Abstract
高迁移率族蛋白1（HMGB1）蛋白是参与调节基因组中的许多重要的功能，如转录，DNA复制和DNA修复的非组蛋白的建筑蛋白。 HMGB1结合具有较高的亲和力结构扭曲的DNA，而不是典型的B-DNA。例如，我们发现，HMGB1结合DNA链间交联（ICLS），其共价连接的DNA的两条链，导致螺旋的畸变，并且如果左未修理可引起细胞死亡。由于它们的细胞毒性潜力，几个ICL诱导剂目前用作在临床化疗剂。而ICL形成剂显示某些碱基序列（如 5'-TA-3“是首选的交联网站补骨脂）的喜好，他们在很大程度上引起不加区别的时尚DNA损伤。然而，由ICL诱导剂共价偶联到三链形成性寡核苷酸（TFO），其结合的DNA序列中的特异性方式，可以实现目标DNA损伤。这里，我们使用一个TFO共价结合于5'末端到4'-羟甲基4,5'，8三甲基补骨脂（HMT）补骨脂上产生一个突变报告质粒一个位点特异性的ICL作为工具使用通过在人类细胞HMGB1研究建筑修改，处理和复杂的DNA损伤的修复。我们描述的实验技术编写有关报告质粒TFO定向ICLS，并使用染色质免疫测定法来询问蜂窝背景与TFO定向ICLS HMGB1的关联。此外，我们描述的DNA超螺旋测定法通过测量由HMGB1补骨脂交联的质粒引入超螺旋匝的数量，以评估受损的DNA的特定的架构的修改。这些技术可以用于研究参与TFO定向ICLS或在任何感兴趣的细胞系其他靶向DNA损伤的处理和修复的其它蛋白质的作用。
Introduction
通过Hoogsteen碱基-氢键形成三寡核苷酸（TFOs）结合双链DNA的序列特异性的方式，以形成三重螺旋结构1-5。三缸技术已被用于询问各种生物分子机制，如转录，DNA损伤修复和基因定位（在参考文献6-8中综述）。 TFOs已广泛用于诱导对报告质粒9,10-位点特异性破坏。我们的实验室和其他人以前用过的一个TFO，AG30，拴补骨脂素分子诱导特异性位点DNA间交联（ICLS）在质粒pSupFG1 5,10-12的supF基因。 ICLS是高度细胞毒性，因为这些病变共价交联的两条DNA链，并且如果左未修理，可阻断基因转录和阻碍DNA复制机械13,14。因为它们的细胞毒性潜力，ICL诱导剂已经被用作化学治疗药在治疗的癌症和其他疾病15。然而，ICLS的人类细胞中的处理和修复还不是很清楚。因此，更好地理解在人类细胞参与ICLS的处理的机制可能有助于改善基于ICL-化疗方案的效力。 TFO诱导ICLS及其修复中间体具有引起显著结构扭曲到DNA螺旋的潜力。这种失真是用于建筑的蛋白质，其结合到扭曲的DNA比对规范B型双螺旋DNA 16-20更高的亲和力可能的目标。这里，我们通过染色质免疫沉淀（ChIP）上补骨脂交联的质粒分析研究了高丰度的建筑蛋白的关联，HMGB1与人体细胞ICLS和在调节人体补骨脂交联的质粒DNA的拓扑确定为HMGB1作用肿瘤细胞裂解物。
HMGB1是一种高度丰富和广泛表达非他音建筑蛋白结合到受损的DNA和可替换的结构的DNA底物，比典型的B-型DNA 17-20更高的亲和力。 HMGB1参与几个DNA的代谢过程，如转录，DNA复制和DNA修复16,21-23。我们以前表明，HMGB1结合的TFO定向ICLS 体外以高亲和性20。此外，我们已经证明，缺乏的HMGB1增加TFO定向ICLS的诱变处理和识别的HMGB1的核苷酸切除修复（NER）辅因子23,24。最近，我们已发现，HMGB1是在人细胞中具有TFO定向ICLS相关联，并且其招募这种病变取决于NER蛋白质，XPA 16。的DNA的负超螺旋已经显示由NER 25以促进高效去除DNA损伤的，我们已经发现，HMGB1优先诱导负超螺旋上的TFO定向含ICL-纤溶酶中间基板（相对于非破坏质粒基板）16，提供了一个更好的理解的HMGB1作为NER辅因子的潜在作用（多个）。 ICLS的处理未完全在人类细胞中理解;因此，根据本文所描述的分子工具的技术和开发的实验可能导致涉及ICL修理额外的蛋白质，这反过来又可以起到可以被利用来改善癌症化疗方案的效力作为药理学靶的鉴定。
这里，一个有效的方法，以通过变性琼脂糖凝胶电泳进行了讨论评估TFO定向的ICL形成的质粒DNA的效率。另外，使用含有TFO定向ICLS质粒，技术来使用改性ChIP实验确定在蜂窝上下文HMGB1和ICL-损坏质粒的关联已经描述。此外，一个浅显的方法来研究由日推出拓扑修改Ë建筑HMGB1蛋白质，特别是对人的细胞裂解物ICL-损坏质粒基材已被通过二维凝胶电泳进行超螺旋化验确定。所描述的技术可用于促进DNA修复和建筑的蛋白质中的目标DNA损伤处理的参与对人体细胞的质粒的理解。
我们描述了TFO定向的位点特异性补骨脂ICLS对质粒DNA，和随后的质粒沉淀和超螺旋测定法分别以确定与病变相关联该改变的DNA拓扑蛋白，和蛋白，形成详细协议。这些测定法可以修改与其他DNA损伤剂，TFOs，质粒底物，和感兴趣的哺乳动物细胞系进行。事实上，我们已经表明，至少有一个潜在的独特和高亲和力的TFO结合位点在人基因组26每注释基因内。怎么样以往，为清楚起见，我们在人U2OS细胞的特定突变报道质粒（pSupFG1）描述了这些技术的使用特定的补骨脂素-缀合的TFO（pAG30），因为我们在慕克吉＆Vasquez的，2016年16已经利用。
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Protocol
1.质粒基板TFO定向ICLS的制备
- 孵育等摩尔量的质粒pSupFG1 10,11- DNA（5微克质粒DNA是一个很好的起点）与补骨脂共轭TFO AG30在8微升三缸结合缓冲液[50％甘油，10毫摩尔Tris（pH值7.6），10mM的氯化镁的2]和DH 2 O至40微升在琥珀色管的终体积。通过上下吹打调匀。在37℃水浴12小时的反应。
- 预热UVA灯，以保证全功率输出。将石蜡膜三缸反应，然后将石蜡膜的UVA（365纳米）灯下冰。放置在灯和反应之间的聚酯薄膜过滤器。
- UVA照射为1.8焦耳/ cm 2的总剂量。储存样品于4℃用于进一步使用。
注意：穿适当的防护眼镜和服装的搭配UVA照射。 - 线性200ng的上述制备的质粒与重striction酶生态 R1在使用制造商20μl总体积10倍提供缓冲。热变性，在65℃下进行20分钟的酶。旋转样品10分钟以10,000 xg离心并在4℃下储存。
- 制备50倍的碱性缓冲液[1.5M的氢氧化钠，50毫乙二胺四乙酸（EDTA）]。 0.5毫克琼脂糖加入至50ml卫生署2 O.煮沸以溶解琼脂糖，并将其放置在50℃的水浴中。
- 溶解琼脂糖的温度下降到50℃后，加入1毫升50X碱性缓冲液，混合，然后倒入凝胶进入凝胶托盘。等待一段时间，凝胶在使用前室温固化。
- 加入4微升的0.5M EDTA至20微升线性DNA样品的孵育在室温下10分钟。
- 添加6倍的碱性凝胶加载缓冲液（300毫氢氧化钠，6毫摩尔EDTA，18％（重量/体积）的高分子量的多糖，0.06％溴甲酚绿在卫生署2 O）与样品和为1 kb的DNA梯。
注：这是使用6X碱性凝胶缓冲液很重要，请讨论。 - 负载样品到在冷室的凝胶，并在每平方厘米3.2伏运行过夜在1×的碱性缓冲液（12-16小时）。一旦样品已进入凝胶，放置在凝胶顶部的玻璃板，以防止其浮动。
- 通过浸泡在中和缓冲液[的1M Tris-Cl（上pH值7.6），1.5M氯化钠，3M乙酸钠（pH 5.2）]，在室温下45分钟的凝胶中和样品。
- 在50毫升水中染色用于DNA的凝胶用4微升1％溴化乙锭（EtBr）的在室温下1小时。用水脱色15分钟。通过使用成像系统观察DNA。
注意：乙锭是一种强效的诱变剂，并且可以通过皮肤被吸收。避免与溴化乙锭直接接触。
在人类细胞中TFO定向含ICL-的质粒转染2.免疫沉淀和
- 板400000哺乳动物细胞（ 例如，U2OSØsteosarcoma细胞）每60mm培养皿中的Dulbecco改进的Eagle培养基（DMEM），补充有10％胎儿牛血清（FBS）的无抗生素的转染之前24小时。孵育细胞过夜，在37℃，5％的CO 2。
- 在转染前，温热的生长培养基和磷酸盐缓冲盐水（PBS），以37℃的水浴中。暖转染试剂至室温。
- 孵育30微升转染试剂用1×生长培养基的500微升（混合物1）和2 TFO定向含ICL-于500μl1X生长培养基（混合物2）的质粒中分离14毫升圆底管微克在10分钟室内温度。
- 添加混合1混合2，吹打上下拌匀。孵育在室温下25-30分钟。
- 用温PBS洗涤细胞两次。添加转染混合物中逐滴的方式在整个细胞的板均匀分布。 1毫升生长培养基添加到板，并使终体积至2ml。我们混合二。放置在37℃培养箱，用5％ 的 CO 2的培养板4小时。
- 替换用补充有10％FBS3毫升生长介质的介质，进一步孵育16小时。不要使用抗生素。
- 治疗细胞用80微升每板37％的新鲜的甲醛至大约1％的终浓度，并在不存在光的在室温下孵育10分钟。
注意：甲醛是有毒的，并应根据其安全指示进行处理。甲醛接触可造成伤害皮肤，眼睛和呼吸道。 - 通过加入300微升每板冷却甘氨酸（在市售试剂盒提供）和温育5分钟，骤冷甲醛交联。删除媒体并用冷PBS洗涤两次，然后通过在1ml冷却（4℃）PBS刮入离心管收集细胞。保持冰样本在任何时候。
- 通过在4℃下离心5分钟制备细胞沉淀T使用台式冷冻离心机13400 XG。吸管出上清液，并放置在冰上的细胞沉淀。
- 均匀悬浮颗粒在1ml冷却（4℃）的缓冲液A（在市售试剂盒提供），并在冰上孵育10分钟。通过倒转该管偶尔混合。颗粒细胞作为前（参见上面的步骤2.9）。
- 均匀悬浮在1ml冷冻沉淀（4℃）缓冲液B（在市售试剂盒提供），并通过反相在冰上孵育10分钟，偶尔搅拌。离心沉淀细胞像以前一样（参见上面的步骤2.9）。
- 在200μl冷却缓冲液B再次重悬细胞中加入2微升微球菌核酸酶（MNase）中，并在室温下孵育10分钟。轻弹试管混合反应偶见。通过放置在冰上的管中并加入40毫摩尔EDTA停止MNase反应。颗粒细胞作为前（参见上面的步骤2.9）。
- 悬浮细胞在100μl1×染色质immunoprecipitation缓冲液（芯片）缓冲（以市售试剂盒提供），辅以蛋白酶抑制剂的鸡尾酒。
- 放置悬浮细胞在薄壁离心管。由浮动它们水浴超声器，持续20秒，随后在冰上20秒温育超声处理的样品。重复步骤超声9倍，产生〜800-1,200 bp的片段。
- 向20微升超声处理的样品添加3微升的5M的NaCl和1μlRNA酶A.混合均匀通过涡旋并在37℃下孵育30分钟。随后，加入2微升蛋白酶K，并在65℃孵育2小时。纯化使用PCR纯化试剂盒的样品。在1％琼脂糖凝胶运行的样本及与溴化乙锭可视化。
注：所产生的DNA的最大强度应等于或低于1,000基点。
- 向20微升超声处理的样品添加3微升的5M的NaCl和1μlRNA酶A.混合均匀通过涡旋并在37℃下孵育30分钟。随后，加入2微升蛋白酶K，并在65℃孵育2小时。纯化使用PCR纯化试剂盒的样品。在1％琼脂糖凝胶运行的样本及与溴化乙锭可视化。
- 在三个单独的试管中，添加30微升溶胞产物在一预冷硅化试管中，然后加70微升冷却的1×片外缓冲器的添加了蛋白酶抑制剂。加入1μ克抗免疫球蛋白（IgG），抗组蛋白H3（作为阳性对照），或抗HMGB1抗体与相应的管子。在冷室中连续旋转孵育过夜。
- 悬浮G蛋白珠均匀在冷室。加入4微升G蛋白珠每管和孵化在寒冷的房间与其它旋转2-4小时。
- 用磁力架，沉淀珠子和除去上清液。加入200μl1X片外缓冲器与蛋白酶抑制剂混合物混合以沉淀并在冷室与旋转洗5分钟。重复洗两次澡。
- 执行与高盐沉淀1X缓冲液（含70毫米氯化钠）一个额外的清洗。
- 悬浮用160微升的洗脱缓冲液（在市售试剂盒提供）的粒料，并在37℃用旋转温育30分钟。
- 颗粒珠子收集上清在新管。添加5M的NaCl 6微升和2μl蛋白酶K，并在65孵育过夜C。
- 纯化使用PCR产物纯化试剂盒的DNA和洗脱使用50微升的dh 2 O该DNA
- 进行PCR使用的引物组对感兴趣的区域（多个）16的反应，并解决与的EtBr染色的1％琼脂糖凝胶的产品。
3.超螺旋测定和二维琼脂糖凝胶电泳
- 制备DNA修复合成缓冲液（45毫摩尔的Hepes-KOH，pH值7.8; 70毫氯化钾; 7.4毫MgCl 2的0.9毫摩尔DTT; 0.4毫摩尔EDTA; 2毫摩尔ATP，20μM的的dNTPs，3.4％甘油和18微克牛血清白蛋白） 。存储在-80℃。在冰上解冻之前使用添加40毫米磷酸和2.5微克肌酸磷酸激酶。
- 制备10倍超螺旋缓冲液[500毫摩尔Tris（pH值8.0），500mM的氯化钠，25mM的MgCl 2的，1毫摩尔EDTA]，并储存在室温下。
- 超螺旋线性化质粒DNA pSupFG1 300纳克完全使用1微升牛痘拓扑异构酶I（5-15 U /微升）用1X在10微升反应超螺旋缓冲区。孵育在37℃下该混合物1小时。
- 在冰上解冻的HeLa无细胞提取液24。到完全放松的质粒，加入25微升的HeLa无细胞提取物和DNA修复合成缓冲器。拌匀。添加额外的1微升牛痘拓扑异构酶I的的组合，并在37℃孵育1小时。
- 加入十二烷基硫酸钠（SDS）（1％终浓度）和蛋白酶K（0.25毫克/毫升终浓度）终止反应。孵育在65℃下2小时。
- 投与1倍的Tris硼酸EDTA（TBE）缓冲液中的1％琼脂糖凝胶。添加DNA上样染料和直接加载反应凝胶上间隔至少4车道。在2伏/厘米在1×TBE（尺寸1）在室温下运行8-10小时的凝胶，以解决topoisomers。
注：通过添加54克Tris碱的准备1升的dh 2 O的5倍TBE原液。 27.5克硼酸和20ml的0.5M EDTA（pH 8.0）中的。 - 准备2升1倍的TBE与3微克/毫升氯喹的磷酸盐。浸泡在200毫升该溶液20分钟的凝胶。用铝箔覆盖凝胶托盘。
- 到electrophorese在第二维凝胶，转动凝胶90°以顺时针方式和在含有1x TBE氯喹2伏/厘米运行4-6小时，以解决的正和负超螺旋。
- 染色用的EtBr凝胶用于在摇臂1小时。脱色与卫生署2 O的凝胶15分钟，随后可视使用的成像器的topoisomers的热分布。
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Representative Results
在TFO定向的ICL的形成是用于基于质粒测定法，其用于询问在人类细胞中的建筑蛋白在ICL处理的作用是至关重要的。变性琼脂糖凝胶电泳是确定TFO定向的ICL形成的效率的便利途径。窝藏TFO定向ICLS质粒迁移通过时相比，未交联的对照质粒（ 图1A，泳道2）的琼脂糖凝胶基质（ 图1A，泳道3）较慢迁移率。在泳道2和3（ 图1A）的条带的密度量化揭示了质粒人口的约70％，通过与减缓迁移率（由黑箭头标识）凝胶迁移，这表明在这些质粒的TFO定向的ICL形成。
从人类U2OS细胞TR提取物进行染色质免疫测定法用对照质粒（P）或含TFO定向ICLS质粒ansfected（P-ICL）在P-ICL区域的HMGB1显示富集对照相比（P）的区域，当与抗HMGB1抗体免疫沉淀（ 图2 ，顶板，泳道2和3）。这些结果表明，在人类细胞中ICLS该HMGB1同伙。当HMGB1从经由siRNA处理的细胞中耗尽时，P-ICL特异性富集减少（ 图2，顶板，泳道4和5），如预期。当相同的样品进行使用抗IgG抗体作为抗体特异性控制免疫沉淀，没有检测到PCR扩增，如预期的（ 图2，顶部面板，泳道6-10）。在图2中泳道10-14（顶面板）为用于标准化输入采样。顶部面板显示由TFO定向ICL站点和底面板附近的引物进行PCR扩增显示了PCR扩增时引物远端的TFO定向ICL网站使用了。
HMGB1是一种体系结构蛋白，比它结合完好的DNA结合到DNA扭曲与更高的亲和力。通过二维凝胶电泳解析的DNA超分析表明相比，控制由HMGB1在HeLa细胞提取物（ 图3）的质粒（P）的TFO定向含ICL-质粒（P-ICL）的建筑修饰。上ICL含P衬底由HMGB1诱导优选建筑修改被检测为阴性超螺旋上升。超螺旋质粒迁移速度更快，通过相对宽松或线性质粒琼脂糖凝胶。该topoisomers的分布表明相比于HMBG1存在P（ 图3）在P-ICLS的更超螺旋。负超螺旋DNA运行在氯喹的存在下第二维作为左旋弧。在P-ICL诱导HMGB1的超螺旋似乎包括主要形成一个左撇子弧（〜14 topoisomers鉴定在含有质粒的TFO定向ICL与从对照质粒〜7 topoisomers），这表明形成负超螺旋的topoisomers。总之，这些数据表明，与TFO定向ICLS质粒可以用作一种工具来研究与在人类细胞中的DNA损伤通过染色质免疫沉淀测定建筑蛋白HMGB1的高亲和力关联。此外，通过HMGB1在P-ICL基质的特定的架构修改还可以使用超螺旋测定和二维琼脂糖凝胶分析。
图1： 碱性琼脂糖凝胶电泳量化的质粒pSupFG1 TFO定向ICL形成效率 （A）第1泳道，1 kb的DNA阶梯。第2泳道，PLasmid pSupFG1（P）用作对照;泳道3，TFO定向含ICL-pSupFG1（P-ICL）。携带ICLS质粒在凝胶更慢迁移如泳道3（在凝胶右侧由黑色箭头指示）证实。在泳道2和泳道3条带的（B）的光密度定量表明质粒的约70％是交联的。这个数字已经从16参考修改。 请点击此处查看本图的放大版本。
图2： 在交联质粒的TFO定向含ICL-区域的HMGB1 ChIP实验示范富集 （A）中。 免疫沉淀的片段的PCR扩增组合如下：Resolved上使用一组的TFO定向ICL部位附近近侧引物在1％琼脂糖凝胶（B; P1和P2，顶面板）和第二组用作为进一步（大约2,000 bp）的特异性对照引物从的位点定向的ICL（B; P3和P4，底部面板）。泳道2和3表示靠近TFO定向的ICL的HMGB1富集（泳道3）相对于未受损的DNA（泳道2）。泳道4和5是使用IgG抗体抗体特异性控制。泳道6和7是在输入采样。泳道8是用于PCR反应的阴性对照和不包含模板DNA。 P，质粒pSupFG1。 P-ICL，TFO定向含ICL质粒pSupFG1。这个数字已经从16参考修改。 （B）显示了P1和P2以及P3和P4的引物位点的质粒pSupFG1的示意图。 请点击此处查看大VERS这个数字的离子。
图3：在TFO定向含ICL-质粒负超螺旋的2D琼脂糖凝胶电泳示出的形成，由HMGB1便利的1×TBE琼脂糖凝胶揭示由单独（P）的质粒产生的topoisomers的热分布或补骨脂交联。质粒（P-ICL）。超螺旋物种的迁移率更快相比松弛质粒。每个频带表示从下方或上方的频带分别是相差少一个或多个超螺旋转，一个topoisomer。左手弧表示负超螺旋（-ve）物种和右旋弧表示正超螺旋（+ VE）物种。补骨脂含ICL质粒人口（P-ICL）含有较多的超螺旋品种比对照质粒（P）。 R，宽松的质粒; S，超螺旋质粒; 1D，凝胶电泳的第一维; 2D，凝胶电泳的第二维。这个数字已经从16修改。 请点击此处查看本图的放大版本。
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Discussion
TFO定向ICLS的有效形成取决于两个关键因素：第一，适当的缓冲液成分（ 如 ， 氯化镁 ），并用其靶DNA底物的TFO的孵育时间（取决于TFO的与其靶的结合亲和力双工和浓度使用）;第二，UVA的适当剂量（365 nm）的照射下有效地形成补骨脂交联。最佳三缸形成可以通过使用HPLC或凝胶纯化TFOs来实现。杂质污染的TFO可能会导致不希望的交联产物，其可以在实验结果进一步复杂化。以增加TFOs的共价附着至5'-HMT补骨脂稳定性，TFOs应在-80℃下以等分试样储存，作为TFOs多重冻融可能导致寡核苷酸的降解。后三缸形成到补骨脂定位到特定的网站（ 例如，5'-TA-3'和5'-AT-3'是预ferred补骨脂交联点），补骨脂素ICL的形成需要有UVA照射。 1.8焦耳/厘米2的UVA剂量足以在体外质粒ICLS的最优形成。曝光时间应通过使用光度计来确定。取决于UVA灯源上，除了在365纳米发射UV，灯可能还发射较短波长，这可能会导致形成的整个DNA骨架意想不到的DNA损伤。因为TFO定向含ICL-质粒将被用于在特定网站相关的ICL的DNA修复的研究，例如意外的光化产物可能混淆的DNA修复的研究的结果。因此，聚酯薄膜过滤器应用于防止样品暴露于更短的波长。成功的ICL形成也取决于三缸结构的UVA照射过程中的稳定性。紫外线照射所需要的时间取决于紫外线源的功率。在我们的情况下，20-30分钟即可生成日Ë所需的UVA的剂量。在此期间，由该灯所产生的热可能引起从样品中蒸发水的损失。这种水损失可改变缓冲液的浓度，并可能导致三缸结构不稳定。 UVA照射期间放置在冰上反应将有助于防止样品的蒸发。
为了确定在质粒基板补骨脂交联的形成的效率，将样品在1％碱性琼脂糖凝胶上分辨（ 图1）。用于碱性凝胶电泳最协议提供一个2×碱性凝胶上样染料，但也有一些协议建议碱样染料是没有必要的，因为凝胶的变性缓冲条件足以变性样品。虽然2X染料用浓的DNA样本效果很好，该协议需要装载大量样品体积。因此，使用6X的碱性凝胶样染料。为了确保交联PL补骨脂素的正确变性asmid基板，孵育在装载缓冲液中的样品在室温下10分钟。此外，镁离子可形成的Mg（OH）2在碱性条件下，其俘获的DNA和能导致其沉淀。三缸形成反应缓冲液含有镁离子 ，因此用EDTA孵育的样品，以确保所述Mg 2+之前加入碱样染料与样品螯合是重要的。电泳后，将其中和凝胶，如溴化乙锭不会与在碱性条件下将DNA插层是重要的。
评估TFO定向交联的形成的效率的另一种方法是使用变性聚丙烯酰胺凝胶电泳的，但这种技术更费力，并且需要质粒随后片段的放射性同位素标记的限制性消化。此目前的方法展示了一个相对简单的，但有效的方法至determine TFO定向的ICL形成的质粒衬底的效率。然而，该技术可应用于由其它成型交联剂，以评估ICLS的形成为好。
质粒ChIP实验的成功结果取决于许多因素。协议和故障排除建议中的关键步骤是在这里讨论。参与该测定的关键步骤，包括甲醛交联，微球菌核酸酶消化，超声处理，样品清洗和样本中的甲醛蛋白质-DNA交联的逆转。用于高效蛋白质-DNA交联，它使用新鲜甲醛是重要的。 37％的甲醛股票的瓶子不应该被用于开封后超过六个月，如同置身于光和氧降解甲醛。因此，它也有利于没有光在细胞培养罩执行甲醛交联。另一个重要步骤是微球菌核酸（MNase）digestio样本的n个。 MNase消化不仅切割的基因组DNA为更小的片段，也删除了转染方法，该方法可以显着降低背景期间未递送到细胞的任何挥之不去的质粒。 MNase消化的温育时间应根据经验确定。再消化可以导致样品损失，而更短的孵育时间可能导致低效去除不需要的DNA。优异的结果可以在10分钟温育在室温下用反相管反应偶尔混合看到。为了有效免疫的DNA应该零碎规模800-1,200基点之间。的DNA的这种片段化可以通过样品的透彻超声处理来实现。样品的高效超声处理可以通过重新悬浮于薄壁PCR管粒料，并随后将它们放置在水浴超声波仪来实现。相比连续超声声波脉冲是更有效的。在ADDIT离子，以放置样品上的脉冲，以防止蛋白质降解之间的冰是很重要的，并且同样重要的是，以补充与蛋白酶抑制剂的1×片外缓冲器，因为稳定的蛋白质所必需的抗体识别和随后的沉淀的步骤。然而，在免疫沉淀过程中，由于磁性珠粒的疏水性，非特异性的DNA将被拉低。为了减少由这种非特异性模板的信号，严格洗涤是绝对必要的。最后，样品的蛋白质的DNA交联的适当的逆转是必需的免疫沉淀模板的PCR扩增。以达到最佳效果，样品应温育用SDS和蛋白酶K的至少12小时有使用基于质粒的ChIP实验过的基因组ChIP分析的好处。例如，靶向DNA损伤可容易地使用质粒DNA基底和一个TFO实现，相比于一个基因组基因座的TFO定位病变形成。在一个基板的安装也可以控制使用TFO靶向破坏的质粒时，调制的信号的强度。此外，这种基片可以在所选择的任何细胞系中使用，并与各种候选蛋白协会测试，从而延长对ICLS的处理和修复的研究范围。
该超螺旋测定基于线性和超螺旋质粒DNA的形状的差别。超螺旋DNA质粒是更加紧凑并迁移相比轻松质粒通过凝胶基质更快。协议和故障排除建议中的关键步骤是在这里讨论。因为建筑的蛋白促进在受损的DNA底物，通过放松质粒超螺旋的感应测量拓扑修改，关键是要完全放松与拓扑异构酶I.质粒是必要的检查的DNA松弛通过琼脂糖凝胶引起拓扑异构酶I的程度电泳。本中的超螺旋缓冲的MgCl 2可以沉淀随时间和MgCl 2的存在下通过促进正超形成影响正和负超螺旋的热分布。因此，有益的是单独添加的MgCl 2的组合或每次准备新鲜的缓冲液。为了分离质粒种群的topoisomers，以一个非常低的电压进行凝胶电泳是很重要的（〜2伏/厘米），所以该DNA的迁移是主要基于分子的结构/形状。如果通过拓扑异构酶I的质粒的松弛是不完整的，则温育时间和/或使用的酶的量应增加。完全放松对移动到后续的DNA超螺旋的步骤，因为使用与不完全松弛质粒超螺旋测定可能导致数据的误解，结果可能难以复制之前被确保。一旦并发症ETE松弛已经实现，该超螺旋测定是比较容易进行。该测定的一个重要组成部分是使用一种DNA修复合成缓冲液中。是必需的磷酸肌酸和肌酸磷酸每次产生ATP被添加到混合物中。随后向超螺旋步骤，它通过用SDS和蛋白酶K的SDS有助于从DNA解离的蛋白质和蛋白酶K降解的蛋白质，这使该DNA完整与各级的超螺旋孵育去除质粒DNA的蛋白质是重要。如果蛋白质不完全除去，则topoisomers的热分布将不清晰可见。氯仿：所述DNA不能由苯酚纯化异戊醇并用乙醇沉淀，因为这种方法（和其他）可以缺口该DNA，从而产生超螺旋的损失。另一个重要步骤是加入氯喹的缓冲区。氯喹是嵌入剂和退绕该DNA。上插层，它放松负超螺旋DNA并引入正超螺旋向这有利于含有超螺旋的一个高密度的topoisomers分离松弛的DNA。从而正和负超螺旋可以区分。这通常是一个浅显的实验，是高度重复性当所有点之上被认为。
然而，如果没有超螺旋是明显的，则有必要确定感兴趣的蛋白质的活性。二维超螺旋法已被用于研究由建筑蛋白27促进拓扑修改。该测定中已被用在这里的TFO定向ICLS的DNA损伤处理的人类细胞中的上下文。 HMGB1结合的TFO定向ICLS以高亲和力和特异性，如先前通过体外凝胶电泳迁移率变动分析20并使用16内描述的质粒ChIP实验人类细胞证实。在这里，U唱二维超螺旋测定它已经证明，在负超螺旋的在基片上形成的结合在HeLa的TFO定向ICLS无细胞提取物，HMGB1协助（ 图3），这可能是在修理一个重要步骤病变由于负超螺旋众所周知，以方便通过NER途径25去除DNA损伤。有已在DNA损伤处理牵涉许多建筑的蛋白质，可以使用该测定进行研究。这种方法仅限于在体外研究，不过，这是一个简单的和有用的测定法来询问在DNA损伤修复的情况下的建筑蛋白质的结构与功能的关系。然而，该芯片的协议可以很容易地修改，以研究在基因组中的上下文DNA-蛋白质相互作用，而评估由这种相互作用的DNA超螺旋的影响可能被证明是相当困难的。我们和其他团体有确实performed基于三缸研究1）由质粒DNA进入基因组二月28日至30日 ）的稳定转染通过靶向基因座31-33和3）通过将补骨脂素改性的TFO（和UVA照射）到细胞的质粒转染后10。
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Acknowledgments
笔者想感谢瓦斯奎兹实验室的成员，有益的讨论。这项工作是由健康/美国国家癌症研究所的国家机构[CA097175，CA093279到KMV]的支持;与癌症预防和得克萨斯研究院[RP101501。资助为开放式接入费：健康/美国国家研究院国家癌症研究所[CA093279到KMV。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 5'HMT Psoralen-AG30 | Midland Certified Reagent Co., Midland, TX | Custom order | HPLC (or gel) purified |
| Simple ChIP Enzymatic Chromatin IP Kit | Cell signaling Inc. | 9003 | Manufacturer suggested protocol is optimized for chromatin IP and not for plasmid IP. The control IgG and H3 antibodies as well as the Protein G beads and micrococcal nuclease are supplied by the manufacturer. |
| GoTaq Green | Promega | M7122 | PCR master mix |
| HMGB1 antibody | Abcam | Ab18256 | |
| Wizard Gel and PCR cleanup kit | Promega | A9281 | |
| Chloroquine-diphosphate salt | Sigma | C6628-50G | For two-dimensional agarose gel electrophoresis |
| EcoRI | New England BioLabs | R0101S | |
| GenePORTER transfection reagent | Genlantis | T201015 | |
| Vaccinia Topoisomerase I | Invitrogen | 38042-024 | |
| Blak-Ray long wave ultraviolet lamp | Upland, CA | B 100 AP | UVA lamp |
| EpiSonic Multi-Functional Bioprocessor 1100 | Epigentek | EQC-1100 | Water bath sonicator |
| Mylar filter | GE Healthcare Life Sciences | 80112939 | |
| Agarose | Sigma-Aldrich | A6111 | |
| BIO-RAD Chemidoc | BIO-RAD | XRS+ system | DNA imaging system |
| Glycine | Fisher Scientific | BP381-500 | |
| 37% Formaldehyde | Sigma-Aldrich | F8775-25ML | Used for crosslinking |
| Proteinase K | New England Biolabs | P8107S | |
| DMEM | ThermoFisher | 11965092 | Cell culture media |
| PBS | ThermoFisher | 70013073 | Cell culture |
| Trypsin-EDTA | ThermoFisher | 25200056 | Cell culture |
| Bromocresol green | Sigma-Aldrich | 114-359 | DNA loading dye |
| Siliconized tubes | Fisher Scientific | 02-681-320 | Low retention microfuge tube |
| Tris base | Fisher Scientific | BP152-1 | |
| Boric Acid | Fisher Scientific | A74-1 | |
| EDTA | Fisher Scientific | BP24731 | |
| Photometer | InternationalLight Technologies | ILT1400-A | UVA dose measurement |
| Cell lines | |||
| Human U2OS osteosarcoma | ATCC | ATCC HTB-96 | Cultured according to supplier’s recommendation |
| Human cervical adenocarcinoma HeLa | ATCC | ATCC-CCL-2 | Cultured according to supplier’s recommendation |
| Proximal forward primer | 5′-gcc ccc ctg acg agc atc ac | ||
| Proximal reverse primer | 5′-tag tta ccg gat aag gcg cag cgg | ||
| Distal forward primer | 5′-aat acc gcg cca cat agc ag | ||
| Distal reverse primer | 5′-agt att caa cat ttc cgt gtc gcc |
References
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