Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Immunology and Infection

Immunostimulerende Agent evaluatie: Lymfoïde weefsel extractie en injectie Route-afhankelijke dendritische cel activeren

doi: 10.3791/57640 Published: September 16, 2018

Summary

Experimentele procedures voor de verdere winning van lymfatische weefsels voor het testen van lymfoïde dendritische cel activatie worden beschreven na behandeling van een immuniteitsverhoging nanomateriaal.

Abstract

Voor de evaluatie van een nieuwe therapeutische agent voor immunotherapie of vaccinatie is analyse van immuun cel activatie in het lymfatische weefsel essentieel. Hier, we onderzochten immunologische effecten van een immunostimulant roman lipide-DNA in nanoparticle vorm van beheer van de verschillende routes in de muis: orale, subcutane, intranasale struikrover, intraperitoneaal en intraveneuze. Deze injecties zal direct invloed uitoefenen op de immuunrespons en oogsten van lymfatische weefsels en analyse van de activering van dendritische cellen (DC) in de weefsels zijn cruciale onderdelen van deze evaluaties. De winning van mediastinale lymfklieren (mLNs) is belangrijk maar vrij complex vanwege de grootte en de locatie van dit orgel. Een stapsgewijze procedure voor het verzamelen van de inguïnale lymfeklieren (iLN), de mLN, en de milt en het analyseren van DC activering door stroom cytometry wordt beschreven.

Introduction

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Immunologie en nanomaterialen vooruitgang hebben geleid tot een overvloed aan potentiële nieuwe therapeutische strategieën voor toepassingen in biologie, met inbegrip van de drug delivery en immunostimulation. Optimalisatie van de route van de administratie is een essentieel element beïnvloeden de effectiviteit van immunostimulerende agenten. Een immunostimulerende nanoparticle (INP) bestaande uit DNA is een nieuw ontwikkelde nano-immuun adjuvans zelf geassembleerd door microphase scheiding vanwege de amfifiele structuur van lipide-DNA1. Daarom, protocollen voor INP met betrekking tot beheer van de materiële1 in vivo via verschillende routes en drie procedures voor oogsten van passende weefsels zoals de inguïnale lymfeklieren (iLN), mediastinale LN (milj.), en de milt, zijn beschreven. Ten slotte, deze weefsels werden geanalyseerd voor dendritische cellen (DC) activeren, de meest krachtige presentatie van antigeen cellen in het immuunsysteem. Dit protocol kan ook worden toegepast voor de beoordeling van de antigenen, antilichamen of andere immuun hulpstoffen2.

We testten de INP formulering, want het is een agent die heeft aangetoond grote belofte. INP is een Toll-like receptor 9 (TLR9) adjuvante materiaal dat bevat van nucleïnezuren, voor welke beoordeling van immunostimulation doeltreffendheid vereist is om te testen verschillende injectie methoden3. In dit verband is de stimulatie van DCs een potente eindpunt voor in vivo evaluatie. Nadat het antigeen of immunostimulerende moleculen zijn in de perifere weefsels of bloed door DCs phagocytosed, migreren deze cellen naar lymfoïde organen zoals de milt en de LNs4,5. Dus, DC activering werd geanalyseerd in de milt, iLN en mLN van de geïnjecteerde dieren. Goed oogsten van deze weefsels is daarom ook belangrijk voor de evaluatie van de immuunrespons op een roman adjuvante of ziekteverwekkers5. Dergelijke weefsel oogsten is ook belangrijk voor de ontwikkeling van een nieuwe immunologische methodologie als een kankertherapie. Bovendien, dit protocol kan worden gebruikt om te controleren of de efficiëntie van andere drugs, zoals anti-menselijke immunodeficiency virus therapeutics6.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Alle experimentele procedures, met inbegrip van dierlijke behandeling, offer en orgel isolatie werden uitgevoerd in strikte overeenstemming met de regels van de internationale Animal Care en gebruik Comité bij Shanghai volksgezondheid klinische Center en Asan Medical Center. Het studie-protocol is goedgekeurd door de respectieve commissies op de ethiek van dier experimenten op Shanghai volksgezondheid klinische Center (muis protocolnummer: SYXK-2010-0098) en Asan Medical Center (2016-02-168).

1. bereiding van materiaal

Opmerking: Een nano-adjuvans, INP, bestaat uit een drager van zelf geassembleerde lipide-DNA, namelijk U4T, en apr-motief met oligonucleotide, eCpG, was werkzaam in de huidige studie voor het testen van de route van de passende injectie voor immunotherapie en vaccinatie in muizen2 . Nog belangrijker is, andere potentiële therapeutische moleculen zoals antigenen en antistoffen adjuvans agenten kunnen worden vervangen voor INP en getest met behulp van dezelfde methode die hieronder worden beschreven.

  1. INP formulering,2,,4,7
    1. Gloeien U4T (160 µM, vervoerder) met eCpG (80 µM, met een opeenvolging van de agonist TLR9) in aanwezigheid van 1 x-fosfaatgebufferde zoutoplossing (PBS, pH 7.4) en MgCl2 (2 mM). De standaard volume voor gloeien is tussen de 50 en 110 µL in een PCR-buis. Verwarm het mengsel tot 95 ° C gedurende 10 minuten en vervolgens langzaam afkoelen (1 ° C/16 min) tot 25 ° C, met behulp van een thermocycler. De onthardende protocol vereist ongeveer 2 h.
      Let op: De U4T-bevattende vloeistof is zeer schuimende en moet zorgvuldig worden behandeld.
    2. Maken van 50 µL aliquots van het INP-preparaat; gebruik 50 µL van het materiaal voor elke injectie.
      Opmerking: In het geval van 100 µL per injectie, herhaal stap 1.1 met juiste berekening van de ingrediënten.

2. algemene dier Procedures

Opmerking: Alternatieve methoden voor de behandeling van de muizen kunnen afhankelijk van de vereisten van het laboratorium en de goedgekeurde dierlijke protocollen8worden gebruikt. Het type van muizen gebruikt is 6-week-oude C57BL/6 en vrouwelijke muizen.

  1. Materiaallijst
    1. De vloeibare verdoving (Isofluraan), verdoving machine, kooldioxide (CO2) inademing chamber, gesteriliseerd gaas, pincet, muis afdekking, handschoenen, verslaafd pincet, 1-inch ontleden schaar, 2-inch ontleden schaar, alcohol voor te bereiden sterilisatie, en insuline spuiten.
  2. Inhalant anesthesie
    Opmerking: Anesthesie is verplicht voor intranasale, subcutane, struikrover, en intraveneuze injecties van muizen9. Een inductie-kamer met een vaporizer-machine en zuurstof-tank aangesloten wordt gebruikt voor deze procedure.
    1. Plaats het dier in de kamer van de inductie en zorg ervoor dat strak sluit het deksel.
    2. Stromen van de zuurstof op 1 L/min en de vaporisator instellen op een niveau van de inductie van 4% voor Isofluraan.
    3. Variëren de belichtingstijd van dieren in de kamer afhankelijk van dierlijke gewicht; echter, meer dan 10 s van blootstelling en het toezicht op elke 5 min voor anesthesie10noodzakelijk is.
      Opmerking: Geen pedaal reflex geeft succesvolle anesthesie.
    4. Uitschakelen van de spoel Isofluraan en stromen van 1 L/min. van zuurstof om te voorkomen dat personeel Isofluraan gas.
  3. Offer
    1. Voorbereiden op een kamer CO2 inademing offer volgens de NIH "richtsnoeren voor euthanasie van knaagdieren met behulp van kooldioxide"11.
  4. Test gag reactie om te bevestigen dat het dier volledig wordt opgeofferd.
    1. Controleer of dat de muis correct wordt opgeofferd door knijpen op het uiteinde van de voet en de bevestiging van geen grap-reactie. Als er een reactie, herhaal stap 2.2.
  5. Desinfectie
    1. Desinfecteer alle oppervlaktes gebruikt voor injecties of dissecties met alcohol spray en gesteriliseerd gaas.
  6. Orgel-opslag
    1. Gebruik pincet te verwijderen alle vet en bloed rond de geoogste organen. Deze geoogste weefsels individueel opslaan in een petrischaal gevuld met 3 mL PBS. De container en de media kunnen verschillen afhankelijk van de vereisten van de vervolgprocedure.

3. injectie Routes

  1. Gebruik de zes injectie methoden te onderzoeken van injectie-afhankelijke immuunrespons: orale, subcutane, intranasale struikrover, intraperitoneaal, en intraveneuze8,12,13.

4. isolatie van lymfklieren en de milt

Opmerking: Gebruik jong en gezond mager muizen (6 weken oud) voor deze procedures, omdat de vetten die meestal opgebouwd rond de lymfklieren in oudere muizen moeilijk te zijn verwijderen en kunnen voorkomen dat goede visualisatie van het orgel.

  1. Vooraf oogsten stappen
    Opmerking: Deze sectie beschrijft het na injectie oogsten van de iLN, milt en mLN van muizen voor het analyseren van immuun stimulatie. Verwijzen naar stappen 2.3-2.5 voor offer, gag respons, en ontsmetting methoden.
    1. De ledematen van de muis op het bord van de chirurgische schuim PIN en steriliseren van de ventrale zijde van de muis met 70% ethanol.
    2. Kies een locatie 2 cm boven de schaamstreek en gebruik verslaafd Tang te trekken van de buitenhuid cover zoals een tent. Maken van een vermindering van ongeveer 1 cm op deze locatie en schuif de schaar (2-inch) onder de huid, waardoor verdere dissectie bezuinigingen.
    3. Voor de omhulling, snijden verticaal door de buitenhuid met beide takken van de schaar (2-inch). De inwendige organen bedekt met buikvlies bloot.
    4. PIN de buitenste laag van de huid.
  2. Isolatie van de inguïnale lymfeklieren (iLN)
    1. Zoek de iLN aan de linker kant van het been na de combinatie van het bloedvat naar beneden het linker been, die wordt weergegeven als een gekantelde letter 'Y'.
      Opmerking: Voor subcutaan ingespoten muizen, kiest u een iLN op dezelfde kant van de locatie van de injectie.
    2. Ontdek de laag met twee pincet te rippen van de overdekte lipide-laag en de oogst van de bleke geel iLN (Boon vorm, 2 mm). Zie stap 2.6 voor latere bewerking en opslag van het weefsel wordt.
  3. Isolatie van de milt 14
    1. Maak een tent in het midden van het buikvlies via verslaafd pincet in de ene hand en gebruik kleine dun schaar (1 inch) in de andere hand te snijden het buikvlies.
    2. Gebruik verslaafd pincet in de linkerhand wegknipt het over te vinden van de rode bean-achtige milt (lengte van ongeveer 14 mm) gekoppeld aan de linker bovenzijde van de buik van de muis te begrijpen van de darm.
    3. Trek voorzichtig uit de milt met een andere set van pincet in de rechterhand terwijl het loskoppelen van andere organen met het verslaafd pincet. Volg stap 2.6 voor het opslaan van de milt.
      Opmerking: Zorg is vereist bij het verzamelen van de milt, zoals het is een gemakkelijk beschadigd zachte orgaan.
  4. Isolatie van de mediastinale lymfeklieren (milj.)
    Opmerking: De mLN is ongeveer 1 cm onder de ribben gelegen en is verzekerd door andere organen zoals het hart en de longen. Vanwege de locatie en de kleine grootte is het belangrijk om zorgvuldig de omgeving met behulp van Tang en schaar (1-inch) bloot te stellen.
    1. Knip het middenrif en het loskoppelen van de ribben. Houd het lichaam van de ribben met een tang en snijd vervolgens de linker- en rechterzijde van de ribben met een schaar (1 inch). PIN de cutoff ribben over de schouder van de muis op het recht op het blootstellen van het hart en de longen.
      Opmerking: Wees voorzichtig niet te knippen om het even welk van de bloedvaten rond het hart en de longen, zoals lekken van bloed maakt het erg moeilijk om te vinden van de kleine doorschijnend mLN. Als bloedvaten zijn afgesneden, zachtjes absorberen het bloed in het gebied met gaas.
    2. Met behulp van verslaafd pincet in de rechterhand, spiegelen het hart en de longen zachtjes naar rechts totdat de ruggengraat wordt blootgesteld. Gebruik een paar normale pincet in de linkerhand te verwijderen van de iLN met de verslaafd pincet in de rechterhand om te helpen met deze oogsten.
    3. Pak de longen en spiegelen ze totdat de ruggengraat wijd wordt blootgesteld. De mLN (een doorschijnend boonvormige structuur van ongeveer 2 mm groot) is gelegen tussen de longen en de wervelkolom.
    4. Gebruik maken van de verslaafd verlostang om het gebied rond de mLN bloot te stellen en de andere verlostang uitpakken van het weefsel.
      Opmerking: De mLN is omgeven door talrijke andere weefsels die zorgvuldig moeten worden verwijderd met een tang vóór oogst.
    5. Zie stap 2.7 voor instructies over het opslaan van de geoogste mLN.

5. bereiding van de monsters voor stroom cytometry

Opmerking: Om de activering van DCs in de geoogste iLN, milt en mLN assay, eencellige schorsingen van deze weefsels zijn gekleurd met fluorescentie-geconjugeerde antilichamen als DC-specifieke markers, co-stimulatory moleculen, en grote histocompatibility complex moleculen en geanalyseerd door stroom cytometry.

  1. Voorbereiding van eencellige schorsingen: milt
    1. Voeg 5 mL van de verse kweekmedium (CM) in 6-mm cultuur schotel en plaats de monsters op ijs.
    2. Verwijder van omliggende weefsels van bloed en vet en plaats het weefsel in het deksel van de schotel cultuur.
    3. Snijd van de weefsels in kleine fragmenten (< 1 mm) met een gebogen schaar. Opschorten van de fragmenten in PBS gevolgd door spinnen omlaag het weefsel met behulp van een centrifuge op 646 × g gedurende 5 minuten en de bovendrijvende vloeistof verwijderen.
    4. Opschorten van de monsters weer in 3 mL CM en verteren de fragmenten met 200 µL van oplossing van 2% foetale runderserum (FBS) aangevuld met collagenase IV voor 20 min.
    5. Voorzichtig schudden en Incubeer het monster bij 37 ° C voor 1 h. filteren de verteerd weefsels via nylon gaas (100 nm) en draai ze naar beneden. Wassen van de afzonderlijke cellen in 5 mL PBS en verwijder de bovendrijvende vloeistof door middel van centrifugeren.
    6. Resuspendeer de cellen in 5 mL cel isoleren oplossing. Re-vracht naar een andere laag van 5 mL cel wissen isolatie-oplossing voor het vormen van een waterige laag-voor-laag stapel.
    7. Centrifugeer het preparaat van de cel bij 2012 × g voor 10 min. verkrijgen het supernatant, oftewel de lichtere fractie dichtheid (< 1.077 g/cm3), voor latere stroom cytometry analyse.
    8. Het aantal cellen met een hemocytometer.
  2. Voorbereiding van eencellige schorsingen: lymfeklier
    1. Volg stap 5.1.1-5.1.2.
    2. Voeg 5 mL van de CM met behulp van een pipet 10 mL tot schorsing van de cellen door pipetteren 3 - 4 keer. Na grondig schorsing gebruiken de gewenste cellen, steriele nylon gaas voor het filteren van de cellen voor collectie in een conische buis 15 mL.
    3. Draai de cellen naar beneden bij 646 ×g gedurende 7 minuten bij 4 ° C en de bovendrijvende vloeistof verwijderen.
    4. Voeg een extra 5 mL van CM in 10 mL pipet op te schorten beter de cellen door pipetteren.
    5. Wassen met PBS en het aantal cellen tellen.
  3. Stroom cytometry analyse
    1. Aliquot 0,5-1 × 106 cellen in elke fluorescentie-activated cell sorting (FACS) buis.
    2. Centrifugeer bij 646 × g bij 4 ° C gedurende 5 minuten en het supernatant gecombineerd.
    3. 5 µL van elk verdund fluorescentie-geconjugeerde antilichaam voorbereiding aan de cellen resuspendeer de pellet van de cel en de vortex toevoegen.
      Opmerking: Het is belangrijk dat de cel pellet van lichte blootstelling zoveel mogelijk beschermen omdat fluorescently gelabelde antilichamen lichtgevoelig zijn. Genereren van een antilichaam master mix en altijd Fc blok toevoegen.
    4. Bereiden FACS buffer met behulp van 100 µL van PBS, 1% van de warmte-geïnactiveerd regelmatige FBS en 0,1% natriumazide.
    5. Leg het monster in de buis bij 4 ° C gedurende 30 min. spoelen de cellen met 2-4 mL FACS buffer en Centrifugeer het monster van 1700 toeren per minuut gedurende 7 minuten bij 4 ° C.
    6. Resuspendeer de cellen in 500 µL van FACS buffer in het donker. Het analyseren van de cellen door stroom cytometry.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Om te beoordelen van passende injectie routes van INP voor lymfatische weefsel DC activering, de DC-bevolking als geslacht werd gedefinieerd als -CD11c+ cellen in de milt, iLN en mLN en de niveaus van de expressie van co-stimulatory moleculen geanalyseerd. Behandeling van INP door onderhuidse (sc) en intraveneuze (IV) injectie bevorderd aanzienlijke stijgingen van de interactie CD40 CD80 en CD86 uitdrukking in de milt en iLN DCs (figuur 2B en 2 C). Struikrover en intraperitoneaal (i.p.) injectie van INP ook aanzienlijk omhoog-geregeld dat de niveaus van de expressie van CD40 CD80 en CD86 in de milt en iLN DCs ten opzichte van in het besturingselement van PBS-behandeld (figuur 2B en 2 C). In gestimuleerd mLN DCs bevorderd intranasale (i.n.) injectie van INP de hoogste up-regulatie van co-stimulatory moleculen vergeleken met die in het besturingselement van PBS-behandeld (figuur 2D). i.p. en i.v. injectie van INP geïnduceerde ook aanzienlijke stijgingen van de co-stimulatory molecuul expressie in de mLN, terwijl mondeling, s.c., en struikrover injectie van INP deed niet activering van mLN DCs (figuur 2D) veroorzaken.

Figure 1
Figuur 1 : Locatie van intraperitoneale injectie punt Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 2
Figuur 2 : Accurate locatie van intraveneuze injectie Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 3
Figuur 3 : DC activering in de lymfatische organen geanalyseerd door stroom cytometry. C57BL/6 muizen werden ingespoten met INP door zes verschillende injectie routes en 24 h na injectie, de milt, iLN en mLN zijn geoogst. (A) de DC-bevolking in de weefselcellen van het lymfatische werd gedefinieerd als geslacht -CD11c+ cellen in levende leukocyten. (B-D) De niveaus van de expressie van CD40 CD80 en CD86 werden geanalyseerd door stroom cytometry in de milt (B), iLN (C) en (D) mLN. Gegevens zijn gemiddelden uit de analyses van zes onafhankelijke steekproeven. Resultaten worden uitgedrukt als de middelen ± standaardafwijking van het gemiddelde (SEM). De statistische significantie van de verschillen tussen experimentele groepen werd berekend met behulp van variantie-analyse met ongepaarde Student t-test. p-waarden < 0.05 werden beschouwd als belangrijke. * < 0,05, ** < 0.01. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Veel vooruitgang in nanotechnologie en immunologie hebben bereikt door middel van therapeutische onderzoek voor drug delivery en immunostimulation. Zorgvuldige selectie van de injectie-methode is bekend als belangrijk voor immunostimulation, die was de focus van de huidige studie.

Verschillende injectie routes werden geëvalueerd voor een natuurlijk niet-giftige en biologisch afbreekbare op basis van DNA materiaal, INP (immunostimulerende nanoparticle), om te bepalen welke route het beste resultaat opgeleverd. Deze aanpak geldt ook voor het leveren van andere therapeutische agenten, met inbegrip van de antilichamen, antigenen of andere hulpstoffen.

Als u wilt analyseren de immune reactie op dergelijke injecties, is oogst van lymfatische weefsel (milt, iLN en mLN) vereist. Isolatie van lymfatische weefsel is het belangrijkste aspect van dit protocol en vereist het gebruik van een techniek die niet eerder zijn beschreven in detail. Bovendien, voorbereiding van de eencellige schorsing verder analyseren immuuncellen is niet goed beschreven. Deze studie concentreerde zich op de winning van het lymfatische weefsel, met name de iLN mLN en milt, voor het analyseren van DC activering. Systemische activatie van de immuunrespons plaatsgevonden voornamelijk via immuuncellen in de milt. Bovendien, werden de immuunrespons in de specifieke weefsel gecontroleerd door de nabijgelegen lymfeklieren. Evaluatie van nieuw ontwikkelde immuun f moleculen moet worden uitgevoerd om te bepalen of de moleculen immuun stimulatie in de weefsels kunnen veroorzaken. Daarom is de methode voor lymfatische weefsel isolatie en analyse van de activering van het DC in de weefsels kan worden gebruikt voor de nieuw ontwikkelde immuun stimulerend moleculen.

Om te beoordelen de immuun-stimulerend effect van INP, de iLN, mLN en milt zijn geoogst en INP bleek te bevorderen van lymfatische DC activering. Zoals eerder is bepaald, richt zich op INP effectief TLR9 stimulatie in DCs in muizen2. Macrofagen express ook cytosolische TLR9 in muizen. INP injectie kan daarom zowel DC en macrofaag activering veroorzaken. Echter, macrofagen bevinden zich in de perifere weefsels die bijdragen aan de fagocytose van microben in het weefsel. Bovendien, de capaciteit van de antigeen-presentatie en trekkende effect aan het lymfatische weefsel van de macrofagen zijn relatief zwakker is dan die in de DCs. Evaluatie van de route van de injectie van INPs voor de immuun-stimulerend effect was dus geschikt voor de behandeling van DCs in het lymfatische weefsel.

De wijze van immuun adjuvans administratie moet worden zeer zorgvuldig derhalve tot succesvolle immunotherapie en vaccinatie met behulp van zachte materialen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgments

Dit onderzoek werd gesteund door creatieve materialen ontdekking programma via de nationale onderzoek Stichting van Korea (NRF) gefinancierd door het ministerie van wetenschap, ICT en toekomst Planning (NRF-2017M3D1A1039421) en mariene biotechnologie-programma gefinancierd door de Ministerie van oceanen en visserij, Republiek Korea en een grant (20150220).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Material
phosphate buffer saline Corning 21-040-CVR Washing organs
(PBS, pH 7.4)
isoflurane solution  Aesica Queenborough limited 26675-46-7 Anesthesia process
Tuberculin 1mL syringe - Junglim N/A Injection
50 mL conical tube  S.P.L 50050 Anesthesia process
1mL Insulin Syringe  (BD Ultra-FineTM­II)_short needle 324826 Intramuscular Injection
DMEM High Glucose Hyclone SH30081.01 Storing organs
Histopaque  Sigma-Aldrich 10771 FACS analysis
Ethyl alcohol anhydrous 99.5 %  Daejung 4022-4110 Disinfectant
Equipments
FineCycler C100 (Thermocycler) Ssufine - Anealing
Centrifuge Centrifuge
FACS tube  FALCON 2052 FACS analysis
Automated High-performance Flow Cytometer BD (USA), FACSVerse - FACS analysis

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Park, H. Preparation of dodecynyl modified DNA nanoparticles with unmethylated CpG adjuvant and ovalbumin for immunostimulation. Department of Chemistry. Pukyong National University, Master Thesis. (2016).
  2. Jin, J. O., Park, H., Zhang, W., de Vries, J. W., Gruszka, A., Lee, M. W., Ahn, D. R., Herrmann, A., Kwak, M. Modular delivery of CpG-incorporated lipid-DNA nanoparticles for spleen DC activation. Biomaterials. 115, 81-89 (2017).
  3. Pal, I., Ramsey, J. D. The role of the lymphatic system in vaccine trafficking and immune response. Advanced Drug Delivery Reviews. 63, (10-11), 909-922 (2011).
  4. Jin, J. O., Kwak, M., Xu, L., Kim, H., Lee, T. H., Kim, J. O., Liu, Q., Herrmann, A., Lee, P. C. W. Administration of soft matter lipid-DNA nanoparticle as the immunostimulant via multiple routes of injection in vivo. ACS Biomaterial Science & Engineering. 3, (9), 2054-2058 (2017).
  5. Worbs, T., Hammerschmidt, S. I., Förster, R. Dendritic cell migration in health and disease. Nature Review Immunology. 17, (1), 30-48 (2017).
  6. Milling, S. W. F., Jenkins, C., MacPherson, G. Collection of lymph-borne dendritic cells in the rat. Nature Protocols. 1, (5), 2263-2270 (2006).
  7. Desormeaux, A., Bergeron, M. G. Lymphoid tissue targeting of anti-HIV drugs using liposomes. Methods in Enzymology. 391, 330-351 (2005).
  8. Machholz, E., Mulder, G., Ruiz, C., Corning, B. F., Pritchett-Corning, K. R. Manual restraint and common compound administration routes in mice and rats. Journal of Visualized Experiments. (67), (2012).
  9. Turner, P. V., Brabb, T., Pekow, C., Vasbinder, M. A. Administration of substances to laboratory animals: routes of administration and factors to consider. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50, (5), 600-613 (2011).
  10. General anesthesia of mice and rats. Animal Care and Use Standards Committee. (2016).
  11. Guidelines for the Euthanasia of Animals. Veterinary Record. (2013).
  12. JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Compound Administration I. Journal of Visualized Experiments. (2018).
  13. JoVE Science Education Database. Lab Animal Research. Compound Administration III. Journal of Visualized Experiments. (2018).
  14. Mebius, R. E., Kraal, G. Structure and function of the spleen. Nature Review Immunology. 5, (8), 606-616 (2005).
Immunostimulerende Agent evaluatie: Lymfoïde weefsel extractie en injectie Route-afhankelijke dendritische cel activeren
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Jin, J. O., Jang, S., Kim, H., Oh, J., Shim, S., Kwak, M., Lee, P. C. W. Immunostimulatory Agent Evaluation: Lymphoid Tissue Extraction and Injection Route-Dependent Dendritic Cell Activation. J. Vis. Exp. (139), e57640, doi:10.3791/57640 (2018).More

Jin, J. O., Jang, S., Kim, H., Oh, J., Shim, S., Kwak, M., Lee, P. C. W. Immunostimulatory Agent Evaluation: Lymphoid Tissue Extraction and Injection Route-Dependent Dendritic Cell Activation. J. Vis. Exp. (139), e57640, doi:10.3791/57640 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter