Farelerde Tam Traneksiyon Tipi Spinal Kord Yaralanması İndüksiyonu
Summary
Bu protokol, fare modelinde stabil traneksiyon tipi omurilik yaralanmasıinin indüksiyonu için hassas bir laminektominin nasıl oluşturulacak larını, omurilik yaralanması araştırmaları için en az ikincil hasarın nasıl yaratılabildiğini açıklamaktadır.
Abstract
Omurilik yaralanması (SCI) büyük ölçüde geri dönüşümsüz ve kalıcı fonksiyon kaybına yol açar, en sık travma sonucu. SCI’den kaynaklanan zayıflatıcı engellerin üstesinden gelmek için hücre nakli yöntemleri gibi çeşitli tedavi seçenekleri araştırılmaktadır. Klinik öncesi hayvan çalışmalarının çoğu SCI’nin kemirgen modellerinde yapılmaktadır. SCI’nin fare modelleri yaygın olarak kullanılırken, fare modelleri fare modelleri fare modellerine göre önemli avantajlara sahip olsa da, fare modelleri daha az dikkat çekilmiştir. Farelerin küçük boyutu sıçanlar için daha düşük hayvan bakım maliyetleri eşittir, ve çok sayıda transgenik fare modellerinin durumu çalışmaların birçok türü için avantajlıdır. Hayvanlarda tekrarlanabilir ve hassas yaralanma indükleyen SCI araştırma için birincil sorundur, hangi küçük kemirgenler yüksek hassasiyetli cerrahi gerektirir. Tradineksiyon tipi yaralanma modeli transplantasyon tabanlı terapötik araştırmalar için son on yılda yaygın olarak kullanılan bir yaralanma modeli olmuştur, ancak farelerde tam bir trasezaryen tipi yaralanma yayılımı için standart bir yöntem bulunmamaktadır. Torasik vertebral düzey 10 (T10) düzeyinde C57BL/6 farelerinde tam bir traneksiyon tipi yaralanmaya neden olmak için cerrahi protokol geliştirdik. Prosedür tam lamina kaldırmak için rongeurs yerine küçük bir ucu matkap kullanır, sonra yuvarlak kesme kenarı ile ince bir bıçak omurilik tradeksi neden kullanılır. Bu yöntem, küçük kemirgenlerde minimal kollateral kas ve kemik hasarı olan reprodüktöbl transection tipi yaralanmalara yol açar ve bu nedenle özellikle davranışsal fonksiyonel sonuçların analiz edildiği şaşırtıcı faktörleri en aza indirir.
Introduction
Omurilik yaralanması (SCI) sağlık ve yaşam tarzı köklü değişikliklere neden karmaşık bir tıbbi sorundur. SCI için bir tedavi yoktur ve SCI patofizyolojisi iyice anlaşılamamıştır. Hayvan SCI modelleri, özellikle kemirgen modelleri, yeni tedaviler deneme için paha biçilmez bir araç sunuyoruz, ve yıllardır SCI keşfetmek için kullanılmıştır. Bugüne kadar, pre-klinik SCI çalışmaların% 72 üzerinde fare modelleri istihdam var, fareler1kullanmış sadece% 16 ile karşılaştırıldığında. Sıçanlar, daha büyük boyutları ve insan SCI’lerine benzer boşluklar oluşturma eğilimleri nedeniyle, geleneksel olarak yeni tedavi yaklaşımlarını incelemek için tercih edilen model hayvanlar olmalarına rağmen, fareler (birçok transgenik fare modeli de dahil olmak üzere) sci2’ninhücresel ve moleküler mekanizmalarını incelemek için daha sık kullanılmaktadır. Fare modeli daha kolay kullanım, daha hızlı üreme oranları ve sıçanlara göre daha düşük maliyetler açısından ek faydalar sunar; fareler de insanlar ile genomik benzerlik yüksek derecedesergilemek 1,2,3. Fare modelinin en büyük dezavantajı, omurilik yaralanmalarının oluşturulması ve tedavisi için cerrahi müdahaleler için zorluklar yaratan önemli ölçüde daha küçük boyut olarak tanımlanmıştır4,5.
Mevcut literatürde fare modelinde kararlı SCI’yi tetiklemek için sağlam ve tekrarlanabilir bir cerrahi protokole duyulan ihtiyacı vurgulayan bir boşluk vardır. Bu nedenle bu sınırlamaların üstesinden gelmek için bu protokolde yeni ve kesin bir cerrahi yaklaşım salıyoruz. Bu protokol farelerde bir trazeksiyon tipi yaralanma neden derinlemesine kurallar sağlar, Bu yaralanma türü bir yaralanma aşağıdaki rejeneratif ve dejeneratif değişiklikleri incelemek için en uygun olarak kabul edilmiştir6, yanı sıra nöroplasti, nöral devre ve doku mühendisliği yaklaşımları7. Torasik düzey SCIliteratürdeen sık kullanıldığından, alt torasik bölgede yaralanmayı tetiklemeyi seçtik.
Protocol
Representative Results
Discussion
Bu yöntem farelerde T10 vertebra düzeyinde tam bir trazeksiyon tipi yaralanmaya neden olur, bu da hayvanın tam paraplejiile sonuçlandığı yaralanma seviyesinin altında. Genel olarak, bu yöntem minimal kanama, ihmal edilebilir ikincil hasar ve stabil, tekrarlanabilir yaralanma ile sonuçlanır. Laminektomi10olmadan traneksiyon daha önce yayınlanmış yöntemlere göre, Bu yöntem omurga eğriliği manipüle etmeden doğrudan görüntüleme açısından yararları sunuyor, yaralanma bütü…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Bu çalışma, Griffith Üniversitesi Uluslararası Öğrencisi (PhD) tarafından RR’ye, Perry Cross Foundation Grant to JE ve JSJ’ye, Clem Jones Vakfı Hibesi jsj ve JE’ye ve Queensland’ın JSJ ve JE’ye verdiği Motor Kazası Sigorta Komisyonu’na destek lenmiştir.
Materials
| Baytril injectable 50 mg/mL, 50 mL | Provet | BAYT I | Post-operative care drug |
| Betadine 500 mL | Provet | BETA AS | Consumable |
| Castroviejo needle holder, locking | ProSciTech | T149C | Reusable |
| Ceramic zirconia blade, round with sharp sides, single edge, angled | ProSciTech | TXD101A-X | Reusable |
| Cotton swabs (5pcs) | Multigate | 21-893 | Consumable |
| Dremel Micro | DREMEL | 8050-N/18 | Cordless rotary tool |
| Dressing forceps fine | Multigate | 06-306 | Single use disposable |
| Drill bits | Kemmer Präzision | SM 32 M 0550 070 | Reusable |
| Dumont #7b forceps | Fine Science Tools | 11270-20 | Reusable |
| Dumont tweezers, style 5 | ProSciTech | T05-822 | Reusable |
| Fur trimmer | WAHL | WA9884-312 | Zero Overlap Hair Trimmer |
| Iris scissors, Ti, sharp tips, straight, 90mm | ProSciTech | TY-3032 | Reusable |
| Isoflurane isothesia NXT 250 | Provet | ISOF 00 HS | Anaesthetic agent |
| Colibri Retractor – 4cm | Fine Science Tools | 17000-04 | Reusable |
| Scalpel handle | ProSciTech | T133 | Reusable |
| Signature latex surgical gloves size 7.5 | Medline | MSG5475 | Consumable |
| Sodium Chloride 0.9% | STS | PHA19042005 | Consumable |
| Sterile Dressing Pack | Multigate | 08-709 | Single use disposable |
| Sterile Fluid Impervious Drape 60×60 cm | Multigate | 29-220 | Single use disposable |
| Surgical spirit 100 mL | Provet | # SURG SP | Consumable |
| Suture Material – SILK BLK 45CM 5/0 FS-2 | Johnson & Johnson Medical | 682G | Silk Suture |
| Suture Material – Vicryl 70CM 5-0 S/A FS-2 | Johnson & Johnson Medical | VCP421H | Vicryl Suture |
| Temgesic 0.3 mg in 1 mL, x 5 ampoules (class S8 drug) | Provet | TEMG I | Post-operative care drug |
References
- Sharif-Alhoseini, M., et al. Animal models of spinal cord injury: a systematic review. Spinal Cord. 55 (8), 714-721 (2017).
- Lee, D. H., Lee, J. K. Animal models of axon regeneration after spinal cord injury. Neuroscience Bulletin. 29 (4), 436-444 (2013).
- Sharif-Alhoseini, M., Rahimi-Movaghar, V., Dionyssiotis, Y. . Topics in Paraplegia. , (2014).
- Talac, R., et al. Animal models of spinal cord injury for evaluation of tissue engineering treatment strategies. Biomaterials. 25 (9), 1505-1510 (2004).
- Nakae, A., et al. The animal model of spinal cord injury as an experimental pain model. Journal of Biomedicine & Biotechnology. 2011, 939023 (2011).
- Kwon, B., Oxland, T., Tetzlaff, W. Animal models used in spinal cord regeneration research. Spine. 27, 1504-1510 (2002).
- Kundi, S., Bicknell, R., Ahmed, Z. Spinal cord injury: current mammalian models. American Journal of Neuroscience. (4), 1-12 (2013).
- Harrison, M., et al. Vertebral landmarks for the identification of spinal cord segments in the mouse. Neuroimage. 68, 22-29 (2013).
- Basso, D. M., et al. Basso Mouse Scale for locomotion detects differences in recovery after spinal cord injury in five common mouse strains. Journal of Neurotrauma. 23 (5), 635-659 (2006).
- Seitz, A., Aglow, E., Heber-Katz, E. Recovery from spinal cord injury: a new transection model in the C57Bl/6 mouse. Journal of Neuroscience Research. 67 (3), 337-345 (2002).
