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Biology

電気生理学測定の電気中立運送者の活動を研究への応用

doi: 10.3791/56630 Published: February 3, 2018

Summary

本稿では、プロトン電極やパッチク メソッドのプロトン輸送システムのアクティビティを計測への応用について説明します。これらのメソッドは、一般的に中等度の感度、時間分解能が不足して細胞内環境制御などのプロトン輸送活性を研究する使用される技術のいくつかの制限を克服します。

Abstract

細胞膜中のイオン輸送は細胞の生存に不可欠な細胞内外のイオン濃度の微調整を保証します。これらの転送機構は、専門にされた蛋白質の活動によって仲介されます。具体的には、pH の動態は、原形質膜プロトン (H+) 押出シ ステ ム、ナ+などによって制御される細かく/H+交換 (NHE) 蛋白質家族。NHE の調節機構を研究するための広範な努力にもかかわらず NHE 族の生物物理・分子の性質の私達の現在の理解は、NHE 活動を効果的に測定する方法の限られた供給のためは十分ではないです。.本稿では、我々 は H+を使用-全体セル中に電極パッチ クランプ記録 NHE 誘起 H+フラックスを測定します。提案した通常のいくつかの制限を克服するためにこのアプローチは、放射性の取り込みなど蛍光膜定性、NHE の利用状況を測定するためのメソッドを使用します。記述法を用いた NHE 活性の測定により、細胞内の H+濃度のより効率的なコントロールと時間分解能高感度。H+-電極がトランスポーター活性細胞膜近くにイオン勾配を作成するという事実に基づいています。H+-への移行と繰り返し、振動方法で細胞膜から離れた電極記録電圧差 h+に依存しています。一方、H+-H+フラックス全体セル構成でパッチ クランプ メソッドを使用して、細胞内のイオン組成を制御する、セルの外に移動を検出する電極を使用します。また、巨大なパッチ ・ クランプの技術のアプリケーションには、イオンだけでなく、脂質の細胞内構成の変更ができます。NHE アイソ フォーム 3 (NHE3) の輸送活動はイノシトールリン脂質により NHE3 調節の分子基盤の研究にこの技術的なアプローチを使用して測定しました。

Introduction

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イオンとプラズマ膜における溶質の輸送は細胞のと、それゆえ、生物1の生存に不可欠です。溶質とイオンの選択的輸送は専門にされたチャネルおよび蛋白質の配列によって実現されます。さまざまな病態、薬物治療1のチャネルやトランスポーター蛋白質の潜在的なターゲットをレンダリングしばしばこれらの蛋白質の突然変異の結果します。残念ながら、チャネルやトランスポーターの機能と制御機構の解明は、しばしば制限のアクティビティ2,34を研究するのにアプローチで。

具体的には、トランスポーターがサブに分けることが彼らは溶質の輸送中における細胞膜電位を変更するかどうかに応じて 2 つの大規模なグループ: 無k イオン変更 [例えばナトリウム ・ リン酸輸送体共輸送体 2 a (NaPi2a)、ナトリウム カルシウム交換体 (NCX) など]。または非変更 electroneutral イオン運送者 [例えば、ナトリウム プロトン交換 (NHE)、塩化ナトリウム共輸送体、NaPi2c、です。]。膜側の透過物の蛍光染料2やトランスポーターの両方のクラスの活動は広範囲の放射性同位体の取り込みを使用して検討されています。両方のアプローチは、特定の細胞質のイオンのバルク濃度の変化を測定することによってトランスポーターの活性を推定し、両者適度な感度と時間分解能と細胞内の管理不十分などの制限があります。環境。確かに、多くのトランスポーターの活性は細胞質 (例えばNHE3、NCX)、運ばれたイオン濃度に依存して、これらのイオン濃度の変化が輸送活動2の調節に重要な役割を果たすことが期待,3,5します。 これらの調節のメカニズムの正確な測定は古典的な方法を使用して制限されます。

これらの制限を克服するために、パッチ クランプ方法トランスポーター活性2,6が検討されます。具体的には、クランピング システム パッチ併用自己参照型イオン選択性電極 (ISEs)7,8は最近 electroneutral トランスポーター アクティビティ3,4の測定を許可しています。,5。 天気予報がトランスポーター活性細胞膜近くにイオン勾配を作成するという事実に基づいています。移動し、細胞膜の繰り返しから伊勢、振動のファッションは、電圧差 (μ V) を記録します。電圧の違いは、拡散2,9の Fick の最初の法律を適用する校正法を用いたイオン流束の値に変換できます。天気予報が使用されている間のうち移動イオンのフラックスを検出する細胞、両方の全細胞のパッチ クランプ法またはインサイド アウト構成膜電位および細胞内のイオン組成を制御するために使用します。また、巨大なパッチ ・ クランプの技術のアプリケーションには、イオンだけでなく、脂質とタンパク質の35の細胞内構成の変更ができます。

要約すると、パッチ クランプ法の汎用性は研究する他の方法の輸送活動が行ったことパッチはこれらの他のメソッドの一般的な制限事項を克服するために適切なクランプと比較されます。自己参照を示さなかったし、パッチク ランプ法の組み合わせが厳しく制御された実験環境における electroneutral トランスポーターの活性を測定して小説生物物理・分子を発見するユニークな可能性を提供しています細胞膜の性質は、3,4,5を転送します。このアプローチは、NHE の活動を研究する正常に使用されています。哺乳類 NHE タンパク質ファミリーは、内側の Na+グラデーションを利用した細胞内のプロトン (H+)10,11細胞外ナトリウム (Na+) の electroneutral ネット交換を触媒します。哺乳類で、NHE タンパク質ファミリーには、11 の関連蛋白質 (NHE1 9 および NHA1 2) と精子固有の NHE10,12,13が含まれています。

NHEs (SLC9a 族) 単純な原核生物から高等真核生物にほとんど生物で普遍的に発見され、さまざまな重要な細胞機能10,11で細胞の塩分防御を制御に関与しています。原核生物、酸基盤ホメオスタティス、細胞量を維持し、様々 な特殊な上皮10,12,14,15の塩と水の吸収を調節します。NHEs の重要な生物学的役割とその機能の重要性がいくつかの研究によって決定されています。ただし、いくつかの研究は、方法論の限界4のための哺乳類 NHEs 生物物理・分子特性を検討しました。最近では、自己細胞パッチク中に天気予報を参照するアプリケーションはイオン、タンパク質やリン脂質で3の細胞内濃度の変化によって規制されての NHE アイソ フォームの分子機構を明らかにしました。 4

具体的には、この原稿の提供されるプロトコル概要方法や勉強活動と NHE アイソ フォーム 3 の規則 (NHE3) Na+、Cl-、HCO3- 、液の吸収の主要なプレーヤーのためのアプローチ、腎と小腸上皮14,16の刷子縁膜。細胞内イノシトールリン脂質 NHE3 活動の感度の違いに新しい洞察力 (phosphatidylinositide 4, 5-ビスリン酸 [PI (4, 5) P2] と phosphatidylinositide 3,4,5 三リン酸 [PI(3,4,5]P3]) が報告されます。チャンネルやトランスポーターなどの細胞輸送蛋白質はイノシトールリン脂質17、によって調整されるし、NHE3 は直接 PI (4, 5) P2 と P3 PI (3,4,5)18をバインドします。現在の文献に基づいて、いずれかのイノシトールリン脂質 NHE35,18,19の生理や病態生理学的規制に関連する可能性があります。我々 の調査結果は、PI (4, 5) P2 の PI (3,4,5) P3 NHE3 活性の調節の別のロールをサポートします。この区別は、全細胞パッチク ランプとの組み合わせで伊勢の技術の適用のため可能だった。この技法は、NHE3 活性の測定中に異なるイノシトールリン脂質の細胞内血流を介してホスホイノシチド携帯電話コンテンツのコントロールもできます。

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Protocol

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注: 2 つのアンプ、クランプ、全体セル構成と高 impendence アンプ (細胞を維持するためにパッチ クランプ アンプ パッチと組み合わせて自己参照伊勢で electroneutral 運送者の活動を記録するために必要です電位計)、伊勢経由で輸送活動を記録する (材料の表を参照してください)。パッチ クランプ アンプは、集録ボードの端子に直接接続されます。電位計を利用してフィルター処理し、信号を増幅する差動増幅器に接続されます。差動増幅器は、集録ボードの端子に接続されます。Capmeter、セル容量を監視するパッチ クランプ ソフトウェアは、以前の研究20で使用されています (材料の表を参照してください)。録音室と灌流ソリューションが 37 ° C で維持されます。

1. 天気予報のピペットの準備

  1. ピペット ホウケイ酸塩のガラス管から 1.2 mm の外径を引く (材料の表を参照してください)2ピペットの引き手を使用して。
  2. 使用して、マイクロフォージ ピペットを磨きます。ピペット先端の直径は、2-3 μ m にする必要があります。
  3. (材料の表を参照) を向いてピペット チップ ピペット用の瓶ホルダーで、ピペットを配置します。
    注意: 換気の化学発煙のフード 1.4-1.6 の手順に従います。
  4. ビス (ジメチルアミノ) ジメチル シランと四塩化炭素の 10 滴 1 滴 (~ 150 μ L) で構成される製造混合物のミックス (材料の表を参照してください)。
  5. 瓶にケイの混合物を注ぎ、ふたをしっかり締めて。
  6. 混合物が完全に蒸発するまでは、24-48 時間室温での化学発煙のフード製造混合物と jar を孵化させなさい。
  7. バックフィル適切なイオン選択性樹脂を用いるピペット約 2-4 mm の列を作成します。
    注: 水素イオノフォア私カクテル B は、NHE アクティビティの使用記録をすることができます (材料の表を参照してください)。
  8. 先端部にイオン選択性樹脂を配布するピペットの先端をタップし、ダウン ピペット ピペット チップの瓶ホルダー内で縦方向に配置します。
  9. Checkunder 樹脂カクテルがヒントの最後に達したこと解剖顕微鏡。必要な場合は、最後に樹脂をプッシュする肯定的な圧力を適用します。
  10. 適切なソリューションとバックフィル半分ピペット (~ 100 μ L)。イオノフォアを使用している場合ここでは、pH 7.0 で 100 mM KCl と 10 mM HEPES を使用私カクテル b.
  11. 電位計に ISE を接続し、記録用風呂のソリューションに、伊勢の先端を配置します。電位計はゼロします。
  12. 試験 H+-バス溶液の pH を変更することで選択的な伊勢の応答。平均 H+-伊勢の選択的な応答は 〜 58 単位 pH の mV。
  13. 伊勢レスポンス校正を定期的に評価します。

2. パッチク ランプの準備記録用ピペットします。

メモ: 単一チャネル記録21ドナルド ・ Hilgemann によって彼の記事で説明した方法をお勧めします。

  1. ホウケイ酸ガラス管から巨大なパッチ用ピペットを引く (2.0 mmOD/1.5 mm ID) ピペット引き手2,22,23
  2. 広いピペット チップ (10-22 μ m)23をするために逆にされた顕微鏡のステージ上を使用して、マイクロフォージ マウント。ビーズを溶かす (〜 0.5 mL)、マイクロフォージの厚い白金線に軟質のガラス。
    注: 比較的厚い白金細線が必要 (~0.5 mm) 巨大なパッチ ピペットを作製します。
  3. 軟質ガラス ビーズに近いパッチ ピペットを置き、先端が後退を開始するまでの完全な熱を適用します。白金細線加熱配属されていますに向かって少し移動します。
  4. 熱の電源を切り、軟化したガラス ビーズにピペット チップをプッシュします。冷却のワイヤー工具はリトラクトし、ピペット チップを破る。
  5. ピペット チップを滑らかに必要な径のピペット チップを作成し熱を再適用します。先端の直径が依存するセルのサイズ パッチ (本研究では 8-10 μ m)。

3. 細胞の調製

  1. ウォーム アップ リン酸バッファー生理食塩水 (PBS) Ca2 + Mg2 +、トリプシン EDTA 溶液、37 ° C で中長期成長なし
  2. 洗浄のセル PBS で 2 回。35 mm 直径細胞培養プレートに 1 mL のバッファーを使用します。
  3. トリプシンの 0.5 mL を 35 mm 直径細胞培養プレートのセルに追加します。
    注: セル起動するとラウンド アップ、セルをアタッチ解除するプレートを振るとき。
  4. 10% 牛胎児血清を添加した完全な成長培地 5 mL (35 mm 径細胞培養プレートの量) を追加することによってトリプシンのアクションを停止します。
    注: トリプシンの反応時間は、細胞型依存。
  5. 塊の形成を防ぐためにロッキング シェーカーにセルを配置します。
  6. Trypsinization 後 2 h までのセルを使用します。
    注: セルの行によって時間が異なります。

4. ピペット内灌流システムの準備

  1. 石英管の適切なサイズをカット (150 μ m OD/75 μ m ID) 内ピペット灌流線を準備します。
  2. 200 μ L ピペット チップ石英管の片側に挿入します。先端に石英管を接着し、鋭いかみそりの刃と先端の端をカットします。
  3. ピペット内灌流液の貯留層となるシリコン チューブの小片に灌流線 (石英チューブ先端に接着) を接続します。
  4. 肯定的な圧力を作成する注射器にシリコン チューブを接続します。
  5. 挿入側灌流のピペット ホルダーのポリエチレン管を通って石英チューブのポート (材料の表を参照)。
  6. ピペット ソリューションと灌流線を評価します。

5. 溶液の調製

  1. NHE (115 mM カリウム アスパラギン酸 (KAsp) 1 mM グリコールエーテルジアミン四酢酸、MgCl20.5 mM、10 mM Mg-ATP、HEPES が 12.5 mM、12.5 mM パイプ、12.5 mM モップ 12.5 mM MES の pH 6.0 アスパラギン酸で調整) を記録するため重くバッファー ピペット ソリューションを準備します。
    注: は、ストック ピペット ソリューションとフィルターを準備します。録音の前に Mg ATP を追加します。
  2. (140 mM の NaCl、2 mM CaCl2、2 mM MgCl2、および 0.1 mM トリス塩酸 pH 8.2) するたびに新鮮なバス ソリューションを準備します。

6. 輸送活動の記録

  1. トランスポーターの活動は温度依存するので、録音室と 37 ° C ですべてのソリューションを維持します。
  2. 記録室にセルを配置します。彼らはチャンバーの下部にドロップしますが、チャンバーに接続させていない場合まで待ちます。
  3. 適切なセルを選択します。眼のマイクロメータとセルの直径を測定します。同じような直径を持つセルを選択します。
    注: 一般的に、大細胞がありより細胞表面おそらくよりトランスポーター従ってより多くのトランスポーター活性を有するも、その膜に発現します。ただし、トランスポーターの活性によって異なります特定のトランスポーターと検討中細胞型、これは必ずしも正しくではないです。
  4. マイクロマニピュレーターにイオン選択性電極のピペットをマウント、バックフィル細胞内のソリューションでは、パッチ用ピペット ピペット2のヒントを解決策に到達を確認してください。
    注: それはピペットの先端で気泡を除去するためにいくつかの穏やかなタップを必要があります。
  5. 設定2,22,23電気生理学の頭の段階にパッチ用ピペットをマウントします。
    これにより、強いシールの形成に適しているピペットの入口角度としてメモ: 水平軸に約 45 度の角度でヘッドのステージを保つために重要です。
  6. 小さく肯定的な圧力を適用 (~ 5 cm H2O) パッチ ピペット先端をブロックする可能性を削減し、お風呂のソリューションに配置します。
  7. パッチ クランプ ピペットの先端がセルの近くに移動を停止します。
  8. ピペットに触れるセル間に肯定的な圧力を緩和し、わずかな否定的な圧力を適用 (~ 5 cm H2O) を取得する、> 1000 パッチで細胞膜上の MΩ (ギガ ω) シール ピペット23
  9. 伊勢市と同じ焦点面でセルとパッチ ピペットを置き、パッチ ピペット、伊勢への近さ内のセルを移動 (~ 5-10 μ m)2,5が回避する (図 1 a) 伊勢にお問い合わせください。
  10. 潜在的な保有が 0 であることを保証する mV。
  11. シリーズでは全細胞構成を取得する短い吸引のシールを破裂します。
  12. 伊勢 (またはパッチ クランプ ピペット) 移動ゆっくりと左右または上下トランスポーター (図 1 b) の活動を記録します。
  13. 少なくとも 5-8 ピークを記録 (図 1、A から B に)。
  14. シールと細胞膜容量 (図 1) の品質を監視する記録中に方形波の摂動を適用します。
  15. H+フラックスの推定 (Equation 1) 細胞表面とバルク ソリューション (ΔH+) 無料 H+の濃度の違いから
    Equation 2
    Equation 3
    注:Equation 4Equation 5H+は、それぞれ、拡散係数をバッファー BTがバッファーの合計濃度、 KDはバッファーの解離定数、 rはセル半径、およびEquation 6無料 H+の小さな変化のため連結 H+の濃度の定常状態の変化を決定します。H+は、ソリューションの無料プロトンを示します。先行研究と一致する H+フラックス、フラックスの現在の同等物を計算して電気生理学的磁束の単位に変換されます (Equation 1/faraday) pA3,5]。
  16. 携帯サイズから計算することができます細胞表面に膜容量陽子のフラックスを正規化します。

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Representative Results

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全細胞のパッチ ・ クランプ記録の中に自己参照の伊勢は、イノシトールリン脂質によって NHE3 活性の調節を研究に適用されました。PS120 線維芽細胞様細胞の24、内因性膜 NHEs の表現が不足しているが使用されました。NHE3 野生型 (NHE3 wt) または NHE3 変異しないバインド イノシトールリン脂質 [チロシン 501、503 アルギニンとリジン 505 はアラニン、Y501A/R503A/K505A (NHE3 YRK) で置換された] 安定 PS120 線維芽細胞様細胞18で表現されました。

トレースは、図 2に掲載されています。セルを全体セル構成、パッチク ランプ用ピペットで開催しましたし、ISE はセルの前に置かれました。この位置で、伊勢記録無料 H+の濃度に近い細胞膜 (図 1 a)。その後、伊勢 (またはパッチ クランプ ピペット) は手動で移動の横に 50 μ m、ソリューション (図 1 b) に無料 H+の濃度を記録しました。NHE3 活動 (図 1) のセルのセルの前にまたは、伊勢から遠いパッチ ピペットの 2 つの位置に対応する記録された電圧の違いはします。エンドウアピラーゼ (ATP-diphosphatase) のピペット内灌流後減少ホスホイノシチド コンテンツ5ATP の細胞内濃度が低下します。以前に報告された研究5,18,19, 合意エンドウアピラーゼ治療を介したイノシトールリン脂質低下コンテンツ削減 NHE3 活動 (50% 以下)、電圧の減少として計上しました振動振幅 (図 2)。NHE3 活動に及ぼす (5 単位/ml で与えられる) エンドウアピラーゼ完全に逆だった 2 μ M との組み合わせでエンドウアピラーゼのピペット内灌流による PI (3,4,5) P3 (図 2および 3 a)。これらの調査結果は、安定に発現する phosphatidylinositides18をバインドすることができませんでした NHE3 変異体 (NHE3 YRK) PS120 セルに記録 NHE3 活動によって支えられました。エンドウアピラーゼ単独または組み合わせて PIP3 の灌流は、NHE3 YRK 変異 (図 3 b) NHE3 の活動には影響しなかった.内因性 NHE3 の活動も、オポッサム腎臓 (OK) セル3のエンドウアピラーゼ処理により抑制された.PI (3,4,5) P3 のピペット内灌流逆 OK 細胞 (図 3) のエンドウアピラーゼによる NHE3 活性の阻害になります。NHE3 活動に及ぼす PI (3,4,5) P3 は細胞タイプに固有ではないことが示唆されました。

次に、NHE3 活動でエンドウアピラーゼを介した変更を規制する PIP3 の特異性をテストする目的とします。私たちはこの試金の PI (4, 5) P2 などの他のイノシトールリン脂質の灌流後 NHE3 活動エンドウアピラーゼ依存低減効果でした。PI (4, 5) P2 (10 μ M) では、エンドウアピラーゼ (図 4 a) を介した NHE3 活性の低下には影響しなかった。最後に、アンプ-PNP、非加水分解性 ATP アナログの灌流は NHE3 アクティビティ (図 4 b) theapyrase 依存的な抑制をブロックしていません。これらの調査結果は、PI (3,4,5) P3 がない PI (4, 5) P2 の ATP の枯渇後の NHE3 の調節の役割を提案します。PI (4, 5) P2 の規制は全細胞パッチク ランプ記録5併用伊勢測定中にイノシトールリン脂質の細胞灌流のためにだけ可能だった NHE3 の PI (3,4,5) P3 別のロールの id。PI (3,4,5) P3 よりもむしろ NHE3 活性の調節における PI (4, 5) P2 の特定のアクションは、異なる細胞内イノシトールリン脂質が異なる NHE3 の機能を調節するかどうかを決定するため貴重です。

Figure 1
図 1.H+の模式図フラックス測定と NHE 活動と pH 電極によって記録された潜在的な違いの相関します
記録設定の模式図。A.初期の実験的設定の図。セルは全体セル構成で保有するパッチ クランプ ピペットは、ISE の前に置かれました。この位置には、ISE は、細胞膜に近い無料 H+の濃度を記録します。B. 『 伊勢 (またはパッチ クランプ ピペット) 手動で移動横 ~ 50 μ m でありこの位置でソリューションの無料 H+の濃度を記録します。C.電圧差のグラフィック表現は、ISE を使用して記録されます。B (伊勢から遠いセル) に、伊勢の前に (セル) の位置から振動 NHE 活動の代表であります。使用ソフトウェアには、電圧の違い、伊勢で記録された細胞膜キャパシタンスとパッチ クランプ シールの品質を監視するための摂動 (20 mV, 0.2 kHz) 方形波を生成が登録されています。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 2
図 2.記録の例はエンドウアピラーゼと PI (3,4,5) P3 潅流前後安定 NHE3 wt に発現する PS120 単細胞で NHE3 トランスポーター アクティビティの設定 (PIP3)。
初期録音後セルはエンドウアピラーゼ ピペット内灌流による ATP の枯渇だった。NHE3 活動は徐々 に減少し、PIP3 ピペット内灌流によって復元されました。エンドウアピラーゼ添加は赤色のバーで示される、PIP3 添加は緑色のバーで示されます。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 3
図 3.ATP の枯渇と PIP3 PS120 と OK 細胞における NHE3 トランスポーター活性血流分布の効果。
PIP3 ピペット内灌流による NHE3 活動と NHE3 活性に及ぼすエンドウアピラーゼの予約に及ぼす ATP の枯渇のエンドウアピラーゼを介した: A. PS120 細胞発現 NHE3 wt またはBPS120 細胞発現 NHE3 YRK、NHE3 変異体イノシトールリン脂質をバインドできません。C. [ok] 細胞の内因性 NHE3 を表現します。実線の円は、個々 の実験 (同一の条件で実験 4) から平均データを表示します。誤差範囲は、平均 ± 標準誤差 (SE) を表します。* P < コントロール、分散分析対 0.05。$P < 0.5、エンドウアピラーゼ + PIP3, ANOVA 対$P < 0.01 エンドウアピラーゼ。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 4
図 4.PI (4, 5) P2 の効果 (PIP2) と ATP の枯渇後の潅流 NHE3 活動に ANP PNP。
Aの効果PIP2 またはBANP PNP 内ピペット血流分布 NHE3 NHE3 重量実線の円は、個々 の実験 (同一の条件で実験 4) の平均データを表示を表現する PS120 細胞活性のエンドウアピラーゼ依存低減。誤差範囲を表す平均 ± SE。 * P < 0.05、* * P < コントロール、分散分析対 0.01。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

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Discussion

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トランスポーターの重要な機能、にもかかわらず彼らの活動を研究するメソッドがないと不十分です。1 つの制限は、使用可能なメソッドが実験4細胞内イオン組成の変動を考慮することがなくトランスポーター活性化イオンの動きを測定することです。提案手法により、細胞内外のイオン組成を正確に制御し、細胞内イオン、タンパク質と脂質組成3,4,5を変更するための強力なツールを提供しています。

このプロトコルでは最も重要なステップは、25の長周期の安定している伊勢の準備です。我々 の経験で不安定な伊勢、ないよくシリル (例えば、伊勢ピペット両側イオン選択性樹脂は再配布)、伊勢の信号で定数と手に負えないドリフトによる検知が可能します。さらに、実験中に ISE で樹脂分布を綿密に監視する必要があります。お風呂のソリューションは、樹脂25までバス ソリューションの列を作成する ISE ピペット内部のイオン選択性樹脂をプッシュ可能性があります。この場合、ISE はこのコラムからイオン濃度を記録、実験中にイオン勾配の変化に応答していないになります。ISE のジオメトリを調整する 100 ms9の範囲で伊勢応答を取得し、伊勢の時間応答の遅延の可能性を克服するための鍵は、イオン勾配の変化と比較します。

提案手法の主な制限は、パッチク上皮細胞におけるトランスポーター活性の測定から継承されます。サポートからデタッチすると懸濁液の維持、偏光の上皮細胞は頂または基底膜トランスポーターの偏光のローカリゼーションを失うかもしれない。

クランプ測定修正パッチを使用して、チャネル, 偏光上皮におけるトランスポーターを勉強してください。提供される数式によってフラックスに H+のグラデーションに変換する際、球は重要ななくシリンダー内にセルが表す概数を検討しています。数式を変更する必要がありますこの場合は、 Equation 7 r は半径、λ は、シリンダーの長さは、ad x はグラデーションが測定5されるシリンダーの中間点からの放射距離。Electroneutral トランスポーターを研究のためこの強力な技術の将来の発展、単分子膜の成長記録セルの最適化方法を変更することに焦点を当てる必要があります。

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Disclosures

著者はある利益相反を開示します。

Acknowledgments

著者は、撮影し、編集したビデオで彼の援助のエリック Fishback (デ モイン大学, デモイン、アイオワ州、米国) を感謝したいです。安定表現 NHE3 wt や NHE3 YRK PS120 線維芽細胞のような細胞は、博士マーク Donowitz (ジョンズ ・ ホプキンス大学医学、ボルティモア、MD、米国) によって提供された親切。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Patch clamp Amplifier Molecular Devices
Dual Channel Differential Electrometer (HiZ-223) Warner Instruments 64-1650
Differential Amplifier (DP-301) Warner Instruments 64-0044
Patch Clamp Software Based on MatLab MatLab with acquisition toolbox The capmeter software is recommended
ThermoClamp-1 Temperature Control System  AutoMate Scientific 03-11-LL In-line heater
Single-Channel Temperature Controller (TC-324C) Warner Instruments 64-2400
Single-Barrel Standard Borosilicate Glass Tubing World Precision Instruments 1B120F-3   Used for ion selective electrodes
Micropipette Storage Jar World Precision Instruments E212
Bis(dimethylamino)dimethylsilane Sigma-Aldrich 14755-100ML
Carbon tetrachloride Sigma-Aldrich 319961-500ML
Hydrogen ionophore I - cocktail B Sigma-Aldrich 95293
Thin Wall Borosilicate Tubing  Sutter Instrument B200-156-15 Used for patch clamp pipette 
Soft glass (Corning 8161 Patch Glass) Warner Instruments 64-0815
Silica Capillary Tubing (150um OD/75um ID) Molex (Polymicro Technologies) 106815-0018 Used for intra-pipette perfusion system
Potassium chloride Sigma-Aldrich P9333
Potassium aspartate  Sigma-Aldrich A6558
EGTA Sigma-Aldrich E3889
Magnesium chloride Sigma-Aldrich M4880
Mg-ATP Sigma-Aldrich A9187
HEPES Sigma-Aldrich H3375
PIPES Sigma-Aldrich P6757
MOPS Sigma-Aldrich M1254
MES Sigma-Aldrich M3671
Calcium chloride Sigma-Aldrich C5670
Tris Sigma-Aldrich T1503
Hydrochloric acid Sigma-Aldrich H1758
Apyrase Sigma-Aldrich A6535
Phosphatidylinositol(4,5) bisphosphate diC8 Echelon Biosciences P-4508
Phosphatidylinositol 3,4,5-trisphosphate diC8 Echelon Biosciences P-3908

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Rives, M. L., Javitch, J. A., Wickenden, A. D. Potentiating SLC transporter activity: Emerging drug discovery opportunities. Biochem Pharmacol. (2017).
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電気生理学測定の電気中立運送者の活動を研究への応用
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Babich, V., Henry, M. K., Di Sole, F. Application of Electrophysiology Measurement to Study the Activity of Electro-Neutral Transporters. J. Vis. Exp. (132), e56630, doi:10.3791/56630 (2018).More

Babich, V., Henry, M. K., Di Sole, F. Application of Electrophysiology Measurement to Study the Activity of Electro-Neutral Transporters. J. Vis. Exp. (132), e56630, doi:10.3791/56630 (2018).

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