Summary
我们证明的使用，能同时容纳6鼠笼现成材料酒精蒸气室的建设。我们进一步描述了在胎儿酒精暴露的小鼠模型相当于人类怀孕的所有3个学期的使用。这一范式妊娠和产后1-12天期间暴露的动物。
Abstract
暴露于酒精在开发过程中可能导致的被统称为胎儿酒精谱系障碍（FASDs）的形态和行为异常的星座。在光谱的最严重的到底是胎儿酒精综合症（FAS），其特点是生长发育迟缓，颅面畸形学和神经行为缺陷。研究，动物模型，包括啮齿类动物，已经阐明参与FASDs的病理生理许多分子和细胞机制。乙醇处理对怀孕啮齿动物已被用来在怀孕的第一和第二孕期人体暴露模型。孕晚期乙醇消费量在人类已经使用新生儿啮齿类动物为蓝本。然而，很少有研究啮齿动物有特点乙醇暴露在相当于人类怀孕，曝光就是常见于孕妇的模式的所有三个学期的效果。在这里，我们将展示如何从随手打造蒸汽室Øbtainable材料，可以各容纳6个标准鼠笼。我们描述了一个蒸汽室的范例，可以用来模拟暴露于乙醇中，用最少的处理，在所有的3个三个月。我们的研究表明，怀孕母畜发展显著的代谢耐受乙醇。然而，新生小鼠没有发展代谢宽容和胎儿的数目，胎儿体重，胎盘重量，为幼崽/产仔数，死亡幼仔/产仔数和小狗体重并没有显著影响乙醇暴露。这种模式的一个重要优势就是它的适用性与转基因小鼠的研究。此外，这种模式最大限度地减少处理的动物，在胎儿酒精研究的一个主要变乱。
Introduction
怀孕期间饮酒可能会损害胎儿，造成持续性的改变在许多器官和系统，显著降低生活质量受影响的个人和家庭。据估计，女性约10〜30％的怀孕，在美国期间喝酒，在一个狂欢的模式1,2 1-8％饮用。胎儿发育过程中由乙醇暴露产生影响的范围内被统称为胎儿酒精谱系障碍（FASDs）。最近的估计表明，FASDs与患病率高达美国3 2-5％一个主要的公共卫生问题。 FASDs较严重的表现为胎儿酒精综合症（FAS），其特点是生长发育迟缓，颅面畸形和神经行为缺陷，包括学习障碍。 FAS的患病率估计为0.2-0.7％，在美国3。对于FASDs目前可用的治疗只是部分有效和更有效的治疗方法的发展是由这种复杂疾病的频谱的细胞和分子基础的认识不足的限制。
从全国出生缺陷预防研究（NBDPS）的数据表明，孕妇在第一孕期最常见的饮料，怀孕已检测前，中后妊娠2阶段其次是禁欲。 NBDPS接受还发现，乙醇消费量在妊娠期间的第二个最常见的模式涉及到整个怀孕2的所有孕期饮用。其原因包括缺乏认识胎儿酒精暴露（即使在低剂量），有限的访问产前检查，对神经精神疾病阳性家族史，以及滥用或酒精依赖4的潜在有害影响。有趣的是，NBDPS报道，消费的第三个最常见的模式在1禁欲参与
在试图建模乙醇消耗量的不同图案的孕妇观察到，一些发育乙醇曝光范式已经建立了采用不同的动物物种，与大鼠和小鼠是最常见的5,6。怀孕在这些动物中的停留时间通常拉斯TS约3周，其对应于1 次和人类妊娠的第二个三个月。许多啮齿动物的研究已经评估不同剂量和乙醇曝光模式在这一时期的影响。通过液体的饮食7,8，加入乙醇到饮用水9,10，糖精增甜的解决方案的自愿饮用11，灌胃12，蒸气吸入13经常用于施用乙醇怀孕小鼠的方法和大鼠的例子包括管理和皮下或腹膜内注射14。这些研究的结果都概括几个在人类与FASDs观察到的赤字，在怀孕的早期阶段表明曝光足够整个大脑（在6,15审阅）损坏的神经元回路。
实验用啮齿类动物也显示出，等效于3 次时的曝光16-18，胃内插管19， 皮下注射20馈送，并且蒸气吸入21,22乙醇已被施用给这些动物。这些研究令人信服地证明，大脑的井喷式增长是高发期易受乙醇6发育的影响。
正如上面提到的，在怀孕的各个孕期饮酒是酒精消费的女性2的通用模式。然而，相对很少有研究评估了利用动物模型曝光此模式的影响。一些研究已经采取advantagË大型动物，其中第三学期相当于在子宫内 ，而不是在新生儿期出现在大鼠和小鼠的情况下。这些动物模型包括非人类的灵长类23,24和羊25-27。然而，这些动物模型中没有得到广泛使用，因为成本高，需要专门的护理设施中FASDs研究，部分。鼠害已较常用的表征对胎儿发育5全孕期酒精暴露的影响。豚鼠在这方面给出了大脑的成熟其广泛的产前发展和相似之处，人类28,29的是特别有利的。用豚鼠，它有可能为乙醇曝光的效果刻画在子宫内 ，其中包括人类第三孕期的等效发展时期。这些动物中的相对较高的成本，以及其怀孕的时间比较长（〜67天），已经它们的使用仅限于工作FASDs研究的几个实验室。
因为在生物医学研究中的成本效益和广泛应用，研究者用大鼠在妊娠的各个孕期暴露于酒精模型。在最初的研究中，大鼠在怀孕期间通过流质饮食其次是乙醇行政胃经人工饲养的新生儿（出生后的天数（P）1-10），导致血峰乙醇含量（BEC）在0.08克/分升的大坝暴露而在幼崽0.16克/分升。这种模式引起持久的改变在视神经髓鞘形成和减少贝格曼神经胶质纤维在小脑30-32的数目。同样，使用在第三孕期当量（P4-9）33,34的一部分，通过胃内插管后新生儿的管理给予乙醇孕鼠水坝在狂欢般的方式人工饲养条件下迈尔和合作者。 PEAK孕产妇和小狗建筑物能源效益守则分别为0.3克/分升在两个孕20天，小六。这一切孕期曝光模式导致生长迟缓，这是显著大于在妊娠期间33选择的期间暴露幼仔观察。此外，大鼠相当于所有孕期期间暴露于乙醇中表现出小脑浦肯野和颗粒细胞，显着高于在动物其他时段34暴露观察到的数量的减少。在海马细胞数量的减少也报告了这一模式，但这种影响似乎主要是暴露的后果第三学期相当于35时。涉及行政乙醇通过灌胃既孕鼠及新生小鼠的方法也被用来模拟所有孕早期接触36。这种方法，取得了0.13克/分升的水坝（孕17天）和0.24克/分升小六的幼崽，引起离子的BEC克持久的改变中单胺神经递质的水平在海马和下丘脑，和DNA甲基转移酶和甲基CpG结合蛋白2在海马37,38的表达增加。使用类似的曝光模式（BEC = 0.14-0.2克/分升的水坝和0.2克/分升的幼崽），吉尔- Mohapel 等 39检测增加了新的未成熟的神经元在成年大鼠海马齿状回的数可能代表一种代偿机制，在成年出生的神经元的成熟乙醇诱导的神经元损伤或改变。研究者也试图透过液体饮食暴露水坝或怀孕和哺乳期间9,40饮水来模拟所有的孕期酒精暴露。然而，通过他们的母亲的乳汁露出幼崽的效用是有限的，因为它通常会导致较低的小狗建筑物能源效益守则（ 例如 ，0.002〜0.05克/分升; 41,42）。
小鼠也被用于EXTENS结构延续表征发育乙醇暴露的影响。这种动物模型股上述许多的大鼠动物模型，具有额外的优势的优势，许多转基因小鼠品系可用5。老鼠已经成功地使用了第一 ， 第二或怀孕43,44的第三学期中乙醇的效果来表征。然而，对这些动物的所有孕早期曝光的影响还没有得到很好的特点，因为它在技术上是比较难在相当于人类怀孕的各个孕期暴露小鼠。例如，人工饲养和灌胃，其已经成功地用于在大鼠中，需要在小鼠45更专门的程序。据我们所知，只有一个研究，迄今已尝试研究利用老鼠进行的所有孕期酒精暴露的影响;这些动物暴露于乙醇溶液中的饮用水杜里纳克怀孕和哺乳46。产妇的BEC分别为0.07克/分升和小狗的BEC没有确定，但预计将那些在堤坝的一小部分。
在这里，我们描述了其中的酒精是通过蒸气吸入室给予双方怀孕母畜和新生儿小鼠的所有孕期酒精暴露的新模式。根据先前的设计47蒸气室建成。我们提供了有关如何构建吸入室，开展曝光程序的详细说明。我们还提供对可达到的的BEC和暴露对幼鼠的存活和生长的影响的信息。
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Protocol
所有动物的程序批准了新墨西哥州，健康科学大学的中心机构动物护理和使用委员会。
1，蒸气室总成
- 切聚碳酸酯板与用于顶部，底部，前，后，侧，和门设置在视频（ 图1和表1）的尺寸的圆锯或线锯。
- 用圆锯或线锯，切于前面板的中间一个开口8英寸高16英寸宽。
- 测量和由10英寸的聚碳酸酯片材，这将成为腔室的门上的孔的钢琴铰链马克到18英寸。
- 在门口，钻埋头孔用5/16英寸的钻头，并用3/16英寸的钻头，钻孔的螺丝。确保钻埋头孔在门内侧的螺丝头。
- 准备聚碳酸酯板进行焊接。
- 来回组装NT，背面和侧面板使用上焊接上＃16的底部面板。
- 密封板之间没有任何间隙与焊接式＃16。
- 连接顶部面板，可焊＃16。
- 使用杆夹持器或重课本持有一步到位，而焊缝治愈。
- 通过一个12英寸的一块聚碳酸酯的附加一个1英寸到前面板1英寸的开口，用于门的铰链的安装如下。
- 留出至少24小时的可焊治愈。
- 切2片PEX管12英寸长，1片1英寸长的PEX管材的。
- 用5/16的钻头，钻在每个12英寸PEX管材的约1至2英寸的孔从一端。
- 附上2×12英寸的PEX管材的3/8英寸T型连接器与位于远离连接器的孔。
- 盖上PEX管材的开口端用3/8英寸的插头。
- 附加的钢琴铰链的前面板和门用4-40机器螺钉和螺母。
- 使用门为指导，M方舟所需的钢琴铰链到所述腔室的前部面板上的1英寸的间隔件的孔中。
- 用3/16英寸的钻头，钻孔插入前面板为钢琴铰链。
- 安装门和钢琴铰链使用4-40机器螺钉和螺母的前面板。
- 组装夹钳所示与上侧臂的任一侧上的垫圈和螺母的视频。
- 马克和钻3/16英寸的孔为式夹钳在前面板上，并附加夹钳与4-40机器螺钉和螺母。
- 加入3/8英寸橡胶球密封门的内侧。
- 用5/8英寸无聊的钻头，钻在顶部面板的中心，进气口的孔。
- 钻在背面板上的出口底部/中心有1/2英寸的孔。
- 通过蒸汽室的所述出口孔的后壁推动的3/8英寸穿墙适配器的螺纹部分组装的出口端口。从安装螺母内室举行到位。
- 从聚碳酸酯板取下保护盖。
- 附加的1英寸片PEX管材的到T型连接器，并通过在从内侧腔室顶部的孔强制PEX管材。
- 附加一个3/8英寸90弯头从外部的1英寸PEX管材的顶部。
注：钻在门上的1/2英寸的孔，并插入一个1/2英寸的密封隔成孔。 - 重复步骤1-22仅供空气控制室。
2，机架和空气输送大会
- 如果放置室上在材料清单中提到的车/架，根据制造商的指示组装车。
- 与备用螺母和螺栓，附加一个废料片聚碳酸酯到机架以保持气流调节器。
- 任何地方的废料一块聚碳酸酯，标记和钻3/4英寸的孔为气流监管机构和监管部门重视与坚果提供。
- 连接3/8英寸穿墙适配器与空气流量调节器的入口和出口。
- 组装乙醇量瓶中，用曝气石，＃8挡和快速释放的在线连接。
- 使用3/8英寸Tygon管，连接流量调节器，以使空气泵和乙醇的烧瓶， 如图1。
- 用于空气只室中，附加的气流调节器的出口与入口3/8英寸90弯头用3/8英寸的聚乙烯管， 如图1。
的蒸气腔室的结构如图1所示。示意图。一个T型连接器连接到低噪声的空气泵。 T形连接器的一侧是直接连接到一个气流调节器的空气只有蒸汽室。在其他SIDE是再次分裂，并连接到两个不同的气流调节器，一个用于空气和1为乙醇。空气腔室直接连接到调节器，如图所示。对乙醇蒸汽室，一个气流调节器被连接到曝气石浸渍于液体乙醇中的过滤器的烧瓶中。过滤烧瓶的侧臂端口与空气调节器的输出连接所指示的。合并的乙醇蒸气与空气然后被连接到乙醇蒸气腔室的入口。出口管（未示出）被连接到在室内的换气口。
3，测试蒸汽房及调整色阶乙醇
- 加600毫升190标准乙醇的过滤烧瓶中，将曝气石，挂钩到入口管向烧瓶的侧臂。
- 关闭室门，并打开空气泵。
- 调节气流调节器，使约一半的空气流过液体的醇，因为它是用混合的空气。 Adjus吨的空气只向空气流的乙醇室的酒精和空气的混合流。
- 允许腔室，以测量空气乙醇浓度之前平衡至少30分钟。
- 通过提取5毫升空气用18G针和60毫升注射器通过隔膜测量空气的乙醇浓度。通过绘制柱塞回〜60毫升（1:12稀释）稀释的样品与室内空气。按照制造商的指示使用呼吸测量空气乙醇水平。室内空气的稀释是需要在酒精的检测范围内实现酒精蒸汽的水平。
注意：如果使用不同级别的醇接触的稀释度可能需要进行调整。 - 作为一个起点，因为需要达到约4.5-5克/分升（每克空气升汽化酒精）的空气酒精浓度调节气流调节器。
4，动物育种
- 女性群体内部C578BL / 6小鼠（2-3月龄）至少1周同步卵巢周期。
- 单独房子雄性C57BL / 6小鼠（2-5月龄）至少2周。
- 同步后，把一个单身女性与5天一个男丁，以便交配。
- 以下交配，除去男性和女性单独房子并将其放置在室内。
5，前和产后乙醇蒸气曝光
- 暴露怀孕母畜乙醇蒸气每天4小时的光周期开始于上午10点（灯从早上6点 - 下午6点），除了诞生之日起，以防止小狗死亡。
- 权衡对妊娠天（G）5，G13-G14，G18和-G20大坝监测怀孕;床上用品是天，女性进行称重，以减少搬运改变。
- 每天更换食物的乙醇染毒组，以避免球团矿的消耗吸收到他们的任何乙醇。
- 于年月日出生不公开的动物。出生后暴露母鼠和幼鼠，每天4小时开始时从P1-P12 10。
- 权衡在P2，P8，P12，和P25幼仔;并更改P8和P12的床上用品，尽量减少额外的处理。
- 紧随最后曝光（P12）后，将笼子转移到一个标准的动物房的房间。
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Representative Results
图2A显示了两个孕鼠及新生后代暴露于相对稳定的乙醇蒸气浓度在室内。这些范围。 图2B显示了在妊娠小鼠获得作为时间的函数的的BEC 4-6克/分升之间。的BEC使用标准的醇脱氢酶测定法基于48测量。在G5，能源效益守则迅速上升到〜60毫米2小时暴露后开始见顶，并在4小时暴露期结束。建筑物能源效益守则曝光结束后逐渐下降至〜12毫米的额外4小时后。由G13-14，有一个显着减少的BEC到G5的检测电平的大约60％。此外，的BEC水平上升更慢和下降更加迅速，从而在乙醇中的孕小鼠的血液较短的存在。在短期内（G18-20），的BEC进一步减少到G5的检测电平的大约30％。这些发现与开发技术相一致快速代谢耐受乙醇在孕鼠ENT。 图2C显示，新生儿后代暴露在近30毫米的BEC。建筑物能源效益守则逐渐上升在这些动物中，在4小时暴露期结束时达到峰值，并逐步降低到基线水平8小时4小时曝光模式结束后。与此相反的怀孕母畜，有在暴露初期（P2）的测量新生儿的BEC没什么区别与晚期（P7-P12）在新生儿期。这些结果表明，在新生小鼠没有发展代谢耐受乙醇。
乙醇含量的图2。表征A）乙醇蒸气室水平在整个曝光paradig的妊娠期及产后阶段保持相对稳定米。为了测量这些级别，室内空气通过橡胶隔膜取出一个注射器，与外界空气稀释，并驱逐到一个呼吸的进气口（详见视频）。值分别为5和4种不同的曝光轮获得的妊娠与产后阶段，分别B）在不同时间点测量在怀孕水坝（N = 5-7水坝）所指示的估计妊娠天血液乙醇水平。法律限制中毒（17.4毫或0.08克/分升）由虚线表示。灰色条表示时间的大坝暴露于乙醇。C）同B中，但来自不同窝的新生小鼠（n = 5-9幼崽）。
图3显示，曝光模式并没有显著影响体重增加的水坝或幼崽。 表2显示，乙醇暴露并没有显著影响可行fetu数SES，再吸收的胎儿，胎儿的重量，及胎盘重量（在短期内测量）。 表2的数字还显示，每窝和小狗死亡幼仔的数量并没有显著影响乙醇暴露。 请点击此处查看大图这个数字。
图3。缺乏对大坝和小狗重量乙醇暴露的效果。 A）大坝体重增加估计妊娠天为n = 8-12的函数（）。在5估计妊娠天的重量对应于暴露的第一天。 乙）小狗体重增加的年龄N = 7-9（）的函数测得的重量。对于这两个面板，误差条比符号小。 <A HREF =“https://www.jove.com/files/ftp_upload/51839/51839fig3highres.jpg”目标=“_blank”>请点击这里查看该图的放大版本。
| 尺寸（英寸） | 高度 | 宽度 |
| 顶部 | 32 | 22 |
| 底部 | 32 | 22 |
| 前 | 32 | 14 |
| 后面 | 32 | 14 |
| 方1 | 21.5 | 14 |
| 侧2 | 21.5 | 14 |
| 门 | 18 | 10 |
表1。聚碳酸酯板材的尺寸。
| 空气 | 乙醇 | |
| 7.50±1.08，N = 6 | 7.33±1.52，N = 6 | |
| 平均胎儿重量（g）：〜E18 | 1.04±0.09，N = 6 | 0.82±0.09，N = 6 |
| 平均胎盘重量（g）：〜E18 | 0.12±0.003，N = 6 | 0.14±0.01，N = 6 |
| 重吸收的胎儿的数目：〜E18 | 0.50±0.34，N = 6 | 0.50±0.50，N = 6 |
| 的幼崽/垃圾号码 | 7.11±0.67，N = 9 | 6.89±0.42，N = 9 |
| 死亡幼仔/窝数 | 0.11±0.11，N = 9 | 0.66±0.24，N = 9 |
表2。前置和鼠标蒸汽暴露范式产后表征。
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Discussion
在这里，我们将详细介绍方法的蒸气吸入室的建设。构建室所需要的材料和工具可容易地从多家商业供应商的步骤和腔室的结构相对简单。我们在这里描述的系统不包含任何直列式止回阀以防止反向流动和混合。我们无法测量任何酒精检测空气中的唯一腔说我们没有任何混合或乙醇回流到空气中只有室。只有腔室应定期检查对乙醇蒸汽的空气（应当指出的是，气室应始终乙醇室之前进行测试，以避免检测残余的乙醇蒸气中存在的呼吸和/或注射器）。理想情况下，商会应在动物护理设施中可连续住了电子商务的持续时间鼠笼放置在专用的房间xposure范式，省去了运输的小鼠中，从而减少应力。标准客房配有通风口是所有需要对这种模式。但是，如果房间与其他研究者共享的，它可能有必要将腔室中设有带分离隔间，以尽量减少其它动物暴露于乙醇气味。每室最多可容纳6个标准鼠笼，使得它比曝光的低劳动强度的方法，例如，灌胃。
曝光示例，可以根据具体的实验要求很容易地修改。动物可以在相当于人类怀孕的各个孕期暴露于乙醇。应当指出的是，啮齿动物的发育相当于人类的发展可以根据什么大脑区域被认为是与什么发育过程1的爱好（神经发生，突触融合等）而有所不同。在这项研究中，我们定义了第三个三美斯特相当于为脑发育突增期。鼓励科研人员咨询网站翻译时间49。根据图2B所示的结果，我们建议，在曝光乙醇蒸气（ 例如 ，〜3克/分升）的一个较低的水平开始，并逐渐增加，以补偿因代谢耐受性的发展。在程序的执行情况，调查人员应密切监测的BEC在不同妊娠天，以确定是否这会导致更稳定的水平在怀孕母畜。醇脱氢酶的抑制剂已被用于防止公差在蒸气室50暴露于乙醇小鼠发展。但是，不建议在孕鼠本剂使用，因为研究表明它有潜在的致畸作用，可能复杂化的结果51,52的解释。此外，任何形式的注射剂将造成额外的应力，怀孕坝，潜在的混淆实验53。
相反，怀孕母畜，在新生儿期蒸汽腔暴露不会导致代谢耐受性的发展。的BEC不是P2和P7-12的小鼠中不同。峰的BEC类似于那些在堤坝在G13-14检测并比那些在G18-20检测略高。然而，能源效益守则需要较长的时间恢复到基线的幼崽。这还有待确定，如果在蒸汽室乙醇暴露在妊娠期间改变新生儿的后代代谢乙醇的能力。然而，根据该文献，可以预计该妊娠期间暴露于乙醇表现出轻微减少或代谢乙醇54,55不变容量幼仔。在我们的研究中，我们并没有观察到小狗的平均重量差，而我们的数据显示，妊娠结束后，产妇的BEC几乎没有超越法律中毒无铁道部Ë超过2小时。这些数据表明，母亲没有显著从在产后期间的酒精暴露的影响。然而，这应当进一步探讨尤其如果动物暴露于较高水平的乙醇。
这种曝光模式有一定的局限性。雌鼠在怀孕的前五天没有接触，因为他们在此期间孕育的男性。较短的繁殖间隔可以尝试（ 例如 2-3天），但是这可能会导致女性的怀孕的数量减少。可替换地，动物可以繁殖的时间更短和女性检查交配塞。另一个限制是，所有的小鼠在一个给定的腔室只能暴露于乙醇蒸汽的单一浓度。此外，乙醇蒸气室曝光模式的某些方面的压力，如事实水坝单独圈养在整个多数妊娠和暴露强烈的乙醇气味。它也有可能是乙醇蒸气暴露引起一些改建大坝和/或幼崽的呼吸系统。另外，暴露在新生大鼠并不是人类接触的孕晚期（ 如胎盘，胎儿的单元不存在在这个模型中）在一个完美的模型。尽管如此，我们认为，这种模式的优点大于它的弱点，它可以是一个有用的模型来描述参与FASDs的病理生理机制。
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Disclosures
作者什么都没有透露。
Acknowledgments
由美国国立卫生研究院支持的授予R01-AA015614，R01-AA014973，T32-AA014127和K12-GM088021。作者感谢萨曼塔L.布基斯特技术援助和博士。凯文·考德威尔和唐纳德·帕特里奇的批判性评估的手稿和视频。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Polycarbonate 1/4" clear 48" x 24" | McMaster-Carr | 8574K23 | 10 |
| Foam Rubber bulb seal 3/8"w x 7/32"h | McMaster-Carr | 93085K67 | 10 ft |
| Weld-on #16 | McMaster-Carr | 7515A11 | 3 |
| Piano hinge 12" long | McMaster-Carr | 1658A11 | 2 x 1 ft |
| Hold-down toggle clamps standard | McMaster-Carr | 5126A26 | 8 |
| PEX tubing 1/2" | McMaster-Carr | 51275K88 | 10 ft |
| Barbed Tee tube fitting (Black) Pkg 10 | McMaster-Carr | 5463K608 | 1 |
| Barbed plug fitting (Black) Pkg 10 | McMaster-Carr | 5462K79 | 1 |
| Barbed Elbow tube fitting (Black) Pkg 10 | McMaster-Carr | 5463K596 | 1 |
| 3/8" Through-Wall Adapters, Tube to Threaded Pipe | McMaster-Carr | 5463K851 | 1 |
| Phillips Machine screw 4-40 | McMaster-Carr | 91772A112 | 1 |
| Machine screw hex nut 4-40 | McMaster-Carr | 90480A005 | 1 |
| Panel-mount flowmeter 2-20 | McMaster-Carr | 41945K76 | 3 |
| FLASK, FILTER 1,000 ml 6/PACK | VWR | 89001-800 | 2 |
| Precision Seal Septa | VWR | 89084-490 | 1 |
| VWR Black Rubber Stopper #8 1-hole | VWR | 59581-367 | 1 |
| TUBE TYGON R3603 3/8X9/16 50' | VWR | 89068-556 | 1 |
| TUBE TYGON R3603 1/4X11/16 50' | VWR | 89068-502 | 1 |
| Aerator Stone P2120 | VWR | 32573-007 | 1 |
| 3/8" T-connectors Pk of 20 | VWR | 46600-060 | 1 |
| VWR Disconnectors tapered Pk of 10 | VWR | 46600-110 | 1 |
| 3/8 Hose Barb valved in-line coupling | Colder Products Company | HFCD17612 | 1 |
| Air pump medium capacity | LMI Manufacturers | DB60L | 1 |
| Nexelate Wire Shelving 36"W X 24"D X 63"H | Global industrial | T9A990135 | 1 |
| Stem Casters Set of (4) 5" Polyurethane Wheel | Global industrial | T9A500591 | 1 |
References
- Centers for Disease Control and Prevention (CDC). World Health Organization Who. Alcohol use and binge drinking among women of childbearing age--United States. MMWR Morb Mortal Wkly Rep. 61 (28), 534-538 (2012).
- Ethen, M. K., et al. Alcohol consumption by women before and during pregnancy. Matern Child Health J. 13, 274-285 (2009).
- May, P. A., et al. Prevalence and epidemiologic characteristics of FASD from various research methods with an emphasis on recent in-school studies. Dev Disabil Res Rev. 15, 176-192 (2009).
- Wendell, A. D. Overview and epidemiology of substance abuse in pregnancy. Clin Obstet Gynecol. 56, 91-96 (2013).
- Cudd, T. A. Animal model systems for the study of alcohol teratology. Exp Biol Med (Maywood. 230, 389-393 (2005).
- Valenzuela, C. F., Morton, R. A., Diaz, M. R., Topper, L. Does moderate drinking harm the fetal brain? Insights from animal models). Trends Neurosci. 35, 284-292 (2012).
- Sliwowska, J. H., Song, H. J., Bodnar, T., Weinberg, J. Prenatal Alcohol Exposure Results in Long-Term Serotonin Neuron Deficits in Female Rats: Modulatory Role of Ovarian Steroids. Alcohol Clin. Exp. Res. 10, (2013).
- Sutherland, R. J., McDonald, R. J., Savage, D. D. Prenatal exposure to moderate levels of ethanol can have long-lasting effects on hippocampal synaptic plasticity in adult offspring. Hippocampus. 7, 232-238 (1997).
- Naassila, M., Daoust, M. Effect of prenatal and postnatal ethanol exposure on the developmental profile of mRNAs encoding NMDA receptor subunits in rat hippocampus. J Neurochem. 80, 850-860 (2002).
- Servais, L., et al. Purkinje cell dysfunction and alteration of long-term synaptic plasticity in fetal alcohol syndrome. Proc Natl Acad Sci U S A. 104, 9858-9863 (2007).
- Brady, M. L., Allan, A. M., Caldwell, K. K. A limited access mouse model of prenatal alcohol exposure that produces long-lasting deficits in hippocampal-dependent learning and memory. Alcohol Clin Exp Res. 36, 457-466 (2012).
- Bake, S., Tingling, J. D., Miranda, R. C. Ethanol exposure during pregnancy persistently attenuates cranially directed blood flow in the developing fetus: evidence from ultrasound imaging in a murine second trimester equivalent model. Alcohol Clin Exp Res. 36, 748-758 (2012).
- Cuzon, V. C., Yeh, P. W., Yanagawa, Y., Obata, K., Yeh, H. H. Ethanol consumption during early pregnancy alters the disposition of tangentially migrating GABAergic interneurons in the fetal cortex. J Neurosci. 28, 1854-1864 (2008).
- Godin, E. A., et al. Magnetic resonance microscopy defines ethanol-induced brain abnormalities in prenatal mice: effects of acute insult on gestational day 7. Alcohol Clin Exp Res. 34, 98-111 (2010).
- Gil-Mohapel, J., Boehme, F., Kainer, L., Christie, B. R. Hippocampal cell loss and neurogenesis after fetal alcohol exposure: insights from different rodent models. Brain Res Rev. 64, 283-303 (2010).
- Diaz, J., Samson, H. H. Impaired brain growth in neonatal rats exposed to ethanol. Science. 208, 751-753 (1980).
- Stanton, M. E., Goodlett, C. R. Neonatal ethanol exposure impairs eyeblink conditioning in weanling rats. Alcohol Clin Exp Res. 22, 270-275 (1998).
- West, J. R., Hamre, K. M., Pierce, D. R. Delay in brain growth induced by alcohol in artificially reared rat pups. Alcohol. 1, 213-222 (1984).
- Tran, T. D., Stanton, M. E., Goodlett, C. R. Binge-like ethanol exposure during the early postnatal period impairs eyeblink conditioning at short and long CS-US intervals in rats. Dev Psychobiol. 49, 589-605 (2007).
- Ikonomidou, C., et al. Ethanol-induced apoptotic neurodegeneration and fetal alcohol syndrome. Science. 287, 1056-1060 (2000).
- Heaton, M. B., Paiva, M., Madorsky, I., Siler-Marsiglio, K., Shaw, G. Effect of bax deletion on ethanol sensitivity in the neonatal rat cerebellum. J Neurobiol. 66, 95-101 (2006).
- Ryabinin, A. E., Cole, M., Bloom, F. E., Wilson, M. C. Exposure of neonatal rats to alcohol by vapor inhalation demonstrates specificity of microcephaly and Purkinje cell loss but not astrogliosis. Alcohol Clin Exp Res. 19, 784-791 (1995).
- Kraemer, G. W., Moore, C. F., Newman, T. K., Barr, C. S., Schneider, M. L. Moderate level fetal alcohol exposure and serotonin transporter gene promoter polymorphism affect neonatal temperament and limbic-hypothalamic-pituitary-adrenal axis regulation in monkeys. Biol Psychiatry. 63, 317-324 (2008).
- Schneider, M. L., et al. Moderate-level prenatal alcohol exposure alters striatal dopamine system function in rhesus monkeys. Alcohol Clin Exp Res. 29, 1685-1697 (2005).
- Ramadoss, J., Hogan, H. A., Given, J. C., West, J. R., Cudd, T. A. Binge alcohol exposure during all three trimesters alters bone strength and growth in fetal sheep. Alcohol. 38, 185-192 (2006).
- Ramadoss, J., Lunde, E. R., Pina, K. B., Chen, W. J., Cudd, T. A. All three trimester binge alcohol exposure causes fetal cerebellar purkinje cell loss in the presence of maternal hypercapnea, acidemia, and normoxemia: ovine model. Alcohol Clin Exp Res. 31, 1252-1258 (2007).
- Ramadoss, J., Tress, U., Chen, W. J., Cudd, T. A. Maternal adrenocorticotropin, cortisol, and thyroid hormone responses to all three-trimester equivalent repeated binge alcohol exposure: ovine model. Alcohol. 42, 199-205 (2008).
- Byrnes, M. L., Reynolds, J. N., Brien, J. F. Brain growth spurt-prenatal ethanol exposure and the guinea pig hippocampal glutamate signaling system. Neurotoxicol Teratol. 25, 303-310 (2003).
- Catlin, M. C., Abdollah, S., Brien, J. F. Dose-dependent effects of prenatal ethanol exposure in the guinea pig. Alcohol. 10, 109-115 (1993).
- Phillips, D. E., Krueger, S. K. Effects of combined pre- and postnatal ethanol exposure (three trimester equivalency) on glial cell development in rat optic nerve. Int J Dev Neurosci. 10, 197-206 (1992).
- Phillips, D. E., Krueger, S. K., Rydquist, J. E. S. hort- Short- and long-term effects of combined pre- and postnatal ethanol exposure (three trimester equivalency) on the development of myelin and axons in rat optic nerve. Int J Dev Neurosci. 9, 631-647 (1991).
- Shetty, A. K., Burrows, R. C., Wall, K. A., Phillips, D. E. Combined pre- and postnatal ethanol exposure alters the development of Bergmann glia in rat cerebellum. Int J Dev Neurosci. 12, 641-649 (1994).
- Maier, S. E., Chen, W. J., Miller, J. A., West, J. R. Fetal alcohol exposure and temporal vulnerability regional differences in alcohol-induced microencephaly as a function of the timing of binge-like alcohol exposure during rat brain development. Alcohol Clin Exp Res. 21, 1418-1428 (1997).
- Maier, S. E., Miller, J. A., Blackwell, J. M., West, J. R. Fetal alcohol exposure and temporal vulnerability: regional differences in cell loss as a function of the timing of binge-like alcohol exposure during brain development. Alcohol Clin Exp Res. 23, 726-734 (1999).
- Livy, D. J., Miller, E. K., Maier, S. E., West, J. R. Fetal alcohol exposure and temporal vulnerability: effects of binge-like alcohol exposure on the developing rat hippocampus. Neurotoxicol Teratol. 25, 447-458 (2003).
- Kelly, S. J., Lawrence, C. R. Intragastric intubation of alcohol during the perinatal period. Methods Mol Biol. 447, 101-110 (2008).
- Perkins, A., Lehmann, C., Lawrence, R. C., Kelly, S. J. Alcohol exposure during development: Impact on the epigenome. Int J Dev Neurosci. 31, 391-397 (2013).
- Tran, T. D., Kelly, S. J. Alterations in hippocampal and hypothalamic monoaminergic neurotransmitter systems after alcohol exposure during all three trimester equivalents in adult rats. J Neural Transm. 106, 773-786 (1999).
- Gil-Mohapel, J., et al. Altered adult hippocampal neuronal maturation in a rat model of fetal alcohol syndrome. Brain Res. 1384, 29-41 (2011).
- Popovic, M., Caballero-Bleda, M., Guerri, C. Adult rat's offspring of alcoholic mothers are impaired on spatial learning and object recognition in the Can test. Behav Brain Res. 174, 101-111 (2006).
- Guerri, C., Sanchis, R. Alcohol and acetaldehyde in rat's milk following ethanol administration. Life Sci. 38, 1543-1556 (1986).
- Matta, S. G., Elberger, A. J. Combined exposure to nicotine and ethanol throughout full gestation results in enhanced acquisition of nicotine self-administration in young adult rat offspring. Psychopharmacology (Berl. 193, 199-213 (2007).
- Olney, J. W. Fetal alcohol syndrome at the cellular level). Addict Biol. 9, 137-149 (2004).
- Sulik, K. K. Genesis of alcohol-induced craniofacial dysmorphism. Exp Biol Med (Maywood). 230, 366-375 (2005).
- Lewis, S. M., et al. Modifying a displacement pump for oral gavage dosing of solution and suspension preparations to adult and neonatal mice). Lab Anim (NY). 39, 149-154 (2010).
- Cebolla, A. M., et al. Effects of maternal alcohol consumption during breastfeeding on motor and cerebellar Purkinje cells behavior in mice. Neurosci Lett. 455, 4-7 (2009).
- Becker, H. C., Hale, R. L. Repeated episodes of ethanol withdrawal potentiate the severity of subsequent withdrawal seizures: an animal model of alcohol withdrawal "kindling". Alcohol Clin. Exp. Res. 17, 94-98 (1993).
- Galindo, R., Valenzuela, C. F. Immature hippocampal neuronal networks do not develop tolerance to the excitatory actions of ethanol. Alcohol. 40, 111-118 (2006).
- Workman, A. D., Charvet, C. J., Clancy, B., Darlington, R. B., Finlay, B. L. Modeling transformations of neurodevelopmental sequences across mammalian species. J Neurosci. 33, 7368-7383 (2013).
- Becker, H. C., Diaz-Granados, J. L., Weathersby, R. T. Repeated ethanol withdrawal experience increases the severity and duration of subsequent withdrawal seizures in mice. Alcohol. 14, 319-326 (1997).
- Ukita, K., Fukui, Y., Shiota, K. Effects of prenatal alcohol exposure in mice: influence of an ADH inhibitor and a chronic inhalation study. Reprod Toxicol. 7, 273-281 (1993).
- Varma, P. K., Persaud, T. V. Influence of pyrazole, an inhibitor of alcohol dehydrogenase on the prenatal toxicity of ethanol in the rat. Res Commun Chem Pathol Pharmacol. 26, 65-73 (1979).
- Balcombe, J. P., Barnard, N. D., Sandusky, C. Laboratory routines cause animal stress. Contemp Top Lab Anim Sci. 43, 42-51 (2004).
- Arias, C., Molina, J. C., Mlewski, E. C., Pautassi, R. M., Spear, N. Acute sensitivity and acute tolerance to ethanol in preweanling rats with or without prenatal experience with the drug. Pharmacol Biochem Behav. 89, 608-622 (2008).
- Nizhnikov, M. E., Molina, J. C., Varlinskaya, E. I., Spear, N. E. Prenatal ethanol exposure increases ethanol reinforcement in neonatal rats. Alcohol Clin Exp Res. 30, 34-45 (2006).
