Summary

सिस्टिक फाइब्रोसिस ज़ेब्राफ़िश भ्रूण में स्यूडोमोनास एरुगिनोसा संक्रमण का प्रतिकार करने के लिए फेज थेरेपी आवेदन

Published: May 12, 2020
doi:

Summary

यहां प्रस्तुत सिस्टिक फाइब्रोसिस (CF) जेब्राफिश भ्रूण में स्यूडोमोनास एरुगिनोसा संक्रमण और फेज थेरेपी आवेदन के लिए एक प्रोटोकॉल है।

Abstract

रोगाणुरोधी प्रतिरोध, नैदानिक अनिश्चितता और रोगाणुरोधी अतिप्रिस्क्रिप्शन का एक प्रमुख परिणाम है, हमारे समाज और स्वास्थ्य प्रणाली पर एक बड़ा प्रभाव के साथ दुनिया भर में गंभीर संक्रमण, जटिलताओं और मृत्यु दर का एक तेजी से मान्यता प्राप्त कारण है। विशेष रूप से, सिस्टिक फाइब्रोसिस (सीएफ) जैसे छेड़छाड़ प्रतिरक्षा प्रणालियों या पूर्व-मौजूदा और पुरानी विकृतियों वाले रोगियों को मल्टीड्रग प्रतिरोधी आइसोले की उपस्थिति और प्रसार के साथ संक्रमण को नियंत्रित करने के लिए लगातार एंटीबायोटिक उपचार के अधीन किया जाता है। इसलिए, जीवाणु संक्रमण का प्रतिकार करने के लिए वैकल्पिक उपचारों को संबोधित करने की तत्काल आवश्यकता है । बैक्टीरियोफेज का उपयोग, बैक्टीरिया के प्राकृतिक दुश्मन, एक संभावित समाधान हो सकता है। इस काम में विस्तृत प्रोटोकॉल सीएफ जेब्राफिश भ्रूण में स्यूडोमोनास एरुगिनोसा संक्रमण के खिलाफ फाज थेरेपी के आवेदन का वर्णन करता है। ज़ेब्राफ़िश भ्रूण पी एरुगिनोसा से संक्रमित थे ताकि यह प्रदर्शित किया जा सके कि फेज थेरेपी पी एरुगिनोसा संक्रमणों के खिलाफ प्रभावी है क्योंकि यह सीएफ भ्रूण में घातकता, बैक्टीरियल बोझ और समर्थक भड़काऊ प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया को कम करता है।

Introduction

फेज थेरेपी, बैक्टीरिया संक्रमण से लड़ने के लिए बैक्टीरिया के प्राकृतिक दुश्मनों का उपयोग, एंटीबायोटिक दवाओं के लिए जीवाणु प्रतिरोध के रूप में नए सिरे से रुचि जुटाने है1,,2। पूर्वी यूरोप में दशकों से उपयोग की जाने वाली इस चिकित्सा को सीएफ के रोगियों में फेफड़ों के संक्रमण के इलाज में एंटीबायोटिक दवाओं के लिए एक पूरक उपचार माना जा सकता है और बैक्टीरिया से संक्रमित रोगियों के लिए एक संभावित चिकित्सीय विकल्प माना जा सकता है जो वर्तमान में उपयोग एंटीबायोटिक दवाओं में सभी के लिए प्रतिरोधी हैं2,,3। एंटीबायोटिक थेरेपी के फायदे यह हैं कि बैक्टीरियोफेज संक्रमण स्थल पर गुणा करते हैं, जबकि एंटीबायोटिक्स मेटाबोलाइज्ड होते हैं और शरीर से समाप्त हो जाते हैं4,,5। दरअसल , विभिन्न प्रयोगशालाओं में अलग – थलग पड़े उग्र फैज के कॉकटेल का प्रशासन पशु मॉडलों में स्यूडोमोनास एरुगिनोसा संक्रमण को कीटों और स्तनधारियोंके,7,रूप में अलग करने में कारगर साबित हुआहै। फेज थेरेपी को भी दिखाया गया कि पी एरुगिनोसा और एस्चेरिचिया कोलाई से संक्रमित जले घावों में बैक्टीरियल बोझ को कम करने में सक्षम होनाचाहिए

जेब्राफिश(डैनियो रेरियो)हाल ही में पी एरुगिनोसा10, 11, माइकोबैक्टीरियम फोड़ा और बर्कोल्डेरिया सेपैसिया,12,,13सहित कई रोगजनकों के साथ संक्रमण का अध्ययन करने के लिए एक मूल्यवान मॉडल के रूप मेंउभराहै। बैक्टीरिया को सीधे भ्रूण रक्त परिसंचरण में माइक्रोजेक्ट करके14 एक प्रणालीगत संक्रमण स्थापित करना आसान है जो जेब्राफिश जन्मजात प्रतिरक्षा प्रणाली द्वारा प्रतिकार किया जाता है, जो मानव समकक्ष के समान न्यूट्रोफिल और मैक्रोफेज पीढ़ी के साथ संरक्षित विकासवादी है। इसके अलावा, जीवन के पहले महीने के दौरान, जेब्राफिश भ्रूण में अनुकूली प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया की कमी होती है, जिससे उन्हें जन्मजात प्रतिरक्षा का अध्ययन करने के लिए आदर्श मॉडल बनाया जाता है, जो मानव फेफड़ों के संक्रमण15में महत्वपूर्ण रक्षा तंत्र है। जेब्राफिश हाल ही में सीएफ की शुरुआत को बेहतर ढंग से समझने और 10 , 16,17को नए औषधीय उपचार विकसित करने के लिए एक शक्तिशाली आनुवंशिक मॉडल प्रणाली के रूप में16,उभरा। जेब्राफिश में मॉर्फोलिनो इंजेक्शन के साथ उत्पन्न सीएफटीआर नॉक-डाउन के सीएफ जेब्राफिश मॉडल ने एक गीला श्वसन फट प्रतिक्रिया और कम न्यूट्रोफिल माइग्रेशन10प्रस्तुत किया, जबकि सीएफटीआर नॉक आउट से आंतरिक अंग की स्थिति बिगड़ी हुई होती है और एक्सोक्रिन अग्न्याशय का विनाश होता है, जो मानव रोग16,,17को प्रतिबिंबित करता है। सबसे बड़ी रुचि यह थी कि पी एरुगिनोसा बैक्टीरियल बोझ 8 घंटे बाद संक्रमण (एचपीआई) पर नियंत्रण की तुलना में cftr-हानि-कार्योंमें काफी अधिक था, जो चूहों और मानव ब्रोंकियल एपिथेलियल कोशिकाओं2,,18के साथ प्राप्त परिणामों को समानताएं देता है।

इस काम में, हम प्रदर्शित करते हैं कि फेएज थेरेपी जेब्राफिश भ्रूण में पी एरुगिनोसा संक्रमण के खिलाफ प्रभावी है।

Protocol

एबी स्ट्रेन (यूरोपीय ज़ेब्राफिश रिसोर्स सेंटर ईजेडआरसी) से वयस्क जेब्राफिश(डैनियो रेरियो)को वैज्ञानिक उद्देश्यों के लिए उपयोग किए जाने वाले जानवरों की सुरक्षा पर अंतरराष्ट्रीय (यूरोपीय संघ के न?…

Representative Results

परिणाम और यहां प्रस्तुत आंकड़े CF cftr morpholinos के इंजेक्शन के माध्यम से उत्पन्न भ्रूण के रूप में पहले10 और चरण 5 में वर्णित करने के लिए भेजा जाता है । CF फेनोटाइप को मान्य करने के लिए, हृदय, यकृत और अग्न?…

