Summary

Mätning och förändra Mating Drive i Male<em> Drosophila melanogaster</em

Published: February 15, 2017
doi:

Summary

Den här artikeln beskriver en beteendeanalys som använder manlig parning enhet i Drosophila melanogaste r att studera motivation. Med den här metoden kan forskarna använda avancerad flyga neurogenetiska metoder för att avslöja de genetiska, molekylära och cellulära mekanismer som ligger bakom denna motivation.

Abstract

Trots decennier av undersökning, de neuronala och molekylära grunden för motiverande stater förblir mystisk. Vi har nyligen utvecklat en ny, reduktionistisk och skalbart system för fördjupad undersökning av motivation att använda parnings enhet av manliga Drosophila melanogaster (Drosophila), de metoder som vi detalj här. Beteende paradigmet kretsar kring upptäckten att manliga parning enhet minskar tillsammans fertilitet under loppet av upprepade kopulationer och återvinner över ~ 3 d. I detta system, de kraftfulla neurogenetiska verktyg som finns i farten konvergerar med den genetiska tillgänglighet och förmodade kopplingsschema för sexuellt beteende. Denna konvergens medger snabb isolering och förhör av små neuronala populationer med specifika motiverande funktioner. Här har vi detalj utformning och utförande av mättnadsanalys som används för att mäta och ändra uppvaktning motivation i den manliga flyga. Med användning av dennaanalysen visar vi också att låga manliga parning enhet kan övervinnas genom att stimulera dopaminerga neuroner. Den mättnadsanalysen är enkel, prisvärd och robust för påverkan av genetisk bakgrund. Vi förväntar oss att mättnadsanalys för att generera många nya insikter i neurobiologi motiverande stater.

Introduction

Arbetet i Drosophila har gett djup och banbrytande insikt i många biologiska fenomen, inklusive vilken typ av gen 1, principerna för embryonal utveckling 2, dygnsrytmen 3, samt utveckling och ledningar av nervsystemet 4, 5, 6. Motivation är långt mindre väl förstått än dessa fenomen, kanske på grund av de begränsningar på de system som har studerats hittills. Motivation i farten främst studeras i samband med hunger, vilket innebär många utmaningar på grund av deras försvinnande liten födointag per utfodring skjutningen och exoskelett som utesluter uppenbara tecken på fettlagring. Följaktligen finns det ett behov av att expandera de system som används för att studera motivation i flugan.

Vi beskriver en beteende ram för att studera parnings enhet iDrosophila. Detta system drar fördel av de neurogenetiska verktyg i farten samt tillgängligheten 7, 8, 9, 10, 11, 12 och den förmodade connectome av dess sexually dimorphic kretsarna 8, 13. Dessutom mycket av det medfödda 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21 och lärt 22, 23, 24 sensomotorisk kretsar som styr uppvaktningen har arbetats fram i detalj, vilket ger en sällsynt möjlighetatt lokalisera den exakta kretsnod på vilken motivation träffar. Vi rapporterade nyligen att, i farten, som hos människor, dopaminnivåer är centrala för parning enhet 25, 26, 27. Vi har fått genetisk tillgång till relevant dopaminproducerande och ta emot nervceller i farten, vilket underlättar detaljerad molekylär- och kretsnivå analyser av denna bevarade fenomen med hjälp av analyser vi beskriver här 25.

Vi lägger till beteendemässiga analyser i Zhang et al. 25 en ny platt beteende arena som tillåter video poäng, som vi kallar en två-dimensionell (2-D) mättnad analys en viktig förbättring jämfört med tidigare metoder. Följaktligen är den nya analysen mer skalbar och mätbar, och därför mer lämpade för genetiska skärmar gener och neuroner som är involverade i motivation. Vi använder denna nya analys, tillsammans med uppvaktning analyser och neurogetiska manipulationer, för att visa hur man mäter och ändra parning enhet i farten.

Protocol

OBS: Detta protokoll beskriver framställningen (avsnitt 1 – 3), utförande (avsnitt 4), och analys (avsnitt 4) 2-D mättnad analyser. Sedan, med hjälp dopaminerg stimulering som ett exempel, visar Avsnitt 5 hur man kombinerar thermogenetic stimulering med 2-D-mättnadsanalyser för att inducera hyper. § 6 beskriver 3 sätt att kontrollera resultaten av 2-D mättnad analyser. Slutligen, Avsnitt 7 visar hur man mäter återhämtning av parnings enhet i manliga flugor. 1. Förfalskning 8- och …

Representative Results

För att karakterisera Drosophila parning enhet, tre dagar gamla, var WT Canton-S-hanar testas i en 2-D mättnad analys. Under loppet av analysen (4,5 h), hanar mate ett genomsnitt på 4,8 ± 0,3 (medelvärde ± standardfel för medelvärdet, SEM) gånger. Parningar initiera mestadels i de första 2 h (78%) (Figur 6a, 6b) och bli mindre frekvent som analysen fortskrider (Figur 6A, 6B). Denna minskning är inte på grund av bristen av med varandr…

Discussion

Motiverande tillstånd kan mätta, underhållas, och återhämtade sig 34. Vi presenterar en 2-D mättnad analys som snabbt och kraftfullt mäter alla dessa aspekter av parning enhet i farten. Denna analys öppnar upp möjligheten att använda avancerad gylf genetiska manipulationer för att studera de molekylära och kretskomponenterna i ett motiverat beteende.

Den mättnadsanalysen bygger på manliga förmåga att framgångsrikt domstol och kopulera och att avsluta …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Mike Crickmore, Dragana Rogulja, and Michelle Frank for comments on the manuscript. Pavel Gorelik provided technical support for manufacturing the behavioral arenas. This work was conducted in Mike Crickmore’s lab and is also supported by the Whitehall Foundation (Principal Investigator: Dragana Rogulja). S.X.Z. is a Stuart H.Q. and Victoria Quan Fellow at Harvard Medical School.

Materials

1/16 inch clear acrylic McMaster-Carr 8589K12 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
1/8 inch clear acrylic McMaster-Carr 8589K42 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
3/16 inch clear acrylic McMaster-Carr 8560K219 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
1/32 inch black delrin McMaster-Carr 8575K132 Used to make arenas; see Supplemental Material 1 for designs.
Hex screws, 1 inch long (50x) McMaster-Carr 92314A115  Used to make arenas. Can be replaced by 3/4 inch screws (92314A113, McMaster-Carr) for 32-chamber arenas.
Thumb nuts (25x) McMaster-Carr 92741A100 Used to make arenas. Can be replaced by regular hex nuts (90480A005, McMaster-Carr).
Camcorder Canon Vixia HF R700 Can be replaced by any consumer comcorder.

References

  1. Sturtevant, A. H., Bridges, C. B., Morgan, T. H. The spatial relations of genes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 5 (5), 168-173 (1919).
  2. Campos-Ortega, J. A., Hartenstein, V. . The Embryonic Development of Drosophila melanogaster. , (1985).
  3. Hall, J. C. Systems Approaches to Biological Rhythms in Drosophila. Methods in Enzymology. 393, 61-185 (2005).
  4. Luo, L. Rho GTPases in neuronal morphogenesis. Nature reviews. Neuroscience. 1 (3), 173-180 (2000).
  5. Schmucker, D., Clemens, J. C., et al. Drosophila Dscam Is an Axon Guidance Receptor Exhibiting Extraordinary Molecular Diversity. Cell. 101 (6), 671-684 (2000).
  6. Jan, Y. N., Jan, L. Y. HLH proteins, fly neurogenesis, and vertebrate myogenesis. Cell. 75 (5), 827-830 (1993).
  7. Stockinger, P., Kvitsiani, D., et al. Neural circuitry that governs Drosophila male courtship behavior. Cell. 121 (5), 795-807 (2005).
  8. Yu, J. Y., Kanai, M. I., Demir, E., Jefferis, G. S. X. E., Dickson, B. J. Cellular Organization of the Neural Circuit that Drives Drosophila Courtship Behavior. Current biology. 20 (18), 1602-1614 (2010).
  9. Zhou, C., Pan, Y., Robinett, C. C., Meissner, G. W., Baker, B. S. Central Brain Neurons Expressing doublesex Regulate Female Receptivity in Drosophila. Neuron. 83 (1), 149-163 (2014).
  10. Rideout, E. J., Dornan, A. J., Neville, M. C., Eadie, S., Goodwin, S. F. Control of sexual differentiation and behavior by the doublesex gene in Drosophila melanogaster. Nature neuroscience. 13 (4), 458-466 (2010).
  11. Manoli, D. S., Foss, M., Villella, A., Taylor, B. J., Hall, J. C., Baker, B. S. Male-specific fruitless specifies the neural substrates of Drosophila courtship behaviour. Nature. 436 (7049), 395-400 (2005).
  12. Kimura, K. I., Ote, M., Tazawa, T., Yamamoto, D. Fruitless specifies sexually dimorphic neural circuitry in the Drosophila brain. Nature. 438 (7065), 229-233 (2005).
  13. Cachero, S., Ostrovsky, A. D., Yu, J. Y., Dickson, B. J., Jefferis, G. S. X. E. Sexual dimorphism in the fly brain. Current biology. 20 (18), 1589-1601 (2010).
  14. Clowney, E. J., Iguchi, S., Bussell, J. J., Scheer, E., Ruta, V. Multimodal Chemosensory Circuits Controlling Male Courtship in Drosophila. Neuron. 87 (5), 1036-1049 (2015).
  15. Kallman, B. R., Kim, H., Scott, K. Excitation and inhibition onto central courtship neurons biases Drosophila mate choice. eLife. 4, e11188 (2015).
  16. von Philipsborn, A. C., Liu, T., Yu, J. Y., Masser, C., Bidaye, S. S., Dickson, B. J. Neuronal control of Drosophila courtship song. Neuron. 69 (3), 509-522 (2011).
  17. Zhou, C., Franconville, R., Vaughan, A. G., Robinett, C. C., Jayaraman, V., Baker, B. S. Central neural circuitry mediating courtship song perception in male Drosophila. eLife. 4, e08477 (2015).
  18. Kohatsu, S., Koganezawa, M., Yamamoto, D. Female contact activates male-specific interneurons that trigger stereotypic courtship behavior in Drosophila. Neuron. 69 (3), 498-508 (2011).
  19. Kohatsu, S., Yamamoto, D. Visually induced initiation of Drosophila innate courtship-like following pursuit is mediated by central excitatory state. Nature Communications. 6, 6457 (2015).
  20. Fan, P., Manoli, D. S., et al. Genetic and neural mechanisms that inhibit Drosophila from mating with other species. Cell. 154 (1), 89-102 (2013).
  21. Kurtovic, A., Widmer, A., Dickson, B. J. A single class of olfactory neurons mediates behavioural responses to a Drosophila sex pheromone. Nature. 446 (7135), 542-546 (2007).
  22. Ejima, A., Smith, B. P. C., et al. Generalization of Courtship Learning in Drosophila Is Mediated by cis-Vaccenyl Acetate. Current Biology. 17, 599-605 (2007).
  23. Keleman, K., Vrontou, E., Krüttner, S., Yu, J. Y., Kurtovic-Kozaric, A., Dickson, B. J. Dopamine neurons modulate pheromone responses in Drosophila courtship learning. Nature. 489 (7414), 145-149 (2012).
  24. Pan, Y., Baker, B. S. Genetic Identification and Separation of Innate and Experience-Dependent Courtship Behaviors in Drosophila. Cell. 156 (1-2), 236-248 (2014).
  25. Zhang, S. X., Rogulja, D., Crickmore, M. A. Dopaminergic Circuitry Underlying Mating Drive. Neuron. 91 (1), 168-181 (2016).
  26. Bowers, M. B., Van Woert, M., Davis, L. Sexual behavior during L-dopa treatment for Parkinsonism. The American journal of psychiatry. 127 (12), 1691-1693 (1971).
  27. Sacks, O. W. . Awakenings. , (1999).
  28. Dietzl, G., Chen, D., et al. A genome-wide transgenic RNAi library for conditional gene inactivation in Drosophila. Nature. 448 (7150), 151-156 (2007).
  29. Crickmore, M. A., Vosshall, L. B. Opposing dopaminergic and GABAergic neurons control the duration and persistence of copulation in Drosophila. Cell. 155 (4), 881-893 (2013).
  30. Peng, J., Chen, S., Busser, S., Liu, H., Honegger, T., Kubli, E. Gradual Release of Sperm Bound Sex-Peptide Controls Female Postmating Behavior in Drosophila. Current biology. 15 (3), 207-213 (2005).
  31. Yapici, N., Kim, Y. J., Ribeiro, C., Dickson, B. J. A receptor that mediates the post-mating switch in Drosophila reproductive behaviour. Nature. 451 (7174), 33-37 (2008).
  32. Pellegrino, M., Nakagawa, T., Vosshall, L. B. Single Sensillum Recordings in the Insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae. Journal of Visualized Experiments. 36 (36), 1-5 (2010).
  33. Cook, R., Cook, A. The Attractiveness to males of female Drosophila melanogaster: effects of mating, age and diet. Animal behaviour. 23, 521-526 (1975).
  34. Toates, F. M. . Motivational Systems (Problems in the Behavioural Sciences). , (1986).
  35. Hall, J. C. The mating of a fly. Science. 264 (5166), 1702-1714 (1994).
  36. Simpson, J. H. Mapping and manipulating neural circuits in the fly brain. Advances in genetics. 65 (9), 79-143 (2009).
  37. Venken, K. J. T., Simpson, J. H., Bellen, H. J. Genetic Manipulation of Genes and Cells in the Nervous System of the Fruit. Neuron. 72 (2), 202-230 (2011).
  38. Klapoetke, N. C., Murata, Y., et al. Independent optical excitation of distinct neural populations. Nature methods. 11 (3), 338-346 (2014).
  39. Bellen, H. J., Levis, R. W., et al. The BDGP gene disruption project: single transposon insertions associated with 40% of Drosophila genes. Genetics. 167 (2), 761-781 (2004).
  40. Spradling, A. C., Stern, D., et al. The Berkeley Drosophila Genome Project gene disruption project: Single P-element insertions mutating 25% of vital Drosophila genes. Genetics. 153 (1), 135-177 (1999).
  41. Parks, A. L., Cook, K. R., et al. Systematic generation of high-resolution deletion coverage of the Drosophila melanogaster genome. Nature genetics. 36 (3), 288-292 (2004).
  42. Matthews, K. A., Kaufman, T. C., Gelbart, W. M. Research resources for Drosophila: the expanding universe. Nature reviews. Genetics. 6 (3), 179-193 (2005).
  43. Ni, J. Q., Liu, L. P., et al. A Drosophila resource of transgenic RNAi lines for neurogenetics. Genetics. 182 (4), 1089-1100 (2009).
  44. Ni, J. Q., Zhou, R., et al. A genome-scale shRNA resource for transgenic RNAi in Drosophila. Nature. 8 (5), 405-407 (2011).

Play Video

Cite This Article
Boutros, C. L., Miner, L. E., Mazor, O., Zhang, S. X. Measuring and Altering Mating Drive in Male Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (120), e55291, doi:10.3791/55291 (2017).

View Video