Summary
BSelex 方法用于识别和从人类外周血单核细胞中识别和回收单个抗原特异性抗体，将流式细胞学与单细胞 PCR 和克隆相结合。
Abstract
人体抗体表谱是潜在治疗抗体和有用生物标志物的一个尚未开发的来源。虽然当前的计算方法，如下一代测序（NGS），在序列水平上产生抗体表谱的大量数据，但需要功能数据来确定哪些序列与特定的抗原或一组相关抗原。在这里，我们描述了一种从人类献血者体内的外周血单核细胞（PBMC）识别和恢复单个抗原特异性抗体的方法。该方法利用成熟B细胞的初始富集，需要结合型板状细胞标记和荧光标记蛋白，通过流式细胞测定分离IgG记忆B细胞。然后克隆重链和轻链可变区域并重新筛选。虽然仅限于记忆B细胞室，但该方法利用流式细胞测量来询问数百万个B细胞，并返回单个细胞中配对的重链和轻链序列，格式可用于表达和确认特异性。用这种方法恢复的抗体可以考虑治疗潜力，但也可以将特异性和功能与生物信息学方法联系起来，以评估个体内的B细胞。
Introduction
抗体是治疗性分子的一类，任何人类现有的B细胞都是这种抗体的潜在来源。当从人类捐赠者身上恢复时，它们不需要适应或"人性化"，这是其他动物系统产生的抗体所需的步骤。存在几种鉴定和分离人类抗体的方法，包括B细胞活化和增殖1，通过EBV转化2、3和生成杂交瘤细胞系4永生 ， 5.然而，所有这些方法都需要广泛的细胞培养来筛选和恢复抗原特异性抗体。随着下一代测序（NGS）技术的发展，有关人类抗体谱系的信息得到了极大的扩展，从而能够识别供体样本中存在的大量单个序列。然而，由于NGS产生所有序列的不可知视图，它不允许识别和分离抗原特异性抗体，特别是在罕见或低频抗体的情况下。
"BSelex"方法的目的是从人类供体中循环的外周血单核细胞中识别抗原特异性抗体，并分离和恢复这些抗体的序列，以便进一步分析。该方法利用流细胞学和细胞分选利用在记忆B细胞表面表达的B细胞受体（BCR）。在启动低通量分子生物学方法之前，可以通过流式细胞测定法筛选数百万个B细胞，以进行抗原特异性。在大多数 NGS 方法中，无法对成重链和轻链进行识别，后者可批量分析细胞序列。在我们这里描述的方法中，细胞被单独分离，并且重链和轻链序列的成对恢复是可能的，这允许直接克隆和表达完整的IgG。
Protocol
使用人类志愿者的样本遵循了斯克里普斯研究所机构审查委员会批准的协议。献血前征得献血者知情同意。
1. 试剂制备
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外周血单核细胞
- 通过Ficoll-Plaque Plus分离，从正常人类捐献者中恢复外周血单核细胞。在90%胎儿牛血清（FBS）和10%二甲基亚硫酸盐（DMSO）中，在5000万细胞/mL下冷冻保存。将细胞冷冻在-80°C，并转移到液氮中长期储存。
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标记目标抗原肽进行分拣
- 使用终端生物锡生成或获得特定靶蛋白的肽（长达 70 个残留物）。
- 标签 4 nmol 每个单独的生物素化肽与链球蛋白共价附着在PE （R-phycoeryrin） 或APC （过敏素青霉素） 在单独的管中。使用9：1肽与链球菌蛋白（SA）的摩尔比制备，最终浓度约为3.2 μM，用于SA-PE和5.7 μM SA-APC。准备生物锡四联体作为负控制。
- 在4°C下，在黑暗中孵育每个肽混合物，缓慢混合。
- 通过含有聚丙烯酰胺珠子的微柱，去除未结合的荧光酸。
- 在4°C下储存肽四联体长达2个月。
2. 单元格排序
- 在CD22+隔离前至少1小时至16小时，解冻供体PBMC，并在37°C下休息。
- 从冰箱中取出冷冻的PBMC小瓶，并立即转移到37°C的水浴中。当小瓶几乎解冻时，转移到工作区。
- 将每个小瓶的含量转移到含有预热介质的50 mL管中（保持捐赠者分开）。将介质添加到 50 mL 的最终体积中。轻轻地混合内容。
- 在室温下以 370 x g离心 6 分钟。丢弃上清液，将细胞重新悬浮在 15 mL 的 RPMI 完整培养基中，并执行细胞计数。
- 使用 RPMI 完整培养基将细胞浓度调整到 2.0 x 107细胞/mL，并将细胞转移到 T75 烧瓶或更大，并在 37°C 孵育至少 1 小时和 16 小时，以便解冻细胞的恢复时间。
- 收集细胞（如果需要，汇集），在370 x g下在4°C下6分钟。丢弃上清液，在5 mL的冷MACS缓冲液（PBS，pH 7.6含有0.5%BSA和2 mM EDTA）中重新悬浮细胞，使用MACS缓冲液将细胞量提高到50 mL，并执行细胞计数。
- 在4°C下将细胞在400 x g下离心7分钟。
- 通过在CD22微珠上捕获，通过正选择分离CD22+B细胞。使用 MACS 缓冲液进行所有扫描。在 4°C 下计数和离心 400 x g 7 分钟。预期恢复率为PBMC总人口的5-10%。
- 以每mL FACS缓冲液4000万的悬浮细胞（Tris缓冲液，pH 8.0含有0.5%BSA和2 mM EDTA），并继续单独或作为池对捐赠者进行细胞染色。
- 用于记忆 B 细胞排序的染色细胞
- 移除用于细胞仪设置的细胞的等分，并补偿所使用的每个标记荧光道。将未染色的单元格作为控件。
- 计算获得的 CD22+细胞数的最终染色量（每 100 μL 染色 2 百万）。
- 根据制造商的稀释建议，为 B 细胞 （CD19-PerCP-Cy5.5）、IgG （IgG-FITC） 和存储室 （CD27-PECy7） 添加细胞外标记，并轻轻混合。将107个细胞放入1.5 mL管中进行负控制，并将剩余的细胞转移到15 mL管中。
- 将双标记生物素-SA四联体添加到负控制管中，最终浓度为 36 nM，PE 和 APC 乘以 SORT 管中的肽数，并通过 FACS 缓冲液（例如，10 个肽 x 36 nM=360 nM）将体积最终达到 0.5 mL。
- 将肽四联体加入PE和APC各36 nM的分拣管中，使用TBS缓冲液将细胞达到每100μL2x10 6。在黑暗中在4°C下孵育，温和旋转30-60分钟。
- 在4°C下洗2次，400 x g，7分钟，在最后一次洗涤前去除一个等分计数。使用 5 mL 滤帽管过滤电池。在分类之前将DAPI（4'，6-diamidino-2-phenylindole）染色添加到0.3 μM最终浓度中，作为细胞膜完整性的标志。
- 通过流式细胞测定进行单细胞分拣
- 准备 48 口 96 孔 PCR 板的孔进行分拣。
- 准备主混合物：每个样品（2 μL的10倍RT缓冲液，0.5μL的RNase抑制剂，7.5μL的无菌PCR级水）。每口井的10μL，盖上盖子，并储存在4°C，直到准备排序。
- 在单元分拣机上运行负控制，分析整个样本。
- 设置流式细胞测量门，以分离用于单细胞分选的相应细胞群。
- 绘制 FSC 区域与 SSC 区域，并将门 R1 设置为隔离淋巴细胞。
- 绘制 FSC 高度与 FSC 宽度，并将门 R3 设置为排除 FSC 双精度值。
- 绘制 SSC 高度与 SSC 宽度，并将门 R4 设置为排除 SSC 双精度值。
- 绘制 SSC 高度 vs DAPI 并设置门 R5 以隔离活细胞 （DAPI-）。
- 图 IgG vs CD19 并设置门 R6 以隔离 IgG+ B 细胞 （CD19+ IgG+）。
- 绘制 IgG vs CD27 并设置门 R7 以选择内存 B 单元 （CD27高）。
- 绘制抗原-PE （Ag-PE） 与抗原-APC （Ag-APC），并将门 R8 设置为 Ag-PE +/Ag-APC+象限，双正门中事件数量少。
- 设置流式细胞测量门，以分离用于单细胞分选的相应细胞群。
- 从抗原阳性（Ag+）样本中收集相同数量的内存细胞，以测定噪声信号。
- 将具有表型 CD19+ CD27+ Ag-PE+ Ag-APC+ （门 R8） 的单细胞分类到准备好的 96 孔 PCR 板中。
- 盖板与铝胶带垫，离心机1分钟，在400 x g，并储存在-80°C为未来的克隆。
- 准备 48 口 96 孔 PCR 板的孔进行分拣。
3. 单细胞克隆
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逆转录反应
- 从 80°C 中取出单个 B 细胞分拣板。在冰上解冻 2 分钟，在 3，300 x g下将板旋转 2 分钟，在打开之前将内容物汇集在井底。
- 准备一个dNTP/缓冲主混合物，以10%非离子洗涤剂和寡果（dT）作为反向底漆。加入酶混合到每个井包含单个细胞和不要混合。
- 在65°C下孵育5分钟。加入含有100mM DTT、RNase抑制剂和逆转录酶的酶主混合物，使总体积达到20μL。在50°C孵育10分钟，在80°C下孵育10分钟。
- 在开始 PCR 步骤之前转移到冰上
-
多步嵌套 PCR 反应
- 使用单独的嵌套 PCR 反应用于重链 （HC） 和轻链 （LC） 放大。
- 对于第一轮PCR扩增（步骤I），使用前引基和单个反向引水器池在单独的PCR反应中放大HC和LC可变区域（图2）。根据设计，前引体池将放大很大比例的生殖系引线（L）序列，反向引基特定于每个链的下游常量区域，包括光链16的kappa（+）和lambda（μ）。
- 使用 2.5 μL 的 cDNA 产物作为每个 PCR（步骤 I） 反应的模板。将引力添加到每个反应浓度为1μM的最终反应浓度中。将10倍聚合酶缓冲液加倍至2倍浓度，使最终体积达到每次反应25μL。使用 [94 °C/4 分钟;94°C /15 s、55 °C /20 s、68 °C/60 s;68°C/3 分钟] 运行 HC PCR 反应，进行 50 个循环。使用 [98 °C/4 分钟;98°C /15 s、72 °C /20 s、72 °C/60 s;72 °C/3 分钟] 运行 LC PCR 反应，进行 50 个循环。
- 使用步骤 I 产品的 2.5 μL 作为每个（步骤 II） PCR 反应的模板。加入特定于HC和LC（+和+）框架1区域的正向引物池，以及特定于每个抗体链的结区域的反向引物池。将10倍聚合酶缓冲液加倍至2倍浓度，并使用与步骤I相同的参数运行PCR反应50个周期。
- 在1%的甘蔗凝胶上运行已完成的PCR反应，以可视化正扩增命中。从同一细胞中恢复成对的放大器（重链和轻链），并通过凝胶提取进行分离。通过 OD260确定 DNA 片段浓度，以便进行准确的结扎混合计算。
- 使用商业试剂盒使用4片结扎反应，将回收的重链和轻链片段与链接器片段和表达向量主干相结合。
- 使用商业试剂盒将结扎反应转化为具有化学能力的细菌。一旦在抗生素板上镀上，在剩余的转化培养基中加入4 mL的生长介质（使用抗生素），并在250rpm下孵育37°C过夜。这就是"结扎混合文化"。
- 使用商业试剂盒从隔夜结扎混合培养物制备微型DNA，并确定产生的质粒DNA浓度。
4. ELISA屏幕确认抗原特异性
-
用阳离子脂基试剂将10μg的微型制备DNA转染成10mL的悬浮293细胞，在37°C（8%CO 2）下孵育3-4天，同时以125rpm旋转。对于收获，离心机培养10分钟在1000 x g和回收澄清介质。
- 通过与蛋白质 A 的亲和力测量上生子中的 IgG 浓度。
- 通过酶链接吸附测定（ELISA）对用于该排序的单个肽（在链球菌蛋白板上捕获或作为阴性对照物的活性剂）测试每个IgG（在上清液中）。使用山羊抗人过氧化物酶二级抗体对抗人类IgG Fab检测重组克隆。减去背景后，OD > 0.5 被定义为屏幕正极。
- 通过执行额外的 ELISA，使用 IgG 上清液稀释产生从每 mL 20 μg 开始的浓度曲线，以及针对初始屏幕 ELISA 中显示反应性的每个抗原针对 OD 绘制图解，确认屏幕正命中数。
Representative Results
该方法涵盖从人类捐赠者中分离抗原特异性抗体的多步骤过程。在此显示的代表性数据中，细胞用荧光标记肽池孵育，这些肽代表tau蛋白的几个不同领域，包括磷酸化肽，以模拟假定磷酸化位点。这些肽被用作"诱饵"，以识别与感兴趣的tau表皮反应的细胞。为了准备分拣，使用荧光标记的荧光标记组来识别富集B细胞群中的不同细胞群。设计了一系列细胞测量门来分离目标记忆B细胞（图1）。淋巴细胞被分离基于其细胞大小和粒度使用正向散射（FSC）和侧散射（SSC）图在流细胞学6，7。排除多个细胞（"双细胞"）和死细胞后，型型标记允许通过IgG、CD19（B细胞）和CD27（内存）分离IgG+记忆B细胞。在这种方法中，CD27标记不分布到两个离散群体，因此CD27的前45%和表达单元包含在最终门。最后，APC和PE荧光团的细胞双阳性分布到门控图的右上象限中，指示对两个标记版本的肽的反应。落在绘制门内的细胞被分离，并分类到96孔板的单个井。使用两个不同的标签使用抗原可提高信噪比，并减少随后分子生物学过程中的误报数。排序的细胞表示最终门中大约 0.1% 的内存 B 细胞，以及起始细胞样本的 0.001%。
单细胞克隆的第一次读出是确认各自重变链和轻变量链的扩增（图2）。由于需要两种放大器的成对恢复，PCR反应在agarose凝胶上并排评估，并从凝胶和提取的DNA片段中切除匹配的对。典型的放大效率是30-50%重链和50-70%轻（卡帕）链。配对的放大器的回收效率通常在 25-40% 之间。这些效率因供体池而异，代表性数据（图3）是24个单细胞（42%成对恢复）高效扩增的一个例子。在IgG克隆之后，IgG表达载体被转染成人类胚胎肾（HEK-293）悬浮细胞，用于最大化表达。使用无血清介质可减少重组抗体制备中的污染蛋白，并有助于将后续结合检测中的噪音降至最低。回收的抗体对原陶肽板进行筛选，并由ELISA进行反应性评分（图4）。OD = 高于背景0.5的初始阈值用于指示阳性抗原反应性，β-actin蛋白用作非特异性结合的控制。如果流式细胞学和分选步骤使用混合肽池，则筛选 ELISA 是去解回收 IgGs 特定反应的第一步。10个IgG测定中，有3种对磷酸化CBTAU22.1肽表现出反应性，1种对非磷酸化CBTAU27.1有反应（图4A）。使用相同重组抗体样本的浓度曲线对初始屏幕中识别的肽进行进一步确认，并添加一个肽作为阴性对照（图4B）。对于每个阳性命中，从转换后的池中分离出单个质粒克隆，并通过相同的 ELISA 方法重新确认。只显示了克隆34的数据，并且确认对非磷酸化CBTAU27.1的反应，同时用磷酸化27.1肽观察到较低的亲和结合（图4C）。
图 1：通过流式细胞测定分离抗原反应单细胞。（A） 图所示为淋巴细胞群包含在绘制门内的代表性图。（B） 基于正向和侧散射的盖茨（FSC 高度 v FSC 宽度 （R3）;SSC- 高度 v SSC 宽度 （R4）） 用于排除双精度值。在后续图中只计算绘制门内的单元格。DAPI+细胞被视为死亡和排除（R5）。在这个实验中，3.7 x 107"活"细胞被询问。大多数活细胞是B细胞（CD19 +），IgG+细胞（4.66%）与这个种群隔离 （R6）。CD27+表达记忆单元的前 43.2% 包含在选择门 （R7） 中。（C） 象限2 （Q2） 含有对两种标记抗原（肽-APC v 肽-PE）反应的细胞，这些细胞被单独分类并恢复到96孔板中。请点击此处查看此图的较大版本。
图 2：PCR扩增恢复IgG重变序列和光变量序列进行克隆。（A） 重 （VH） 和轻 （Vk 或 Vl） 链变量区域均使用嵌套 PCR 反应恢复。步骤 I 引源从本机引线序列向前放大，并从常量区域内反转。多个箭头表示 7-12 个引种之间的池，用于确保广泛覆盖可能的生殖系。步骤 II 引源是嵌套的，特定于变量开放读取帧的极端端，并将序列添加到与表达式向量中的相邻序列相同的放大器的两端。（B） 链接器由恒定光链（Ck 或 Cl）组成，后跟重链启动子和非原生信号肽序列。在步骤II PCR扩增过程中产生的重叠同源序列同时分离的扩增剂、链接器和质粒主干，并作为完整的质粒分离。最终表达载体中的重组重链和轻链由独立（和相同）CMV启动子驱动，并被翻译为单独的蛋白质。请点击此处查看此图的较大版本。
图 3：IgG重和轻可变链放大器从单个细胞中回收。嵌套 PCR 反应（步骤 II）直接加载到 1% 甘蔗糖凝胶上并可视化。同一细胞的重链（H）和卡帕轻链（L）PCR反应被加载到相邻的井中，因此很容易观察到成对的放大器。成功的重链和轻链产品分别为约400 bp和350 bp。成功恢复成对的放大器用 （*） 表示。请点击此处查看此图的较大版本。
图 4：抗原特异性通过重组IgGs得到确认。含有回收的重链和轻链序列的疟原虫被转染成HEK细胞进行表达。四天后，ELISA评估重组抗体的反应性。（A） 在澄清介质中的IgG浓度被测量并稀释至20微克/mL。用于分拣的肽池在链球蛋白板中每井40pmol单独评估。所有IgG在重复的井中测试。（B） 显示 OD450 测量值 >0.5 的克隆对屏幕中标识的肽使用 1：5 稀释步骤对克隆#32、#34、#35） 进行重新评估。（C） 一旦被确认为命中，从克隆中分离出单个质粒克隆#34转化的结扎、转染，并由ELISA重新确认。#32和#35克隆（未显示数据）也是如此。请点击此处查看此图的较大版本。
Discussion
这里介绍的方法结合了流细胞学和单细胞克隆，我们在这里描述的方法，我们基于以前由Tiller和同事11开发的方法。他们的工作描述了单克隆抗体的恢复和克隆，以研究人体在单个细胞水平上的B细胞。我们已经调整了它们过程的主要成分，以便从记忆B细胞群中恢复抗原特异性的单克隆抗体，包括多步扩增引物策略。主要的改性是添加标记的抗原"诱饵"。对已发布的协议作了其他调整，包括（但不限于）将克隆载体主干修改为单一表达质粒，对生殖系谱系进行额外的引种覆盖（引线序列和框架1），缓动HEK293细胞的转染，用于更高的表达，并在PCR扩增过程中使用高保真聚合系统。
对于此处描述的方法，最关键的步骤是接近流细胞测定和单细胞克隆之间的过渡。首先，将分类的单个细胞正确放入板中至关重要。在分拣器上正确设置放置延迟是一个关键步骤。还必须考虑到环境因素，如低湿度，因为我们发现，除非在目标排序板上使用静态喷枪，否则我们的回收效率会显著下降。在细胞放置后，板离心，以确保细胞接触井底的10μL缓冲液。所有这些措施对于分子生物学部分的成功至关重要。如果单个细胞的逆转录反应的条件不理想，则甚至β-actin的PCR扩增可能很困难。所呈现的方法的强度是能够对数百万个细胞进行询问，并且仅对与抗原反应性标准相匹配的细胞与选择的抗原进行分类。这要求信号噪声比尽可能高，这是在分拣前通过优化诱饵浓度来完成的。双标记诱饵用于减少假阳性细胞的回收，如果其中一个荧光团有高背景，则可能发生假阳性细胞的回收。使用多个抗原诱饵可以使信号：噪声优化更加困难，但同时询问多个肽的能力是这种方法的另一个好处。
当恢复效率较低时，使用一组嵌套 β-actin 引注来确认模板 cDNA 是否存在。这种方法的缺点是很难确定井中是否存在细胞或逆转录反应是否失败，使得故障排除变得困难。偶尔会发生相反的情况，效率高于预期。重链的典型回收率在30-45%之间，轻链较高，在40-60%之间。每个PCR反应（步骤I和II）使用50个周期从单个细胞放大。总循环次数大也使得这种方法容易受到污染。对安利康的序列分析可用于确定是否引入了污染物，或者已合法实现了异常高的回收率。
该方法对选择的抗原恢复原生人类抗体的效用有几个显著的局限性。首先，只有可标记的可溶性蛋白质才能用作流动细胞仪的"诱饵"。对于代表性结果中呈现的种类，我们使用了一系列来自tau蛋白的合成重叠肽，因为使用整个蛋白质证明是困难的。线性肽的使用可能不是最佳的，因为它可能会限制对非线性或结构表位抗体的识别。然而，我们能够识别几种针对tau的独特抗体，这些抗体目前正在进一步评估8，9。另一个限制是IgGs的分子生物学恢复和克隆的低通量。最初的分选策略允许筛选数百万个细胞，但随后的分子生物学处理由多个阶段组成。正在进行的优化工作，以纳入新技术，如吉布森组装10已经简化了几个步骤，但瓶颈仍然是克隆单个重链和轻链对。
"BSelex"方法利用在记忆B细胞表面表达的BCR来识别显示抗原反应的细胞，然后通过流式细胞测定11、12恢复这些单个细胞。由于这种对BCR的依赖，该方法仅限于记忆B细胞室，并且不捕获抗体分泌细胞（ASC），如血浆细胞。然而，与ASCs相比，这种方法可能有利于恢复更广泛的抗原特异性免疫球蛋白。流感疫苗接种研究表明，虽然反应性ASC可以由少量扩热B细胞克隆主导，但抗原特异性记忆B细胞群很少克隆12。T细胞表面的T细胞受体（TCR）在基因排列和重组中与B细胞受体相似，以最大化多样性。单细胞方法类似于这里介绍的方法，已经开发用于评估T细胞的表谱，包括α和β链的恢复和单细胞克隆13。然而，TCR识别需要由MHC分子呈现肽，为标记诱饵方法增加显著的复杂性，以识别肽特异性T细胞。与B细胞不同，T细胞不经过整个可变区域的亲和成熟，因此识别短CDR3区域和一些侧翼序列是识别和重组所需的全部。最后，该方法描述了使用流式细胞测定法识别IgG分子的方法，但也可以使用替代型型标记来识别不同等型的B细胞。
目前，正在开发一些方法，将下一代测序收集的大量数据与抗原特异性的功能分析联系起来，但这些方法仍在改进中。尽管存在局限性，但本文所述方法已用于识别具有潜在治疗价值的抗体，适用于传染性和非传染病8、14、15，并代表一种可靠的从人类中恢复相关抗原特异性IgG的方法，无需广泛操作B细胞或广泛的细胞培养。
Disclosures
作者没有什么可透露的
Acknowledgments
作者要感谢露西·查马斯、玛莎·科斯塔、朱莉·金、南希·埃雷迪亚和杰里米·马塞多对当前BSelex平台的许多方法修改和改进进行了广泛的测试。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| MoFlo Astrio EQ, Cell Sorter | MoFlo | cell sorting | |
| Biotinylated peptides | New England Peptide | Cell sorting "bait" | |
| Micro Bio-spin P30 gel column | BioRad | #7326223 | |
| Streptavidin (R-PE) | Thermo Scientific | SA10041 | |
| Streptavidin (APC) | Thermo Scientific | S32362 | |
| CD22 MicroBeads, human | Miltenyi | #130-046-401 | |
| LS columns | Miltenyi | #130-042-401 | |
| Pre separation filters | Miltenyi | #130-041-407 | |
| PerCp-Cy5.5 mouse anti-human CD19 | BD Biosciences | BD#340951 | |
| PE-Cy7 mouse anti-human CD27 | BD Biosciences | #560609 | |
| FITC mouse anti-human IgG | BD Biosciences | #560952 | |
| DAPI | Life Technologies | #D21490 | |
| RNaseOUT | Life Technologies | #10777-019 | |
| Bovine serum albumin, Fraction V | Sigma | #A4503 | |
| RPMI media | Hyclone | #SH30096.01 | |
| HI FBS (Fetal bovine serum) | Invitrogen | #10082147 | |
| Mastercycler Gradient | Eppendorf | Model #6325 | PCR machine |
| PCR 96-well plates | Phenix | MPS-500 | |
| PCR Plate mats | Phenix | SMX-PCR96 | |
| Advantage UltraPure PCR Deoxynucleotide Mix | Clontech | #639125 | |
| Superscript IV First-strand synthesis system | Invitrogen | #18091050 | |
| Phusion High Fidelity Polymerase | Thermo Scientific | F-531-L | |
| Platinum polymerase | Invitrogen | #10966108 | |
| Nuclease-free water | QIAGEN | #129114 | |
| Oligonucleotide primers | IDT | assorted | Primers for all PCR steps |
| Gel Extraction Kit | QIAGEN | #28706 | |
| PCR Purification kit | QIAGEN | #28106 | |
| Miniprep Kit | QIAGEN | #27106 | |
| NEBuilder HiFi DNA Assembly Cloning Kit | New England Biolabs | E5520S | Gibson assembly |
| Expi293 Expression Media | Invitrogen | #A14351-01 | |
| ExpiFectamine 293 Transfection Kit | Invitrogen | #A14525 | |
| Opti-MEM Media | Invitrogen | #31985070 | |
| CO2 incubator (Multitron) | |||
| Octet RED384 System | Pall/ Forte Bio | ||
| Pierce Streptavidin Coated High Binding Capacity Clear 96-well Plates | Thermo Scientific | #15500 | |
| Corning Costar 96-well Polystyrene Plate High Binding Half Area | Corning | #3690 | |
| Goat Anti-human IgG Fab Secondary Antibody | Jackson Labs | #109-036-097 | |
| Goat Anti-mouse HRP Secondary Antibody | Jackson Labs | #115-035-072 | |
| SureBlueTM TMB Microwell Peroxidase Substrate (1-Component) | KPL | #52-00-03 | |
| TMB Stop Solution | KPL | #50-85-06 |
References
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