Summary

Medium-throughput Screening Assays til vurdering af virkninger på Ca2 +-signalering og Acrosome reaktion i menneskelige sædceller

Published: March 01, 2019
doi:

Summary

Her, to medium-overførselshastighed assays til vurdering af virkninger på Ca2 +-signalering og acrosome reaktion i menneskelige sædceller er beskrevet. Disse assays kan bruges til hurtigt og nemt skærmen store mængder af stoffer for effekter på Ca2 +-signalering og acrosome reaktion i menneskelige sædceller.

Abstract

Ca2 +-signalering er afgørende for normal sæd cellefunktion og mandlige fertilitet. Ligeledes, acrosome reaktionen er afgørende for evne til menneskelige sædcellen trænger zona pellucida og befrugte ægget. Det er derfor af stor interesse at teste forbindelser (f.eks. Miljøkontaminanter eller lægemiddelkandidater) for deres effekt på Ca2 +-signalering og acrosome reaktion i menneskelige sædceller enten at undersøge de potentielle negative virkninger på menneskers sædcelle funktion eller at undersøge en mulig rolle som et præventionsmiddel. Her, to medium-overførselshastighed assays er beskrevet: 1) et fluorescens-baseret analyse til vurdering af virkninger på Ca2 +-signalering i menneskelige sædceller og 2) et billede cytometric analyse til vurdering af acrosome reaktion i menneskelige sædceller. Disse assays kan bruges til at screene et stort antal stoffer for effekter på Ca2 +-signalering og acrosome reaktion i menneskelige sædceller. Desuden, assays kan bruges til at generere meget specifikke dosis-respons kurver af enkelte forbindelser, bestemme potentielle additivity/synergi for to eller flere forbindelser og studere den farmakologiske virkningsmekanisme gennem konkurrencedygtige hæmning eksperimenter med CatSper hæmmere.

Introduction

Formålet med de to assays beskrevet her er at undersøge virkningerne på Ca2 +-signalering og acrosome reaktion i menneskelige sædceller, som har været vist flere forbindelser i flere publikationer beskæftiger disse undersøgelser1,2, 3,4,5,6,7. Ca2 +-signalering og acrosome reaktion er afgørende for normale menneskelige sædceller cellefunktion og mandlige fertilitet.

Det overordnede mål med en menneskelig sædcelle er at befrugte ægget. For at være i stand til med succes og naturligvis befrugte ægget, skal funktioner af sædcellen være reguleret stramt under rejsen af sædcellen gennem den kvindelige forplantningsorganerne8,9. Mange af funktionerne sædcelle er reguleret via den intracellulære Ca2 +-koncentration [Ca2 +]jeg (fx, sperm motilitet, chemotaxis og acrosome reaktion)10. Også, en modningsproces, kaldet retsevne, som gengiver sædcellen i stand til at befrugte ægget, er delvis reguleret af [Ca2 +]jeg10. Ca2 +-ekstrudering af Ca2 +-ATPase pumper11 opretholde en cirka 20.000 fold Ca2 +-gradienten over menneskelige sædceller cellemembranen, med en hvilende [Ca2 +]jeg af 50-100 nM. Hvis Ca2 + er tilladt at krydse cellemembranen (f.eks. gennem åbningen af Ca2 +-kanaler), en betydelig tilstrømning af Ca2 + opstår, giver anledning til en højde af [Ca2 +],jeg. Dog sædcellen også bærer intracellulære Ca2 +-butikker, som kan frigive Ca2 + og derfor også giver anledning en udvidelse af [Ca2 +]i12. Interessant, alle kanal-medieret Ca2 +-tilstrømning i menneskelige sædceller er hidtil blevet fundet for at forekomme via CatSper (kationisk kanal SpeRM), som er kun udtrykt i sædceller11. I menneskelige sædceller, CatSper er aktiveret af endogene ligander progesteron og prostaglandiner gennem særskilte ligand bindende websteder13,14,15, fører til en hurtig Ca2 +-tilstrømning til sædcelle. To hovedkilder nær ægget giver høje niveauer af disse endogene ligander. En er den follikulære væske, der indeholder høje niveauer af progesteron16. Follikulært væsken er frigivet fra modne follikler sammen med æg på ægløsning og blander sig med væsken i æggelederne17. Den andre vigtigste kilde er de cumulus celler, der omgiver ægget og slip høje niveauer af progesteron og prostaglandiner. De progesteron-induceret Ca2 +-tilstrømning i sædceller har vist sig at mægle chemotaxis mod æg9,18, styre sperm motilitet19,20 og stimulere acrosome reaktion21. Udløsning af disse individuelle [Ca2 +]jeg-regulerede sperm funktioner i den rigtige rækkefølge og på det rigtige tidspunkt er afgørende for befrugtning af ægget8. I denne, en suboptimal progesteron-induceret Ca2 +-tilstrømning er blevet fundet at være associeret med reduceret mandlige fertilitet22,23,24,25,26 er vigtigt for mandlige fertilitet26,30,31,32, ,27,28,29 og funktionelle CatSper 33,34,35,36.

Da sædceller nå ægget, en sekvens af begivenheder skal finde sted for befrugtning forekommer: 1) sædcellerne skal trænge igennem de omkringliggende cumulus cellelag, 2) binder sig til zona pellucida, 3) exocytose acrosomal indhold, den såkaldte acrosome reaktion 37, 4) trænge igennem zona pellucida og 5) fuse med æg membranen at fuldføre befrugtning38. Hvis du vil være i stand til at gå gennem disse trin og befrugte ægget, skal sædcellen først gennemgå retsevne11, der begynder som sædcellerne forlade den sædvæske, der indeholder “decapacitating” faktorer39 og svømme ind i væsker for kvindelige forplantningsorganerne med høje niveauer af bikarbonat og albumin37. Retsevne gengiver i stand til at gennemgå hyperactivation, en form for motilitet med en kraftig slå fimrehår, og acrosome reaktion37sædceller. Hyperactivated motilitet kræves til penetration af zona pellucida40, og acrosome indeholder forskellige hydrolytiske enzymer, at støtte denne penetration proces41. Derudover gengiver acrosome reaktion sædceller i stand til at fusionere med ægget ved at udsætte specifikke Membranproteiner på sæd overfladen nødvendige for sperm-æg fusion42. Evnen til at gennemgå hyperactivation og acrosome reaktion er derfor både nødvendige for vellykket befrugtning af æg40,42. I modsætning til hvad er blevet set for musen sædceller43,44,45, kan kun menneskelige sædceller, der er acrosome-intakt binde til zona pellucida46. De skal gennemgå acrosome reaktion at trænge igennem zona pellucida41 og afdække specifikke Membranproteiner, der er nødvendige for fusion med æg38, når de menneskelige sædceller er bundet til zona pellucida. Timingen af acrosome reaktionen i menneskelige sædceller er således afgørende for befrugtning at forekomme.

Som beskrevet ovenfor, Ca2 +-signalering er af afgørende betydning for normale sæd celle funktion8, og det er derfor af stor interesse at skærmen stort antal forbindelser for effekter på Ca2 +-signalering i menneskelige sædceller. På samme måde, som kun menneskelige sædceller, der undergår acrosome reaktion på rette tid og sted kan trænge igennem zona pellucida og befrugte ægget46,47, det er også af stor interesse at kunne teste forbindelser for deres evne til at påvirke acrosome reaktionen i menneskelige sædceller. Til dette formål to medium-throughput screening-assays er beskrevet: 1) en analyse af virkninger på Ca2 +-signalering i menneskelige sædceller og 2) en analyse for evnen til at fremkalde acrosome reaktion i menneskelige sædceller.

Analyse 1 er en medium-overførselshastighed Ca2 +-signalering assay. Denne fluorescens plade reader-baseret teknik overvåger ændringer i fluorescens som funktion af tiden samtidig i flere brønde. Ca2 +-følsomme fluorescerende farvestof, Fluo-4 har en Kd for Ca2 +≈ 335 nM og er celle-permeant i AM (acetoxymethyl) ester form. Med Fluo-4, er det muligt at måle ændringer i [Ca2 +]jeg over tid og efter tilsætning af forbindelser af interesse for sædceller. Analysen blev udviklet af laboratoriet af Timo Strünker i 201113 og er siden blevet brugt i flere undersøgelser at skærmen stoffer for effekter på Ca2 +-signalering i menneskelige sædceller1,2,3, 4,5. Også har en lignende metode været anvendt til at screene flere drug kandidater48. Desuden, er denne analyse også nyttige til at vurdere den farmakologiske tilstand af aktion1,2,3,4,5, dosis-respons kurver1, 2,3,4,5, konkurrencedygtige hæmning1,2, additivity1,2og synergi3 af forbindelser af interesse.

Analysen 2 er en medium-overførselshastighed acrosome reaktion assay. Dette billede Flowcytometret-baseret teknik måler mængden af levedygtige acrosome reagerede sædceller i en prøve, ved hjælp af tre fluorescerende farvestoffer: propidium Iodid (PI), FITC-kombineret lektin Pisum sativum (FITC-PSA), og Hoechst-33342. Analysen blev ændret fra en lignende flow flowcytometri-baserede metode af Zoppino et al.49 og har været anvendt i flere undersøgelser6,7. For Ca2 +-signalering assay, denne acrosome reaktion assay kan også bruges til at vurdere dosis-respons-kurver, hæmning, additivity og synergi af forbindelser af interesse.

Protocol

Indsamling og analyse af menneskelige sæd prøver i protokollerne følger retningslinjerne i den videnskabsetisk Komité for Region Hovedstaden. Alle sæd prøver har opnået efter informeret samtykke fra frivillige donorer. Efter levering, var prøverne fuldt anonymiseret. For deres ulejlighed modtaget hver donor et gebyr på 500 kr. (omkring $75 amerikanske. dollars) pr. prøve. Prøverne blev analyseret på dagen for levering og derefter destrueres straks efter laboratorieforsøg. Bemærk:…

Representative Results

Repræsentant resultater fra et eksperiment teste effekten af 4 forbindelser (A, B, C og D) sammen med en positiv (progesteron) og negative (buffer) kontrol på [Ca2 +]jeg i menneskelige sædceller ved hjælp af medium-overførselshastighed Ca2 +-signalering analysen kan ses i figur 4a. I figur 4b, er en dosis responskurve af progesteron vist, som var afledt af peak ΔF/F0 (%) data indu…

Discussion

Den medium gennemløb Ca2 + signalering assay er baseret på målinger af fluorescens fra enkelt microwells indeholder omkring 250.000 sædceller. De tilfangetagne signal er i gennemsnit fra alle individuelle sædceller i brønden. Analysen giver således ingen geografisk information om, hvor specielt i den sædcelle [Ca2 +]jeg er ændret, i hvor stor en del af sædcellerne en ændring i [Ca2 +]jeg finder sted, eller hvor heterogene svaret er mellem de enkelte celler…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne vil gerne anerkende lab af Timo Strünker for kontrol med AR og DLE under deres ophold på hans lab. Desuden vil vi gerne takke vores kolleger på afdelingen for vækst og reproduktion, Rigshospitalet, Rigshospitalet for deres hjælp med opsætning af disse to assays. Dette arbejde blev støttet af tilskud fra Danmarks innovationsfond (grant numre 005-2010-3 og 14-2013-4).

Materials

0.2 µm pore filter Thermo Fisher Scientific, USA 296-4545
1 L measuring cylinder Thermo Fisher Scientific, USA 3662-1000
1,4 and 2 mL plastic tubes Eppendorf, Germany 30120086 and 0030120094
12-channel pipette Eppendorf, Germany 4861000813
384 multi-well plates Greiner Bio-One, Germany 781096
15 and 50 mL platic tubes Eppendorf, Germany 0030122151 and 30122178
A2-slide ChemoMetec, Denmark 942-0001
Automatic repeater pipette Eppendorf, Germany 4987000010
CaCl2
Centrifuge
Clean wide-mouthed plastic container for semen sample
Dimethyl sulfoxide (DMSO)
FITC-coupled lectin of Pisum sativum (FITC-PSA) Sigma-Aldrich, Germany L0770
Fluo-4 AM Thermo Fisher Scientific, USA F14201
FLUOstar OMEGA fluorescence microplate reader BMG Labtech, Germany
Glucose anhydrous
HEPES
Hoechst-33342 ChemoMetec, Denmark 910-3015
Human serum albumin (HSA) Irvine Scientific 9988 For addition to HTF+
Immobilizing solution containing 0.6 M NaHCO3 and 0.37% (v/v) formaldehyde in distilled water
Incubator
KCl
KH2PO4
Magnetic stirrer
MgSO4
Na-Lactate
NaCl
NaHCO3
NC-3000 image cytometer ChemoMetec, Denmark 970-3003
Pipettes and piptting tips
propidium iodide (PI) ChemoMetec, Denmark 910-3002
Purified water
Rack for placing 50 mL plastic tubes in 45° angle
S100 buffer ChemoMetec, Denmark 910-0101
SP1-cassette ChemoMetec, Denmark 941-0006
Volumetric flasks of appropriate sizes
Vortexer

References

  1. Schiffer, C., et al. Direct action of endocrine disrupting chemicals on human sperm. EMBO reports. , (2014).
  2. Rehfeld, A., Dissing, S., Skakkebæk, N. E. Chemical UV Filters Mimic the Effect of Progesterone on Ca(2+) Signaling in Human Sperm Cells. Endocrinology. 157 (11), 4297-4308 (2016).
  3. Brenker, C., et al. Synergistic activation of CatSper Ca2+ channels in human sperm by oviductal ligands and endocrine disrupting chemicals. Human Reproduction (Oxford, England). 33 (10), 1915-1923 (2018).
  4. Brenker, C., et al. The CatSper channel: a polymodal chemosensor in human sperm. The EMBO Journal. 31 (7), 1654-1665 (2012).
  5. Brenker, C., et al. Action of steroids and plant triterpenoids on CatSper Ca2+ channels in human sperm. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (3), E344-E346 (2018).
  6. Rehfeld, A., et al. Chemical UV filters can affect human sperm function in a progesterone-like manner. Endocrine Connections. , (2017).
  7. Egeberg Palme, D. L., et al. Viable acrosome-intact human spermatozoa in the ejaculate as a marker of semen quality and fertility status. Human Reproduction. , (2018).
  8. Publicover, S., Harper, C. V., Barratt, C. [Ca2+]i signalling in sperm–making the most of what you’ve got. Nature Cell Biology. 9 (3), 235-242 (2007).
  9. Publicover, S. J., et al. Ca2+ signalling in the control of motility and guidance in mammalian sperm. Frontiers in Bioscience. 13, 5623-5637 (2008).
  10. Publicover, S., Harper, C. V., Barratt, C. [Ca2+]i signalling in sperm–making the most of what you’ve got. Nature Cell Biology. 9 (3), 235-242 (2007).
  11. Lishko, P. V., et al. The control of male fertility by spermatozoan ion channels. Annual Review Of Physiology. 74, 453-475 (2012).
  12. Morris, J., et al. Cell-penetrating peptides, targeting the regulation of store-operated channels, slow decay of the progesterone-induced [Ca2+]i signal in human sperm. Molecular Human Reproduction. 21 (7), 563-570 (2015).
  13. Strünker, T., et al. The CatSper channel mediates progesterone-induced Ca2+ influx in human sperm. Nature. 471 (7338), 382-386 (2011).
  14. Lishko, P. V., Botchkina, I. L., Kirichok, Y. Progesterone activates the principal Ca2+ channel of human sperm. Nature. 471 (7338), 387-391 (2011).
  15. Miller, M. R., et al. Unconventional endocannabinoid signaling governs sperm activation via the sex hormone progesterone. Science (New York, N.Y.). 352 (6285), 555-559 (2016).
  16. Revelli, A., et al. Follicular fluid content and oocyte quality: from single biochemical markers to metabolomics. Reproductive Biology And Endocrinology RB&E. 7, 40 (2009).
  17. Lyons, R. A., Saridogan, E., Djahanbakhch, O. The effect of ovarian follicular fluid and peritoneal fluid on Fallopian tube ciliary beat frequency. Human Reproduction. 21 (1), 52-56 (2006).
  18. Eisenbach, M., Giojalas, L. C. Sperm guidance in mammals – an unpaved road to the egg. Nature reviews. Molecular Cell Biology. 7 (4), 276-285 (2006).
  19. Alasmari, W., et al. The clinical significance of calcium-signalling pathways mediating human sperm hyperactivation. Human Reproduction. 28 (4), 866-876 (2013).
  20. Alasmari, W., et al. Ca2+ signals generated by CatSper and Ca2+ stores regulate different behaviors in human sperm. The Journal of Biological Chemistry. 288 (9), 6248-6258 (2013).
  21. Tamburrino, L., et al. The CatSper calcium channel in human sperm: relation with motility and involvement in progesterone-induced acrosome reaction. Human Reproduction. 29 (3), 418-428 (2014).
  22. Krausz, C., et al. Intracellular calcium increase and acrosome reaction in response to progesterone in human spermatozoa are correlated with in-vitro fertilization. Human Reproduction. 10 (1), 120-124 (1995).
  23. Oehninger, S., et al. Defective calcium influx and acrosome reaction (spontaneous and progesterone-induced) in spermatozoa of infertile men with severe teratozoospermia. Fertility and Sterility. 61 (2), 349-354 (1994).
  24. Shimizu, Y., Nord, E. P., Bronson, R. A. Progesterone-evoked increases in sperm [Ca2+]i correlate with the egg penetrating ability of sperm from fertile but not infertile men. Fertility and Sterility. 60 (3), 526-532 (1993).
  25. Falsetti, C., et al. Decreased responsiveness to progesterone of spermatozoa in oligozoospermic patients. Journal of Andrology. 14 (1), 17-22 (1993).
  26. Williams, H. L., et al. Specific loss of CatSper function is sufficient to compromise fertilizing capacity of human spermatozoa. Human Reproduction. 30 (12), 2737-2746 (2015).
  27. Forti, G., et al. Effects of progesterone on human spermatozoa: clinical implications. Annales d’Endocrinologie. 60 (2), 107-110 (1999).
  28. Krausz, C., et al. Two functional assays of sperm responsiveness to progesterone and their predictive values in in-vitro fertilization. Human Reproduction. 11 (8), 1661-1667 (1996).
  29. Kelly, M. C., et al. Single-cell analysis of [Ca2+]i signalling in sub-fertile men: characteristics and relation to fertilization outcome. Human Reproduction. 33 (6), 1023-1033 (2018).
  30. Brown, S. G., et al. Homozygous in-frame deletion in CATSPERE in a man producing spermatozoa with loss of CatSper function and compromised fertilizing capacity. Human Reproduction. 33 (10), 1812-1816 (2018).
  31. Avenarius, M. R., et al. Human male infertility caused by mutations in the CATSPER1 channel protein. American Journal of Human Genetics. 84 (4), 505-510 (2009).
  32. Smith, J. F., et al. Disruption of the principal, progesterone-activated sperm Ca2+ channel in a CatSper2-deficient infertile patient. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (17), 6823-6828 (2013).
  33. Hildebrand, M. S., et al. Genetic male infertility and mutation of CATSPER ion channels. European Journal of Human Genetics. 18 (11), 1178-1184 (2010).
  34. Avidan, N., et al. CATSPER2, a human autosomal nonsyndromic male infertility gene. European Journal of Human Genetic. 11 (7), 497-502 (2003).
  35. Zhang, Y., et al. Sensorineural deafness and male infertility: a contiguous gene deletion syndrome. BMJ Case Reports. 2009, (2009).
  36. Jaiswal, D., Singh, V., Dwivedi, U. S., Trivedi, S., Singh, K. Chromosome microarray analysis: a case report of infertile brothers with CATSPER gene deletion. Gene. 542 (2), 263-265 (2014).
  37. Visconti, P. E., Krapf, D., de la Vega-Beltrán, J. L., Acevedo, J. J., Darszon, A. Ion channels, phosphorylation and mammalian sperm capacitation. Asian Journal of Andrology. 13 (3), 395-405 (2011).
  38. Wassarman, P. M., Jovine, L., Litscher, E. S. A profile of fertilization in mammals. Nature Cell Biology. 3 (2), E59-E64 (2001).
  39. Leahy, T., Gadella, B. M. Sperm surface changes and physiological consequences induced by sperm handling and storage. Reproduction. 142 (6), 759-778 (2011).
  40. Suarez, S. S. Control of hyperactivation in sperm. Human Reproduction Update. 14 (6), 647-657 (2008).
  41. Liu, D. Y., Baker, H. W. Inhibition of acrosin activity with a trypsin inhibitor blocks human sperm penetration of the zona pellucida. Biology of Reproduction. 48 (2), 340-348 (1993).
  42. Okabe, M. The cell biology of mammalian fertilization. Development. 140 (22), 4471-4479 (2013).
  43. Inoue, N., Satouh, Y., Ikawa, M., Okabe, M., Yanagimachi, R. Acrosome-reacted mouse spermatozoa recovered from the perivitelline space can fertilize other eggs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (50), 20008-20011 (2011).
  44. Jin, M., et al. Most fertilizing mouse spermatozoa begin their acrosome reaction before contact with the zona pellucida during in vitro fertilization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (12), 4892-4896 (2011).
  45. Hirohashi, N., Yanagimachi, R. Sperm acrosome reaction: its site and role in fertilization. Biology of Reproduction. 99 (1), 127-133 (2018).
  46. Liu, D. Y., Garrett, C., Baker, H. W. G. Acrosome-reacted human sperm in insemination medium do not bind to the zona pellucida of human oocytes. International Journal of Andrology. 29 (4), 475-481 (2006).
  47. Overstreet, J. W., Hembree, W. C. Penetration of the zona pellucida of nonliving human oocytes by human spermatozoa in vitro. Fertility and Sterility. 27 (7), 815-831 (1976).
  48. Martins da Silva, S. J., et al. Drug discovery for male subfertility using high-throughput screening: a new approach to an unsolved problem. Human Reproduction. , 1-11 (2017).
  49. Zoppino, F. C. M., Halón, N. D., Bustos, M. A., Pavarotti, M. A., Mayorga, L. S. Recording and sorting live human sperm undergoing acrosome reaction. Fertility and Sterility. 97 (6), 1309-1315 (2012).
  50. Mata-Martínez, E., et al. Measuring intracellular Ca2+ changes in human sperm using four techniques: conventional fluorometry, stopped flow fluorometry, flow cytometry and single cell imaging. Journal of Visualized Experiments. (75), e50344 (2013).
  51. Egeberg, D. L., et al. Image cytometer method for automated assessment of human spermatozoa concentration. Andrology. 1 (4), 615-623 (2013).
  52. Nash, K., et al. Techniques for imaging Ca2+ signaling in human sperm. Journal of Visualized Experiments. (40), (2010).

Play Video

Cite This Article
Rehfeld, A., Egeberg Palme, D. L., Almstrup, K., Juul, A., Skakkebaek, N. E. Medium-throughput Screening Assays for Assessment of Effects on Ca2+-Signaling and Acrosome Reaction in Human Sperm. J. Vis. Exp. (145), e59212, doi:10.3791/59212 (2019).

View Video