,13, однако с довольно длинными шагами пищеварения. Чтобы сократить время пищеварения, механическое разукрупнение был включен и стандартизированы, используя многоканальную пипетку. На E из преимуществ текущего протокола является то, что она позволяет изолировать стромальных клеток только в 45 мин, следовательно, минимизации их время инкубации с пищеварением ферментов. Кроме того, постоянное перемешивание при переваривании позволяет оптимальный доступ переваривания ферментов в структуру лимфатического узла. Кроме того, объем пищеварения была снижена до 750 мкл минимизации количества используемого фермента.

Чрезмерное механическое усилие разрушает плотные соединения, но может привести к гибели клеток, в то же время. По этой причине мы протестировали несколько комбинаций циклов перезаписи подвески и различных диссоциации устройств. Мы обнаружили, что использование автоматизированной многоканальной пипетки позволяет диссоциации в течение 2 применений 99 циклов; применить постоянное давление на клетки, и это приведет к суспензии отдельных клеток с оптимальной жизнеспособности. От четырех до шести образцы могут быть смешаны и пипеткой в ​​то же время сокращая время лимфатического узла изоляции стромальных клеток.

ontent "> Протокол пищеварения должен поддерживать поверхностную экспрессию почти всех молекул;. только таким образом сопутствующее окрашивание нескольких маркеров можно выявить, если население гомогенным или гетерогенным Например, использование ВР-3 и CD35 в TRC gp38 + CD31 -. позволяет для визуализации и выделения медуллярная TRC (Санджив Лютера, личное сообщение) Кроме того, слабо изучен фракция DN дополнительно характеризовали как содержащие Aire + клеток и перицитов как клетки положительных для интегринов α7 (отзывы в 7, 13). Таким образом, настоящее протокол по сравнению с опубликованными них. Как показано в результатах, аналогичных частот и количества лимфатических узлов стромальных клеток были получены с текущего протокола по сравнению с опубликованными них. Интересно, что частота и число изолированных TRC были высокая помощью Fletcher протокол предлагая лучшее диссоциации структур КИП, чем в текущем протоколе иПротокол Link. Кроме того, для выражения различных поверхностных молекул была увеличена с существующим протоколом по сравнению с протоколом Флетчера. Эти различия в способе пищеварения может быть причиной для несколько иных паттернов экспрессии в лимфоузлах исследований клеток стромы 6,19,21. Это может быть полезно для тестирования различных протоколов с пищеварением, потому что в преимуществах каждого протокола. Текущий протокол может быть лучше для анализа экспрессии поверхность, в то время как протокол Флетчер может быть полезна для изоляции высокой численности жизнеспособных клеток для анализа транскрипции (как опубликовано в Малхотра и др. 7). Поэтому, сравнивая все три протокола пищеварения может быть важно для получения оптимальных результатов после выделения лимфатических узлов стромальных клеток и их следует рассматривать как взаимодополняющие.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
DMEM LifeTechnologies-Gibco 41965-039
FCS Final concentration 2%
CaCl2 Sigma 499609 Final concentration 1.2 mM
Collagenase IV Worthington Biochemical Corporation >160 units per mg dry weight, use at final concentration of 1 mg/ml
Collagenase D Roche 11088882001 use at 3.5 mg/ml
DNAse I Roche  11284932001 use at 40 µg/ml
Stiring magnets FAUST 5 mm long-2 mm ø
Polystyrene round bottom tubes 5 ml Falcon-BD Bioscience
Magnetic stirrer with heating function IKA-RCT-standard 9720250
Petri dishes 100 mm, sterile TPP 6223201
25 G needles Terumo
anti mouse CD45 Ab Biolegend Clone 30-F11
anti mouse CD11c Ab Biolegend Clone N418
anti mouse Podoplanin Ab Biolegend Clone 8.1.1
anti mouse CD31 Ab Biolegend Clone MEC13.3

Eppendorf Xplorer plus, Multichannel
Eppendorf 4861 000.821/830 1.250 µl max. volume
anti mouse CD140a Biolegend Clone APA5
anti mouse CD80 Biolegend Clone 16-10A1
anti mouse CD40 Biolegend Clone 1C10
anti mouse I-Ab Biolegend Clone AF6-120.1
anti mouse CD274 (PD-L1) Biolegend Clone 10F.9G2
LIVE/DEAD Fixable Near-IR Dead Cell stain kit Invitrogen L10119

