Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
JoVE Journal Immunology and Infection
Click here for the English version

Immunology and Infection

הלוח מבוססי ציטורעילות מבוסס על הערכה של עכברוש הרוצח הטבעי בתפקוד התאים Cytolytic

Published: June 2, 2019 doi: 10.3791/58961
Automatic Translation
1, 1, 2, 1,2
1Department of Emergency Medicine, University of Mississippi Medical Center, 2Department of Experimental Therapeutics and Pharmacology, University of Mississippi Medical Center

Summary

כאן, אנו מספקים מתודולוגיה מפורטת כדי לבודד ולהעריך את הפונקציה ציטוטוקסיות של תאים הרוצח טבעי מפני השמש על ידי שיטת הלוח לצבוע מטרי. הלחץ מופחת זלוף ללחוץ עכברוש מודל של איסכמיה השלתית נבחרה כדי להדגים את הבידוד נוגדן מתווך והערכה של תפקוד ציטוטוקסיים של תאים הרוצח הטבעי.

Abstract

ידוע היטב כי הרוצח טבעי הדציבלים (NK) תאים לשחק תפקיד קריטי בהקמת ותחזוקה של הריון רגיל. מחקרים שנעשו לאחרונה הפגינו אוכלוסייה שונה של במחזור והשמדת התאים NK כפול אצל נשים הסובלות סיבוכים הריון שלילית כגון הפלה חוזרות ו טרום הרעלת. מחקרים של הקבוצה שלנו הראו כי יתר לחץ דם בהריון קשורה לאוכלוסיה מוגברת של תאי NK מופעל השליה מבוסס על הביטוי של סמנים הפעלת פני השטח. כתב יד זה מספק פרוטוקול מפורט כדי להעריך את הפונקציה ציטוטוקסיות של תאי NK מבודדים מפלנטכמו במודל בעלי חיים כמו הרעלת-הזרע של איסכמיה הנגרמת בניתוח. השלבים הבאים מתוארים בפירוט: דור של השעיה תא יחיד, בידוד תא NK, גירוי vivo ex, אפקטור: תא היעד המשותף התרבות, ואת שיטת הרעילות.

Introduction

Preאקלמפסיה היא הפרעה יתר לחץ דם של ההריון מאופיין הגבלת צמיחה עוברית, לסיים איבר נזק הפעלה חיסונית כרונית. הפעלה חיסונית כרונית אצל נשים עם טרום האקלמפסיה מוביל במחזור מוגבר ציטוקינים דלקתיים בנטל, חוסר איזון ב CD4+ T תאים אוכלוסיות, ו מוגברת האוכלוסייה של הרוצח הטבעי המופעל (NK) תאים1. מחקרים שפורסמו לאחרונה על ידי המעבדה שלנו להפגין תפקיד עבור תאים NK בגרימת כמה הפתופסולוגיה הקשורים טרום אקלמפסיה בלחץ רחמי Perfusion (ראפ) מודל החולדה של טרום הרעלת הרחם. באמצעות הזרמת cy, למדוד ביטוי פני השטח של סמנים הפעלה על תאים NK, האוכלוסייה מוגברת של תאים NK מופעל במחזור והפלנטאס של חולדות ראפ לעומת נורמלי בהריון (NP) חולדות נצפתה2.

כדי לאשר את הזרם cy, לבחון את התצפיות, מחקרים פונקציונליים כדי להעריך את הפעילות ציטוטוקסיטים של תאים NK מבודדים מן הפלנטאס של NP וחולדות ראפ בוצעו. ישנן מספר שיטות זמין להערכת תפקוד ציטוטוקסיים של תאים CD8- T ציטוטוקסיים ותאים NK. התקן הזהב עבור ניתוח ציטוטוקסיים פונקציונלי הוא שחרור כרום שיטת3. פרוטוקולים מפותחים אחרים מנוצל כוללים הזרימה cy, לנסות4, התמונה cy, לנסות5, calcein שחרור6, ולאחרונה ביולומינסנציה7. וידאו זה יספק פרוטוקול מפורט על שימוש היטב מבוססת לקטט דהידרוגנאז (ldh) שחרור התפקוד למדוד פונקציה ציטוטוקסיים של תאים NK באמצעות ערכה מסחרית של ldh הרעילות ציטובית.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

כל הפרוטוקולים אושרו על ידי הוועדה לטיפול בבעלי חיים מוסדיים והשתמש במרכז הרפואי של אוניברסיטת מיסיסיפי. הטיפול והטיפול של בעלי החיים היו בהסכמה עם המוסדות הלאומיים לבריאות הנחיות לטיפול מוסרי בעלי חיים.

1. תא לימפוציט בידוד מפלנטאס

  1. הסר שליה אחת מן הרחם עכברוש (יום ההיריון 19) ומקום ב 10 מ ל של הקרח קר PBS8.
  2. המקום שליה אחת על מסנן יקרומטר 100 ולשבת בצלחת פטרי המכילה 13.5 ml של RPMI ו 1.5 mL של fbs (נפח הכולל הוא 15 ml). השתמש בצד השטוח של המזרק כדי לדחוף את השליה דרך המסנן לתוך צלחת פטרי.
  3. הכינו 3 15 מ"ל שפופרות חרוט עבור כל רקמה. הוסף 3 מ ל של צפיפות בינונית מעבר הצבע (ראה טבלת חומרים) לכל צינור, ולאחר מכן שכבת בזהירות 5 מ ל של השליה המהומוגניים לתוך כל צינור.
  4. צנטריפוגה עבור 25 דקות ב 300 x g בטמפרטורת החדר (RT) ללא בלם. לאסוף את שכבת באפי לבנה רזה עם פיפטה העברה.
    הערה: לאחר צנטריפוגה, 3 שכבות גלויים, RPMI אדום בחלק העליון, שכבת באפי הלבנה באמצע, ואת צפיפות ברורה הדרגתי שכבה בתחתית. השתמש בפיפטה העברה כדי למשוך. את שכבת הבאפי הלבנה מהצינור שילוב שכבת באפי מכל הצינורות של השליה אותה לתוך צינור 1.
  5. הוסף 10 מ ל של RPMI כדי לשלב שכבות באפי. צנטריפוגה עבור 10 דקות, 300 x g, ב 4 ° צ' ולהיפטר supernatant.

2. בידוד של תאים רוצח טבעי

  1. השהה מחדש את גלולה תא ב 50 μL של הקרח קר PBS
  2. הוסף נוגדן CD3 התווית ביוטין כדי להתאים את התאים בהתאם לפרוטוקול של היצרן ולערבב היטב עם פיפטה. מניחים את הצינור בתוך מסובבי הצינור ומודעד 20 דקות ב 4 ° c.
  3. הוסף 1 מ ל של RPMI, צנטריפוגה עבור 10 דקות ב 400 x g ו 4 ° c, ולמחוק supernatant.
  4. להשעות את הגלולה ב 1 מ ל של RPMI ולשלב עם 150 μL של חרוזים מגנטיים בשפופרת מיקרוצנטריפוגה 1.5 mL. מניחים את צינור המיקרוצנטריפוגה בתוך מסובב צינור ולסובב תוך הדגירה 30 דקות ב 4 ° c.
    הערה: משוך את מאגר שחרור בשלב זה ולאפשר להגיע RT בארון בטיחות.
  5. מניחים את הצינורות במגנט 1 דקות. לאסוף supernatant ולשמור CD3-cell האוכלוסייה ב 15 מ ל שפופרת על הקרח.
    הערה: . זה האוכלוסיה הCD3 של תאים
  6. הסירו את השפופרת מהמגנט והוסיפו 1 מ ל RPMI. מערבבים תאים וחרוזים 5 פעמים עם פיפטה.
  7. חזור על שלב 2.5.
  8. צנטריפוגה את CD3- אוכלוסיה של תאים עבור 10 דקות ב 400 x g ו 4 ° צ' ו להיפטר supernatant. השהה מחדש את הגלולה בתא ב 50 μL של הקרח קר PBS
  9. הוסף נוגדן CD161a המסומן בביוטין לתאים CD3 בהתאם לפרוטוקול של היצרן וערבב היטב. מניחים את הצינור בתוך מסובבי הצינור ואת הדגירה של 20 דקות ב 4 ° c.
  10. הוסף 1 מ ל של RPMI, צנטריפוגה עבור 10 דקות ב 400 x g ו 4 ° c, ולמחוק supernatant. להשעות את הגלולה ב 1 מ ל של RPMI ולשלב עם 150 μL של חרוזים מגנטיים בשפופרת מיקרוצנטריפוגה 1.5 mL.
  11. מניחים צינור מיקרוצנטריפוגה בתוך מסובב צינור ולסובב תוך הדגירה עבור 30 דקות ב 4 ° c.
  12. מניחים את הצינורות במגנט 1 דקות. לאסוף supernatant ולהיפטר CD3-/Cd161a- תאים.
  13. להסיר את הצינור ממגנט ולהוסיף 1 מ"ל של RPMI. מערבבים תאים וחרוזים 5 פעמים עם פיפטה.
  14. חזור על שלב 2.12.
  15. הסרת צינורות מיקרוצנטריפוגה מן המגנט ולהוסיף 1 מ ל של מאגר שחרור RT. צינור מקום על מסובבי הצינור ולסובב תוך הדגירה עבור 15 דקות ב RT.
  16. מניחים צינורות במגנט עבור 1 דקות. לאסוף supernatant ב 15 מ"ל חדש של שפופרת חרוט על קרח.
    הערה: זוהי האוכלוסייה של תאי NK.
  17. להסיר את הצינור ממגנט ולהוסיף 1 מ ל של RT RPMI. מערבבים תאים וחרוזים 5 פעמים עם פיפטה.
  18. חזור על שלב 2.16, הצבת סופרנטנט באותה צינורית. מערבבים היטב ולוקחים לדוגמה 20 μL כדי לספור תאים
    הערה: . שמור על הקרח
  19. צנטריפוגה CD3-/cd161a+ תאים עבור 10 דקות, 400 x g ב 4 ° c, ולאחר מכן להסיר supernatant. להשעות את התאים ב-RPMI (10% FBS, 1% עט/דלקת, 2 ng/mL IL-2) וזרע בריכוז של 3 x 105 תאים/גם בצלחת 6-באר ב 2.5 mL של מדיה הפעלה תא NK. התאים הדגירה עבור 48 h ב 37 ° צ', 5% CO2 בתוך מחולל לחות.

3. שיטת הרעלת ציטוזה: מאחזר תאים NK או YAC1 מן התרבות או העובר תאים

הערה: כל הצעדים חייבים להתבצע. מתחת למכסה המנוע כל צינורות התאים. חייבים להישמר בקרח כל הזמן

  1. השתמש זכוכית מלאה סרולוגית לאסוף YAC1 תאים ומדיה מ בקבוקון, מקום בצינור 50 mL על קרח, ומערבבים היטב. קח 20 μL כדי לספור תאים.
  2. סובב את התאים YAC1 עבור 10 דקות ב 300 x g ו 4 ° c. ספירת תאים בזמן שאלה מסתובבים.
  3. הוסף את טריפסין/EDTA לכל באר בתא NK 6-צלחת. הקש על צלחת ומקום בחממה.
  4. לאחר התאים יש מודדים עם טריפסין/EDTA עבור ~ 5 דקות ב 37 ° c, לגרד את הצלחת/בקבוקון עם מגרד צלחת סטרילי. להוסיף 1 מ ל של מדיית התא NK לכל טוב.
  5. לאסוף תאים ומדיה עם pipet סרולוגית ולאסוף ב 15 מ"ל שפופרת צנטריפוגה. קח 20 μL כדי לספור תאים.
  6. הספין תאים NK עבור 10 דקות, 400 x g ב 4 ° c. לספור את המדגם של תאים משלב 3.5 במהלך צנטריפוגה זה.
    הערה: לראות את לוחיות התרבות תחת מיקרוסקופ לפני השלכת אותם כדי לוודא שאין תאים יותר דבק לתחתית הבארות. מאחר שהניסוי משתמש בתאי NK ובתאים YAC1, הקפד לספור כל אחד בנפרד.
  7. לספור תאים מחדש בריכוזים שנקבעו מבחנים אופטימיזציה כדי לבדוק את המספר המתאים של היעד: היחס אפקטור. זה יהיה מושגת על ידי השעיית מחדש את הגלולה במדיה המקבילה שלהם כדי להפוך את ריכוזי התא הבאים: YAC1 ב 4 x 105 תאים/ml ו-NK תאים ב 2 x 107 תאים/ml.

4. שיטת הרעלת ציטוזה: פרוטוקול שיטת המשך

  1. השימוש בחלק התחתון עגול, התרבות שטופלו 96-צלחת הבאר כדי להגדיר את הצלחת כפי שהוצע בטבלה 1. טבלה זו מציגה את הפקדים הניסיוניים ו-3 סטים של עמודות ניסויית של NK. זה יכול להיות מורחב לסכום כולל של 10 הטורים הניסיוניים NK בצלחת 96-באר.
  2. צנטריפוגה את צלחת הספק ב 250 x g עבור 4 דקות להיות בטוח כי האפקטור ותאי היעד הם במגע. מודקת את הצלחת 96-ובכן עבור 5 שעות בחממה קאמרית מחולל לחות ב 37 ° צ', 5% CO2 כדי להשיג קשר מספיק בין היעד ואת התאים היעד לפירוק התא על ידי תאים אפקטור.
    הערה: הפרוטוקול יכול להיות מושהה כאן.
  3. 45 דקות לפני קצירת סופרנטנים, להוסיף 10 μL של פתרון 10 x הליזה על תא היעד מקסימום LDH שחרור בארות (ולס 1E, 1E, 1E, ו-1E) ולמקם את הצלחת בחזרה בחדר לחות.
  4. לאחר הזמן הדגירה הושלמה, צנטריפוגה את הצלחת ב 250 x g עבור 4 דקות. באמצעות פיפטורים רב ערוצית, העברת 50 μl מתוך כל הבארות כדי טרי 96-ובכן שטוח בתחתית הצלחת.
    הערה: אין לגעת בתחתית הבארות, כך שתאים לא יועברו לתוך לוחית השיטת החדשה. אין להשתמש בלוחית מטופלת תרבותית כלוחית הטיפול הטרייה.
  5. בצע הפיכת שיטת מגיב.
    1. לאחר ש-' מאגר הגישה ' הגיע לטמפרטורת החדר, הוסף 12 מ ל של מאגר הגישה לבקבוקון אחד של מיקס מצע. היפוך וטלטול בעדינות עד התפרקה לחלוטין. 1 בקבוק מספיק עבור 2 96-טוב צלחות.
      הערה: יש להגן על מאגר השיטת הזמן מפני אור בעת ההפשאתו. מערבבים מיד לפני השימוש.
  6. הוסף 50 μL של שיטת הפעולה הכימית לכל הבארות בלוח השיטת ההרחבה משלב 4.6. לכסות את הצלחת עם רדיד אלומיניום כדי להגן עליו מפני אור ו דגירה עבור 30 דקות בטמפרטורת החדר.
    הערה: יש לאחסן את האפשרות ' מגיב חדש ' במקפיא. הדבר מגיב בטוב ל -8 שבועות בקירוב.
  7. הוסף 50 μL של פתרון Stop לכל באר. לקרוא לוחית בתוך שעה אחת לאחר הוספת פתרון עצור ולהקליט את ספיגת ב 490 nm. נתוני הנציג מוצגים בטבלה 2.

5. חישוב תוצאות

  1. חשב את ערך הספיגה הממוצע מבארות הרקע של התרבות והפחת מכל ערכי הספיגה של הניסוי, מהדורת LDH ספונטנית של תאי היעד ושחרור התאים הספונטני LDH שחרור בארות.
  2. חשב את ערכי הספיגה הממוצעים עבור בארות בקרת תיקון אמצעי האחסון והפחת מערכי הספיגה הנרכשים עבור בארות בקרת שחרור מרבי של תא יעד למהדורת LDH.
  3. השתמש בערכים המתוקן מתוך שלבים 5.1 ו-5.2 בנוסחה הבאה כדי לחשב אחוזי רעילות באחוזים עבור כל אפקטור: המטרה היטב.
    Equation 1

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

שלנטל התאים שהתקבלו מ NP ו רופ חולדות היו מודבטים עבור 5 h עם תאים היעד ב דיות המתאימים שלהם ביחס של 50:1 (NK: היעד). הקליטה הוקלטה ב490 ננומטר והנתונים הגולמיים מוצגים בטבלה 2. הספיגה הממוצעת של רקע התרבות ובארות השליטה בתיקון אמצעי האחסון חושבו. ממוצעים אלה המופגו מבארות המתאימות המסומנות בפרוטוקול היצרן ומיוצגים בטבלה 3. הערכים המתוקן השתמשו לאחר מכן כדי להשיג את ה-% ציטורעילות באמצעות הפרוטוקול שסיפק היצרן (טבלה 4).

1 2 3 4 מיכל 5
TCS דחסי VCC ECSR-1 ECSR-2 מיכל הטלפון
TCS דחסי VCC ECSR-1 ECSR-2 מיכל הטלפון
TCS דחסי VCC ECSR-1 ECSR-2 מיכל הטלפון
TCS דחסי VCC ECSR-1 ECSR-2 מיכל הטלפון
TCM אחים מק איכס-1 . איכס-2 איכס-3
TCM אחים מק איכס-1 . איכס-2 איכס-3
TCM אחים מק איכס-1 . איכס-2 איכס-3
TCM אחים מק איכס-1 . איכס-2 איכס-3

טבלה 1: פריסת לוחית שיטת. TCS = תא יעד שחרור LDH ספונטני (50 μL היעד תאים + 50 μL תא יעד בינונית); TCM = מקסימום תא יעד שחרור LDH (50 μL היעד תאים + 50 μL תא יעד בינונית); VCC = בקרת תיקון אמצעי האחסון (50 μL תא יעד בינונית + 50 μL תא בינונית); CMB = בקרת רקע לתרבות בינונית (50 μL מדיום תא היעד + 50 μL בינונית תא); ECSR = שחרור תא לגרסה ספונטנית (50 μL לאחר מכן תאים + 50 μL בינונית תאים); EW = בארות ניסיוני (50 μL היעד תאים + 50 μL תאים).

1 2 3 4 מיכל 5
NP רופ NP
0.615 0.484 0.473 0.463 0.471
0.586 0.484 0.458 0.474 0.469
0.61 0.486 0.464 0.459 0.469
0.578 0.495 0.478 0.458 0.482
0.605 0.55 0.524 0.526 0.543
0.576 0.504 0.519 0.502 0.528
0.565 0.512 0.515 0.513 0.531
0.563 0.581 0.526 0.508 0.519

שולחן 2: נתוני ספיגה גולמית של צלחת היישום המכיל את הפקדים ניסיוני בעמודות 1 ו 2 ובארות ניסיוני כדי למדוד את הרעילות של תאים NK לסביבה מחולדות NP ו ראפ נגד YAC1 תאי יעד.

1 2 3 4 מיכל 5
NP רופ NP
0.12775 -0.01425 -0.02425 -0.01625
0.09875 -0.02925 -0.01325 -0.01825
0.12275 -0.02325 -0.02825 -0.01825
0.09075 -0.00925 -0.02925 -0.00525
0.06825 0.03675 0.03875 0.05575
0.03925 0.03175 0.01475 0.04075
0.02825 0.02775 0.02575 0.04375
0.02625 0.03875 0.02075 0.03175

. שולחן 3 בספיגת מתוקן. ספיגה של בארות לאחר חיסור של ספיגת ממוצע של בארות שליטה על פי פרוטוקול היצרן. טור 1, בארות 1-4, הם בספיגת ערכי TCS-ערך בספיגת CMB הממוצע. טור 1, וולס 5-8, הם ערכי הספיגה של TCM-ערך הספיגה הממוצע של VCC.

NP רופ NP
128.9916 108.8235 93.69748
63.44538 118.9076 66.80672
75.92593 72.75132 64.28571
66.27907 63.17829 83.33333
% ממוצע הרעילות של% ציטוזה 83.66049 90.91518 77.03081

. שולחן 4 הרעילות בחישובים. ממוצע אחוז הרעילות של דגימות שכפול של תאי NK מבודדים מחולדות NP ו ראפ.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

קיימים מספר הערות חשובות שכדאי לשקול לקבלת תוצאות אופטימליות. עקרות התאים מנוצל חשוב מאוד. לאחר אוסף של השליה, חשוב כי הכנה ובידוד של התאים NK מתבצעים בתנאים סטרילי בארון בטיחות ביולוגית. יתר על כן, כי כל התאים לשחרר LDH על הנזק התאי, יש לנקוט כדי להשיג כדאיות גבוהה של תאים NK לאחר בידוד במהלך תהליך שיתוף התרבות. יותר מדי שחרור LDH ספונטני מתאי NK יכול לעתים קרובות לגרום לנתונים שליליים, שאינם שמיש

קיימים מספר היבטים של פרוטוקול זה שיהיו ספציפיים למשתמש ולצרכיהם. לדוגמה, קיימות שיטות שונות לבידוד של תאים מונחדריים משליה בנוסף לשיטות במאמר זה, כגון פירוק מכני ואנזימטי. בנוסף, זה במעלה המשתמש כדי לקבוע את מספר התאים האופטימלי היעד ואת האפקטור: יחס היעד שיתאים לניסוי שלהם. בידינו, 10,000 בתאי היעד והאפקטור: יחס היעד של 50:1 היה נחוש להיות אופטימלי עבור הניסויים שלנו. מספרים אלה עשויים להשתנות בהתאם לתאי היעד שנבחרו ולגבי הרקמה שממנה מבודדים תאי ה-NK. חוקרים אחרים שימוש בשיטה זו כדי להעריך את הפונקציה NK של תאים מבודדים מהכבד והטחול9. לפיכך, ניתן להשתמש בשיטה זו בתחומים שונים של מחקר, לא רק במחקרים של טרום-הרעלת ממון, כפי שבחרנו בשימוש בו.

התקן הזהב עבור הערכת רעילות ציטומה הוא שחרור כרום הערכה5. למרות ששיטה זו אמינה ומתוכמת, המגבלה הברורה ביותר היא השימוש בסיכון חשיפה רדיואקטיבי לאנשי כוח אדם ולסילוק רדיואקטיבי. אחרים, שאינם רדיואקטיביים הרעלת ציטוזה כגון הזרימה cy, מבוסס ולאחר שחרור השחרור, מדווחים כי יש תוצאות דומות לשטויות6,10,11. עם זאת, זרימה-cy, מבוססי בחני דורש הכשרה מיוחדת נוספת של אנשי זרימה cy, לנסות להפעיל את הדרישה. מבחן השחרור של LDH אינו דורש שום הכשרה מיוחדת, מאחר שבדיקה זו דורשת רק ליטוף פשוט כדי לבצע את המבדק. בנוסף, בעוד שניתן לנצל את שיטת השחרור של LDH באמצעות ספקטרוסקופיית רגיל או מזהה פלורסנט, שיטות ההפצה והזרימה של המערכת מבוססות על שימוש בחומרים מבוססי-cy, מחייבות ציוד המסוגל לזהות קרינה פלואורסצנטית. מגבלות שיטת השחרור של LDH כוללות הערכת מוות של תאים עקב שחרור לא שלם של LDH מתאים פגומים.

ביישום זה, מדידת ה-LDH ששוחררה לתוך המדיה מתרחשת בתגובה אנזימטית שבה הופכת אידונטסרופזויום (מלח טטרזויום) לתוך מאזן (אדום בצבע). הספיגה נמדדת על-ידי ספקטרוסקופיה סטנדרטית, וכמות התאים הפגועים בתרבות היא פרופורציונלית לעוצמת הצבע האדום. שיטת הפעולה מאפשרת קביעה מדויקת של תאים פגועים או פגועים במדגם. בסופו של דבר, ניתן להשתמש באותו שיטה מטרית צביעה עם סוגי תאים אחרים כדי לקבל הרעלה באמצעות תא בתיווך, כמו גם מנגנוני תיווך כימיים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

אין קונפליקטים של עניין, פיננסיים או אחרים, מוצהר על ידי המחברים.

Acknowledgments

העבודה הזאת נתמכת על ידי המכון הלאומי לבריאות ובדם של המוסדות הלאומיים של בריאות תחת גרנט R00HL130456, המכון הלאומי למדעי הרפואה הכללית של המכון הלאומי לבריאות תחת הפרס P20GM104357, ועל ידי מיסיסיפי INBRE, ממומן על ידי פרס פיתוח מוסדי (רעיון) מן המוסדות הלאומיים של מדעי הרפואה הכללית של המוסדות הלאומיים לבריאות תחת מספר P20GM103476. התוכן הינו באחריות המחברים בלבד ואינו מייצג בהכרח את ההשקפות הרשמיות של המכון הלאומי לבריאות.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
1.5 mL Eppendorf tube Fisher 5408129
100 µL Filter Fisher 22363549 Nylon Mesh
15 mL conical tube Fisher 0553859A
3 mL syringe Fisher 14823436
50 mL conical tube Fisher 7203510
6-well cell culture plate Corning 720083
96-well Tissue Culture Plate CELLTREAT 229190 Sterile, Round Bottom
AOPI Nexcelom CS201065ML
Cell scraper Fisher 8100241
Cellometer Disposable Counting Chambers Nexcelom CHT4-SD100
Cellometer Vision Image Cytometer Nexcelom N/A
Cytotox 96 Non-Radioactive Cytotoxicity Assay Kit Promega G1780
Dynabeads Flowcomp Flexi Kit Invitrogen 11061D
DynaMag-2 Magnet Invitrogen 12321D
EDTA Sigma Aldrich EDS-100G
FBS Atlanta Biologicals S11150H
Flow Cytometry Tube Corning 352008
Lymphoprep Fisher NC0460539 Density gradient medium; 4 x 250 mL
PBS Fisher SH3025801 10 x 500 mL
Penicillin/Streptomycin Gibco 15140122
Petri dishes Fisher 9720500 Without Pad
Purified Mouse anti-Rat CD161a BD Biosciences 555006
Purified Mouse anti-Rat CD3 BD Biosciences 554829
Recombinant Rat IL-2 R&D Systems 502-RL
RPMI Gibco 11875135 1640 Medium
T25 flask Corning 430639
Trypsin ThermoFisher 15090046
YAC-1 cell ATCC TIB-160

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Cornelius, D. C., Cottrell, J., Amaral, L. M., LaMarca, B. Inflammatory Mediators: A causal link to hypertension during pregnancy- Studies in Preeclampsia. British Journal of Pharmacology. , (2018).
  2. Elfarra, J., et al. Natural killer cells mediate pathophysiology in response to reduced uterine perfusion pressure. Clinical Science. 131 (23), 2753-2762 (2017).
  3. Brunner, K. T., Mauel, J., Cerottini, J. C., Chapuis, B. Quantitative assay of the lytic action of immune lymphoid cells on 51-Cr-labelled allogeneic target cells in vitro; inhibition by isoantibody and by drugs. Immunology. 14 (2), 181-196 (1968).
  4. Kim, G. G., Donnenberg, V. S., Donnenberg, A. D., Gooding, W., Whiteside, T. L. A novel multiparametric flow cytometry-based cytotoxicity assay simultaneously immunophenotypes effector cells: comparisons to a 4 h 51Cr-release assay. Journal of Immunological Methods. 325 (1-2), 51-66 (2007).
  5. Somanchi, S. S., McCulley, K. J., Somanchi, A., Chan, L. L., Lee, D. A. A Novel Method for Assessment of Natural Killer Cell Cytotoxicity Using Image Cytometry. PLoS One. 10 (10), 0141074 (2015).
  6. Neri, S., Mariani, E., Meneghetti, A., Cattini, L., Facchini, A. Calcein-acetyoxymethyl cytotoxicity assay: standardization of a method allowing additional analyses on recovered effector cells and supernatants. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 8 (6), 1131-1135 (2001).
  7. Karimi, M. A., et al. Measuring cytotoxicity by bioluminescence imaging outperforms the standard chromium-51 release assay. PLoS One. 9 (2), 89357 (2014).
  8. Caporossi, C., Nogueira, P. L., Marques, J. C., Assis, R. M., Aguilar-Nascimento, J. E. Validation of the gastroschisis experimental model and the influence of the mother's diet enriched with glutamine in the fetal morphology. Acta Cirúrgica Brasileira. 29 (3), 158-165 (2014).
  9. Lv, L. H., et al. Functional distinction of rat liver natural killer cells from spleen natural killer cells under normal and acidic conditions in vitro. Hepatobiliary and Pancreatic Diseases International. 11 (3), 285-293 (2012).
  10. Flieger, D., et al. A novel non-radioactive cellular cytotoxicity test based on the differential assessment of living and killed target and effector cells. Journal of Immunological Methods. 180 (1), 1-13 (1995).
  11. Jang, Y. Y., et al. An improved flow cytometry-based natural killer cytotoxicity assay involving calcein AM staining of effector cells. Annals of Clinical Laboratory Science. 42 (1), 42-49 (2012).

Tags

אימונולוגיה וזיהום סוגיה 148 הרעלה תא הרוצח הטבעי Lymphopre לקטט דהידרוגנאז אימונולוגיה דלקת יתר לחץ דם
הלוח מבוססי ציטורעילות מבוסס על הערכה של עכברוש הרוצח הטבעי בתפקוד התאים Cytolytic
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Baik, C. H., Geer, M., Travis, O.… More

Baik, C. H., Geer, M., Travis, O. K., Cornelius, D. C. A Plate-based Cytotoxicity Assay for the Assessment of Rat Placental Natural Killer Cell Cytolytic Function. J. Vis. Exp. (148), e58961, doi:10.3791/58961 (2019).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter