Summary

In vivo undersøkelse av antimikrobiell blå lysterapi for multidrug-resistent Acinetobacter baumannii Brenninfeksjoner ved bruk av bioluminescens-bildebehandling

Published: April 28, 2017
doi:

Summary

Infections caused by multidrug-resistant (MDR) bacterial strains have emerged as a serious threat to public health, necessitating the development of alternative therapeutics. We present a protocol to evaluate the effectiveness of antimicrobial blue light (aBL) therapy for MDR Acinetobacter baumannii infections in mouse burns by using bioluminescence imaging.

Abstract

Brenn infeksjoner fortsette å være en viktig årsak til sykelighet og dødelighet. Den økende veksten av multilegemiddelresistente (MDR) bakterier har ført til hyppige feil av tradisjonelle antibiotika behandlinger. Alternative behandlingsformer er sterkt behov for å takle MDR bakterier.

En innovativ ikke-antibiotiske tilnærmingen, har antimikrobiell blått lys (Abl), vist lovende effektivitet mot MDR-infeksjoner. Virkningsmekanismen av ABL er ennå ikke fullt ut forstått. Det er alminnelig antatt at naturlig forekommende endogene fotosensibiliserende kromoforer i bakterier (f.eks, jernfrie porfyriner, flavins, etc.) blir eksitert ved hjelp av Abl, som i sin tur frembringer cytotoksiske reaktive oksygenarter (ROS) gjennom en fotokjemisk prosess.

I motsetning til en annen lys-baserte antimikrobiell tilnærming, antimikrobiell fotodynamisk terapi (aPDT), abl behandling ikke krever medvirkning av en eksogen photosensitizer. Alt den trenger for å tre i kraft er bestråling av blått lys; Derfor er det enkelt og billig. Abl-reseptorene er de endogene lyssensitiverende cellulære i bakterier, i stedet for DNA. Således er abl antas å være mye mindre genotoksiske vertsceller enn ultrafiolett-C (UVC) bestråling, som direkte fører til DNA-skade i vertsceller.

I denne artikkelen presenterer vi en protokoll for å vurdere effektiviteten av abl-terapi for MDR Acinetobacter baumannii infeksjoner i en musemodell for brannskader. Ved å bruke en konstruert bioluminescent belastning, kunne vi invasivt overvåke omfanget av smitte i sanntid i levende dyr. Denne teknikken er også et effektivt verktøy for å overvåke den romlige fordeling av infeksjoner hos dyr.

Introduction

Burn infeksjoner, som ofte rapportert på grunn av kutane termiske skader, fortsette å være en viktig årsak til sykelighet og dødelighet 1. Styringen av forbrennings infeksjoner er blitt ytterligere svekket av den økende veksten av multilegemiddelresistente (MDR) Bakteriestammene 2 på grunn av den massive bruk av antibiotika. Et viktig MDR Gram-negative bakterier er Acinetobacter baumannii, som er kjent for å være assosiert med siste sår kjempe og er resistente overfor nesten alle tilgjengelige antibiotika 3. Tilstedeværelsen av biofilm på den skadede brennpunktene har blitt rapportert 4, 5 og antas å forverre toleranse overfor antibiotika og vertsforsvar 6, 7, forårsaker vedvarende infeksjoner 8, 9. Derfor er det en pressing behov for utvikling av alternative behandlinger. I den nylig annonserte Nasjonal strategi for bekjempelse av antibiotikaresistente bakterier, har utviklingen av alternative behandlingsformer mot antibiotika blitt bemerket som en handling av regjeringen i USA 10.

Lys-baserte antimikrobielle tilnærminger, som navnet indikerer, krever lys bestråling med eller uten andre midler. Disse metodene inkluderer antimikrobiell fotodynamisk terapi (aPDT), ultrafiolett-C (UVC) bestråling, og antimikrobiell blått lys (ABL). I tidligere studier har de vist lovende effektivitet i å drepe MDR-bakteriestammer 11, 12, 13. Blant de tre lys-baserte tilnærminger, har ABL økt oppmerksomhet de siste årene på grunn av sine iboende antibakterielle egenskaper uten bruk av fotosensitisere 14. i komparativeison til aPDT, ABL bare omfatter bruk av lys, mens aPDT krever en kombinasjon av lys og et fotosensibiliserende middel. Derfor er ABL enkel og rimelig 14. I forhold til UVC er abl antas å være mye mindre cytotoksiske og genotoksiske vertsceller 15.

Målet med denne protokollen er å undersøke effektiviteten av abl for behandling av brann infeksjoner forårsaket av MDR A. baumannii i en musemodell. Vi bruker bioluminescerende patogene bakterier for å utvikle nye musemodeller av brann infeksjoner som gjør at ikke-invasiv overvåkning av bakteriebelastning i sanntid. Sammenlignet med den tradisjonelle metoden for kroppsfluid / vevsprøver og påfølgende platekledning og kolonitelling 16, gir denne teknikken nøyaktige resultater. Prosessen med prøvetagnings kunne innføre en annen kilde til eksperimentelle feil. Siden den bakterielle luminescens intensitet er lineært proporsjonal med tilsvrende bakterie CFU 17, kan vi direkte måle overlevelse av bakterier etter en viss dose av lysbestråling. Ved å overvåke bakteriemengden i levende dyr som mottar lyset behandling i sann tid, kan kinetikken av bakteriedrep karakteriseres ved anvendelse av et betydelig redusert antall mus.

Protocol

1. Fremstilling av bakteriekultur Legg 7,5 ml hjerne-hjerte-infusjon (BHI) medium til et 50 ml sentrifugerør. Seed A. baumannii cellene i BHI-medium og deretter inkubere A. baumannii kulturen i en inkubator (37 ° C) i 18 timer. Sentrifuger kulturen av celler ved 3500 x g i 5 minutter, fjern supernatanten, og vask pelletene i fosfat-bufret saltvann (PBS). Re-suspendere bakteriene pelletene i frisk PBS og grundig pipettere suspensjonen. Samle 100 pl av bakteries…

Representative Results

A. baumannii belastningen som vi brukte er en MDR klinisk isolat, som rapportert tidligere 12, 17. Bakteriestammen ble gjort selvlysende ved transfeksjon av luxCDABE opera 11. Figur 1A viser de suksessive bakteriell luminescens bilder fra en representativ mus brenne infisert med 5 x 10 6 A. baumannii og eksponert til en enkel ABL eksponering ved 24 tim…

Discussion

Abl er en ny fremgangsmåte for behandling av infeksjoner. Siden dens virkningsmekanisme er helt forskjellig fra den til kjemoterapi, er det mer av et fysikalsk. Det middel som medierer den antimikrobielle virkning er blått lys bestråling (400-470 nm). Med utviklingen av blå lysdioder, fikk vi tilgang til en effektiv og enkel lys-baserte antimikrobielle tilnærming for MDR infeksjoner.

I denne protokoll har vi beskrevet utviklingen av en musemodell for brann infeksjoner forårsaket av et …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported in part by the Center for Integration of Medicine and Innovative Technology (CIMIT) under the U.S. Army Medical Research Acquisition Activity Cooperative Agreement (CIMIT No. 14-1894 to TD) and the National Institutes of Health (1R21AI109172 to TD). YW was supported by an ASLMS Student Research Grant (BS.S02.15). We are grateful to Tayyaba Hasan, PhD at the Wellman Center for her co-mentorship for YW.

Materials

IVIS  PerkinElmer Inc, Waltham, MA IVIS Lumina Series III Pre-clinical in vivo imaging
Light-emitting diode LED VieLight Inc, Toronto, Canada  415 nm Light source for illumination
Power/energy meter Thorlabs, Inc., Newton, NJ PM100D Light irradiance detector
Mouse  Charles River Laboratories, Wilmington, MA BALB/c 7-8 weeks age, 17-19 g weight
Acinetobacter baumannii  Brooke Army Medical Center, Fort Sam Houston, TX Clinical isolate Engineered luminescent strain
Insulin Syringes Fisher Scientific 14-826-79 BD Lo-Dose U-100 Insulin Syringes for injection
Sodium Chloride Fisher Scientific 721016 0.9% Sodium Chloride
Phosphate Buffered Saline, 1X Solution Fisher Scientific BP24384  A standard phosphate buffer used in many biomolecular procedures
Brain Heart Infusion Fisher Scientific B11059 Bacterial culture medium
Falcon 15mL Conical Centrifuge Tubes Fisher Scientific 14-959-70C For bacterial suspension centrifuge
Benchtop Incubated Orbital Shakers Laboratory Supply Network, Inc, Atkinson, NH  Incu-Shaker Mini For culturing of bacteria
Inoculating Loops Fisher Scientific 22-363-605   For smearing bacterial inoclum on burn surface of mice
Fisher Scientific Redi-Tip Pipet Tips, 1-200µL Fisher Scientific 02-707-502 Pipet Tips
Thermo Scientific Sorvall Legend X1 Centrifuge Fisher Scientific 75-004-220 For bacterial suspension seperation
Brass Block Small Parts, Inc., Miami, FL 10 mm by 10 mm  For creation of burns in mice
Extreme Dragon PBI/Kevlar High-Heat Gloves Superior Glove Works Ltd, Cheektowaga, NY PBI83514  Heat Resistant Gloves
Greiner dishes Sigma-Aldrich Co. LLC P5112-740EA 35 mm ×10 mm
Corning Digital Hot Plate Cole-Parmer Instrument Company, LLC UX-84301-65 10" x 10", 220 VAC, for boiling water 
Mouse/Rat Thin Line Water Heated Surgical Bed E-Z Systems EZ-211 Prevents heat loss and hypothermia during surgery

References

  1. Gibran, N. S. Summary of the 2012 ABA Burn Quality Consensus conference. J Burn Care Res. 34 (4), 361-385 (2013).
  2. Sommer, R., Joachim, I., Wagner, S., Titz, A. New approaches to control infections: anti-biofilm strategies against gram-negative bacteria. Chimia (Aarau). 67 (4), 286-290 (2013).
  3. Peleg, A. Y., Seifert, H., Paterson, D. L. Acinetobacter baumannii: emergence of a successful pathogen. Clin Microbiol Rev. 21 (3), 538-582 (2008).
  4. Uppu, D. S. Amide side chain amphiphilic polymers disrupt surface established bacterial bio-films and protect mice from chronic Acinetobacter baumannii infection. Biomaterials. 74, 131-143 (2016).
  5. Schaber, J. A. Pseudomonas aeruginosa forms biofilms in acute infection independent of cell-to-cell signaling. Infect Immun. 75 (8), 3715-3721 (2007).
  6. Hoiby, N., Bjarnsholt, T., Givskov, M., Molin, S., Ciofu, O. Antibiotic resistance of bacterial biofilms. Int J Antimicrob Agents. 35 (4), 322-332 (2010).
  7. Lebeaux, D., Ghigo, J. M., Beloin, C. Biofilm-related infections: bridging the gap between clinical management and fundamental aspects of recalcitrance toward antibiotics. Microbiol Mol Biol Rev. 78 (3), 510-543 (2014).
  8. Akers, K. S. Biofilms and persistent wound infections in United States military trauma patients: a case-control analysis. BMC Infect Dis. 14, 190 (2014).
  9. Burmolle, M., et al. Biofilms in chronic infections – a matter of opportunity – monospecies biofilms in multispecies infections. FEMS Immunol Med Microbiol. 59 (3), 324-336 (2010).
  10. . National strategy on combating antibiotic-resistant bacteria Available from: https://www.whitehouse.gov/sites/default/files/docs/carb_national_strategy.pdf (2014)
  11. Dai, T. Photodynamic therapy for Acinetobacter baumannii burn infections in mice. Antimicrob Agents Chemother. 53 (9), 3929-3934 (2009).
  12. Zhang, Y. Antimicrobial blue light therapy for multidrug-resistant Acinetobacter baumannii infection in a mouse burn model: implications for prophylaxis and treatment of combat-related wound infections. J Infect Dis. 209 (12), 1963-1971 (2014).
  13. Dai, T., et al. Ultraviolet C light for Acinetobacter baumannii wound infections in mice: potential use for battlefield wound decontamination?. J Trauma Acute Care Surg. 73 (3), 661-667 (2012).
  14. Dai, T. Blue light for infectious diseases: Propionibacterium acnes, Helicobacter pylori, and beyond?. Drug Resist Updat. 15 (4), 223-236 (2012).
  15. Yin, R. Light based anti-infectives: ultraviolet C irradiation, photodynamic therapy, blue light, and beyond. Curr Opin Pharmacol. 13 (5), 731-762 (2013).
  16. Haisma, E. M. Inflammatory and antimicrobial responses to methicillin-resistant Staphylococcus aureus in an in vitro wound infection model. PLoS One. 8 (12), e82800 (2013).
  17. Wang, Y. Antimicrobial Blue Light Inactivation of Gram-Negative Pathogens in Biofilms: In Vitro and In Vivo Studies. J Infect Dis. 213 (9), 1380-1387 (2016).
  18. Chen, D., Shen, Y., Huang, Z., Li, B., Xie, S. Light-Emitting Diode-Based Illumination System for In Vitro Photodynamic Therapy. Int J Photoenergy. 2012 (2), (2012).
  19. Demidova, T. N., Gad, F., Zahra, T., Francis, K. P., Hamblin, M. R. Monitoring photodynamic therapy of localized infections by bioluminescence imaging of genetically engineered bacteria. J Photochem Photobiol B. 81 (1), 15-25 (2005).
  20. Hamblin, M. R., Zahra, T., Contag, C. H., McManus, A. T., Hasan, T. Optical monitoring and treatment of potentially lethal wound infections in vivo. J Infect Dis. 187 (11), 1717-1725 (2003).
  21. Rowan, M. P. Burn wound healing and treatment: review and advancements. Critical Care. 19, 243 (2015).
  22. Marx, D. E., Barillo, D. J. Silver in medicine: The basic science. Burns. 40 (Supplement 1), S9-S18 (2014).
  23. Heyneman, A., Hoeksema, H., Vandekerckhove, D., Pirayesh, A., Monstrey, S. The role of silver sulphadiazine in the conservative treatment of partial thickness burn wounds: A systematic review. Burns. 42 (7), 1377-1386 (2016).
  24. Roberts, J. A. Individualised antibiotic dosing for patients who are critically ill: challenges and potential solutions. Lancet Infect Dis. 14 (6), 498-509 (2014).
  25. Dai, T. Blue light eliminates community-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus in infected mouse skin abrasions. Photomed Laser Surg. 31 (11), 531-538 (2013).
  26. Uppu, D. S. Amide side chain amphiphilic polymers disrupt surface established bacterial bio-films and protect mice from chronic Acinetobacter baumannii infection. Biomaterials. 74, 131-143 (2016).
  27. Donlan, R. M., Costerton, J. W. Biofilms: survival mechanisms of clinically relevant microorganisms. Clin Microbiol Rev. 15 (2), 167-193 (2002).
  28. Olsen, I. Biofilm-specific antibiotic tolerance and resistance. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. , (2015).
  29. Song, H. H. Phototoxic effect of blue light on the planktonic and biofilm state of anaerobic periodontal pathogens. J Periodontal Implant Sci. 43 (2), 72-78 (2013).
  30. Rosa, L. P., da Silva, F. C., Viana, M. S., Meira, G. A. In vitro effectiveness of 455-nm blue LED to reduce the load of Staphylococcus aureus and Candida albicans biofilms in compact bone tissue. Lasers Med Sci. 31 (1), 27-32 (2015).
  31. Guffey, J. S., Wilborn, J. In vitro bactericidal effects of 405-nm and 470-nm blue light. Photomed Laser Surg. 24 (6), 684-688 (2006).
  32. Enwemeka, C. S., Williams, D., Enwemeka, S. K., Hollosi, S., Yens, D. Blue 470-nm light kills methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) in vitro. Photomed Laser Surg. 27 (2), 221-226 (2009).
  33. Bumah, V. V., Masson-Meyers, D. S., Cashin, S. E., Enwemeka, C. S. Wavelength and bacterial density influence the bactericidal effect of blue light on methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). Photomed Laser Surg. 31 (11), 547-553 (2013).
  34. Maclean, M., MacGregor, S. J., Anderson, J. G., Woolsey, G. Inactivation of bacterial pathogens following exposure to light from a 405-nanometer light-emitting diode array. Appl Environ Microbiol. 75 (7), 1932-1937 (2009).
  35. Kim, M. Optical lens-microneedle array for percutaneous light delivery. Biomedical Optics Express. 7 (1o), 4220-4227 (2016).

Play Video

Cite This Article
Wang, Y., Harrington, O. D., Wang, Y., Murray, C. K., Hamblin, M. R., Dai, T. In Vivo Investigation of Antimicrobial Blue Light Therapy for Multidrug-resistant Acinetobacter baumannii Burn Infections Using Bioluminescence Imaging. J. Vis. Exp. (122), e54997, doi:10.3791/54997 (2017).

View Video