Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

כימות המרחבי של תרופות נגעים שחפת הריאה על ידי לייזר ללכוד Microdissection נוזלי כרומטוגרפיה ספקטרומטר מסה (LCM-LC/MS)

Published: April 18, 2018 doi: 10.3791/57402

Summary

כאן, אנו מתארים את פרוטוקול באמצעות לייזר לכידת microdissection בשילוב עם ניתוח LC/MS במרחב-לכמת הפצות סמים בתוך גרנולומות שחפת הריאה. הגישה יש ישימות רחבה כדי לכימות ריכוז סמים בתוך רקמות-פירוט מרחבית גבוהה.

Abstract

השחפת היא עדיין גורם התחלואה והתמותה ברחבי העולם. שיפורים משטרי סמים הקיים ופיתוח של הריפוי דרושים בדחיפות. היכולת של תרופות במינון טרה-בתים כדי להגיע, לעקר את החיידקים בתוך גרוע vascularized נמק מחוזות (caseum) גרנולומות ריאתי חיונית התערבות טיפולית מוצלחת. משטרי טיפולית יעילה ולכן חייב להכיל תרופות עם סגולות חדירה caseum חיובית. השיטות הקיימות LC/MS עבור לכימות רמות התרופה ברקמות ביולוגיות מוגבלת ליכולות הרזולוציה המרחבית, ולכן קשה לקבוע במדויק ריכוז סמים מוחלטת בתוך תאי רקמת קטן כמו אלה שנמצאו בתוך גרנולומות נמק. כאן אנו מציגים פרוטוקול המשלב לייזר לכידת microdissection (LCM) של רקמות באופן פתולוגי, נבדל אזורים עם ביופידבק כמת. טכניקה זו מספקת כימות מוחלטת של סמים בתוך caseum גרנולומה, סביב הנגע הסלולר ואת רקמת הריאה מעורב, לכן, באופן מדויק קובע אם ריכוזים אחרים להיות מושגת. בנוסף המחקר שחפת, הטכניקה יש יישומים פוטנציאליים רבים על כימות נפתרה במרחב של סמים לרקמות החולות.

Introduction

היכולת לזהות ולכמת רמות התרופה במרחב היא דרישה חיונית לקביעת אם תרופות נגד שחפת להגיע subpopulations חיידקי בתוך נגעים ריאתי-לחיטוי ריכוזים1. חשיבות מיוחדת הוא בקביעת סמים חדירה לתוך הליבה נמק של הנגע (שנקרא caseum), אשר בדרך כלל מכילה את המספר הגבוה ביותר של החיידקים, וייתכן שהוא לקוי נגיש לסמים עקב העדר vascularization.

שיטות מסורתיות כדי להעריך את הנגע חדירה, שכרוכים המגון הנגעים ריאתי נכרת ואחריו החילוץ הממס וניתוח ספקטרומטר מסה (LC/MS) כרומטוגרפיה נוזלית, הם מאוד רגישים, סלקטיבי עבור הסמים של ריבית. עם זאת, שיטות אלה מציעים מידע מרחבי המסכן, מוגבל לגודל של הרקמה homogenized המקורי. מסה ספקטרומטר הדמיה גישות, כגון לייזר בסיוע מטריקס desorption יינון (MALDI)2,3, desorption ספקטרומטריית electrospray יינון (דסי)4 או חילוץ שטח משופרת נוזל5, 6 מציעים יכולות הדמיה מאוד במרחב-נפתרה, אבל כימות ישיר יכול להיות מאתגר מאוד או בלתי אפשרי בשל היעילות חילוץ שונות של analyte מהתא שונים ואפקטים של דיכוי יון הטרוגניות או רקמות סוגי7. בנוסף, גישות הדמיה הישירה ביותר של רקמות MS הם מטבעם פחות רגישים יותר LC/MS עקב חוסר ההפרדה כרומטוגרפי של אנדוגני מינים מתחרים על יינון ואת היעילות החילוץ הממס נמוכה יותר של הסם מרקמות.

לייזר לכידת microdissection (LCM) בשילוב עם ניתוח LC/MS יש כבר מיושם באופן שגרתי כדי לבודד לאפיין אזורים רקמה נפרדות עבור פרוטיאומיה מבנית מחקרים8,9 , לאחרונה מנוצל על כימות סמים ב עצומות ברקמות בעלי חיים10. כאן אנו מציגים פרוטוקול ממוטבת החלת LCM בשילוב עם ניתוח LC/MS (LCM-LC/MS) לכמת תכשירים נגד שחפת בתוך תאים נפרדים גרנולומה. בתהליך microdissection לכידת לייזר, לייזר UV הוא מרוכז באמצעות המטרה מיקרוסקופ לתוך מקטע רקמות, אשר חותך ומבודד אזור הרקמה הרצויה על-ידי ביצוע נתיב המוגדר על-ידי המשתמש. עבור בסיוע הכובד LCM (בטכניקה השתמשו לצורך מחקר זה), סעיף הרקמה הוא רכוב לשקופית קרום דק פולימרי (PET או עט), הרקמה נלכד בתוך הצינורית אוסף מוצב מתחת לשקופית. הסמים מופקים מכל רקמת נכרת, לכמת באמצעות גישות LC/MS סטנדרטי. כמות רקמת נדרש להיות שנאספו נקבעת בסופו של דבר את ריכוז התרופה נוכח הרקמה הצפוי, הרגישות של שיטת ביופידבק. עבור רוב ניתוחים של סמים עצומות ברמות טיפולית וניתח באמצעות ספקטרומטר מסה פאול טריפל שגרתית, 3 מיליון מיקרומטר2 (3 מ מ2) של רקמת שטח מספיקה.

פרוטוקול זה מתאר שילוב רב עוצמה של פרופיל המרחבי, כימות מלא מוצעים על ידי אופנת LCM-LC/MS, מתן סמים מוחלטת ריכוזים בתוך התאים של גרנולומות טרה-בתים. ניתן להחיל את הטכניקה גם לקביעת ריכוזי התרופה ברקמות רבות חולה אחר מתן מידע חיוני סמים בגילוי ופיתוח.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

מחקרים שנעשו בבעלי חיים כל בוצעו על פי המדריך על טיפוח ועל שימוש של חיות מעבדה של מכוני הבריאות הלאומיים באישור בעלי חיים מוסדיים אכפת והוועדה שימוש של NIAID (NIH), בבתסדה, מרילנד

1. הניסויים ואוסף רקמות

סעיף זה של הפרוטוקול מתאר נהלים בעלי חיים וגבייה מדגם בתנאים אבטחה ברמה 3 (BSL3). הפרוטוקולים מפורט של שחפת Mycobacterium תרסיס זיהום הליך התרופות, המינהל היה הפרוטוקולים ארנבים שתוארה לעיל11,12.

  1. להדביק ארנבים ניו זילנד הלבן (זכר ונקבה -בת 4-5 חודשים) עם מ. שחפת HN878 באמצעות מערכת תרסיס האף בלבד, כפי שצוין בעבר תיאר11.
  2. לנהל את הסמים שבחרת (Ethambutol בדוגמה המובאת כאן) דרך המסלול המועדף, המתת חסד החיות של 2, 6 ו- 24 שעות לאחר ניהול. ראשית, עזים ומתנגד הארנב בזריקה תוך שרירית של קטמין 35 מ"ג/ק"ג, חריגות השירותים הווטרינריים-5 מ"ג/ק"ג. לחכות 10 דקות ואשר ההרדמה המתאים על-ידי צובט את הזנב ונגיעה בעדינות את העין. אם אין תגובה, המתת חסד על ידי עירוי לוריד של פנטוברביטל, פניטואין (ראה טבלה של חומרים) ב 1 מ"ל/4.5 ק"ג ב 2 מ ל תמיסת מלח סטרילית.
    הערה: אלה timepoints אופטימלית לחפות את הפרופיל פרמוקוקינטיים Ethambutol, מחייבים התאמת/אופטימיזציה עבור תרופות מחקר אחרות.
  3. באמצעות מלקחיים, מספריים, ו/או אזמל, להסיר את הריאות בחלל החזה, נכרות ביופסיות הריאה המכיל גדול גרנולומות נמק נעוץ סביב רקמת הריאה מעורב (כמתואר קודם לכן3). נמק גרנולומות מופיעות בז, צבע, בדרך כלל בולטות מעט מן הריאות שצבעו אדום/ורוד שמסביב. כדי להקל על cryosectioning קל, ודא ביופסיות יותר מ- 2 x 1.5 x 1.5 ס מ.
  4. באמצעות מלקחיים, מקם את הביופסיה על גבי מגש cryomold שכותרתו מראש עם משטח החיתוך הרצוי במגע ישיר עם הבסיס של המגש. לאחר הקפאה, פעולה זו תספק משטח שטוח שממנו יהיה לחתוך cryosections.
  5. להקפיא את הביופסיה ב אדי חנקן נוזלי. למלא את מיכל קלקר עד לעומק של 2 ס מ עם חנקן נוזלי ומניחים מתלה צינור מתכת. המתלה צריכים לבלוט מעל פני השטח של החנקן הנוזלי מתן משטח שטוח שעליו ממוקמים המגשים רקמות. מקם את המכסה על המכולה קלקר ולהשאיר רקמות ל-10 דקות להקפיא באופן מלא.
  6. להסיר את המגשים רקמות, במהירות לעטוף בסרט אלומיניום, למקם באופן אינדיבידואלי עם התווית שקיות פלסטיק לסגירה חוזרת וחותמת. להעביר ל-80 מעלות צלזיוס מקפיא לאחסון.
    הערה: השלבים 1.1-1.6 מבוצעות בתנאים BSL3 (כולל כל העבודה בעלי חיים וטיפול של האיברים הנגועים). גמא שקסמה מקרין והביופסיות ריאות ב- 3 Megarads כדי לאפשר טיפול מחוץ BSL3 הבלימה. ניתן לבצע לייזר microdissection לכידת על רקמות הפטריה בתוך BLS3 המתקן אם תאושר פרוטוקול הבטיחות נמצאים במקום. עם זאת, השארית של פרוטוקול זה מתאר עיבוד במורד הזרם במתקן BSL-2.

2. רקמת חלוקתה

  1. הגדר את cryostat הטמפרטורה הרצויה חיתוך. להעביר את הביופסיה ריאות מוקרן-גמא-80 ° C אחסון cryostat ולהשאיר למשך 30 דקות equilibrate הטמפרטורה ברקמות. הערה:-20 ל-22 ° C הוא אופטימלי ביופסיות הנגע טרה-בתים.
  2. באמצעות פינצטה, לתקן את הביופסיה לצ'אק cryostat באמצעות כמות קטנה של דבק טמפרטורה אופטימלית חיתוך (אוקטובר) לדבוק הבסיס של רקמות הצ'אק. אוריינט הרקמה כך משטח שטוח (זה היה בקשר עם בסיס cryomold) הוא השטח החשוף לחיתוך. ודא ש-OCT לא לזהם את השטח רקמות, כמו זה עלולים להפריע הניתוח ספקטרומטר מסה עוקבות.
  3. חותכים לשלושה חלקים רקמות-עובי 25 מיקרומטר והר אל מחמד ממברנה שקופיות. בעדינות לגעת הקרום בסעיף רקמות והסר. אם מוחל מדי לחץ, קרום דק לגזרים.
    1. הימנע טיפול מופרז של השקופיות לפני הרכבה כפי התוצאה תהיה קרום חיית המחמד להיות טעון ועניים הידבקות של הסעיפים רקמות. ודא כי השקופית הממברנה נשמרת בטמפרטורת החדר, כדי לאפשר אדהזיה ההפשרה-הרכבה ומוצלח של הרקמה למוח.
  4. הסר את השקופית cryostat, מאפשרים מילה נהדרת. במשך 3 דקות. אם הפונקציה LCM-LC/MS/MS לא תתבצע באופן מיידי, חותם את השקופית בתיק קטן אטום sealable, העברת אחסון-80 ° C עד נדרש ניתוח.
  5. לגזור מקטע הסמוך ב 10-12 מיקרומטר, הפשרה-mount על משטח זכוכית רגילה עבור Hematoxylin ואאוזין (H & E) צביעת והפניה. סעיפים נוספים ניתן לחתוך בשלב זה עבור אחרים כתמים להסטולוגיה הרצוי (כגון צביעה-Niellsen להמחשת שחפת Mycobacterium (MTB)).

3. Microdissection

  1. להסיר את שקית אטומה המכילה את השקופית מ-80 מעלות צלזיוס אחסון ומאפשרים להגיע בטמפרטורת החדר למשך 5 דקות.
    הערה: אם השקופית קר חשוף מיד לאווירה מעבדה, הרקמה להפוך מצופה עיבוי, עלולה לסכן את שלמות המרחבי של התרופה.
  2. הפעל את המיקרוסקופ ואת לייזר (לייזר דורש 5-10 דקות להתחמם לפני חיתוך יכול להתחיל). לטעון mL 0.20 כובע שטוח המבחנות לתוך למחזיק.
  3. הסר שקופיות מתוך התיק ולקחת תמונה אופטי של סעיף הרקמה בשקופית מחמד באמצעות סורק משטח אופקי.
  4. מקם את השקופית לתוך מחזיק שקופיות (רקמות פונה כלפי מטה) והקצה אוסף נפרד צינורות לאזורים ספציפיים גרנולומה עניין שימוש בתוכנה מיקרוסקופ. בדרך כלל, אלה יהיו 'ריאות מעורב,' 'הסלולר גרנולומה,' ו- 'caseum' (נמק במרכז), אבל עשוי להשתנות בהתאם פתולוגיה ספציפית של גרנולומה/הביופסיה.
  5. מתמקדים הרקמה באמצעות 5 X מיקרוסקופ אובייקטיבי. ההגדלה זה צריך לספק תמונה כללית של הרקמה המכילה בשני התחומים גרנולומה הסלולר, נמק. התוכנה בחר את הצינור המיועד 'caseum' כדי להעבירו למצב תחת הרקמה.
  6. הזן את הפרמטרים הרצויים לנתיחה. הגדרות אופייניות עבור מקטע ריאות עבה מיקרומטר 25 הם עוצמת הלייזר 30, 15, ומהירות צמצם 35 (שרירותי יחידות). עם זאת, אלו ישתנו בהתאם המיקרוסקופ משמש ופוטנציאל פוחתת כוח בגלל גילו של הלייזר.
  7. בחרו בכלי 'חינם-draw' ו, באמצעות עט או עכבר או מסך מגע, המתאר את האזור הרצוי לצורך ניתוח. פני השטח של האזור יוצג בתוכנה. לשמור על אזורים שנבחרו תחת 500,000 מיקרומטר2 (0.5 מ מ2) כדי להקל על ניתוח קל יותר. חזור על הקרע עד 3 מיליון מיקרומטר2 (3 מ מ2) שנאסף בסך הכל הצינורית.
    1. לעיתים, באזור גזור עשוי להשאר תקועים למוח שמסביב (למשל עקב משיכה סטטית), אל תיפול לתוך הכיפה אוסף. להסיר אזורים אלה מצטברים שטח הפנים הכולל על-ידי בחירת והסרה ידנית בתוך התוכנה.
  8. בחר את הכובע על 'הנגע הסלולר' ולאסוף 3 מיליון מיקרומטר2 של רקמות שימוש באותו התהליך כמתואר בשלב 3.7.
  9. בחר את הכובע 'ריאות מעורב' ולאסוף 3 מיליון מיקרומטר2 של רקמות שימוש באותו התהליך כמתואר בשלב 3.7. שימו לב כי רקמת הריאה מעורב מכיל bronchioles רבים ורווחים מכתשי. שים לב כדי לא לכלול את אלה מאזורים רקמות שהוגדרו עבור ניתוח.
  10. בעל כיפה, בזהירות להיפרם, חותם, שלוף כל שפופרת. להגן על הרקמות גזור סביב אוויר הפרעות (למשל מאנטנת זרימת אוויר התפרצותם דלת הפתיחה). לנתח את רקמות גזור באופן מיידי, או לאחסן ב-80 מעלות צלזיוס, להפשיר לפני עיבוד וניתוח איכות המזון.

4. הפקת וניתוח איכות המזון

  1. הכנת מיצוי פתרון של acetonitrile 1:1 / Ethambutol d-10 תקן פנימי המכיל מתנול. בעת בחירת תקן פנימי, שימוש טופס שכותרתו יציב של התרופה analyte (כגון התווית על-ידי דאוטריום EMB המשמש ההדגמה) עם shift המוני מספיק כדי להימנע איזוטופ לחצות לדבר בין סמים analyte תקן (בדרך כלל מינימום של 4 daltons) .
    הערה: יצירת תקנים ב- homogenate של כל אחד מסוגי רקמות בהתאמה קשה כי יש שליטה מוגבלת מאוד רקמות עם אשר כדי ליצור סטנדרטים homogenate. בתור חלופה להפיכת תקנים מתוך מדגם homogenate מחודדים, תקן יכולים להיווצר על-ידי הוספת רקמות ריק מבחן מתחם יחד, לחילוץ. נפח של רקמות שליטה homogenate שמתאים האחסון היעד מהסעיפים המחקר דגימת רקמה משולבת ישירות עם כמות של הבדיקה מתחם זה יהיה נוכח ריכוז נתון.
  2. לחשב האחסון רקמות יישוב מבוסס על פני השטח ואת עובי של סעיף הרקמה ולקבוע את גורם הכרחי דילול homogenate שימוש באמצעי האחסון של homogenate אשר יתווספו תקן ו- QC דגימות. חישובים מומחשים מתחת לאזור היעד גזור2 (3 מ מ2) 3 מיליון מיקרומטר עם מיקרומטר עובי 25, 2 µL נפח של homogenate.
    Equation 1
    Equation 2
    Equation 3
    Equation 4
  3. בהנחה צפיפות רקמה של 1 g/mL, להכין את המניה homogenate על-ידי במשקל של 50 מ"ג של רקמות שליטה והוספת PBS מאגר לדלל (באמצעות הגורם דילול 26.67 homogenate שחושבו בצעד 4.2, diluent זה 1.283 מ"ל). Homogenize על ידי להכות רקמת הריאה ומאגר PBS במשך 5 דקות ב- 1750 סל"ד על מהמגן חרוז חרוז.
    Equation 5
    Equation 6
  4. למהול 1 מ"ג/מ"ל ריכוז התרופה מניות ב- 1:1 acetonitrile/מים כדי ליצור עיקול רגיל עולה פתרונות. לקבוע עולה ריכוז רגיל המבוסס על ספייק ונפח האחסון רקמת המטרה. הדוגמה מאויר מיועדת 100 ננוגרם למ"ל רגיל באמצעות אמצעי אחסון ספייק µL 10.
    Equation 7
    Equation 8
  5. להסיר את הצינורות המכילים הרקמות microdissected מ-80 מעלות צלזיוס אחסון ומאפשרים להגיע בטמפרטורת החדר למשך 5 דקות.
  6. להוסיף 10 µL של פתרון 1:1 acetonitrile/מים ו- 2 µL PBS מאגר הצינורות המכיל רקמות microdissected.
  7. עיקול רגיל וצינורות בקרת איכות, להוסיף 10 µL של עולה פתרון 2 µL של שליטה ריאות homogenate.
  8. להוסיף 50 µL של פתרון מיצוי כל שפופרת.
  9. מערבולת כל שפופרת למשך 5 דקות, sonicate במשך 5 דקות, צנטריפוגה-5000 סל ד למשך 5 דקות כדי ליצור גלולה של הסרט ורקמות בתוך כל שפופרת.
  10. להעביר 50 µL של תגובת שיקוע צלחת עמוקה 96-טוב-טוב, לדלל עם µL 50 נוספים מים יונים מכל קידוח.
  11. לבצע ניתוח LC/MS/MS באמצעות כלי אופטימיזציה פרמטרים עבור Ethambutol ו- Ethambutol-d10 תקן פנימי (כאמור שמתואר פרט12).
  12. השתמש גורם לדילול כדי לתקן את הסכום המדויק של רקמות גזור עבור כל דגימה.
    Equation 9

5. שיטת אימות

  1. ליצור homogenate של רקמת הריאה שליטה על-ידי שילוב ריאות חלק 1, PBS חלקים 2 ו- 3-4 חרוזים פלדה. לנצח את רקמת הריאה ומאגר PBS למשך 5 דקות ב- 1750 סל"ד באמצעות מהמגן חרוז.
  2. ספייק homogenate על-ידי הוספת 10 µL של 1 מ"ג/מ"ל Ethambutol דימתיל סולפוקסיד מניות לתוך 990 homogenate µL כדי ליצור ריכוז סופי של 10,000 ng/mL (10 mg/mL) ו מערבולת במשך דקה אחת.
  3. יצירת בלוק קפוא homogenate על-ידי לשפוך את homogenate לתוך cryomold במהירות קפוא בקרח יבש למשך 5 דקות.
  4. להכין 25 סעיפים עבה מיקרומטר מהגוש homogenate כמתואר בצעדים 2.1-2.5.
  5. לנתח אזור הרקמה היעד כמפורט בשלבים 3.2-3.10.
  6. להוסיף 10 µL 1:1 acetonitrile/מים ו- 2 µL PBS מאגר הצינורות המכיל רקמות microdissected.
  7. להוסיף 50 µL של פתרון מיצוי כל שפופרת. בצע שלבים 4.9-4.12 כדי ליצור עיקול רגיל ולקבוע את ריכוז התרופה בבלוק homogenate רקמות.
  8. לחשב יעילות חילוץ באמצעות הנוסחה שלהלן:
    Equation 10

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

סקירה כללית של הגישה LCM-LC/MS מוצג באיור1. לאחר לחיטוי הרקמה על ידי גמא-הקרנה, כל השלבים הבאים (מתוך רקמת חלוקתה ואילך) מתקיימים מחוץ BSL3 תנאים. איור 2 מציג הנגע מקטעים ביופסיה לפני ואחרי רקמות בידוד על ידי אופנת LCM. אזורי נמק הסלולר של נגעים טרה-בתים יכול להיות בקלות לזהות, מבודדים על ידי בדיקה חזותית של התמונות אופטי לבד (ללא הדרישה כדי להפנות לסעיפים שהוכתמו בהיסטולוגיה רקמות סמוכים). דיסקציה יוצר חתך נקי עם הפרעה מינימלית הרקמה שמסביב, לנתח 3 מיליון מיקרומטר2 (3 מ מ2) של כל אזור בעל עניין מהפצעים לוקח בערך שעה סך הכל.

החילוץ יעילות ויציבות של השיטה LCM-LC/MS הוערכה באמצעות ריאות Ethambutol EMB-עלה homogenate (טבלה 1). מיצוי מלא של הסם נצפתה, ללא בעיות יציבות סמים אותרו באמצעות תהליך ניתוח והפקת. פרוטוקול החילוץ, כימות LCM-LC/MS אומתה עוד יותר על-ידי השוואת לשיטות הוקמה LC/MS כימות חלה על הרקמות אותו. עקב הטרוגניות הטבועה של נמק ריאתי נגעים טרה-בתים, יחודיות המרחבי המסכן המוצעים על ידי רקמת סטנדרטי המגון, אנחנו אומת השיטה LCM-LC/MS על-ידי ישירות השוואת ריכוזים סמים בריאה מעורב נותחו על ידי שניהם שיטות אנליטיות (עקב ההומוגניות רקמת גבוה יחסית שלה). טבלה 2 מציג את ריכוז התרופה בריאה מעורב של ביופסיות שנלקחו שלושה ארנבות עצומות Ethambutol כפי שהוערכו: 1) homogenizing 25 סעיפים רקמות עבות מיקרומטר וניתוח לפי תקן LC/MS, וניתוח 2) LCM-LC/MS של הריאה מעורב שטחים שנלקחו מקטע רקמות עבות מיקרומטר 25 סמוכים. הנתונים מראים כי שתי גישות לייצר נתונים עקביים כימות, הממחיש את התאמת על כימות המרחבי שגרתית.

לנו יש להחיל LCM-LC/MS במרחב-לכמת הקיים ואת הרומן נגד שחפת תרופות רבות בתוך נגעים ריאתי. איור 3A מציג נתונים לדוגמה ארנבים הנגועים MTB שיסממו אותו מצב יציב עם Ethambutol. LCM-LC/MS זמין כימות מלא של הסם נפתרה בתוך caseum, הנגע הסלולר ואזורי רקמת הריאה מעורב. EMB נצפתה לחדור אל תוך הנגע ולהגיע לחיטוי ריכוזים בתוך caseum עם נמק. התמונה MALDI-MS התואם של התפלגות EMB שנרכש מקטע רקמות סמוכים מוצג באיור 3B. התמונות MALDI-MS איכותי בקורלציה עם הנתונים הכמותיים LCM-LC/MS עם ריכוז נמוך יותר של התרופה, זוהה את caseum עם נמק לעומת השפה התאית. נתונים LCM-LC/MS אומתה על ידי השוואה ישירה אל רקמת homogenates נותחו על ידי תקן LC/MS.

Figure 1
איור 1 : סכמטי של תהליך LCM-LC/MS. ארנב ריאות ביופסיות המכיל נמקי יחד עם סביב הריאה מעורב נאספים וכוח קפוא. Cryosections נחתכים על גבי ממברנות מחמד רזה ואת תחומי הנגע הסלולר ולאחר השעוונית ריאות מעורבים, הם גזור מבודדת על כימות על ידי הותאם LC/גב' מ. צימרמן et al. 12 אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 2
איור 2 : הנגע (A, B) ובריאות מעורב (C, D) כפי שהם מופיעים כאשר צפו באמצעות המיקרוסקופ לפני (א, ג) ואחרי (B, D) microdissection. הנגע השעוונית אזורים נראים כהים ונסדק '' במהלך הסריקה תמונה אופטי (, מתווה ירוק). הנגע הסלולר הוא בהיר ומוצק יותר במבנה (A, בקו מתאר אדום). ריאות מעורב כדאי לטעום לפחות 5 מ מ מהגבול הנגע ומופיע אדום/ורוד בצבע (C, חלוקה לרמות ציאן). גודל ברים (שחור, כחול וסגול) = 400 מיקרומטר. הערה כי יש לבחור רק שטחים אחידים של הריאה מעורב כדי להימנע כולל רווחים מכתשי bronchioles באזור השטח הכולל של רקמות שנאספו (כפי שמוצג ברה). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Figure 3
איור 3 : דוגמה LCM-LC/MS dataset מן הנגע ביופסיות שנלקחו ארנבים קיבלה 100 מ"ג/ק"ג EMB במשך 7 ימים. (א) חדירה חיובית של התרופה לתוך התאים ריאות, הנגע נצפתה. ריכוז סמים לכמת על ידי אופנת LCM-LC/MS (ברים חלול) /MS היו בהסכם חזק עם אלה לכמת מ הומוגני נגעים גזור על ידי תקן LC/MS (מוצק ברים, זאת אומרת ± סטיית תקן, n = 3-8). ריכוז מינימלי נדרש להרוג 99% של החיידקים שכפול חוץ-תאית (MBC99) ו- 99% של החיידקים תאיים ב מקרופאגים (iMBC99) מסומנים. החלונית העליונה (B) : התמונה MALDI-MS ומציגות את חלוקת EMB יון [M + H]+ (מ/z 205.193) בתוך מקטע לרקמות סמוכות. שימו לב כי התמונה MALDI-MS מרמז המסכן לחדירה של EMB caseum עקב ריכוז התרופה הנוכחית להיות מתחת לגבול התחתון של זיהוי (לוד) של הטכניקה. עם זאת, ירידה לפרטים המרחבי של סופריור לוד של הפונקציה LCM-LC/MS להראות שהסם מגיע לחיטוי ריכוזים בתוך התאים הנגע כולל את caseum. החלונית התחתונה: Hematoxylin & אאוזין צבעונית סעיף הרקמה סמוכים ישירות אל הסעיף משמש MALDI MSI. Cellular (C), נמק גרנולומות (NG) נכחו ברקמה. ליבת caseum המותווה בלבן. מ. צימרמן et al. 12 אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

אזור גזור (2מיקרומטר) נמדד conc EMB. (ng/g) (n = 3) EMB השחזור (%) (n = 3)
3 מיליון 10633 (±404) 106 (±4)
5 מיליון 10057 (±1132) 101 (±11)
10 מיליון 10563 (±1128) 105 (±11)

טבלה 1: החילוץ היעילות של שיטת LC-LC/MS לכימות EMB בריאה. החלמה מלאה של EMB נצפתה ברקמות homogenate גזור ריאות EMB עלה עבור כל אמצעי אחסון רקמות הערכה.

מזהה ארנב LC/MS EMB (ng/g) LCM-LC/MS EMB (ng/g) ההבדל (%)
899 2910 3320 14
904 2010 1870 -7
911 2150 2370 9

בטבלה 2: השוואה של EMB כמת בריאות מעורב ביופסיות מ 3 ארנבים עצומות על ידי LC/MS LCM-LC/גב ריכוז סמים המקביל אותרו על ידי שיטות והן לא לאבדן קשר עקב השפלה או מיצוי במהלך תהליך LCM-LC/MS נצפתה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

נפתרה במרחב כימות של סמים בתוך נגעים שחפת הריאה נדרשת כדי לקבוע אם התרופה חשיפה מגיע ריכוזים לחיטוי על אוכלוסיות חיידקים השוכנים התאים הנגע שונים. השיטה LCM-LC/MS המתוארות כאן מאפשר כימות מוחלטת של תכשירים נגד שחפת בתוך הנגע התאים, כולל את caseum חיידקים-עשיר, שימוש רק 1-3 מקטעי רקמת בסך הכל. רקמה מסורתית המגון וגישות LC/MS על כימות סמים בתוך הרקמה לעיתים קרובות חסר יחודיות המרחבי לפתרון תאים ספציפיים הנגע, גם כאשר זה אפשרי, ויש פוטנציאל משמעותי צלב לזהם סלולריים ו נמקי אזורים במהלך תהליך הוצאה ידנית.

הגישה LCM-LC/MS יש מספר יתרונות מרכזיים על מסה ספקטרומטר מבוססי טכנולוגיות הדמיה. ראשי בין אלה הן היכולות כמותי מלא של השיטה ואת הרגישות נוספים של ניתוח LC/MS עקב פתרון הסמים של הפרעה/העלמת מינים אנדוגני באמצעות ההפרדה כרומטוגרפי. עם זאת, MALDI-MSI מספק שמידע מרחבי לגבי הפצת סמים מפורט יותר. MALDI-MSI והן LCM-LC/MS/MS דרוש מדגם הכנה הפעולות כדי ליצור מקטעי רקמת קפוא, ניתן לבצע את שתי הטכניקות במשולב על ביופסיה רקמות באותו מתן כימות מלאה לצד הפערים מפורט הדמיה של סמים הפצה. דוגמה של הדרישה רגישות גבוהה יותר אנליטי מוצג באיור3. רק רמות נמוכות מאוד של האות EMB התגלו באזור גרנולומה נמק מרכזי התמונה MALDI MS (המוצג באיור 3B), מציע caseum חדירה של הסם הוא עני. עם זאת, עקב המגבלה מעולה של זיהוי של הפונקציה LCM-LC/MS הסם הודגם בבירור להגיע לחיטוי ריכוזים בתוך התא הזה, ריכוז התרופה הנוכחי היה ברובו בלתי מורגשת על ידי MALDI (איור 3 א).

פרוטוקולים צביעת רקמות משמשים בדרך כלל כדי לאפשר זיהוי קל של רקמות שטחים ואוכלוסיות תא ממוקם בתוך לפני LCM ליישומים פרוטיאומיה מבנית. השגרה פתולוגיה כתמים כגון H & E אינם תואמים כימות סמים, כמו הממס רבות שטיפת השלבים המעורבים delocalize את התרופה מהמקטע רקמות. ניתן להיות מוכתם H & E, משמש כמדריך microdissection לחתוך חלקים סמוכים. אולם, זה לא נחוץ בדרך כלל, כמו התאים הנגע יכול להיפתר שטיחות תחת המיקרוסקופ brightfield LCM סטנדרטי (איור 2).

אופטימיזציה של השלבים חלוקתה, microdissection חיונית כימות הנגע מוצלחת. במהלך הפיתוח של השיטה, אנחנו הערכה של שני החומרים ממברנה שונים, פוליאתילן terephthalate (PET) ופוליאתילן naphthalate (עט), כמו המצע להרכבת הסעיפים רקמות עבור microdissection. עט ממברנות סבלה טעינה סטטית מוגברת בהשוואה חיית המחמד ממברנות, כ-30% בכל התחומים רקמות ביתור אבדו בשל משיכה סטטית בין אזור הרקמה גזור את הקרום. מסיבה זו, חיית המחמד ממברנות נבחרו והניתוחים בעתיד עקב האטרקציה סטטי מופחתת באופן משמעותי שנצפו (רק 5% של אזורים גזור מן חיית המחמד ממברנות אבדו במהלך תהליך LCM).

היציבות של סמים בתוך רקמת מקטעים הוא שיקול חשוב בעת עיצוב של המחקר LCM-LC/MS. במהלך תהליך חלוקתה של דיסקציה, הסעיפים רקמות חשופים מעבדה לטמפרטורה ואור לתקופה של פחות שעה. בעיות אחרות לשקול לכלול את היעילות החילוץ של התרופה מן הסעיפים רקמות, כפי יש צעד המגון לא מעורב (מיצוי מבוצעת רק על ידי מערבולת ערבוב sonication). מניסיוננו, החילוץ אינם סובלים חוסר של רקמות המגון עקב מיצוי גבוה הממס יחס רקמות בשימוש, דלילות הסעיפים רקמות גזור. התצפיות שלנו נוטים להסכים שתואר קודם לכן מקוון LCM-LC/MS שיטה שפותחה כדי לכמת את הפרופראנולול המקטעים של רקמת microdissected של המוח והכבד, איפה מיצוי מלא של סמים מרקמות נצפתה 20 מיקרומטר, בעובי 40 µm סעיפים10. נוכל לאמת את היעילות של התרופה החילוץ וניתח היציבות סמים במהלך תהליך LCM על-ידי השוואת ריכוזים רקמת הריאה (מן אותו ארנב האונה ריאות) ישירות על ידי אופנת LCM-LC/MS עם ריכוזים נקבע על ידי רקמת סטנדרטי המגון, LC/MS (לדוגמה מוצג בטבלה1). השוואה זו מאפשרת לנו לקבוע אם כל שינוי של אות מתרחש בין שני למתודולוגיות.

הצפיפות של רקמות ביתור אזורים היא גם שיקול חשוב כאשר לכימות רמות התרופה בהתאם רקמת שטח או נפח. . זה של דאגה מסוימת עבור ביופסיות ריאות, נגעים, שבה האזורים רקמת הריאה מעורב יש של צפיפות נמוכה יותר באופן כללי מאשר סלולריים ו caseum (פחות רקמת המכסים את השטח היחסי באותו) בשל נוכחותם של bronchioles פתוחים מרובים, עיצור מכתשי, מקומות. ההשפעות של ההפרש בין צפיפות יכול להיות חמאני הציור בזהירות סביב המרחבים הפתוחים כדי להימנע כולל אותם בתוך שטח מצטבר של רקמות שנאספו (כפי שמוצג באיור2).

מגבלה נוספת היא כי השיטה LCM-LC/MS הציג רק מכמתת את ריכוז התרופה הכולל בתוך רקמת מבודד (במשותף עם כל המגון רקמות, חילוץ הממס, וגישות LC/MS כימות), אינה פותרת ריכוז חלבון מכורך סמים של שברים לא מאוגד. Microdialysis היא גישה חלופית עבור לכימות סמים לא מאוגדים בתוך רקמת ומאפשר כימות מדויק של ריכוז סמים חינם לכת חוץ-תאית אוכלוסיות חיידקים13. עם זאת, הטכניקה הטובה ביותר תוחל כמו בגישה המשלימה, כפי שהוא חסר יחודיות המרחבי של הפונקציה LCM-LC/MS רק מכמתת את רמות התרופה מסיסים בתוך נוזל חוץ-תאי רקמות, לא התוכן תאיים.

שילבנו, בפעם הראשונה, הפונקציה LCM ו LC/MS במרחב לכמת אנטיביוטיקה באתר של זיהום שחפת. המתודולוגיה היא למטען חשמלי רב עוצמה שכן יכול להחיל אותה על כל סם מולקולה קטנה בשימוש בשום מצב המחלה. אכן, אנחנו לאחרונה יש לכמת מועמד תרופה נגד פטריות במודל של עכברים של קנדידה בטן14. תרופה דיפרנציאלית למחיצות לתוך תאי הגידול הטרוגנית (כולל ליבות עם נמק) היא הדאגה העיקרית לטיפול בסרטן, ואזור ביקורתית של מחקרים סרטן-סמים-גילוי-15. LCM-LC/MS מתאימה באופן אידיאלי כדי לגשת לשאלות אלה. יתר על כן, הפונקציה LCM-LC/MS יכול לשמש עבור גילוי סמן לכמת מטבולית, lipidomic, פרוטיאומיה מבנית שינויים המתרחשים רקמות לאזורים ואוכלוסיות תא במהלך המחלה פתוגנזה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgments

אנו מודים פול אובריאן, מינה Marizel, איזבלה פרידמן לניסויים בבעלי חיים, Jacquie גונזלס, ויינר דניאל מ- NIH/NIAID לעזרה עם גמא הקרנה של רקמות ארנב לפני לייזר לכידת microdissection ו Jansy Sarathy עבור כתב יד מחשבות ועצות. עבודה זו נתמכה על ידי מימון הצעת החוק ולהעניק ומלינדה גייטס (OPP1174780) ומכשור NIH משותפים 1S10OD018072. אנו מודים Eliseo א Eugenin על מתן גישה המיקרוסקופ לייקה LMD 6500 ושיתוף מומחיות וייעוץ. הרכישה, ותמיכה מתמשכת של, 6500 LMD מומן על ידי מענק של לאומי המכון לבריאות הנפש, MH096625, המכון הלאומי של הפרעות נוירולוגיות, שבץ מוחי, NS105584, PHRI מימון (E.A.E) GSK תרומות (E.A.E).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
New Zealand White rabbits Covance N/A
HN878 Mycobacterium tuberculosis BEI Resources NR-13647
Ketathesia (Ketamine) 100 mg/mL C3N Henry Schein Animal Health 56344
Anased (Xylazine) 100 mg/mL Henry Schein Animal Health 33198
Euthasol (pentobarbital sodium and phenytoin sodium) Solution Virbac 710101
Acetonitrile (LC-MS grade) Fisher A955-212
Methanol (LC-MS grade) Fisher A456-212
Formic Acid (LC-MS grade) Fisher A117-50
Water (LC-MS grade) Fisher W6212
0.2 mL flat-cap PCR tubes Corning 07-200-392
Steel frames, PET-membrane Leica 11505151
Premium Frosted Microscope Slides Fisher 12-544-2
96 Deep well plate 2.0ML PP RB Fisher NC0363259
Zorbax SB-C8 column (4.6 by 50 mm; particle size, 3.5 μm) Agilent 820631-001D
"Zipper” Seal Sample Bags Fisher 01-816-1B
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
CM1850 cryostat Leica Discontinued Leica CM1860 is the current model
Laser Microdissection System 6500 Leica Discontinued Leica LMD 6 is the current model
Agilent 1260 Infinity II HPLC Agilent
API 4000 QTRAP Mass Spectrometer Sciex

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Dartois, V. The path of anti-tuberculosis drugs: From blood to lesions to mycobacterial cells. Nat Rev Microbiol. 12 (3), 159-167 (2014).
  2. Prideaux, B., et al. The association between sterilizing activity and drug distribution into tuberculosis lesions. Nat Med. 21 (10), 1223-1227 (2015).
  3. Prideaux, B., et al. High-sensitivity MALDI-MRM-MS imaging of moxifloxacin distribution in tuberculosis-infected rabbit lungs and granulomatous lesions. Anal Chem. 83 (6), 2112-2118 (2011).
  4. Roscioli, K. M., et al. Desorption electrospray ionization (DESI) with atmospheric pressure ion mobility spectrometry for drug detection. Analyst. 139 (7), 1740-1750 (2014).
  5. Prideaux, B., et al. Mass spectrometry imaging of levofloxacin distribution in TB-infected pulmonary lesions by MALDI-MSI and continuous liquid microjunction surface sampling. Int J Mass Spectrom. 377, 699-708 (2015).
  6. Griffiths, R. L., Randall, E. C., Race, A. M., Bunch, J., Cooper, H. J. Raster-mode continuous-flow liquid microjunction mass spectrometry imaging of proteins in thin tissue sections. Anal Chem. 89 (11), 5683-5687 (2017).
  7. Prideaux, B., Stoeckli, M. Mass spectrometry imaging for drug distribution studies. J Proteomics. 75 (16), 4999-5013 (2012).
  8. Dilillo, M., et al. Mass spectrometry imaging, laser capture microdissection, and LC-MS/MS of the same tissue section. J Proteome Res. 16 (8), 2993-3001 (2017).
  9. Xu, B. J. Combining laser capture microdissection and proteomics: methodologies and clinical applications. Proteomics Clin Appl. 4 (2), 116-123 (2010).
  10. Cahill, J. F., Kertesz, V., Van Berkel, G. J. Laser dissection sampling modes for direct mass spectral analysis. Rapid Commun Mass Spectrom. 30 (5), 611-619 (2016).
  11. Subbian, S., et al. Chronic pulmonary cavitary tuberculosis in rabbits: A failed host immune response. Open Biol. 1 (4), 110016 (2011).
  12. Zimmerman, M., et al. Ethambutol partitioning in tuberculous pulmonary lesions explains its clinical efficacy. Antimicrob Agents Chemother. 61 (9), (2017).
  13. Kempker, R. R., et al. Cavitary penetration of levofloxacin among patients with multidrug-resistant tuberculosis. Antimicrob Agents Chemother. 59 (6), 3149-3155 (2015).
  14. Zhao, Y., et al. Unraveling drug penetration of echinocandin antifungals at the site of infection in an intra-abdominal abscess model. Antimicrob Agents Chemother. , (2017).
  15. Pascal, J., et al. Mechanistic modeling identifies drug-uptake history as predictor of tumor drug resistance and nano-carrier-mediated response. ACS Nano. 7 (12), 11174-11182 (2013).

Tags

רפואה בעיה 134 שחפת הפצת סמים כימות לייזר לכידת microdissection ספקטרומטר מסה כרומטוגרפיה נוזלית גרנולומה נמק
כימות המרחבי של תרופות נגעים שחפת הריאה על ידי לייזר ללכוד Microdissection נוזלי כרומטוגרפיה ספקטרומטר מסה (LCM-LC/MS)
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Zimmerman, M., Blanc, L., Chen, P.More

Zimmerman, M., Blanc, L., Chen, P. Y., Dartois, V., Prideaux, B. Spatial Quantification of Drugs in Pulmonary Tuberculosis Lesions by Laser Capture Microdissection Liquid Chromatography Mass Spectrometry (LCM-LC/MS). J. Vis. Exp. (134), e57402, doi:10.3791/57402 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter