Introduction
该方法的目标是创造在大鼠为严重，流动引起的肺动脉高压可再现模型，并测量它的原理的血液动力学和组织病理学终点。
肺动脉高压（PAH）是一种临床综合征，它包括肺血管阻力逐步增加，导致右心室衰竭而死亡。内肺动脉高血压疾病（PH）的上级疾病谱，多环芳烃是最严重的形式，另一种仍然没有治愈1。在PAH的根本动脉的特点是血管重塑的一种典型形式，闭塞血管腔。正常的非肌型容器和内侧容器层的肥大的肌被视为在PAH早期疾病的现象，也见于其他形式的PH 2，并且被认为是可逆3。作为一个PAHdvances，内膜层开始改造，最终形成特征性病变内膜2。内膜型肺血管重构是独家PAH，目前认为是不可逆的4。
由于PAH是一种罕见的疾病，在推进其病理学的理解和新疗法的发展严重依赖动物模型。大鼠monocrotalin（MCT）模型是一个简单的单击模式，已经，并且现在仍然是经常使用的。 MCT是导致伤到肺小动脉和地区炎症5毒素。 60毫克/千克的MCT导致增加的平均肺动脉压（mPAP），肺血管阻力（PVR），以及3后右心室肥大（RVH） - 4周5。该组织形态学无内膜病变5的特点是隔离膜肥厚。该MCT从而大鼠模型表示的PH适度的形式，而不是PAH，虽然它通常呈现为后者。
在与先天性左向右分流（PAH-CHD）相关的PAH的孩子，肺血流增加被认为是内膜病变的7，8，9发展的重要触发。在大鼠中，肺血流增加可由创作腹主动脉和腔静脉，在1990年10首先描述的技术之间的分流来诱导。替代创造增加肺血流量是单侧肺或锁骨下肺动脉吻合术11。这些模型的概念缺点包括由肺，或由于肺血管的医源性损伤致残留肺和自适应通路激活潜在补涨肺动脉吻合术，既混淆增加肺血流量的影响。
当创建主动脉腔静脉分流和肺血流增加是诱发作为第二砸在MCT处理的大鼠，发生特点内膜病变，和多环芳烃是一种严重的和相关的右心室衰竭（RVF）制定3周上升后流程12。 PAH的此模型中的血液动力学级数可以在体内通过超声心动图和右心脏导管插入术进行评估。血管组织形态学，血管壁的厚度，小动脉闭塞程度和参数右心室衰竭形成PAH的体外表征的支柱。
这种方法描述了主动脉腔静脉分流术（AC-分流）详细的手术方案，对心脏导管检查和血管组织形态学定性和定量评估。
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Protocol
涉及受试动物的程序已通过荷兰中央委员会的动物实验和动物保健委员会在格罗宁根大学医学中心（NL）。使用了这两个的Wistar和刘易斯大鼠180和300克之间的权。
1.住房和驯化
- 在中央动物设施，房屋大鼠的每笼5组到任后。在7天的适应期后，习惯于老鼠对人类的处理，但不进行任何实验程序。
2.准备和无菌Monocrotalin注射
- 为1毫升60毫克/毫升monocrotalin（MCT）溶液，称重60毫克monocrotalin的在2毫升管中。添加0.9％的NaCl的700微升。加入1 M盐酸200微升。温热下热运转的自来水和涡流它在管中的溶液。使用6N的氢氧化钠以使pH向7.0。使用无菌技术制备的MCT的用于注入啮齿动物。 注入无菌60毫克/毫升的MCT每kg皮下颈部溶液（0.3毫升的60毫克/毫升的MCT为一个300-G大鼠）1毫升。注意：我们不喜欢使用更小的体积由于机会较大的注射剂量不恰当的。
3.主动脉腔静脉分流手术
- 麻醉。
- 填用5％异氟烷/ 100％O 2的感应腔（流速：1升/分钟），然后将鼠在腔室。通过执行后脚趾捏检查麻醉深度足够。称量老鼠。
- 刮脸和清洁腹部过了约8厘米长，宽3厘米的区域。放置老鼠在其上通过一个无菌垫覆盖的热垫（37℃）背部。
- 放置吻在通气面罩/罩2 - 3％异氟烷/ 100％O 2（流速：1升/分钟）。通过执行后趾压紧检查麻醉深度。应用眼膏，以防止干燥，而在麻醉下。
- 分流苏尔格里。
- 擦洗氯化物hexidine消毒皮肤。注入0.01毫克/千克丁丙诺啡皮下术后镇痛。
- 使用无菌器械进行手术。作出切口在腹部＃10解剖刀刀片上的中线，在开始向下延伸到正好在生殖器上述膈下1厘米。
- 抬起用棉签肠道，盖在无菌，湿纱布（0.9％NaCl）中的肠，并把它们放置在动物的左侧。
- 用棉签到附加腹主动脉和下腔静脉周围组织的膜分离。
注意：不要解剖主动脉和下腔静脉之间的隔膜。 - 使用分裂镊子，去除血管周围主动脉脂肪只是分叉以上，仅在主动脉的右侧，并且只在其中针将被插入的位点。
- 用棉签主动脉和下腔静脉由2毫米分离苏佩rior到针会为了要Biemer钳创造空间被插入的位点。
- 在这个区域中，首先放置一个松散结扎（5-0缝合）围绕主动脉。通过放置一个科赫尔钳在其上创建的结扎张力，然后将科赫尔优于切口（ 图1A）。放置Biemer钳只是优于结扎（FIGURē1A）。
- 用棉签，如向远端尽可能压缩腔静脉阻塞的流动（ 图1A）。弯针（18克在这个协议）成45度角，与朝外面（ 图1A）孔口指点。
- 以90度的角度，插入针在主动脉，只是分叉上方，与针指向的孔向左侧（ 图1A）。操纵针向左的前端，将其插入腔静脉。
注：针尖现在应该VISI竹叶提取在腔静脉（ 图1B）。 - 使用第二棉签推剩余的血液在主动脉出插入位点的，以防止血栓形成。干周围用无菌纱布分流的区域，以便使胶充分粘。
- 拉动整个针从主动脉并立即应用组织胶一滴到在主动脉穿刺部位。确保不要棉签粘上来组织。松开主动脉。
- 拉动和释放的主动脉近端分流结扎手动验证分流。松动应上色腔静脉远端鲜红色分流和分流站点上创建的动荡。
注：紧缩将会把血液中的腔静脉回暗红色。 - 放置肠放回动物。关闭肌肉层和皮肤可吸收缝线4-0。通风用100％O 2的动物从麻醉中恢复。
注意：不要让一个ANI发作无人值守，直到它已经恢复了足够的意识，以保持胸骨斜卧。
- 假手术。
- 执行上述所有的方法，只是在插入针的进入主动脉。
- 手术后的护理。
- 放置老鼠在单个笼和入在37℃的培养箱，直到第二天早上。
- 周围手术后6小时，注入0.01毫克/千克丁丙诺啡皮下术后镇痛。如果老鼠显示不适的迹象，第二天早上重复。
注意：手术后第3天，老鼠喜欢吃少喝（当饲料及饮水与药物混合，这一点尤为重要）。大多数老鼠显示手术后第3天的正常行为。如果没有，密切监测。 1周后超过15％的重量损失被认为是不正常的，并且这样的大鼠应在循环血液量而麻醉下的提取安乐死。
注意：在这个协议中，该动物是由循环血液量而麻醉下的提取安乐死。
- 手术（MF8）对早期细胞和功能性反应肺血流增加（ 例如，基因上调或早期转录因子）后牺牲1天。
- 手术（MF14）为早期PAH血管表型（膜肥厚内膜无损伤）后牺牲1周。
- 手术（MF21）对于晚期PAH血管表型（标记膜肥厚和内膜增生）与RVP和肺动脉压轻度升高后牺牲2周。
- 手术（MF28）为终末期PAH血管型（标内膜闭塞）和强大的海拔RVP和肺动脉压后牺牲3周。右心衰竭的临床症状在这个阶段很常见。
- 第28天（MF-RVF后牺牲）对PAH相关的右心室衰竭（RVF），临床上定义为呼吸困难，严重嗜睡，体重下降（<1周10％）。终止时，老鼠的这些迹象之一是存在。通常情况下，老鼠患天28和35之间，这些症状，如果无人看管，在该时间间隔期间死亡油然而生。
5.右心导管
- 麻醉。
- 填用5％异氟烷/ 100％O 2的感应腔（流速：1升/分钟），然后将鼠在框中。通过执行后脚趾捏检查麻醉深度足够。称量老鼠。
- 剃和在大鼠的右腹侧清洁颈部和，对于心动协议，胸部和上腹部。
- 放置在其上的热垫（37℃）背面的大鼠和放置鼻子在通气面罩/罩2 - 3％异氟烷/ 100％O 2（流速：1升/分钟）。吻应该面对朝研究员。
- 超声心动图的协议。
- 根据由布里泰恩等人描述的协议来执行超声心动图。在朱庇特13。
- 导尿协议。
注意：此协议使用一个预成形端部的刚性套管弯曲20度，以指导15厘米硅导管 ，从尖端球2毫米。与其孔口微曲到内部的20-G 针用于插入套管插入右颈静脉（见材料的列表）。在PAH进展和控制的任何阶段只可在该协议中使用。- 用消毒氯hexidine颈部。做一个1.5厘米的切口，在右腹侧＃10手术刀刀片颈部，从右侧锁骨到下颌骨。
- 用剪刀传播组织。使用镊子，轻轻直到出现颈静脉拉开组织。周围解剖颈膜使用静脉分裂镊子。
- 通过放置一个松散的结扎（缝合5-0）船舶周围戴上颈静脉的张力。加剧紧张局势，并用胶带将结扎到通气面罩（ 图 2A）。
- 下游的插入位点，放置一个松散结扎血管周围收紧后套管是在原地 ，以防止泄漏和压力损失。
- 使用镊子的把手，稍微弯曲的孔的内部的20-G针的前端与导管进行插管。
- 引入20-G针插入静脉的尖端，并迅速放入含有容器内的导管插管。拔出针头，然后关闭结扎已在步骤5.3.4准备。
- 进行含有导管插入颈静脉插管。套管的前端是在20度曲线（见步骤5.3.5）。操纵锁骨下套管和前进少许进入右心房（ 图2C）。
- 进入右心室，指向套管向左的前端，朝向心脏（ 图2D）。在床旁监护仪，一个RV压力曲线应该出现，匹配图2D。
- 当RV压力曲线是恒定的，写下收缩和舒张右心室压力1（sRVP1 / dRVP1）。
- 操纵套管的左侧和向上的尖端。套管（ 图2E）内推进导管。
- 推进导管进入主肺动脉（PA）。经过肺动脉瓣时，应感到无阻力。
注：当导管进入主肺动脉，则Diastolic压力将上升。在床边监护仪，一个PA压力曲线应该出现，配套图2E。 - 当PA压力曲线是恒定的，记下收缩压，舒张压，平均PA的压力1（sPAP1，dPAP1，mPAP1）。
- 进一步推进套管内的导管，直到导管的前端的球在肺动脉被楔入。观察床旁监护仪下降压力曲线和匹配图2F楔形压力曲线。
- 当楔压曲线是恒定的，记下收缩压，舒张压，平均楔压。
- 拉回导管慢慢地，随后测量并记下sPAP2，dPAP2，mPAP2，sRVP2和dRVP2值，床旁监护仪上显示。
- 当房车，略有回拉套管和导管测量平均右房压（RAP）。曲线应该与图2A的RAP曲线。
没有TE：在这个协议中，将大鼠的导尿协议之后，由循环血液量的同时麻醉下提取安乐死。
6.形态学评估和形态测量
注意：在这个协议中，该动物是由循环血液量而麻醉下的提取安乐死。在PAH进展和控制的任何阶段只可在该协议中使用。
- 处死后，通过切割约5mm支气管分叉以上和肺连接到心脏血管气管取出肺。把肺部冷盐水。解剖左肺。切在分叉的左主支气管。
- 填写一个50毫升的注射器，用4％多聚甲醛，附加一个管套管注射器，并悬挂约工作台上方一米的注射器。适合在左主支气管插管被动填充用多聚甲醛的肺。手柄谨慎多聚甲醛。
- 孵育在多聚甲醛左肺48小时。
- 通过在70％乙醇（1小时），80％乙醇（1小时），90％乙醇（1小时），100％乙醇（3小时），混合二甲苯（2小时），和石蜡连续孵育它脱水左肺（ 2小时）。
- 嵌入左肺石蜡，面向磁带肺肺门。
- 染色用维尔赫夫或弹性van Gieson染色染色的石蜡包埋，4微米肺切片，按照制造商的说明29。确保弹性薄片是公分化（ 如图3）。扫描染色切片放大40倍。
- 划分成肺4个象限。在每一个象限中，找到10容器的外径<50微米（帧内腺泡）和10容器的外径> 50微米（预腺泡）。拍照（每肺2×40图片）。放大随机高达20倍的放大倍率和照片每艘船在视这一领域，以尽量减少选择偏差。
- 排除具有> 2最长/最短径比，一个不完整的圆形，或血管壁的四分之一以上的崩溃血管。
注：排除的容器的一个例子显示于图3b中制作的相同的放大倍率（40X）每一画面，并包括一个比例尺。 - 打开ImageJ的与第一张照片。绘制比例尺的直线上的图象通过“ 分析 ”，设置刻度 和“设置规模 。” 素以“ 距离”，使用图片的比例尺上的值。用微米（μm），为长度单位。将比例设置为全局。
- 使用“ 写意选择 ，” 画一条线上的管腔面积（ 图3）的内边界， 并使用“测量 ” （CRTL M）来衡量这个区域。然后，周围画外ELAST线集成电路层（ 图3）来测量总血管面积。
- 计算管腔和外径（
）使用
。 - 使用计算壁厚
。 - 通过计算墙/管腔比
。 - 使用计算遮挡比分
。 - 得分上肌在容器（无，部分，或总肌）（ 图3B）。
注：船只具有双重弹性薄片的一半以上的圆周被定义为完全肌型。具有双弹性薄片不到一半的圆周血管被定义为部分肌型。 - 得分上neoi的存在下容器ntima（是或否）（ 图3C）。
注：船舶没有明确定义的内弹力层与（通常偏心）管腔闭塞合并被定义为内膜病变。
）使用
。 
。 
。 
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Representative Results
代表性的结果示于图4中。所提出的研究结果表明MCT +流Lewis大鼠在以下群体的特征：（N = 3），MF8（N = 5），MF14（N = 5），MF28（N = 5）和MF-RVF控制（ N = 10）。统计分析采用与Bonferroni校正方差分析单向进行的。
60毫克/千克的MCT和肺血流增加导致收缩期右心室压的平均上升（sRVP）（23±6到56±11毫米汞柱），肺动脉收缩压（SPAP）（20±4 54.0±10毫米汞柱），以及平均肺动脉压（mPAP）（16±3 28天（MF28），以36±4毫米汞）。他们保持同样高的可达时，右心衰竭的发展（MF-RVF）阶段（ 图4）。在早期阶段的PAH（MF8和MF14），在sRVP，SPAP和肺动脉压力升高没有观察到。舒张PAP和权利试验压力增加的相位晚，但不显著。楔压力不疾病进展期间显著变化。
右心室到左心室和室间隔的重量比从MF14显著增加为MF-RVF，表示右心室肥大。肝脏的湿干重比是在MF-RVF阶段显著增加，表明肝脏水肿和充血性右心衰竭。
腺泡内血管肌<PAH进展过程中逐渐50μm的增加。这种尺寸的船只通常没有在对照大鼠肌肉内侧层。在MF14，这些血管（43±17％）的几乎一半具有总共肌肉媒体（如在图3B）。在MF28和MF-RVF，几乎每个动脉被肌型（98.7±2.5％和100±0％）。内膜病变发生第一在MF21，而在MF28和MF-RVF，所有小动脉的65％左右有一个新内膜层（如在图3C）。小动脉壁 - 管腔比和闭塞的分数从MF14至MF28（两者分别增长显著，10.4±3.9至71.5±30（CON：7.1±0.2）和20.0±2.8至54.7±10.6（CON：12.2±0.3） ）。在MCT + FLOW PAH进展的血流动力学与组织学特征Wistar大鼠是相似的14。
图1.主动脉-静脉分流手术的示意图。 A）本主动脉被拉紧并夹紧优于插入部位。腔静脉被压缩劣于插入位点。针，在45℃，并与该孔向外部弯曲，在一个90°的角度插入到主动脉。 B） 请点击此处查看该图的放大版本。
图2.右心导管程序和代表性压力曲线。 A）右颈静脉被拉紧了结扎和录音到通气面罩。导管被放入颈静脉。 B）床边监护仪显示右心室压力波。 C）放置在右心房导入后到右颈静脉的插管内的导管。下图：一个典型的右心房压力波。 D）放置在右心室的插管内的导管。下图：一个典型的右ventriculAR压力波终末期PAH。 E）导管在插管提前进入主肺动脉。下图：一个典型的肺动脉压力波。直到一个楔压波显示在监视器上F），将导管推进到肺动脉。下图：一个典型的肺楔压力波。 请点击此处查看该图的放大版本。
图3.血管形态和形态测量控制和PAH大鼠。 A）正常，无肌化与闭塞分数3.7％船只。 B）完全肌型动脉与闭塞得分24.3％。 C）。一个内膜病变闭塞得分54.1％。 D） E）的总容器和腔面积的测量（在与新内膜病变的示意性表示一个容器）中，其中包括的计算。条形代表50微米。 请点击此处查看该图的放大版本。
图4.肺血流动力学和血管形态/形态测量的代表性结果。统计分析采用与邦费罗尼更正单因素方差分析进行。值表示为平均值±SEM表示。 CON：控制; MF（monocrotalin +流量）; RVF：右心衰竭;小号：收缩压; D：舒张期; L：均值; RVP：右心室压力; PAP：pulmonarŸ动脉压; RAP：右心房压力。 RV：右心室; LV：左心室; IVS：室间隔; BW：体重。 请点击此处查看该图的放大版本。
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Discussion
该方法描述了一种主动脉腔静脉分流的大鼠MCT创建流动引起的肺动脉高压和技术来评估原则血液动力学和表征的PAH和该模型的组织病理学终点预处理的外科手术。
该议定书和故障排除中关键步骤
手术和手术后。在主动脉 - 静脉分流手术，最关键的步骤是主动脉和腔静脉的剥离。括住主动脉和腔静脉应足够解剖膜创造1）的主动脉区域，其中，所述针将被插入的良好的能见度，并且在插入后腔静脉针的位置和2）有足够的空间以钳插入部位上方的主动脉。相同的膜，然而，也可用于通过两个容器（ 见图1）之间的穿刺部位进行主动脉血。解剖膜太多会使分流泄漏。组织胶可以解决泄漏，但随后可能也渗入分流，降低其尺寸。当胶水已经限制通过分流或血管的流动或者，胶能轻轻除去，但腔静脉或进行，可能会发生分流的破膜。分流的大小或充足可以通过比较色差，并在腔静脉的血液的紊流用棉签近端主动脉的压缩和解压缩过程中的程度来估计。
一个18-G针头已被证明创造一种适当的分流导致在刘易斯（本文）和Wistar PAH进展的一致性和可重复性的形式（见参考文献14），大鼠和右心室容量负荷15。一个18-G针创造了最良好的平衡分流，以显著增加一方面和肺血流量另一方面低手术后并发症的发生率。 最常见的手术后的问题是体重减轻。重量损失高达10％1周发生在所有的大鼠在手术后，大概是由于低摄取手术后的前几天。当体重减轻1周超过15％的大鼠安乐死，因为这被认为是不舒服的标志。液体食物可以改善手术后的第一周喂养。罕见的术后并发症是后腿麻痹和肠管缺血，这也导致安乐死。总共，大鼠小于5％不得不术后安乐死。
导尿。导尿协议中的关键步骤开始麻醉的调节。麻醉的深度应尽可能最小（1.5 - 在这个协议中2％异氟烷），如增加麻醉深度看来减少右心室和肺动脉的压力，特别是在大鼠右心室衰竭。测量必须becom的倾向Ë不可靠的，当超过协议持续时间20分钟。
下一关键步骤是在右心室和在主肺动脉导管的操纵。这是具有挑战性的。当提示卡在右心室的小梁冲洗导管可以帮助曲线流出道导管。操纵本身也可引起运动障碍RV，显示了床旁监护仪上不规则的压力曲线。引入导管进入右心室和肺动脉应顺利进行。当尖端卡住在肺动脉瓣，一个感觉到阻力。通过这个电阻压制可能导致肺动脉瓣破裂，这限制了随后的测量的可靠性。
在本协议中，大鼠导尿程序后处死。在理论上，但是，颈静脉和手术伤口可在导管被拉出后关闭，如动物只能与活剩下的左颈静脉。
形态。在血管壁的厚度和闭塞成绩的评估，最关键的一步是确定弹力板。从以往的经验，成功为此的可能性是最大的一个分化良好费尔赫夫或弹性van Gieson染色染色。而内腔通常可以容易地从内膜辨别（以测量内部血管面积），从外膜媒体的区别可能需要细看（以测量外部血管区域）。一些协议测量内膜和分别膜厚度，限定内膜作为内腔和内弹性膜，和媒体作为内和外弹性膜之间的层之间的层。这通常是有可能在早期阶段的MCT +流动PAH。然而，在动脉晚期疾病，尤其是病变的内膜，可以显示多个弹力板，往往失去弹力板的完整性（ 优势和添加流量作为触发的局限性 使用肺血流增加的大鼠创建的PAH具有几个优点，其中最突出的是，它是一个已知的（病理）生理为疾病触发，这有利于翻译人类PAH-CHD（艾森生理学），但也其他形式的PAH 9。该模型允许流动通过创建对AC-分流时改变所述针的尺寸的调节。 胡人PAH-冠心病，分流的关闭会导致PAH的在疾病的早期阶段的逆转，但在疾病晚期阶段PAH的进展。 体内分流的关闭将允许一个调查除去触发的效果在疾病进展的不同的时间点，从而来研究PAH的（非）反转的机制。不幸的是，目前，分流闭合不在当前模型是可行的。血流动力学正常化的影响（ 例如，过量流的去除和肺动脉压力的正常化）大鼠流相关的PAH可通过受影响的左肺移植研究与正常循环收件人鼠。先前已表明，血液动力学正常化，在通过肺移植大鼠和人类由心脏分流的闭合PAH-CHD，引出膜肥厚的早期阶段的PAH 21回归。血流动力学正常的效果化实验流动PAH的高级阶段，目前尚不清楚。 就以替代型号意义 单命中MCT模型。 60毫克/千克MCT皮下注射是一种简单而有效的方法来创建大鼠肺动脉高压的典范。 MCT诱导肺动脉内皮细胞损伤，随后是肺动脉5的肌层肥大。虽然确切的机制尚不清楚，各种途径和生长因子已确定参与膜肥厚以下MCT。在这些途径药业干预往往成功地减少膜肥厚和肺动脉压在MCT-老鼠。然而，由于膜肥厚已知具有在人中3逆转的自然倾向，并且还描述了自发逆转MCT-大鼠16，这些治疗的效果应严格评价。 双击MCT +流模型。加入肺血流增加7天后的MCT注射危重改变在一个特征时间依赖性方式的（血管）的表型。在MF14（流量增加诱导后7天），一般无肌型船开始开发肌肉中间层。在MF21，内侧厚度增加和第一内膜发生病变。在MF28，一个新内膜层已在大多数的船只的开发。 MF28和MF35之间，大多数老鼠患右心脏衰竭及其后遗症的死亡。在MCT +流大鼠先前的研究已经表明，除了流MCT的导致基因的特定簇的活化。在一些集群，流量反对通过MCT引起的影响;在其他国家，流增强这些效果，并且一个簇包含了某些具体流17后上调的基因。其中一个流特定的基因是早期生长反应1基因14（EGR-1）。 Egr-1的早期抑制导致肺动脉高压的衰减和新生内膜形成的MCT +流动大鼠18。 EGR-1也与人类肺动脉高压（PAH-CHD和特发性肺动脉高压）19内膜重塑有关。这些意见添加到增加或干扰肺血流量是新生内膜形成的重要触发证据。 单只命中了流模型。在大鼠主动脉一腔静脉分流不MCT注射，肺动脉高压（肺动脉压> 25毫米汞柱）分流诱导后20 10至20周之间产生。在20周，肺血管组织学是由腺泡前动脉内侧肥厚和腺泡内动脉的新肌为主。虽然有些内膜病变也已经在这个模型中描述的20，这些病变的发展需要Ť Ø确认和量化。 该SUGEN缺氧模型。对PAH另一个常见的模型内膜病变是Sugen5416缺氧（SuHx）老鼠。 Sugen5416块血管内皮生长因子（VEGF）受体。这诱导内皮细胞损伤和一个信号级联，在缺氧的组合，唤起内皮细胞凋亡和增殖22。 Sugen5416注射后，大鼠被放置在一个缺氧室4周，在其上的PAH发展。将大鼠然后重新暴露于含氧量正常4周。靶向内皮细胞凋亡的抗性或TGF-β和BMP的信号级联药理化合物已显示出扭转内膜病变在此模型23，24，25的潜力。该SuHx模型的一个新变种是SUGEN-pneumectomy模式，这也导致严重的PAH与内膜病变 > 26。然而，这种模式还没有得到充分的特点还没有。以诱导的PH大鼠一种新颖的遗传方法涉及在BMP-受体-2基因，这导致显著肌（PH）中的突变，但没有新内膜形成（PAH）27。 比较的结果，已经报道了关于新内膜病变的数目和管腔闭塞的在未处理SuHx和MCT +流大鼠28的终末期的程度。这两种模式之间的主要区别是：1）使肺动脉压在MCT +流量逐渐增加，而在SuHx的肺动脉压力已经显示出重新暴露在常氧28后逐渐下降; 2）在MCT +流动模型知道早期疾病阶段，其特点是膜肥厚和内皮功能障碍; 3）所花费的时间这两种模式以达到最终阶段，右心室衰竭开始发展（4周MCT +流量，8周SuHx）EF“> 28是不同的;和4），该Sugen5416在一个分子途径（VEGF），其在PAH的发病中的作用仍不清楚干扰，这可能阻碍翻译到人类的PAH。 未来的应用方向或 在MCT +流模型的不同疾病阶段允许一个1）来测试疾病进展的机制（人体组织，一般只能从验尸或植程序），并在不同的策略2）测试的干预措施。预防性策略可以在分流（MF7）建设启动。早期干预可在MF14启动。这可能是有关以分流闭儿童与先天性心脏病分流相关的PAH已经进展到可逆和不可逆的疾病之间的灰色地带之前治疗策略。反转策略可以在MF21或MF28发起。后期都显示内膜病变，末期PAH的体现。</ P> 总之，除了增加肺流MCT大鼠造成渐进性和严重的肺动脉高压模型，模仿人类疾病的发展。右心脏导管检查和血管组织病理学的定性和定量评估形成疾病的表征在本作PAH的基石等车型。
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Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Shunt Surgery | |||
| Sterile surgical gloves | |||
| Duratears Eye ointment | Alcon | 10380 | |
| Chloride-Hexidine | |||
| Cotton swabs | |||
| Histoacryllic tissue glue | B. Braun Medical | 1050052 | |
| Silkam 5-0 sutures black non-resorbable | B. Braun Medical | F1134027 | |
| Safil 4-0 sutures violet resorbable | B. Braun Medical | ||
| 18 G needle | Luer | NN1838R BD | tip bent in 45 degrees orifice to the outside |
| Gauzes 10 x 10 cm | Paul Hartmann | 407825 | |
| Temgesic Buprenorphine | RB Pharmaceuticals | 5429 | subcutaneous injection |
| Sodium Chloride 0.9% | |||
| Ventilation mask Rat | |||
| Scalple blade | |||
| Biemer clamp 18 mm, 5 mm opening | AgnTho | 64-562 | |
| Heat mat | |||
| Kocher Clamp | |||
| Shaving machine | |||
| Microscope | Leica | ||
| Right Heart Catheterization | |||
| Sterile surgical gloves | |||
| Eye ointment | Duratears | ||
| Chloride-Hexidine | |||
| Cotton swabs | |||
| Gauzes 10 x 10 cm | Paul Hartmann | 407825 | |
| Silkam 5-0 sutures black non-resorbable | B. Braun Medical | F1134027 | |
| Needle 20 G | Luer | Tip slightly bent to the inside | |
| Cannula 20 G | Luer | to introduce catheter, tip pre-formed in 20 degrees | |
| Silastic Catheter 15 cm long | 0.5 mm ball 2 mm from tip | ||
| Pressure transducer | Ailtech | ||
| Bedside monitor Cardiocap/5 | Datex-Ohmeda | ||
| Shaving machine | |||
| 10 mL Syringe | |||
| Sodium Chloride 0.9% | for flushing | ||
| Vascular Morphology | |||
| 50 mL Syringe | |||
| 4% Formaldehyde | |||
| 18 G cannula with tube | |||
| Verhoef staining kit | Sigma-Aldrich | HT254 | http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/ht254?lang=en®ion=US |
| Digital slide scanner | Hamamatsu | C9600 | |
| ImageJ | |||
| Elastic (Connective Tissue Stain) | Abcam | ab150667 | http://www.abcam.com/elastic-connective-tissue-stain-ab150667.html http://www.abcam.com/ps/products/150/ab150667/documents/ab150667-Elastic%20Stain%20Kit%20(website).pdf |
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- Elastic (Connective Tissue Stain) Instructions for Use. , Available from: http://www.abcam.com/ps/products/150/ab150667/documents/ab150667-Elastic%20Stain%20Kit%20(website).pdf (1506).
