Summary
Bu iletişim kuralının amacı bir domuz modelinde bir koroner arter etrafında gecikmeli kısıtlayıcı aygıtı (bir ameroid yılanı) yerleşimini göstermektir. Bu cihaz yeni tanı görüntüleme teknikleri ve yeni tedavi yöntemleri eğitimi için yararlıdır kalp iskemik bir bölümünü oluşturur.
Abstract
Kalp-damar hastalıkları ölüm Amerika Birleşik Devletleri'nde bir numaralı nedeni kalır. Bu hastalıkların tedavisi için çok sayıda yaklaşım vardır ama yaklaşım ne olursa olsun, bir vivo modeli her tedavi test etmek için gereklidir. Domuz kalp-damar hastalıkları için en çok kullanılan büyük hayvan modellerinden biri. Onun kalp anatomi ve işlevi çok bir insan için benzer. Ameroid yerleştirme tekniği iskemik miyokard infarktüsü eğitim birçok yararlı uygulama olan kalp, yüzölçümü oluşturur. Bu model cerrahi araştırma, ilaç çalışmaları, görüntüleme teknikleri ve hücre tedavileri için kullanılmıştır.
Kalp iskemik bir alanda inducing birkaç yolu vardır. Her birinin avantajları ve dezavantajları vardır, ancak en çok kullanılan teknik bir ameroid yılanı yerleşimini kalır. Ameroid kullanarak ana avantajları mevcut araştırma yaygınlık, onun durumu çeşitli ebat anatomisine uyacak ve dar için gemi boyutunu, nispeten basit bir işlem ve izleme post operatif cerrahidir korumak için harici bir aygıt yok olduğundan, en az düzeydedir. Bu inceleme ameroid yılanı yerleşim için uygun tekniği ayrıntılı bir özetini sağlar.
Introduction
Miyokardiyal iskemi açan koroner arter hastalığı (CAD), önde gelen sakatlık, ölüm ve sağlık maliyetleri dünya4 civarında ve yaklaşık 1 ABD1,2 3 her ölüm için atfedilebilecek nedeni , 3 , 4 , 5 , 6. en çok üçte biri en düşük CAD hastalarda perkütan ve cerrahi tedaviler birçok gelişmeler rağmen yaş, kötü sağlık veya suboptimal anatomi4, nedeniyle bu tedaviler için uygun olmayan 5 , 6 , 7. Tanı görüntüleme veya tedavi yeni yöntemler değerlendirmek için uygun bir hayvan modeli geliştirilmesi önemlidir.
Bir hastalık için bir hayvan modeli geliştirirken, indüklenen bozukluğu yakından insanlar8,9bozuklukta anatomik ve fizyolojik özellikleri öykünüp. Bir kardiyovasküler çalışmalar için en çok kullanılan büyük hayvanların domuz var. Domuz kalbi en yakın boyut, anatomi ve fizyolojisi3,6açısından insan kalbi ROM'una benzer. Benzer şekilde insan kalbi, domuzun kalbi Miyokardiyum bir geniş Kollateral Dolaşım6sahip değil. Bu nedenle, domuz kalbi akut koroner oklüzyon de tahammül etmez ama yavaş yavaş koroner oklüzyon tolere edebilir. Bir Koroner yavaş yavaş tıkandı, o bir model olarak kronik miyokardiyal iskemi, kronik kalp krizi ve kalp yetmezliği5,6,9,10, için kullanılabilir 11 , 12 , 13. kronik miyokardiyal iskemi stent implantasyonu ve hidrolik occluder, sabit stenoz occluder veya bir ameroid yılanı yerleşimini ile indüklenen. Avantajları ve dezavantajları için çeşitli yayınlar6,9,13 ' te ayrıntılı olarak açıklanan tüm bu yöntemler vardır ama ameroid yerleşim5en sık kullanılan yöntemdir, 6,10,11.
Ameroid yılanı kazein malzeme kaplı paslanmaz çelik, plastik veya titanyum yüzük içinde oluşur. Bir kez bir arter (genellikle sol ön inen koroner arter (evlat) veya Sol Sirkumfleks koroner arter (LCX)) yerleştirilir, kazein malzeme yavaş stenoz, taklit eden yavaş yavaş, daraltmak iç Lümen neden çevresindeki sıvı emer bir sonunda, arter ve ortaya çıkan tıkanıklığı9,13,14tam. Bu yordam, tek başına veya diğer yöntemleri sonuçlarını bölge kronik miyokardiyal iskemi ve/veya geliştirmek ve yeni görüntüleme teknikleri8değerlendirmek için yararlı olmuştur kalbin sol ventrikül infarktüsü ile birlikte kullanılan 10,15, tedavi tedaviler7,16,17,18 ve cerrahi işlemler19,20.
Protocol
burada açıklanan yordamları Ulusal kalp, akciğer ve kan Enstitüsü hayvan bakım ve kullanım Komitesi, Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından kabul edildi ve halk sağlığı hizmet İlkesi'nde belirtilen ilkelerine uygun İnsana ilişkin bakım ve laboratuvar hayvanları, hayvan hakları yasası ve Bakım Kılavuzu ve Use of Laboratory Animals.
Not: Bu yordamın amacı, cerrahi klinik hasta şiddetli CAD ile ilgilidir tedavileri geliştirmek için kullanılan kronik miyokardiyal iskemi bir hayvan modeli üretmektir. Bu bir vitro modelini kullanarak başarılı olamaz.
1. hayvanlar
- kullanın erkek Yorkshire domuz arasında 12 ve 15 kg ağırlığında
2. pre-surgical yordamları
- profilaktik antibiyotik için amoksisilin ve clavulanate potasyum (15 mg/kg) günde iki kez sözlü olarak ameliyat öncesi 24 h başlayan kullanın.
Not: Bu oral antibiyotik domuz yutmak emin olmak için ve ayrıca onlar post-operatively ilaç Alerjik bir reaksiyon yok edecektir emin olmak için ameliyattan önce başlatılır. - Gıda ve domuz ameliyat öncesi 12 h su kesintisi.
- Ameliyat günü, domuz ketamin (33 mg/kg), midazolam (0,5 - 0,75 mg/kg) ve glycopyrrolate (0.01 mg/kg) kas içi (IM) verilen bir kokteyl ile anestezi.
- Bir kulak ven bir 20 G intravenöz (IV) kateter yerleştirin ve 7.0 Fr endotrakeal tüp ile hayvan entübe.
Not: IV kateter ve domuz boyutu için uygun endotrakeal tüp boyutunu ayarlamak. - Göbeğini için omuz ve karın orta hat vertebral sütun için domuz sol tarafında (tıraş) saç kaldırmak.
- Profilaktik antibiyotik yönetmek (piperacillin ve tazobactam: 100 mg/kg IV) ve ağrı ilaç (buprenorfin sürekli yayın: 0.2 mg/kg subkutan (SC) veya bir fentanyl transdermal yama 25-50 µg/h).
Not: hayvanlar için ameliyat öncesi 12 h Oruç ve daha önce bahsedilen oral antibiyotik bu süre zarfında almazsınız çünkü IV antibiyotik verilir. - Domuz ameliyathane için taşıma ve endotrakeal tüp hava yolu gazlar izlemek için bir sidestream sensörüne sahip anestezi makineye bağlayın. Mekanik olarak 10 mL/kg gelgit hacmi bir başlangıç noktası olarak kullanarak domuz havalandırın ve bir hava yolu basıncı 30 cm H 2 O. Set min (bpm) başına 10-20 nefes arasında solunum hızı aşan ve sonunda tidal CO 2 (tutmak için gereken şekilde ayarlayın PetCO 2) düzeyleri arasında 28 ve 35 mm Hg. koru isoflurane (% 1-3) ya da sevoflurane (% 2-5) ile anestezi.
- Domuz sağdaki ameliyat masasında aşağı getirin. Vücut ısısı (BT), Elektrokardiyogram (EKG), Nabız oksimetri (SpO 2) vb. izlemek için tüm gerekli sonda takmak
- %2 chlorohexidine ve % 70 alkol ile üç alternatif scrubs ile cerrahi site hazırlamak (geçerli bir dairesel hareket Merkezi ile başlayan ve dışa doğru hareket).
- Aseptik teknik 21 kullanarak cerrahi sitesi asmak.
3. Cerrahi işlem
- sol torakotomi kalbine maruz.
- Bir cilt kesi için 4 th paralel yapmak ve 5 inci interkostal alan yaklaşık 8-9 cm uzunluğunda bir No 10 neşter bıçak kullanarak.
- Latissimus dorsi ve serratus bir çift eğri Metzenbaum makas ve Brown Adson forseps kullanarak ventralis kasları kesmiş. Elektrokoter hemostaz gerektiği gibi güncelleştirmek için kullanın.
- Th 4 ve 5 inci kaburga ile 4 inci kaburga ön yönünü boyunca Metzenbaum makas kesim arasında interkostal kaslara aracılığıyla plevral boşluğu girin. Yanlışlıkla akciğer zarar verme olasılığını azaltmak, solunum plevral boşluğu girmeden önce nefes üzerinde devre dışı bırakın. Bir kez plevral boşluğu delindi, solunum yeniden açın.
- Kalp açığa ayrı, kaburga yaymak için küçük bir Finochietto Retraktörü kullanın.
- Kullanım Debakey forseps kavramak ve kalp zarını kaldırın. Potts makas Perikardiyal boşluk bırakmak hava izin kalp zarını küçük bir delik açmak için kullanın. DELİKANLI ve LCX arterler kesişimine Potts makasla kesmeye devam.
- Sol atriyal apendiks geri çekmek için kullanmak Babcock forseps. DeBakey ve küçük dik açı forseps kullanarak, teşrih çevreleyen doku önce veya proksimal LCX arterin 1 st kalın kafalı marjinal şube için.
- İki gemi döngü disseke LCX arter, tek tek her iki ucu altında yerleştirin. Bir boyutu 3.0 mm ameroid yılanı küçük dik açı Forseps ile tutun ve hafifçe yılanı delikten LCX arter yol gemi döngüler kaldırın. Açılış karşı karşıya olduğu bu yüzden yılanı Yavaşça döndürün. Gemi döngüler kaldırın. Bkz: şekil 1.
Not: Arter yeterli diseksiyon kırışma önlemek için önemlidir. Uygun ölçekli yılanı bireysel hayvan için seçin. Uygun ölçekli yılanı yakından başlangıçta gemi constricting olmadan gemi çevreler. Yerli domuzlar arasında 12 ve 15 kg ağırlığında ameroid kıskaçlar 2.5-3.5 mm boyutlu gerektirir. Gemide ameroid yılanı konumunu iskemik çevrenin istenen boyutuna bağlıdır. - Kalp zarını yeniden yaklaşık ve 4-0 polipropilen sütür ile yakın.
- Sonunda dışarı kapatma, genellikle iki interkostal boşluk Torakotomi siteye posterior katmanlar arasında çıkmadan ile plevral boşlukta 12 Fr göğüs tüpü veya eşdeğer ekleyerek negatif torasik basınç yeniden.
Not: kaburga kapatmadan önce akciğer atelectasis için gözlemlemek. Eğer belirtisi underinflation gözlenir, el ile en fazla 30 mm Hg baskısı akciğerler tekrar havalanmasını sağladık. - 1 polipropilen sütür kullanarak interkostal katmanı, subkutan katman için polipropilen sütür 2-0 ve 3-0 polipropilen sütür subcuticular katman için serratus ve Fasial katmanı için 0 polipropilen sütür için göğüs kapatın. Zımba veya deri dikiş.
- Üç yollu dur horoz Göğüs tüpünü sonuna eklemek ve negatif bir mühür elde kadar göğüs havada bir 40-60 cc şırınga tahliye edin. Hayvan tüm havayı çıkarma kolaylaştırmak için göğüs kemiği ya tam tersi yan üzerine rulo. Bir kez negatif basınç göğüs tutar, göğüs tüpü çıkarması ve çıkış sitesi dikiş. Eğer hayvanlar tek başına post-operatively yerleştirilmiştir, birkaç gün için belgili tanımlık kesme sargılı.
4. Post Operatif
- her iki taraf boyunca kesi ile % 0.25 bupivacaine Torakotomi sitesinin kapatılması sızmak.
- Hayvan solunum kapalı vazgeçirmek ve anestezi açmak. Hayvan kendi başına nefes alıyor bir kez Endotrakeal tüpü çıkarması ve yutma. Bu tamamen iyileşti (uyanık ve sternal) kadar
- hayvan izlemek. Orada-meli var olmak hiçbir anormallik veya EKG'nin, BT aritmiler 38,7-39.8 ° C olması gerektiğini, SpO %2 95-100 olmalıdır ve solunum hızı 32-58 bpm olmalıdır.
- Yönetici Amiodaron (100 mg, günde iki kez sözlü olarak) ve tromboz ve aritmiler önlemek için Klopidogrel bisulfate (75 mg, sözlü olarak günde bir). Amoksisilin ve clavulanate potasyum (15 mg/kg) ile sözlü olarak iki kere a gün için devam etmek 10 gün sonrası işlemi. Ameliyat sonrası ağrı buprenorfin SR (sürekli yayın) ile kontrollü 0.2 mg/kg. SQ üç günde. Buprenorfin SR carprofen (4,4 mg/kg) ile bir kez takviye ve o zaman (2.2 mg/kg) PO veya IM teklifi.
- Hayvan tüm yatak ve yiyecek malzemeden devam ' kesik tamamen iyileşene kadar alan konut s.
Representative Results
Ameroid yerleştirme ameliyatları tesisimizde bir iki yıllık süre içinde yapılan elde edilen verileri analiz sonra sağkalım oranı % 80 olmak bulduk. Yordamı 12-15 kg arasında ağırlıklı 25 Yorkshire domuzlar üzerinde gerçekleştirildi. 25 domuzlar 20 izleme yordamı, kaplama ve sonra kısa bir süre kapatma, 2 ağır kalp yetmezliği ve akciğer ödemi için ötenazi ve 1 takip grafisi sırasında anestezik bir ölümdü öldü 2 hayatta kaldı. Nekropsi yordamı 24 saat içinde ölmüş hayvanlar sol ventrikül hazır bir bölümünü ortaya koydu. Bu şüpheli ama ameroid varlığı nedeniyle ameroid Lümen beri müstehcen arter hala açık onaylanamadı. Kalp yetmezliği nedeniyle euthanized hayvanlardan elde edilen ameroids incelenmiş. 18 gün Lümen toplam kapanış oldu.
Hayatta kalan hayvanlar manyetik rezonans görüntüleme (kalp fonksiyonları ve iskemik alanının boyutunu ölçmek için MRG tarafından) 28 gün post-ameroid yerleşim, görüntüsü. Şekil 2 ve şekil 3 titanyum kaplı ameroid bir domuz ve bir plastik encased ameroid bir domuzla sırasıyla elde edilen MRI resimleri göster. Görüntüleme sonra ikinci Torakotomi bir hücre enjeksiyon veya sahte yordam için gerçekleştirildi. Hayvanlar 16 hafta post-ameroid yerleşim olarak uzun bir süre izledi.
Şekil 1: domuz görüntülerini kalp ameroid yerleştirme işlemi sırasında. (A) delikanlı, LCX ve kalın kafalı marjinal arter (OM) gösteren domuz kalbi görüntüsünü. (B) görüntü disseke LCX arter ameroid yerleşim önce. LCX çevresinde ameroid uygun yerleştirme yukarı veya kalp uzak karşı karşıya ameroid açılması ile (C) görüntüsü. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 2: MRG görüntüsü domuz kalbi bir titanyum ile kaplı ameroid. Dört hafta sonra bir titanyum encased ameroid yılanı LCX arter üzerinde yerleşimini alınan bir domuz kalbi Mr görüntüsü. Titanyum tarafından oluşturulan yapıya ok gösterir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Şekil 3: MRG görüntüsü bir domuz kalbi bir plastik kaplı ameroid. Dört hafta sonra bir plastik encased ameroid yılanı LCX arter üzerinde yerleşimini alınan bir domuz kalbi Mr görüntüsü. Ok ameroid yılanı işaret eder. Hiçbir yapı görülmektedir. Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.
Discussion
Ameroid kıskaçlar yoğun kronik miyokardiyal iskemi, kronik kalp krizi ve kalp yetmezliği5,6,7,9,10 hayvan modeller oluşturmak için kullanılan , 11 , 12 , 13 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 22. her ne kadar bu modelleri restenoz, hidrolik occluders veya sabit stenoz occluders kullanılarak oluşturulmuş daha doğru bir şekilde işlerini sonuçlarını karşılaştırmak araştırmacılar bilimsel literatürde ameroid kullanımına ilişkin yaygınlık sağlar daha önce yayınlanmamış çalışmalar5,6,7,9,10,11,12,13, 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 22. ameroid yılanı kullanmanın bir diğer avantajı prosedür nispeten basittir ve başarıyla makul cerrahi becerileri olan herkes tarafından gerçekleştirilen ve hiçbir özel araçlar gerektirir alır. Yukarıda belirtilen diğer yöntemleri büyük teknik becerileri gerektirir ve hidrolik occluder söz konusu olduğunda, yoğun ameliyat sonrası nedeniyle externalized aygıt6,13izleme gerektirir.
Ameroid yılanı kullanmanın ana tıkanıklığı9,13hızı değişkenliği kısıtlamadır. Genel olarak, çoğu çalışmalar ameroid yılanı kullanarak tam tıkanıklığı23,24oluşana kadar ilk iki hafta içinde en yüksek ve sonra yavaş yavaş kapalı konik olmak stenoz oranı bulduk. Doğrudan ameroid Lümen kapatma oranını ölçme ex vivo çalışmalar Lümen çapı en büyük azalma ilk iki hafta içinde oluşur ve bundan sonra25,26yavaşlar doğruladı. Ancak, bu aynı çalışmalar da glikoz ve protein konsantrasyonları çevreleyen oranı ve böylece vivo içinde koşulların değişkenliği için büyük olasılıkla sorumlu olduğunu düşündüren ameroid kapatılması completeness etkileyebilir göstermiştir ameroid içinde25,26tıkanıklığı oranları. Diğer araştırmacılar mekanik travma, inflamasyon, fibrozis ve ameroid yerleştirme yordam tarafından neden trombüsü oluşumu bu değişkenliği5,-6,25 katkıda bulunabilir tavsiye ettiler . İkinci senaryo olasılıkla erken ölüm ve kalp bu çalışmada gözlenen başarısızlık nedeni var. Narin, henüz yeterli, arter diseksiyon iki tarafında gemisini kırışma önlemek için ameroid yapmanın yeterince stresli önemini olamaz.
Uygun ameroid yılanı yerleşimini iskemik yüzölçümü de tedavi için büyük kalp geliştirmek için kritik ama değil çok büyük ölümle sonuçlanır. Yorkshire domuzlarda en iyisi için ilk kalın kafalı marjinal şube görüntülenmeden önce ameroid yılanı LCX yerleştirerek. Başka bir yerde bildirildiği gibi bu yaklaşık 25-%306sol ventrikül iskemik yüzölçümü sonuçlandı. Ameroid yerleştirerek herhangi sonuçlandı bu çalışmada araştırılmıştır belirli tedavisi için yetersiz bir iskemik alanda daha düşük.
Cerrahi işlem sırasında meydana gelen aritmiler nadirdir. Sözlü Amiodaron sonrası işlem sonuna kadar çalışma yönetme, ameroid kapalı kapatırken Aritmilere 2-3 hafta sonrası işlemi sırasında engelleyebilir. Ayrıca, kapıcılık ve sağlık personeli herhangi bir pulmoner ödem/kalp yetmezliği erken bir belirtisi olabilir bu süre içinde öksürük belirterek özellikle uyanık olmalıdır.
Yıllar içinde ameroid yılanı tasarım üzerine geliştirilmiş. Ameroids şu anda cerrah tıkandı için gemi çapını eşleşen bir ameroid seçmek izin çeşitli boyutlarda mevcuttur. Ameroid dış halkasındaki paslanmaz çelik, titanyum veya plastik mevcuttur. MRI kullanarak etkilenen kalpler değerlendirirken bu özellikle önemlidir. Tüm metal bir obje Mr görüntülerinde neden olur. Plastik hiçbiri vasıl tüm yapraklar ederken titanyum ameroids paslanmaz çelikten, daha bir obje daha az neden. MRI görüntüleri bir titanyum ameroid ve plastik ameroid arasındaki farkı gösteren Şekil 2 ve şekil 3, sırasıyla gösterilir. Yapının Şekil 2 kalbinde sağ tarafındaki ameroid kapatan titanyum halka tarafından nedeniyle oluşur. Yakın zamana kadar plastik ameroid kapsama halkada bir koroner arter gemi kırışma olmadan yerleştirmek için çok hantal. Bu çalışmada kullanılan ameroid yılanı (bakınız Tablo reçetesi) metal ameroids olarak aynı dış çapı çok daha akıcı bir sürüm olduğunu.
Disclosures
Yazarlar hiçbir ifşa etmek çıkar çatışması var.
Acknowledgments
İntramural finansman bu proje için Intramural araştırma bölümü, ulusal kalp, akciğer ve kan Enstitüsü'nde Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından sağlandı. Dr James Hawkins, Dr Robert Hoyt, hayvan hastalıklarıyla ilgili kaynaklar bölümü NIH ve personel NIH de kardiyotorasik cerrahi araştırma programı kabul etmek istiyoruz.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Anesthesia: ketamine | Putney, INC | Dose: 25mg/kg, IM | |
| Anesthesia: midazolam | App Pharmaceuticals | Dose: 0.75mg/kg, IM | |
| Anesthesia: isoflurane | Baxter | Dose: 1-3%, INH | |
| Antibiotics: amoxicillin and clavulanate potassium | WG Critical Care | Dose: 15mg/kg, IV | |
| Antibiotics: piperacillin and tazobactam | Fresenius Kabl | Dose: 100mg/kg, PO | |
| Analgesia: buprenorphine (sustained release) | Zoo Pharm | 10mg/ml bottle, Dose: 0.2mg/kg SC | |
| Analgesia: fentanyl patch | Mylan | Dose: 25-50mcg/hr, TD | |
| Analgesia: bupivicaine 0.25% | Hospira | Give SC at incision site for analgesia | |
| Alcohol 70% | Humco | NDC 0395-4202-28 | for scrubbing surgical site |
| Chlorhexidine scrub 2% | Vet One | 510083 | for scrubbing surgical site |
| Datex-Ohmeda Aestiva /5 anesthesia machine | GE Healthcare Madison WI. | ||
| Pediatric anesthesia circuit | Westmed | 7-8901 | www.westmedinc.com |
| Water blanket | Cincinnati Sub Zero | Blanketrol 2 | |
| EKG | Medtronics- Physiocontrol | LifePak 20 | |
| Oxygen saturation monitor | GE Healthcare Madison WI. | ||
| Temperature probe | GE Healthcare Madison WI. | ||
| Electrical cautery unit | Valley Labs | Force 2 | Cut-30 Coag-40 |
| Endotracheal tube | Hudson RCI | HUD510312 | Hudson brand - appropriate size for animal |
| Intravenous catheter, size 20 gauge | Santa Cruz Biotechnology, Inc | SC-360097 | Fluid and drug administration |
| Lactated Ringers Solution | Hospira | NDC 0409-7953-03 | |
| Macro IV drip set 15 drops/ml | Hospira | 12672-28 | |
| Surgical gowns | Kimberly Clark | 90142 | |
| Utility drapes | Kimberly Clark | 89731 | |
| Adult laparotomy drape | Medline | DYNJP3004 | |
| Sterile surgical gloves | Cardinal Health (Allegiance) | 22537-570 | Size 7 - use appropriate size for surgeon |
| Needle mat - sterile | Medline | NC30MBR | |
| Cautery pencil | Medline | ESPB 2000 | |
| Suction tubing | Medline | DYND50251 | |
| Suction tip; Yankauer | Medline | DYND50130 | |
| Suction cannister | Cardinal Health (Allegiance) | 65651-220 | |
| Ameroid constrictors sizes 2.5mm -3.5mm | Research Instruments SW, Inc. | 760-764-9411 | Types: Stainless steel, titanium, or plastic |
| 3-way stopcock | Cardinal Health (Allegiance) | 455991 | For chest tube |
| Stomach tube - 18 Fr | Cardinal Health (Allegiance) | DC4418 | For chest tube |
| 60cc syringe | Cardinal Health (Allegiance) | SY35060LL | For chest tube |
| 3cc syringe | Cardinal Health (Allegiance) | SY35003LL | For post-op analgesia injection |
| Skin stapler - 35W | Ethicon Endo-Surgery | PMW 35 | skin closure |
| Scalpel blade - size #10 | Cardinal Health (Allegiance) | 32295-010 | |
| Mini silicone vessel loops 1 Pak | Aspen Surgical | 011001PBX | for elevating circumflex artery to apply ameroid |
| 1 (polypropylene) taper | Ethicon | BB #8425H | close ribs |
| 2-0 (polypropylene) taper | Ethicon | SH #8523 | close muscle layers |
| 4-0 (polypropylene) taper | Ethicon | BB #8581H | close pericardium |
| 20 gauge needle | Cardinal Health (Allegiance) | 81-200219 | post-op analgesia injection |
| antimicrobial drape | 3M | 6640EZ | |
| Finochietto rib retractor - infant size | Codman | 50-8057 | |
| Potts-Smith scissors | Roboz | RS-6043 | |
| Babcock forceps | Roboz | RS-8022 | |
| Pean hemostatic forceps curved | Codman | 30-4565 | |
| scalpel handle #7 | Codman | 11-5534 | |
| Brown Adson forceps | Roboz | RS-5231 | |
| Debakey forceps | Roboz | RS-7562 | |
| Mayo scissors | Roboz | RS-6870SC | |
| Metzenbaum dissecting scissors | Codman | 36-5011 | |
| Metzenbaum dissecting scissors | Codman | 36-5016 | |
| Mayo-Hegar needle holder | Codman | 36-2017 | |
| Ryder needle holder | Codman | 36-3012 | |
| Kelly hemostatic forceps | Roboz | RS-7130 | |
| Reynolds hemostatic forcep | Roboz | RS-7211 | |
| Weitlander retractor | Roboz | RS-8612 | |
| Yorkshire domestic pigs |
References
- Mozaffarian, D., et al. Executive Summary: Heart Disease and Stroke Statistics--2016 Update: A Report From the American Heart Association. Circulation. 133 (4), 447-454 (2016).
- Heron, M. Deaths: Leading causes for 2014. National Vital Statistics Reports. 65 (5), Public Health Service. Washington, DC. (2016).
- Tsang, H. G., Rashdan, N. A., Whitelaw, C. B. A., Corcoran, B. M., Summers, K. M., MacRae, V. E. Large animal models of cardiovascular disease. Cell Biochem Funct. 34 (3), 113-132 (2016).
- Lassaletta, A. D., Chu, L. M., Sellke, F. W. Therapeutic neovascularization for coronary disease: current state and future prospects. Basic Res Cardiol. 106 (6), 897-909 (2011).
- Tuzun, E., et al. Correlation of Ischemic Area and Coronary Flow With Ameroid Size in a Porcine Model. J Surg Res. 164 (1), 38-42 (2010).
- Hughes, G. C., Post, M. J., Simons, M., Annex, B. H. Translational Physiology: Porcine models of human coronary artery disease: implications for preclinical trials of therapeutic angiogenesis. J Appl Physiol. 94 (5), 689-701 (2003).
- Sabe, A. A., et al. Investigating the effects of resveratrol on chronically ischemic myocardium in a swine model of metabolic syndrome: a proteomics analysis. J Med Food. 18 (1), 60-66 (2015).
- Santos, A., et al. Cardiovascular imaging: what have we learned from animal models? Front Pharmacol. 6, 227 (2015).
- Klocke, R., Tian, W., Kuhlmann, M. T., Nikol, S. Surgical animal models of heart failure related to coronary heart disease. Cardiovasc Res. 74 (1), 29-38 (2007).
- Tarkia, M., et al. Cardiac remodeling in a new pig model of chronic heart failure: Assessment of left ventricular functional, metabolic, and structural changes using PET, CT, and echocardiography. J Nucl Cardiol. 22 (4), 655-665 (2015).
- Caillaud, D., et al. Echocardiographic analysis with a two-dimensional strain of chronic myocardial ischemia induced with ameroid constrictor in the pig. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 10 (5), 689-693 (2010).
- Unger, E. F. Experimental evaluation of coronary collateral development. Cardiovasc Res. 49 (3), 497-506 (2001).
- Giordano, C., Kuraitis, D., Beanlands, R. S., Suuronen, E. J., Ruel, M. Cell-based vasculogenic studies in preclinical models of chronic myocardial ischaemia and hibernation. Expert Opin Biol Ther. 13 (3), 411-428 (2013).
- St Louis, J. D., et al. An Experimental Model of Chronic Myocardial Hibernation. Ann Thorac Surg. 69 (5), 1351-1357 (2000).
- Green, J. D., et al. Comparison of X-ray fluoroscopy and interventional magnetic resonance imaging for the assessment of coronary artery stenoses in swine. Magn Reson Med. 54 (5), 1094-1099 (2005).
- Qiu, Q., Lin, Y., Xiao, C., et al. Time-Course of the Effects of QSYQ in Promoting Heart Function in Ameroid Constrictor-Induced Myocardial Ischemia Pigs. Evid Based Complement Alternat Med. , (2014).
- Zhou, Y., et al. Direct Injection of Autologous Mesenchymal Stromal Cells Improves Myocardial Function. Biochem Biophys Res Commun. 390 (3), 902-907 (2009).
- Radke, P. W., et al. Evaluation of the porcine ameroid constrictor model of myocardial ischemia for therapeutic angiogenesis studies. Endothelium. 13 (1), 25-33 (2006).
- Estvold, S. K., et al. Does laser type impact myocardial function following transmyocardial laser revascularization? Lasers Surg Med. 42 (10), 746-751 (2010).
- Kumar, A. H., et al. Intravascular cell delivery device for therapeutic VEGF-induced angiogenesis in chronic vascular occlusion. Biomaterials. 35 (32), 9012-9022 (2014).
- JoVE Science Education Database. Essentials of Lab Animal Research: Considerations for Rodent Surgery. , JoVE, Cambridge, MA. Available from: https://www.jove.com/science-education/10285/considerations-for-rodent-surgery (2017).
- Cao, X., et al. Coronary artery vasospasms in a microminipig occurred after placing an ameroid constrictor. J Vet Med Sci. 78 (7), 1213-1216 (2016).
- Sereda, C. W., Adin, C. A. Methods of Gradual Vascular Occlusion and Their Applications in Treatment of Congenital Portosystemic Shunts in Dogs: A Review. Veterinary Surgery. 34, 83-91 (2005).
- Ikonen, T. S., et al. Ligation of ameroid-stenosed coronary artery leads to reproducible myocardial infarction--a pilot study in a porcine model. J Surg Res. 142 (1), 195-201 (2007).
- Adin, C. A., Gregory, C. R., Kyles, A. E., Griffey, S. M., Kendall, L. Effect of Petrolatum Coating on the Rate of Occlusion of Ameroid Constrictors in the Peritoneal Cavity. Veterinary Surgery. 33, 11-16 (2004).
- Griffin, M. A., Hunt, G. B., Epstein, S. E. Behavior of plastic and metal ameroid constrictors during in vitro incubation in physiologic solutions of varying glucose concentration. Res Vet Sci. 105, 165-170 (2016).