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Mueller, S. N., Ahmed, R. Lymphoid stroma in the initiation and control of immune responses. Immunological reviews. 224, 284-294 (2008).
  2. Roozendaal, R., Mebius, R. E. Stromal Cell - Immune Cell Interactions. Annual Review of Immunology. 29, (1), 23-43 (2011).
  3. Turley, S. J., Fletcher, A. L., Elpek, K. G. The stromal and haematopoietic antigen-presenting cells that reside in secondary lymphoid organs. Nature Reviews Immunology. 10, (12), (2010).
  4. Bajénoff, M., et al. Stromal cell networks regulate lymphocyte entry, migration, and territoriality in lymph nodes. Immunity. 25, (6), 989-1001 (2006).
  5. Katakai, T., Hara, T., Sugai, M., Gonda, H., Shimizu, A. Lymph node fibroblastic reticular cells construct the stromal reticulum via contact with lymphocytes. The Journal of experimental medicine. 200, (6), 783-795 (2004).
  6. Link, A., et al. Fibroblastic reticular cells in lymph nodes regulate the homeostasis of naive T cells. Nature Immunology. 8, (11), 1255-1265 (2007).
  7. Malhotra, D., et al. Transcriptional profiling of stroma from inflamed and resting lymph nodes defines immunological hallmarks. Nature Immunology. 13, (5), 499-510 (2012).
  8. Gretz, J. E., Norbury, C. C., Anderson, A. O., Proudfoot, A. E., Shaw, S. Lymph-borne chemokines and other low molecular weight molecules reach high endothelial venules via specialized conduits while a functional barrier limits access to the lymphocyte microenvironments in lymph node cortex. The Journal of experimental medicine. 192, (10), 1425-1440 (2000).
  9. Sixt, M., et al. The conduit system transports soluble antigens from the afferent lymph to resident dendritic cells in the T cell area of the lymph node. Immunity. 22, (1), 19-29 (2005).
  10. MartIn-Fontecha, A., et al. Regulation of dendritic cell migration to the draining lymph node: impact on T lymphocyte traffic and priming. The Journal of experimental medicine. 198, (4), 615-621 (2003).
  11. Luther, S. A., Tang, H. L., Hyman, P. L., Farr, A. G., Cyster, J. G. Coexpression of the chemokines ELC and SLC by T zone stromal cells and deletion of the ELC gene in the plt/plt mouse. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 97, (23), 12694-12699 (2000).
  12. Braun, A., et al. Afferent lymph-derived T cells and DCs use different chemokine receptor CCR7-dependent routes for entry into the lymph node and intranodal migration. Nature Immunology. 12, (9), 879-887 (2011).
  13. Fletcher, A. L., et al. Reproducible isolation of lymph node stromal cells reveals site-dependent differences in fibroblastic reticular cells. Frontiers in immunology. 2, 35 (2011).
  14. Lukacs-Kornek, V., et al. Regulated release of nitric oxide by nonhematopoietic stroma controls expansion of the activated T cell pool in lymph nodes. Nature Immunology. 12, (11), 1096-1104 (2011).
  15. Siegert, S., et al. Fibroblastic reticular cells from lymph nodes attenuate T cell expansion by producing nitric oxide. PLoS ONE. 6, (11), e27618 (2011).
  16. Khan, O., Headley, M., Gerard, A., Wei, W., Liu, L., Krummel, M. F. Regulation of T cell priming by lymphoid stroma. PLoS ONE. 6, (11), e26138 (2011).
  17. Svensson, M., Maroof, A., Ato, M., Kaye, P. M. Stromal cells direct local differentiation of regulatory dendritic cells. Immunity. 21, (6), 805-816 (2004).
  18. Onder, L., et al. Endothelial cell-specific lymphotoxin-β receptor signaling is critical for lymph node and high endothelial venule formation. The Journal of experimental medicine. 210, (3), 465-473 (2013).
  19. Fletcher, A. L., et al. Lymph node fibroblastic reticular cells directly present peripheral tissue antigen under steady-state and inflammatory conditions. The Journal of experimental medicine. 207, (4), 689-697 (2010).
  20. Fletcher, A. L., Malhotra, D., Turley, S. J. Lymph node stroma broaden the peripheral tolerance paradigm. Trends in Immunology. 32, (1), 12-18 (2011).
  21. Cohen, J. N., et al. Lymph node-resident lymphatic endothelial cells mediate peripheral tolerance via Aire-independent direct antigen presentation. Journal of Experimental Medicine. 207, (4), 681-688 (2010).
  22. Lee, J. -W., et al. Peripheral antigen display by lymph node stroma promotes T cell tolerance to intestinal self. Nat Immunol. 8, 181-190 (2006).
  23. Nichols, L. A., et al. Deletional self-tolerance to a melanocyte/melanoma antigen derived from tyrosinase is mediated by a radio-resistant cell in peripheral and mesenteric lymph nodes. J Immunol. 179, 993-1003 (2007).
  24. Gardner, J. M., et al. Deletional tolerance mediated by extrathymic Aire-expressing cells. Science. 321, 843-847 (2008).
  25. Gardner, J. M., et al. Extrathymic Aire-expressing cells are a distinct bone marrow-derived population that induce functional inactivation of CD4+ T cells. Immunity. 39, 560-572 (2013).
  26. Magnusson, F. C., et al. Direct presentation of antigen by lymph node stromal cells protects against CD8 T-cell-mediated intestinal autoimmunity. Gastroenterology. 134, 1028-1037 (2008).
  27. Tewalt, E. F., et al. Lymphatic endothelial cells induce tolerance via PD-L1 and lack of costimulation leading to high-level PD-1 expression on CD8 T cells. Blood. 120, (24), 4772-4782 (2012).
Выделение Мышиный лимфатических узлов стромальных клеток
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Broggi, M. A. S., Schmaler, M., Lagarde, N., Rossi, S. W. Isolation of Murine Lymph Node Stromal Cells. J. Vis. Exp. (90), e51803, doi:10.3791/51803 (2014).More

Broggi, M. A. S., Schmaler, M., Lagarde, N., Rossi, S. W. Isolation of Murine Lymph Node Stromal Cells. J. Vis. Exp. (90), e51803, doi:10.3791/51803 (2014).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter