Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Developmental Biology

X-ray Diffraksjon av intakt murine skjelettmuskulatur som et verktøy for å studere den strukturelle grunnlaget for muskel sykdom

Published: July 18, 2019 doi: 10.3791/59559

Summary

Vi presenterer detaljerte protokoller for å utføre små-vinkel X-ray Diffraksjon eksperimenter med intakt mus skjelettmuskulatur. Med den brede tilgjengeligheten av transgene Mouse-modeller for menneskelige sykdommer, kan denne eksperimentelle plattformen danne en nyttig test seng for å Elucidating det strukturelle grunnlaget for genetiske muskel sykdommer

Abstract

Transgene Mouse-modeller har vært viktige verktøy for å studere forholdet mellom genotype og fenotype for menneskelige sykdommer, inkludert de av skjelettmuskulatur. Mus skjelettmuskulatur har vist å produsere høy kvalitet X-ray Diffraksjon mønstre på tredje generasjons Synchrotron beamlines gir en mulighet til å knytte endringer på nivået av genotype til funksjonell fenotyper i helse og sykdom ved å bestemme strukturelle konsekvenser av genetiske forandringer. Vi presenterer detaljerte protokoller for utarbeidelse av eksemplarer, samle X-ray mønstre og utvinne relevante strukturelle parametre fra røntgen mønstre som kan hjelpe guide forskere som ønsker å utføre slike eksperimenter for seg selv.

Introduction

Synchrotron liten vinkel X-ray Diffraksjon er metoden for valg for å studere NM-skala struktur av aktivt kontraktørselskaper muskel preparater under fysiologiske forhold. Viktigere, strukturelle informasjon fra levende eller flådd muskel preparater kan fås i Synchrony med fysiologiske data, for eksempel muskelkraft og lengde endringer. Det har vært økende interesse for å anvende denne teknikken til å studere den strukturelle grunnlaget for arvet muskel sykdommer som har sitt grunnlag i punkt mutasjoner i sarcomeric proteiner. Den muskel biofysikk samfunnet har vært veldig aktiv i å generere transgene Mouse modeller for disse menneskelige sykdommer som kan gi ideelle test senger for strukturelle studier. Nyere publikasjoner fra vår gruppe1,2,3 og andre4,5 har indikert at X-ray mønstre fra musen extensor senen Longus (EDL) og soleus musklene kan gi alle Diffraksjon informasjon tilgjengelig fra mer tradisjonell modell organismer som frosk og kanin psoas skjelettmuskulatur. En fordel med musen skjelettlidelser muskel forberedelser er den enkle disseksjon og utføre grunnleggende membran-intakt, hele muskel fysiologiske eksperimenter. Dimensjonene av dissekert muskelen har tilstrekkelig masse til å gi svært detaljerte muskel mønstre i svært korte X-ray eksponeringstider (~ millisekunder per ramme) på tredje generasjons røntgen beamlines.

Muscle X-ray Diffraksjon mønstre består av ekvator refleksjoner, den Meridional refleksjoner samt laget linje refleksjoner. Den ekvator intensitet ratio (forholdet mellom intensiteten av 1, 1 og 1, 0 ekvator refleksjoner, jeg11/i10), er nært korrelert til antall festet Cross-broer, som er proporsjonal med kraften som genereres i musen skjelettlidelser muskel 2. Meridional refleksjoner som rapporterer periodicities innenfor de tykke og tynne filamenter kan brukes til å anslå filament utvidbarhet1,3,6,7. Diffraksjon funksjoner ikke på Meridian og ekvator kalles lag linjer, som oppstår fra de ca skruelinjeformet bestilte myosin hoder på overflaten av tykt filament ryggrad samt ca skruelinjeformet bestilte tynne filamenter. Intensiteten av myosin lag linjer er nært beslektet med graden av bestilling av myosin hoder under ulike forhold2,8. All denne informasjonen kan brukes studere oppførselen til sarcomeric proteiner in situ i helse og sykdom.

Synchrotron X-ray Diffraksjon av muskelen har vært historisk gjort av team av høyt spesialiserte eksperter, men fremskritt innen teknologi og tilgjengeligheten av nye data reduksjon verktøy tyder på at dette ikke alltid er tilfelle. Det BioCAT Beamline 18ID for det avansert Foton kilde, Argonne nasjonal laboratorium har plikttro stab og oppbacking fasiliteter for utføre muskelen X-rokke Diffraksjon eksperimenter det kanne hjelpe nykommere å feltet komme i gang inne benytter disse teknikker. Mange brukere velger å formelt samarbeide med BioCAT stab, men et økende antall brukere finner de kan gjøre eksperimenter og analyse selv redusere byrden på beamline staff. Hovedmålet med denne utredningen er å gi opplæring som gir potensielle forskere med den informasjonen de trenger for å planlegge og utføre eksperimenter på musen skjelettlidelser muskel system enten på BioCAT beamline eller ved andre høy Flux beamlines rundt verden hvor disse eksperimentene ville være mulig.

Protocol

Alle dyr eksperimenter protokoller ble godkjent av Illinois Institute of Technology institusjonelle Animal Care og use Committee (protokoll 2015-001, godkjenningsdato: 3. november 2015) og fulgte NIH "guide for omsorg og bruk av Laboratoriedyr"9 .

1. pre-eksperiment forberedelse

  1. Klargjør 500 mL ringe oppløsning (inneholder: 145 mM NaCl, 2,5 mM KCl, 1,0 mM MgSO4, 1,0 mm CaCl2, 10,0 mM HEPES, 11 mM glukose, pH 7,4) fersk for hver dag i eksperimentet.
  2. Fyll 200 mL ringe løsning i en sprøyte flaske og oppbevar den ved 4 ° c kjøleskap. Fyll en Petri parabolen (10 cm i diameter) med ringer ' s løsning og perfuse med 100% oksygen ved å koble røret fra en oksygen sylinder til et akvarium luft stein. Den Petri retter ("dissekere retter") var tidligere belagt med en elastomer sammensatte å tillate innsetting pins under disseksjon.
  3. Forbered metall monterings kroker. Skjær to stykker av rustfritt stål wire, 0,5 mm i diameter, til riktig lengde og bøy ledningen i begge ender for å danne kroker. Ordne alle dissekere verktøy, saks, Sutur binde tang, mikro-saks hendig for bruk.
    Merk: Kroken delen bør være ca 3 mm lang. Jo lengre ledning (som ender i en krok) bør være ca 5 cm lang, og den kortere wire (også ender i en krok) bør være ca 1 cm lang for å passe de tilpassede kamre som brukes på BioCAT og gir mulighet for et tilstrekkelig utvalg av bevegelse for svinger armen.
  4. Koble til og slå på alt utstyret. Dette inkluderer en kombinert motor/kraft svinger, motor/styrke svinger kontrolleren en høyeffekts bi-phasic gjeldende stimulator, og en datamaskinstyrt datainnsamling/kontrollsystem.
    1. Slå på datainnsamlings systemet, og Kalibrer det før du begynner eksperimentet10. Kort kalibrering av kraften ved å legge til et sett av kjente vekter, som dekker opptil 50% av den maksimale kraften målt ved kraft svingeren i en lineær progresjon, på kraft svingeren og registrere utgangs spennings endringene. Kalibrere lengden ved å bruke et sett av kjente utgangsspenning til spaken armen og måle lengden endring av armen.
    2. Koble slangene fra den termiske blokken på prøve holderen til et kjøleskap som sirkulerer bad, og Still inn temperaturen for å opprettholde ønsket temperatur i kammeret til mellom 10 ° c og 40 ° c. Bestem dette empirisk forut for tiden ved å sette sirkulerende bad til en rekke temperaturer og måle temperaturen i kammeret med en Termo.

2. muskel forberedelse

  1. Euthanizing musa
    1. Euthanize musen av karbondioksid inhalasjon etterfulgt av cervical forvridning.
    2. Spray huden på bakdelen med kald ringer løsning for å hindre at håret blåser inn i preparatet. Fjern huden ved å klippe den bort rundt låret ved hjelp av fine disseksjon saks og raskt trekke huden ned med #5 tang for å avdekke musklene.
    3. Amputere bak benet og Overfør det til en dissekere rett som har blitt fylt med oxygenized ringer, og plasser deretter under et kikkert dissekere mikroskop.
  2. Klargjøre en soleus muskel
    1. Fest bak benet ned i dissekere parabolen med gastrocnemius muskelen vendt oppover. Skjær den fjerne sene av gastrocnemius/soleus muskel gruppe og løft musklene forsiktig og langsomt ved å skjære bort konseptet på hver side av gastrocnemius muskelen ved hjelp av fin saks. Isolere gastrocnemius/soleus muskel gruppe fra lem etter frigjøre proksimale sene av soleus muskelen.
    2. PIN muskelgruppen som inneholder gastrocnemius muskelen og den som er i ro ned i dissekere parabolen. Løft soleus muskelen forsiktig via proksimale sene og skille den fra gastrocnemius muskelen forlater så mye av soleus fjerne senen intakt som mulig.
  3. Klargjøre en extensor digitorium Longus (EDL) muskel
    1. Fest bak benet ned i dissekere parabolen med tibialispuls fremre muskelen vendt oppover. Skjær konseptet langs tibialispuls fremre (TA) muskelen og trekk det klart ved hjelp av tang. Identifiser og skjær den som ikke er i TA-muskelen. Løft TA muskelen og skjær den forsiktig ut uten å trekke på EDL muskelen.
    2. Skjær åpne den laterale siden av kneet og utsett de to sener. Skjær proksimale sene, etterlot så mye av senen som mulig fortsatt festet til muskelen, og løft EDL muskelen (midtre muskel) ved å forsiktig trekke senen. Skjær den sene senen når den utsettes.
  4. Montering av muskelen
    1. PIN ned muskelen via sener, og trim alle ekstra fett, konseptkjedene og sene bort så mye som mulig. Sett en sene inn i en pre-bundet knute og knytte Sutur tett med Sutur binde tang. Bind den andre knuten på rundt metall kroken.
    2. Gjenta samme prosedyre med den lange kroken på den andre enden av senen. Pass på at ingen av kroppen av muskelen er kontaktet av sting. Dette vil skade preparatet.
    3. Fest den korte kroken til bunnen av den eksperimentelle kammeret og den lange kroken til Dual Mode Force svinger/motor. Bubble løsningen i det eksperimentelle kammeret med 100% oksygen.
  5. Optimalisering av stimulering protokoller og muskel lengde
    1. Strekk muskelen ved å justere micromanipulators festet til transduseren/motoren for å generere en Baseline spenning mellom 15 til 20 mN før du finner den beste stimulans parametere. Sett stimulering spenning til 40 V. Stimulering strømmen økes systematisk til det ikke er ytterligere økning i twitch-kraft. Den høyeste strømmen som blir funnet, økes med ca. 50% for å sikre at aktiveringen blir maksimal.
    2. Finn den optimale lengden, L0, definert som muskel lengde som gir maksimal twitch-kraft, ved å øke muskel lengden og aktivere muskelen med en enkelt trekning til den aktive kraften (peak Force minus Baseline Force) stopper økende.
    3. Utfør en kort tetanic sammentrekning (1 s aktivering) for å teste montering og strekke muskelen tilbake til optimal Baseline kraft om nødvendig. Ta opp muskel lengde i mm med en digital tykkelse.

3. røntgen Diffraksjon

Merk: Følgende beskrivelse er for X-ray Diffraksjon eksperimenter gjort ved hjelp av liten vinkel X-ray Diffraksjon instrument på BioCAT beamline 18ID på Advanced Foton kilde, Argonne National Laboratory men lignende metoder kan være ansatt på andre beamlines som ID 02 på ESRF (Frankrike) og BL40XU på SPring8 (Japan). Beamline 18ID drives på en fast X-ray stråle energi av 12 keV (0,1033 NM bølgelengde) med en hendelse Flux på ~ 1013 fotoner per sekund i full stråle.

  1. Velg en prøve til detektor avstand (kamera lengde). Bruk en 1,8 meter lang kamera lengde for eksperimenter som undersøker 2,7 NM utgangen og høy orden myosin refleksjoner som 2,8 NM Meridional refleksjoner. Bruk en 4-6 m kamera for andre eksperimenter, hvor man er primært interessert i fine detaljer på Meridian og lag linjer
  2. Optimalisere plasseringen av prøven i strålen
    1. Bestem strålen posisjon ved hjelp av en bit av X-ray sensitiv papir som gir en mørk flekk som svar på røntgenstråler ("a Burn"). Deretter bruker en video Cross-Hair generator for å lage et kryss-hår på linje med brenne merke på papiret eller bare lage et merke på video skjermen med en markør penn.
    2. Bruk BioCAT leveres grafisk brukergrensesnitt til prøven positioner å flytte muskelen å være sentrert på strålen posisjon. Svinge prøven kammer på ~ 10-20 mm/s ved å flytte prøven scenen for å spre X-ray dose over muskelen under eksponering. Observer prøven som den beveger seg for å unngå store områder av konseptet (inneholder kollagen som vil forurense Diffraksjon mønstre) og for å sikre at den forblir opplyst under hele veien for sin reise.
      Merk: Det pressepenger av skritt krevde inne avsnitt 3,3 og 3,4 å vil få krevde innfatningene og aksjonene benytter det beamline-forsynte grafisk bruker grenseflate ville være beamline og merker spesifikk. Spør beamline personalet om hvordan du skal utføre disse operasjonene.
  3. Sette opp CCD (charge kombinert enhet) detektor for høy oppløsning mønstre fra muskel i definerte statiske tilstander (hvile, eller under Isometrisk sammentrekning)
    1. Sett opp eksponeringstid og eksponerings periode i det grafiske brukergrensesnittet til Kontrollprogramvaren. Ta et mørkt bakgrunnsbilde før du tar eksponering og gjenta denne prosedyren hver 2 timer eller etter endring av eksponeringstid å korrigere noen drift i detektoren avlesning elektronikk.
    2. Dempe røntgen strålen til ønsket verdi for eksponeringen. Så ta et bilde. Det er ikke mulig å ta sekvenser av bilder med denne detektoren. Det CCD merker likeledes nødvendig adskillige sekunder å lese ut en individ image.
  4. Sette opp pixel array Detector for et tids løst eksperiment
    1. Sett opp antall bilder, eksponeringstid, eksponerings periode i det grafiske brukergrensesnittet. Pixel array Detector brukes her trenger minst 1 MS til avlesning. Det maksimum rammen hyppigheten for Foton opptellingen merker er 500 Hz. Bruk signal signalet for Foton telling til å kontrollere røntgen lukkeren.
    2. Dempe strålen til ønsket intensitet. Bevæpne detektoren og vent på utløseren fra datainnsamlings systemet. Synkroniser mekaniske og røntgen data ved å utløse dem på samme tid. The X-ray mønstre er samlet kontinuerlig gjennom protokollen a med en 1 MS eksponeringstid og en 2 MS eksponerings periode.
      Merk: Den nøyaktige eksponeringstiden og eksponerings perioden bør fastsettes på et enkelt tilfelle for den ønskede informasjonen og den observerte levetiden til prøven i strålen. Dempe strålen for å bruke mer Røntgenstråle enn det som er nødvendig for å gi analyzable data i den valgte eksponerings perioden.

4. post-eksperiment muskel behandling

  1. Komme seg og veie muskelen etter hvert mekanisk og røntgen eksperiment. Beregn tverrsnitt av muskelen ved hjelp av målt muskel lengde og muskel massen11 forutsatt en muskel tetthet på 1,06 g/ml12.
  2. Strekk muskelen til den eksperimentelle lengden og fikse muskelen i 10% formalin i 10 min. Skill den faste muskelen i en rekke fiber bunter valgt fra steder i hele muskelen tverrsnitt3.
  3. Mål sarkomerlengde lengde ved hjelp av et video sarkomerlengde lengde målesystem.

Representative Results

Isometrisk tetanic sammentrekning. Enhver form for klassisk muskel mekanisk eksperiment, slik som isometrisk eller isoton sammentrekninger, kan utføres med samtidig oppkjøp av røntgen mønstre. Figur 1 A viser det eksperimentelle oppsettet for mekaniske og røntgen eksperimenter. Et eksempel Force Trace for en isometrisk tetanic sammentrekning er vist i figur 1B. Muskelen ble holdt på hvile for 0,5 s før aktivert for 1 s. Den mekaniske innspillingen stopper 1 s etter stimulans. X-ray mønstrene ble samlet kontinuerlig gjennom protokollen ved 1 MS eksponeringstid på 500 Hz.

X-ray Diffraksjon mønstre. Muskelen X-ray Diffraksjon mønster kan gi nanometer oppløsning strukturell informasjon fra strukturer inne i sarkomerlengde. Muscle X-ray Diffraksjon mønstre består av fire tilsvarende kvadranter delt på ekvator og Meridian. Ekvator mønsteret oppstår fra myofilamentdiameter pakking innenfor sarkomerlengde vinkelrett på fiber aksen, mens Meridional mønstrene rapporten strukturelle informasjon fra myofilaments langs muskelen aksen. De resterende refleksjoner ikke på ekvator eller Meridian kalles lag linjer. Lag linjer (f.eks. funksjoner merket MLL4 og ALL6 i figur 2A) stå opp fra den ca.-spiral arrangement av molekylær under enheter innenfor myosin inneholder tykke filamenter og utgangen inneholder tynne filamenter. De myosin lag linjene er sterke og skarpe i mønstre av hvile muskler (figur 2A), mens utgangen lag linjer er mer fremtredende i mønstre fra kontraktørselskaper muskel (figur 2B). Forskjellen mønstre oppnås ved å trekke hvile mønsteret fra kontrakts mønsteret (figur 2C) kan belyse strukturelle endringer under styrke utviklingen i sunn og syk muskel. Ved å følge disse strukturelle endringene på tidsskala for millisekunder for de molekylære hendelsene under muskel sammentrekning, kan X-ray-Diffraksjon mønstre avdekke betydelig strukturell informasjon (figur 2D).

Data analyse ved hjelp av MuscleX. Her er et eksempel på Ekvatorial Refleksjoner analyse ved hjelp av "ekvator" rutine i MuscleX pakken (Figur 3). MuscleX er en åpen kildekodeanalyse programvarepakke utviklet på BioCAT13. Den ekvator intensitet ratio (jeg1, 1/i1, 0) er en indikator på nærhet av myosin til utgangen i hvile muskelen (Figur 3A), mens det er nært korrelert til antall festet Cross-broer i kontraktørselskaper ( Figur 3B) murine Skjelettmuskel2. Intensiteten ratio, jeg1, 1/i1, 0, er ca 0,47 i hvile muskler og ca 1,2 i kontraktørselskaper muskel. Avstanden mellom de to 1, 0 refleksjon (2 * S1, 0) er omvendt knyttet til Inter-filament avstand. Detaljerte dokumentasjon og håndbøker for MuscleX er tilgjengelig på nettet13.

Figure 1
Figur 1 : Mekanisk og røntgen eksperiment oppsett og protokoll. (A) muskelen er montert på den ene enden til en krok inne i eksperimentell kammer og den andre enden til en dual-modus motor/kraft svinger. Den holdes mellom to Kapton film Vinduer for å la røntgenstråler passere gjennom. Kammeret er fylt med ringer ' s løsning perfusert med 100% oksygen gjennom hele eksperimentet. (B) den mekaniske protokollen for X-ray eksperimenter på en muskel under tetanic sammentrekning. Vennligst klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 2
Figur 2 : EDL X-ray Diffraksjon mønstre. EDL muskel X-ray Diffraksjon mønster fra hvile (A) og kontraktørselskaper (B) muskel. (C) forskjellen mønster mellom hvile og kontraktørselskaper mønster. Den blå regionen indikerer høy intensitet i hvile mønster, mens den gule regionen representerer høy intensitet i kontraktørselskaper mønster. (D) X-ray Diffraksjon mønster fra en 1 MS eksponering med EDL muskel. MLL1 = første bestilling myosin lag linje; MLL4 = fjerde ordre myosin lag linje; ALL1 = første bestilling utgangen lag linje ALL6 = sjette ordre utgangen lag linje; ALL7 = syvende ordre utgangen lag linje; TM = Tropomyosin refleksjon (indikert med en hvit boks); M3 = tredje bestilling Meridional refleksjon; M6 = sjette ordens Meridional refleksjon. Vennligst klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Figure 3
Figur 3 : Data analyse av ekvator mønstre ved hjelp MuscleX. Bakgrunnen trekkes ekvator intensitet ratio profil (mens området) og første fem ordre (grønne linjer) var skikket til å beregne intensiteten av hver topp. Vennligst klikk her for å se en større versjon av dette tallet.

Discussion

Nyere publikasjoner fra vår gruppe viste at røntgen mønstre fra musen skjelettmuskelen kan brukes til å belyse sarcomeric strukturelle informasjon fra muskel i helse og sykdom1,2,3 spesielt med den økte tilgjengeligheten av genetiske modifiserte musemodeller for ulike myopatier. Høyoppløselig mekaniske studier på enkelt fibre eller små bunter kombinert med røntgen Diffraksjon gjøres best av eksperter. Hvis imidlertid mer beskjeden mekanisk informasjon vil være tilstrekkelig for dine formål, gjør hele muskel forberedelser samling av detaljerte røntgen mønstre fra en enkel forberedelse.

En ren disseksjon er nøkkelen til en vellykket kombinert mekanisk og X-ray eksperiment. Det er svært viktig å ikke dra på målet muskelen samt andre muskler knyttet til soleus eller EDL musklene under disseksjon siden dette kan rive deler av muskelen og føre til redusert kraft. Det kan også føre til skadet indre struktur som vil forringe X-ray mønstre. Siden alt vil spre seg i X-ray strålen, er det viktig å rense bort noe ekstra fett, kollagen i konseptet, samt eventuelle hår eller løse biter av vev mens du gjør følgende protokoll. For å redusere ytterligere samsvar i muskel forberedelser, det er også viktig å sikkert knytte sener til krokene, så nær som mulig til muskel kroppen uten å skade den.

Ulike X-ray eksponeringstider kan gi ulike typer informasjon fra samme muskelen. Ved hjelp av full stråle på 18ID kan en analyzable ekvator fås i en 1 MS eksponering (se figur 2D). For en analyzable første myosin lag linje refleksjon, er en 10 MS totale eksponeringstid vanligvis nødvendig. For å samle høyere orden Meridional refleksjoner som M15 (2,8 NM myosin Meridional refleksjon) og 2,7 NM utgangen Meridional refleksjon, vanligvis minst 1 s total eksponering er nødvendig, men mer enn 2 s total eksponering anbefales for høy nøyaktighet Målinger.

Valget av den optimale røntgen detektoren for eksperimentet er viktig. For de mest detaljerte røntgen mønstre en tilpasset CCD-detektor, slik som den på BioCAT med ca. 40 μm piksler og ~ 65 μm punkt spredt funksjoner i fosfor, kan gi mønstre med høy dynamisk rekkevidde og god romlig oppløsning, men kan bare ta ett bilde av gangen. For tid løst eksperimenter, det Foton telling pixel array detektor på BioCAT kan samle røntgen mønstre på 500 Hz. The 172 μm pixel størrelse med denne detektoren, men gir ikke tilstrekkelig romlig oppløsning for detaljerte studier av indre del av Meridian, men er tilstrekkelig for de fleste andre formål. BioCAT ervervet en høy-resolution Foton opptellingen merker skaffer 75 μm virkelig resolution for maksimum rammen rate av 9 000 Hz. lignende detektorer av denne typen ventes å erstatte aktuelle detektorer for muskel studier i løpet av de neste årene.

Med den svært høye flukser av røntgenstråler på tredje generasjons synchrotrons, er strålings skade en alvorlig bekymring. Det er alltid et godt valg å dempe strålen til å levere noe mer stråle enn det som er nødvendig for å observere de ønskede Diffraksjon funksjoner. Den samme totale røntgen eksponeringen kan oppnås ved å forlenge eksponeringstiden fra en svekket stråle. En fordel av Foton telling pixel array detektorer er at enkelte rammer kan oppsummeres sammen med ingen støy straff. Selv da er strålings skade mulig. Tegn på stråling skader inkluderer dråpe maksimal kraft av sammentrekning, smøre av lag linje refleksjoner, selv endring av muskel farge.

En av begrensningene i intakt mus Skjelettmuskel forberedelser er vanskeligheten med å skaffe sarkomerlengde lengde fra intakt muskelen under eksperimentene. Musklene er for tykke for video mikroskopi og laser Diffraksjon. Mens med fremtidig utvikling kan det være mulig å anslå sarkomerlengde lengde direkte fra Diffraksjon mønstre14, i nær sikt det eneste alternativet er å måle den etter eksperimentet som beskrevet her.

Disclosures

Forfatterne erklærer at de ikke har noen konkurrerende finansielle interesser.

Acknowledgments

Denne forskningen anvendt ressursene av det avansert Foton kilde, en U.S. avdeling av energi (DOE) kontor av vitenskap bruker Letter operert for DOE kontor av vitenskap av Argonne nasjonal laboratorium under kontrakt nei. DE-AC02-06CH11357. Dette prosjektet ble støttet av stipend P41 GM103622 fra National Institute of General Medical Sciences i National Institutes of Health. Bruk av Pilatus 3 1M detektor ble levert av Grant 1S10OD018090-01 fra NIGMS. Innholdet er utelukkende ansvaret til forfatterne og reflekterer ikke nødvendigvis den offisielle synspunktene til National Institute of General Medical Sciences eller National Institutes of Health.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
#5 forceps WPI 500342
4/0 surgical suture Braintree Sci SUT-S 108
Aquarium air stone uxcell a regular air stone from a pet store would be fine
CaCl2 Sigma-Aldrich C5670
CCD detector Rayonix Inc MAR 165 CCD
Data acquisition system Aurora Scientific Inc 610A
Elastomer compound Dow Corning Sylgard 184
Glucose Sigma-Aldrich G8270
HEPES Sigma-Aldrich H3375
High resolution photon counting detector Dectris Inc EIGER X 500K
High-power bi-phasic current stimulator Aurora Scientific Inc 701
Iris Scissors WPI 501263-G
KCl Sigma-Aldrich P9541
MgSO4 Sigma-Aldrich M7506
Micro scissor WPI 503365
Motor/force transducer Aurora Scientific Inc 300C-LR
NaCl Sigma-Aldrich S9888
Petri dish Sigma-Aldrich CLS430167
Photon counting detector Dectris Inc Pilatus 3 1M
Stainless Steel wire McMaster-carr 8908K21
Suture Tying Forceps WPI 504498
Video sarcomere length measuring system Aurora Scientific Inc 900B

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Ma, W., et al. Thick-Filament Extensibility in Intact Skeletal Muscle. Biophysical Journal. 115 (8), 1580-1588 (2018).
  2. Ma, W., Gong, H., Irving, T. Myosin Head Configurations in Resting and Contracting Murine Skeletal Muscle. International Journal of Molecular Sciences. 19 (9), (2018).
  3. Kiss, B., et al. Nebulin stiffens the thin filament and augments cross-bridge interaction in skeletal muscle. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (41), 10369-10374 (2018).
  4. Ochala, J., Gokhin, D. S., Iwamoto, H., Fowler, V. M. Pointed-end capping by tropomodulin modulates actomyosin crossbridge formation in skeletal muscle fibers. Federation of American Societies for Experimental Biology Journal. 28 (1), 408-415 (2014).
  5. Lindqvist, J., Iwamoto, H., Blanco, G., Ochala, J. The fraction of strongly bound cross-bridges is increased in mice that carry the myopathy-linked myosin heavy chain mutation MYH4(L342Q). Disease Models & Mechanisms. 6 (3), 834-840 (2013).
  6. Huxley, H. E., Stewart, A., Sosa, H., Irving, T. X-ray diffraction measurements of the extensibility of actin and myosin filaments in contracting muscle. Biophysical Journal. 67 (6), 2411-2421 (1994).
  7. Wakabayashi, K., et al. X-ray diffraction evidence for the extensibility of actin and myosin filaments during muscle contraction. Biophysical Journal. 67 (6), 2422-2435 (1994).
  8. Anderson, R., et al. Mavacamten stabilizes a folded-back sequestered super-relaxed state of β-cardiac myosin. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. , (2018).
  9. National Research Council. Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. Guide for the care and use of laboratory animals. Institute for Laboratory Animal Research (U.S.) & National Academies Press (U.S.). , National Academies Press. (2011).
  10. Rand, C. How to Calibrate Your Dual-Mode Lever System Using DMC. , Available from: https://aurorascientific.com/how-to-calibrate-your-dual-mode-lever-system-using-dmc/ (2017).
  11. Alexander, R. M. V. A. The dimensions of knee and ankle muscles and the forces they exert. Journal of Human Movement Studies. 1, 115-123 (1975).
  12. Burkholder, T. J., Fingado, B., Baron, S., Lieber, R. L. Relationship between Muscle-Fiber Types and Sizes and Muscle Architectural Properties in the Mouse Hindlimb. Journal of Morphology. 221 (2), 177-190 (1994).
  13. Jiratrakanvong, J., et al. MuscleX: software suite for diffraction X-ray imaging V1.13.1. , (2018).
  14. Reconditi, M., et al. Myosin filament activation in the heart is tuned to the mechanical task. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (12), 3240-3245 (2017).

Tags

Utviklingsbiologi skjelettlidelser muskel X-ray Diffraksjon acto-myosin interaksjon sarkomerlengde struktur skjelettlidelser muskel myopati skjelettlidelser muskel fysiologi
X-ray Diffraksjon av intakt murine skjelettmuskulatur som et verktøy for å studere den strukturelle grunnlaget for muskel sykdom
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Ma, W., Irving, T. C. X-rayMore

Ma, W., Irving, T. C. X-ray Diffraction of Intact Murine Skeletal Muscle as a Tool for Studying the Structural Basis of Muscle Disease. J. Vis. Exp. (149), e59559, doi:10.3791/59559 (2019).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter