Abstract
骨髓间充质干细胞（BMMSC）的肌腱和韧带受伤的马的治疗应用的最新进展表明，在实验和临床研究改善结果的措施。虽然BMMSC注入到肌腱病变大量（通常为10 - 20个百万细胞），只有相当少数存活（<10％），尽管这些能持续植入后长达5个月。这似乎是在其他物种的共同观测其中BMMSC已注入到其它组织和重要的是要理解，当这个损失发生时，有多少生存最初植入过程和细胞是否被清除到其他器官。跟踪细胞的命运可以通过放射性标记的BMMSC在植入前，允许非侵入性的细胞的位置和细胞数的定量体内成像来实现。
本协议描述的小区labeliNG过程使用锝-99m（TC - 99m的），而这些细胞植入后追踪到马受伤的肌腱。锝- 99m的是一个短暂的（吨1/2 6.01的小时）同位素发射的γ射线，并且可以通过细胞的亲脂性化合物hexamethylpropyleneamine肟（HMPAO）的存在下内化。这些特性使其非常适合在核医学诊所使用了很多不同的疾病的诊断。标记的细胞的命运可以遵循在短期内（长达36小时）通过γ闪烁来量化细胞保留在病灶和细胞分布到肺，甲状腺和其它器官的两个数。该技术适于从血液中的白细胞的标签和可用于图像中的其它器官植入BMMSC。
Introduction
对于患病或受损组织的修复再生策略基于来自于多种组织和注入到患部的多能干细胞。自体BMMSC的肌腱和韧带受伤的马治疗应用的最新进展表明在这两个实验1-5改善成果的措施和临床研究6。马是一个特别有吸引力的模型来评估干细胞的相关治疗的功效，因为它遭受年龄和过度紧张有关的伤害到远侧前肢的筋，它是一个运动动物，而且它是一个大的，促进骨髓恢复和准确植入。肌腱损伤自然愈合与纤维化，但愈合肌腱功能逊色7并且有再度受伤8的高风险。浅数字屈肌腱（SDFT）最常受到影响，因为它已演变作为弹性能存储和经验的高负荷强调，实现节能和高速运动。伤后恢复功能，因此，至关重要。这些损伤是类似于那些影响跟腱在人中它执行类似的功能9。有没有好的治疗方案治疗或达到良好的修为这种伤害，因此基于细胞的再生战略提供了一个有吸引力的机会，改善预后，减少再损伤。
在大多数研究中5年 - 2000万元自体BMMSC直接注入这通常发生在腱体，其因此用作容器的细胞的芯内的病变。一旦注入细胞的命运不明确和不同的细胞标记方法来跟踪单元已经被最近描述。细胞标记有荧光标记示生存只在相对 较小的数量（<10％）10,11。荧光标记必要组织提取和切片用于组织学分析这是耗时和不容易促进在大型动物模型或在临床病例时间分析。在最近的工作中，我们使用了放射性同位素99m锝标记细胞，并按照他们的命运由γ闪烁1。此方法允许细胞递送的不同途径，包括病灶内，经颈静脉或1区域性灌注静脉内经由动脉12或静脉内注射1,12之间进行快速比较。细胞的持久性和分布然后通过各个器官的γ闪烁成像。这已经证明，只有24％的细胞注射的病灶内留在病变24小时1，这是支持通过使用实验产生的损伤，并使用相同的放射性标记5的另一项研究。此外，细胞表现出的能力，家里有限的肌腱病变时delivere改发局部灌注或静脉内而是被分散进入肺部受到后者的路线4。
BMMSC标记铁纳米颗粒是一种替代的方法来跟踪细胞植入到前肢筋13。虽然铁纳米颗粒标记的细胞允许在体内通过MRI细胞跟踪，在大型动物颞研究是由麻醉可以在用于执行磁共振成像扫描每个时间点进行给药的次数的限制。此外，铁纳米颗粒是低信号的MRI这限制了对标记细胞的迁移进入腱体中的信息。可以使用的其它放射性同位素包括铟-111但这遭受更长的半衰期比锝 - 99m的的缺点（2.8天比6.0小时）和较高的γ射线发射能量。此外，细胞存活率已报道可以减少当与铟-111 14标记。锝 - 99m的，另一方面，是经常在两个马和人核用药品标签外周血单个核细胞，并按照其在体内的分布显像。它可以相对容易地采取由使用HMPAO作为连接分子结合的锝细胞，在Tc-99米-HMPAO，至细胞。锝- 99m的-HMPAO标记BMMSC显示出良好的可行性和可在体外增殖4。这个协议的细节注入自然发生病变的前肢SDFT标签和马自体BMMSC的跟踪。
要注意，该协议仅用于被用作研究工具是重要的。其作为临床治疗方法不推荐使用作为上的细胞表型的放射性标记还没有得到完全阐明的效果。
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Protocol
下面授予的存留Veterinarios马拉加，西班牙的动物伦理和福利委员会，以及皇家兽医学院，北Mymms，英国的马匹使用的程序伦理许可本文所描述的情况下，进行基于批准的方案是在临床上使用接收的干细胞为基础的治疗，其包括镇静，骨髓抽吸内，腱注射，局部灌注，静脉注射，后处理程序和疼痛管理和监测植入后马。
1.重点安排，事先提出
- 寻求制度伦理和动物福利的批准，并坚持在开始工作之前当地法律要求。
- 寻求机构的批准与电离辐射工作作为规定由地方和法律法规，包括人员保护的适当水平，环境及处置CONTAM的inated浪费。
- 使用下列入选标准：存在有非创伤性过度紧张损伤（腱炎或desmopathy）的前肢和病变导致肌腱内的缺陷和缺陷的浅屈肌数字肌腱马匹由完整肌腱和/或腱旁组织包围。
注意：检查，诊断为这种伤害和临床准备的马细胞移植已在别处6,15详细说明。
注意：从马的骨髓来源在BMMSC的培养的分离和扩增先前已6,16详述。目前的协议注入BMMSC的SDFT受伤的马每使用自体骨髓上清液（BMS）16毫升4 10万个细胞。 - 使用已经历不超过4通道，用于植入体内的细胞，以避免与高传代数字c相关的潜在的细胞表型或遗传改变ELLS。
- 递送的细胞在BMS所需数量（在24小时内以寒意盒在4 - 8℃）的兽医诊所，其中细胞植入将被执行。
注意：在骨髓上清液中的临床使用间充质干细胞是一种专利程序由ReCellerate公司（美国）和它的使用资可能需要授权。
注意：锝- 99m的是γ发射体（140千电子伏）具有相对短的半衰期（6.0058小时，因此近94％的它衰减到其稳定99锝形式中24小时）。伽玛能量使得它适合于检测通过γ相机（显像）和短半衰期的结果在非常有限的辐射暴露时间既马和动物处理人员。这个协议描述了使用锝 - 99m的-HMPAO [HMPAO标记锝 - 99m的（如高锝酸钠）]细胞内的标记。 - 订购锝 - 99m的从供应商新鲜使得其被输送，并用于标记细胞机智欣2小时洗脱从TC - 99m的发电机。确保锝 - 99m的是作为1 GBq在1ml溶液（供应商的标准缓冲液）。
- 使用所有的缓冲区在室温。执行标记过程中的同位素封闭的房间与酒精清洗所有设备单元和成像（γ闪烁）植入湿巾工作开始之前。
2.准备前肢肌腱的马和超声
- 记录超声波扫描在伤害第一入场（当骨髓吸出），然后在时间点时的放射性标记的细胞注射。
- 与马承重量均匀地在一档和下站在镇静（而非全身麻醉）进行超声和细胞移植。使用detomidine HCl和酒石酸布托啡诺的混合物中，每个在0.01到0.02毫克/公斤静脉施用镇静剂。
注意：恢复是快速的和手术后的治疗，无需特殊注意事项。 - 经过周围神经麻醉适用于患肢（步骤2.6），让马在车站镇静下减少治疗过程中的马的运动。目视检查镇静从降低头部位置和马的神态，而马是细胞注射和伽玛相机采集核素图像在运动过程中的舒适判断的适当水平。
注意：这是没有必要适用兽医软膏上的眼睛（防止干燥），因为下镇静闪烁不受影响，马是能够保持对眼睛的水化。细胞的植入后的监视是非侵入性（超声和γ闪烁）。 - 紧紧夹在头发上覆肌腱（马理发器），然后清除使用洗必泰外科洗手和组合终于酒精剪切区域。
- 应用声耦合凝胶的面积和扫描有条不紊地记录完整的手掌掌骨区域的扫描，依次标有等级1 - 7月17日，具有线性传感器（12 MHz或类似）来获取序列上发生横向和纵向的图像。数字存储图像，使得截面积和最大伤区 4可以与图像分析软件的帮助而获得。
- 准备覆掌的神经立刻远端腕骨无菌注射麻药，以保证皮肤覆盖在肌腱和表面数字屈肌腱的完全脱敏的区域。注入2 ml的mepivicaine的屈肌腱之间既皮下和相邻的掌侧神经（在它们的子筋膜位置）和悬韧带立即远端在肢体上的两侧腕骨。
- 一旦初步扫描已经执行通过用氯己定外科擦洗小号的区域准备植入部位至少5分钟crub溶液，最后用浸泡的纱布醇。请在无菌时尚所有后续步骤。
马间充质干细胞3锝 - 99m的标签
注：可以在前肢的超声检查作为细胞标记和标记细胞植入之间，这样可以降低同位素衰变为肌腱期间进行的细胞标记的步骤。
- 从细胞中除去在BMS因为它与同位素的吸收干扰。要做到这一点，检索BMMSC从寒意箱小瓶（10百万个细胞在1毫升BMS）和颗粒细胞在离心350 XG 5分钟，在室温。小心取出用18G或19G针（连接到2毫升注射器）上清，留下一小滴（≤0.1毫升）在管，以帮助细胞悬浮。保存上清液（在BMS）在无菌的离心管并保持在冰上购买再利用。
- 由FL悬浮细胞培养液中残余的液滴伊京管轻轻地用手指（而不是涡旋）和离开所述管在机架在RT。确保将细胞重悬于完全并且不存在任何可见的细胞团块。
- 准备锝 - 99m的如下。传送1 ml的锝高锝成HMPAO的小瓶用1ml注射器和针头。轻轻混匀但彻底离开背后的铅屏蔽5分钟。注意：此步骤可以在将细胞在纺丝步骤2.1来完成。
- 将所有使用1ml注射器和针头对细胞的锝 - 99m的-HMPAO混合物轻轻混匀。下室温温育30分钟，后面铅屏蔽。
- 在接下来的步骤中，使用钳子（或一块薄纸）打开的离心管的盖，以尽量减少（戴手套）拇指同位素污染并随后其他设备。用2ml的注射器和21g的针来添加或删除的洗涤缓冲液。
注意：使用一个字段同位素监视器的鼓励监视表面和设备的污染。 加入1毫升的PBS的锝 - 99m的-HMPAO细胞混合，盖上盖子，轻轻混匀沉淀细胞如步骤3.1。 - 小心取出PBS到一个新的管（保存此背后铅屏蔽和标签为W1）。重悬细胞沉淀在1ml新鲜的PBS。离心管，去除上清如上（这和标签保存为W2）。
- 通过测量计数W1和W2管和在细胞沉淀计算标记的效率。通过将各管在一个良好的同位素剂量校准仪和记录的放射性每分钟（CPM）计数做到这一点。计算标记效率（如放射性细胞的CPM）/（放射性细胞+上清）×100。
- 在剩余的PBS彻底重悬细胞，然后加入BMS保存步骤3.1。这些细胞是准备病灶内植入。
4.注入锝 - 99m的-HMPAO标记的细胞
- 病灶内植入为超声引导下的肌腱
- 慢慢引入1.5或2英寸（50毫米）20G的针头插入病变的纵向方向与超声换能器，盖在无菌披盖的最大伤区，在线路与针，使针的长度可被超音波识别和尖端如果针头被准确地定位在病变的中心。
- 用适当的屏蔽，收集细胞到2ml注射器（Luer锁紧套口，以尽量减少外部污染的风险，并在铅屏蔽注射器套）用20G的针。丢弃的针小心，不要失去任何液体。现在附加注射器与标记的细胞到针预先位于肌腱。
- 放置下针的超声波探头，以便在所述组织的针道是清晰可见。注入细胞处于缓慢但稳定的步伐进入病灶。确保有注射无阻力。如果此遇到仔细重新定位超声引导下针。检查流体喷射到病灶的超声图像作为包含高回声气泡消声流体上可见。
- 拔出针头，并立即放置压力在针孔，以防止注射细胞的损失，并尽量减少在肢的外表面同位素的传播。马上装扮肢体一层自粘合绷带。马现在已经准备好了γ闪烁。立即执行此。
注意：注射细胞进入腱后，取得空的注射器和针头的计数，以评估可能的直接损失细胞可能残留在注射器中。
- 锝 - 99m的-HMPAO标记的细胞局部灌注
- 按照步骤2.4。
- 在近端掌骨有两个百毫米棉卷纱布包扎定位内侧和外侧采用100mm的橡皮止血带包扎。
- 无菌准备日e皮肤上在横近端籽骨的水平的横向侧指静脉通过用至少5分钟的洗必泰手术擦洗溶液擦洗区，最后用纱布浸泡于酒精。请在无菌时尚所有后续步骤。
- 填写肝素化无菌生理盐水准备100毫米扩展设置了21国祥¾“（0.8×19毫米），蝴蝶针静脉穿刺，然后引入针头插入侧掌侧静脉。一旦静脉进入血液将部分填补扩展集。在鲁尔锁连接器连接鲁尔锁定橡胶帽便于以后的注射标记的细胞。
- 通过收集所述细胞在一个20毫升注射器预装的PBS稀释19毫升的PBS中的MSC。 （ - 40秒30），通过使用18克（1.2×40 MM）皮下注射针在缓慢而稳定的速度皮碗应用细胞。冲洗导管用1毫升的PBS预装在一个syring即
- 取出针，并立即将压力施加在皮肤上有一层5 4×4棉花纱布针孔。然后将一个光绷带用弹性粘结剂在近端籽骨面积和留在原地止血带为注射后30分钟。
- 30分钟后，松开止血带。马现在已经准备好了γ闪烁。
注意：注射细胞后，将获得的空的注射器和针头的计数，以评估可能的直接损失细胞可能残留在注射器中。
5.γ闪烁
- 显像图像
- 获得平面闪烁图像用γ照相机（设定为140千电子伏光电峰使用20％对称窗口）配备了低能量，平行孔准直仪。
- 获取时间为0后，所有图像上站在马注射镇静剂如步骤2.2。时间0闪烁图后，更换绷带光在植入SI忒带衬垫的绷带。删除之前，每个显像检查绷带。
- 获取静态图像使用处理软件的“取得”60秒（每256 256矩阵） - “研究的选择” - “骨静态”的选项。至关重要的是，马并不在图像采集期间移动，因为静态模式选项没有用于校正运动的模块。
- 为病灶内注射，获得从病变区域从腕骨横向图像到远侧末端，对侧肢体，左肺字段和左甲状腺的等效面积。在采集前肢图像，定位两腿之间铅屏，以避免肢体对侧的成像。获得在5分钟的喷射图像（时间0）后，再在1，3，6，12，24，36和48小时。
- 对于局部灌注，获得外侧和足背伽玛图片为5.1.1.3。获取图像5分钟自动对焦之三止血带释放。注入细胞，以评估止血带释放之前计数后立即这将是时间0。它可以是有用的图像的肢体。得到的γ图像在细胞给药后1，3，6，12，24，36和48小时。
- 图像已被获取后，过程中手动使用具有选择为“Sokoloff”色彩和“反转”颜色选项软件的“处理”选项的图像。接下来选择“感兴趣区域”（ROI）和“椭圆形”，因为这可以让选择掩码和运动在病变区的重塑。通过选择“添加到统计”选项获得了投资回报率的计数。确保的感兴趣区（ROI），该相同大小的区域记录每个动物在不同时间点。
- 接着，校正锝的在每个时间点所预测的衰变计数。使用以下方程来校正衰减：A = A 出 O E - （0.693吨/ T 1/2），其中A o为同位素的初始活性，A是衰减校正的放射性在零时间，t是经过时间和T 1/2是半 - 生命的同位素。然后表示在每个时间点作为ROI的一个百分比的校正计数在时间0制定出剩余的，使用下面的公式细胞的百分比：
- 获得平面闪烁图像用γ照相机（设定为140千电子伏光电峰使用20％对称窗口）配备了低能量，平行孔准直仪。
％细胞其余（吨）= 100 - {[（预测衰变（吨） - 衰变（吨））/预测衰变（吨）]}×100
衰减（T）=投资回报率（T）/ ROI（0）×100。
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Representative Results
锝- 99m的-HMPAO掺入BMMSs并不其粘附到组织培养塑料能力产生不利影响，而它们显示出扩散以形成单层的能力（图1），我们还没有完全确定的增殖率或其他细胞表型是否会受到影响。其形态类似于未标记细胞具有典型的纺锤形。蜂窝标记效率（即，摄取标签）通常变化约1.5％至25％。的主要原因的低标记率与在交付99m锝的诊所从其中的Mo-99 /锝- 99m的发电机已洗脱站点的延迟。超过2小时的延迟导致在细胞的标记的一个主要的下降。然而，足够同位素掺入细胞进行γ闪烁长达36小时（ 图2）。能够提高标记效率的因素进行了详细讨论。
1（直接进入损伤）或通过局部灌注经由数字静脉1或动脉12。病灶内植入是可能的，当损伤是肌腱的核心，由完整肌腱组织充当容器的细胞包围。局部灌注是一个更简单的途径给予细胞，因为它们被注入到血管但该方法依赖于期望的干细胞能够“家中”肌腱病变。有限的证据，干细胞可以专门家肌腱病变部位，但这种方法提供了一个有用的实验方法来开发应用程序这可能增加干细胞的归巢能力。
与病灶内递送途径，细胞将被看作是信号的一个重点领域保持被相对局部化与时间即 ，存在有限小号的pread或细胞迁移进入周围肌腱组织。与此相反，将有随时间逐渐减少信号的在注射部位时细胞通过局部灌注通过数字掌静脉（图2）施用。它是常见的损伤内注射肺野为阴性，但在某些情况下，在非常早的时间点的肺上可能显示同位素的信号可以是焦点，然后变得更广义（ 图3）。甲状腺仍然为负这一给药途径。局部灌注同样可以显示在肺部然后成为更加分散，但相比于与病灶内路径观察到的信号是显著更强烈焦信号。甲状腺往往也表现出焦点信号。
将细胞（时间0，预喷射），并从初始伽马闪烁图在感兴趣区域中的计数的初始总放射性同位素计数（时间0，后-i的njection）被标出并用来计算百分比减少计数在每个时间点。这个用于比较的锝- 99m的从初始计数的预测衰变（图4）。计算出的曲线会按照预测的曲线。但是，考虑所预测的衰变考虑后，残留在病灶内给药后注射部位细胞的持久性是约32％（在12小时）和24％（24小时）（ 图4）。
图1.细胞标记，注入和γ闪烁（一）转让BMMSC到微量之前标记与锝- 99m的-HMPAO背后衬铅屏蔽（屏幕和注射器持有人）和辐射监测器和离心。 （ 乙 ）锝- 99m的-HMPAO标记的细胞接种在组织培养皿显示出良好的米的等分试样orphology，活力和增殖; （C）注射超声引导进右前肢SDFT的损伤部位以下锝- 99m的-HMPAO标记的细胞; （ 四）前肢的γ闪烁。伽玛相机定位精确使用机动液压臂和标记的细胞在对侧肢体用腿夹住的铅屏蔽消除任何潜在的。伽玛相机同样位于胸部监控肺野或颈部监测甲状腺领域。 请点击此处查看该图的放大版本。
图2. SDFT的超声和伽玛Scintigrams，前肢在中掌区域（ 一个典型的声像和 （B）横截面。在SDFT病变清晰可见为低回声区域（朝向扫描的顶部）相比未受伤的（正常）组织的深数字屈肌腱（DDFT）邻近和SDFT下方的完整性。病变和筋的相对位置的区域示于下面的示意图。伽马scintigraphs在3,6和12小时后注入的放射性标记的细胞进行示为中喷射出的细胞 （C）转换成通过数字手掌静脉病变或 （D）通过静脉内灌注的区域。在所示的情况下，有放射性标记的细胞在病灶部位中的SDFT（实线箭头）的摄取。摄取由掌侧静脉持久性表示为虚线箭头。 请点击此处查看该图的放大版本。
图的肺组织及甲状腺3.伽玛Scintigrams。从早期的时间点的典型的扫描显示为内注射和标记细胞的局部灌注。请注意，在肺和甲状腺领域的焦点和扩散的信号。 请点击此处查看该图的放大版本。
图4.放射性衰变从利益的地区录制局部注射后，在这匹马，计数从SDFT的伽玛scintigrams测量超过36小时注射到病变部位后。左侧面板：放射性在每个时间点，计算对时间0值。然后在99m锝的放射性衰变atural示出用于比较。右面板：其余单元的估计百分比。这是从所关注的区域中的放射性水平计算的。在这种情况下，细胞在24小时的剩余百分比为24％左右。我们已经执行该协议（标签MSC和植入）的21匹马。 请点击此处查看该图的放大版本。
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Discussion
除了骨髓，干细胞等来源的脂肪组织中分离适合与此协议标签。此外，从冷冻状态的细胞可以恢复并在培养中扩增到所需的号码标记研究12。
用于确定标记所述BMMSC的效率的一个关键因素是锝 - 99m的从钼发生器的洗脱之间的时间在放射性药物，制备锝 - 99m的-HMPAO和使用在临床的放射性药物。有从发电机，使得超出此期间延迟可显著损害细胞标记的效率锝 - 99m的洗脱后标记效率和时间之间的反比关系。因此，需要交付从实验室细胞和交付锝 - 99m的的诊所当天，这些细胞将放射性植入之间的密切配合。传输时间到克里尼因此c是一个重要因素。供应商的数据表中指定的锝 - 99m的衰变减小的放射化学的后2小时后洗脱的纯度可与HMPAO到锝 - 99m的并随后锝 - 99m的-HMPAO截取的量的粘合干扰了由细胞。我们也注意到，培养的细胞在实验室环境下的标记，得到更有效的标记比在诊所。这也报道了另一项研究中马5所在的标记细胞在实验室环境中。此外，根据我们的经验，标签是采取了更有效地被立即标记以下制备从血液或组织样品相比，从培养物制备的细胞的细胞。然而，即使有标记的低效率有与细胞结合超过36小时来执行显像足够标签。
可以实现对白细胞的80％，如果锝 - 99m的从一个使用过 - 40％标记的效率（ - 0.5 ml的1）18在30分钟内和在小体积进行反应新鲜发生器洗出液。 47％的标记效率- 71％已实现，包括马的MSC 19表明它有可能增加在理想条件下MSC的标记效率。
我们经常植入物20亿个细胞的SDFT核病变的治疗，虽然高达40万个细胞被植入了最大的病灶。细胞的类似数目可以经由局部灌注被植入虽然这种方法并不常用，因为更复杂的过程。然而，它可以是用于病变延伸到肌腱表面的周边并期望足够的细胞家到病灶有用。通过γ闪烁跟踪细胞可以提供通过不同的途径施用的细胞的移动有用的信息。在这个协议中，由病灶内途径植入细胞是mos晶体管逻辑ý由病灶内路径保留在注射部位。放射性同位素信号可以在某些情况下，肺野被观察，但它出现在一般有细胞的小迁移远离病灶部位。递送BMMSC通过局部灌注表明，有可能保持细胞在损伤部位，但是，当通过静脉内注射4递送我们没有观察到细胞的归巢。的锝- 99m的-HMPAO标签不影响细胞迁移能力20和，作为锝- 99m的-HMPAO由细胞内在化，并保留在细胞质中，这是不可能干扰附着性能。
信号的来自感兴趣区域的计算可能被低估，因为它是可能的，有可能是从细胞中的标签（从死细胞或释放的来自活细胞的其他机制释放）的显著离解。甲状腺捕捉游离的同位素（TC - 99m的）从死亡或濒临死亡细胞释放，和TC-99M-HMPAO可以由肾脏和肠道被淘汰。这些组织可以通过γ闪烁进行监视，以评估标签的潜在损失。
在细胞标记过程可以适于使用不同的递送途径的测试单元的保持和吸收的各种网站（器官和损伤）。该信号在肺部的焦点性质可以指示细胞聚集这大概分手时间或输入细胞裂解。甲状腺，它可以捕获自由同位素，想必显示下列区域灌注增加摄取，因为注射的细胞和产生的碎片从死亡的细胞有更方便的途径，通过循环中甲状腺。虽然只有约24％的细胞保持24小时后，在损伤内途径进入腱是最有效的递送途径，因为大多数情况下显示无游离锝 - 99m的在甲状腺。从利用这样的协议中获得的信息可以告知未来设计的干细胞应用莫及发展再有效的临床治疗。
该细胞标记协议被改编为从人类医学应用白细胞锝 - 99m的-HMPAO标记马使用。其在本协议中的使用说明在其中肌腱疾病发生自发用于细胞疗法的研究大型动物的适用性。临床病例的招聘可以帮助抵消了更大的动物工作的相关费用更高。用作成像模态标记过程已在小动物模型21进行了描述，我们相信，该协议可以类似地在较大的动物使用，例如羊的其他肌腱疾病调查。
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Technetium99m | Please enquire with local ionisation radiation supplier in accordance with legal requirements. The isotope must be used within 2 hr of elution from the molybdenum-99 generator | ||
| Ceretec - Hexamethylpropyleneamine oxime (HMPAO) | GE HealthCare | Please enquire directly with GE HealthCare | |
| Microfuge, Minispin/Minispin Plus | Ependorf | 22620100 | |
| 18 G and 19 G Needles | Terumo Medical | NN-1838R (18 G); NN1938R (19 G) | |
| Syringes 1 ml and 2 ml | Scientific Laboratory Supplies Ltd | SYR6200 (1 ml); SYR6003 (2 ml) | |
| Microcentrifuge tubes 1.5 ml | Greiner Bio-One Ltd | 616201 | |
| PBS - Phosphate-Buffered Saline | LifeTechnologies | 14190 | |
| Sterile Gauze Swabs | Shermond Ltd | UNG602 | |
| CoflexVet self adhering bandage | Andover Healthcare, Inc. | 3540RB-018 | |
| Ultrasound imaging software | Scion Image, Scion Corporation, USA | ||
| MicasXplus Scintigram processing software | Bartec Technologies Ltd | http://www.bartectechnologies.com/veterinaryscintigraphy.html | |
| Field isotope counter for monitoring isotope | John Caunt U.K. | GMS1800a | http://www.johncaunt.com/ |
| Well counter for isotope measurements, dose calibrator | Capintec Southern Scientific | CRC-25R |
References
- Becerra, P., et al. Distribution of injected technetium(99m)-labeled mesenchymal stem cells in horses with naturally occurring tendinopathy. Journal of Orthopaedic Research. 31, 1096-1102 (2013).
- Nixon, A. J., Dahlgren, L. A., Haupt, J. L., Yeager, A. E., Ward, D. L. Effect of adipose-derived nucleated cell fractions on tendon repair in horses with collagenase-induced tendinitis. American Journal of Veterinary Research. 69, 928-937 (2008).
- Schnabel, L. V., et al. Mesenchymal stem cells and insulin-like growth factor-I gene-enhanced mesenchymal stem cells improve structural aspects of healing in equine flexor digitorum superficialis tendons. Journal of Orthopaedic Research. 27, 1392-1398 (2009).
- Smith, R. K., et al. Beneficial effects of autologous bone marrow-derived mesenchymal stem cells in naturally occurring tendinopathy. PloS one. 8, e75697 (2013).
- Sole, A., et al. Distribution and persistence of technetium-99 hexamethyl propylene amine oxime-labelled bone marrow-derived mesenchymal stem cells in experimentally induced tendon lesions after intratendinous injection and regional perfusion of the equine distal limb. Equine Veterinary Journal. 45, 726-731 (2013).
- Godwin, E. E., Young, N. J., Dudhia, J., Beamish, I. C., Smith, R. K. Implantation of bone marrow-derived mesenchymal stem cells demonstrates improved outcome in horses with overstrain injury of the superficial digital flexor tendon. Equine Veterinary Journal. 44, 25-32 (2012).
- Crevier-Denoix, N., et al. Mechanical properties of pathological equine superficial digital flexor tendons. Equine Veterinary Journal. 29, Suppl S23. 23-26 (1997).
- O'Meara, B., Bladon, B., Parkin, T. D., Fraser, B., Lischer, C. J. An investigation of the relationship between race performance and superficial digital flexor tendonitis in the Thoroughbred racehorse. Equine Veterinary Journal. 42, 322-326 (2010).
- Alexander, R. M. Energy-saving mechanisms in walking and running. The Journal of Experimental Biology. 160, 55-69 (1991).
- Guest, D. J., Smith, M. R., Allen, W. R. Monitoring the fate of autologous and allogeneic mesenchymal progenitor cells injected into the superficial digital flexor tendon of horses: preliminary study. Equine Veterinary Journal. 40, 178-181 (2008).
- Guest, D. J., Smith, M. R., Allen, W. R. Equine embryonic stem-like cells and mesenchymal stromal cells have different survival rates and migration patterns following their injection into damaged superficial digital flexor tendon. Equine Veterinary Journal. 42, 636-642 (2010).
- Sole, A., et al. Scintigraphic evaluation of intra-arterial and intravenous regional limb perfusion of allogeneic bone marrow-derived mesenchymal stem cells in the normal equine distal limb using (99m) Tc-HMPAO. Equine Veterinary Journal. 44, 594-599 (2012).
- Carvalho, A. M., et al. Evaluation of mesenchymal stem cell migration after equine tendonitis therapy. Equine Veterinary Journal. 46, 635-638 (2014).
- Welling, M. M., Duijvestein, M., Signore, A., van der Weerd, L. In vivo biodistribution of stem cells using molecular nuclear medicine imaging. Journal of Cellular Physiology. 226, 1444-1452 (2011).
- Dowling, B. A., Dart, A. J., Hodgson, D. R., Smith, R. K. Superficial digital flexor tendonitis in the horse. Equine Veterinary Journal. 32, 369-378 (2000).
- Kasashima, Y., Ueno, T., Tomita, A., Goodship, A. E., Smith, R. K. Optimisation of bone marrow aspiration from the equine sternum for the safe recovery of mesenchymal stem cells. Equine Veterinary Journal. 43, 288-294 (2011).
- Avella, C. S., et al. Ultrasonographic assessment of the superficial digital flexor tendons of National Hunt racehorses in training over two racing seasons. Equine Veterinary Journal. 41, 449-454 (2009).
- de Vries, E. F., Roca, M., Jamar, F., Israel, O., Signore, A. Guidelines for the labelling of leucocytes with (99m)Tc-HMPAO. Inflammation/Infection Taskgroup of the European Association of Nuclear Medicine. European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 37, 842-848 (2010).
- Trela, J. M., et al. Scintigraphic comparison of intra-arterial injection and distal intravenous regional limb perfusion for administration of mesenchymal stem cells to the equine foot. Equine Veterinary Journal. 46, 479-483 (2014).
- Barbash, I. M., et al. Systemic delivery of bone marrow-derived mesenchymal stem cells to the infarcted myocardium: feasibility, cell migration, and body distribution. Circulation. 108, 863-868 (2003).
- Heckl, S. Future contrast agents for molecular imaging in stroke. Current Medicinal Chemistry. 14, 1713-1728 (2007).