Discussion

इस पांडुलिपि में, हमने जेब्राफिश भ्रूण में पी एरुगिनोसा (PAO1) संक्रमण करने के लिए प्रोटोकॉल का वर्णन किया और इसे हल करने के लिए PAO1 को संक्रमित करने में सक्षम के रूप में पहचाने गए पहले फेज के कॉकटेल के सा?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम को इतालवी सिस्टिक फाइब्रोसिस फाउंडेशन (एफएफसी #22/2017) द्वारा समर्थित किया गया था; एसोसियाज़िओन “ग्ली एमिकी डेला रिट्टी” कैस्निगो और एफएफसी #23/2019; पियू ओनलस ला मनो टेसा ओनलस में संयुक्त राष्ट्र रेस्पेरो)।

Materials

Bacto Agar BD 214010
Calcium chloride Sigma-Aldrich 10043-52-4
CsCl Sigma-Aldrich 289329
Dulbecco's phospate buffered saline PBS Sigma-Aldrich D8537
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate Sigma-Aldrich 886-86-2 common name tricaine
Femtojet Micromanipulator Eppendorf 5247
Fleming/brown P-97 Sutter Instrument Company P-97
LE-Agarose Sigma-Aldrich 11685660001
Low Melting Agarose Sigma-Aldrich CAS 9012-36-6
Magnesium sulfate Sigma-Aldrich 7487-88-9
Methyl Blue Sigma-Aldrich 28983-56-4
Microinjection needles Harvard apparatus
N-Phenylthiourea >=98% Aldrich-P7629 103-85-5
Oligo Morpholino Gene Tools designed by the researcher
PEG6000 Calbiochem 528877
Phenol Red Solution Sigma-Aldrich CAS 143-74-B
Potassium chloride Sigma-Aldrich 7447-40-7
Pronase Sigma-Aldrich 9036-06-0
Sodium chloride ACS reagent, ≥99.0% Sigma-Aldrich S9888
Stereomicroscope Leica S9I
Tris HCl Sigma-Aldrich T5941
Triton X Sigma-Aldrich T9284
Tryptone Oxoid LP0042B
Yeast extract Oxoid LP0021B
Z-MOLDS Microinjection Word Precision Instruments

References

  1. Cisek, A. A., Dąbrowska, I., Gregorczyk, K. P., Wyżewski, Z. Phage Therapy in Bacterial Infections Treatment: One Hundred Years After the Discovery of Bacteriophages. Current Microbiology. 74 (2), 277-283 (2017).
  2. Trend, S., Fonceca, A. M., Ditcham, W. G., Kicic, A., Cf, A. The potential of phage therapy in cystic fibrosis: Essential human-bacterial-phage interactions and delivery considerations for use in Pseudomonas aeruginosa-infected airways. Journal of Cystic Fibrosis. 16 (6), 663-667 (2017).
  3. Pacios, O., et al. Strategies to combat multidrug-resistant and persistent infectious diseases. Antibiotics. 9 (2), 65 (2020).
  4. Dubos, R. J., Straus, J. H., Pierce, C. The multiplication of bacteriophage in vivo and its protective effect against an experimental infection with shigella dysenteriae. Journal of Experimental Medicine. 78 (3), 161-168 (1943).
  5. Marza, J. A. S., Soothill, J. S., Boydell, P., Collyns, T. A. Multiplication of therapeutically administered bacteriophages in Pseudomonas aeruginosa infected patients. Burns. 32 (5), 644-656 (2006).
  6. Heo, Y. J., et al. Antibacterial efficacy of phages against Pseudomonas aeruginosa infections in mice and Drosophila melanogaster. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. , 01646 (2009).
  7. McVay, C. S., Velásquez, M., Fralick, J. A. Phage therapy of Pseudomonas aeruginosa infection in a mouse burn wound model. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. , 01028 (2007).
  8. Forti, F., et al. Design of a broad-range bacteriophage cocktail that reduces Pseudomonas aeruginosa biofilms and treats acute infections in two animal models. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. , 02573 (2018).
  9. Jault, P., et al. Efficacy and tolerability of a cocktail of bacteriophages to treat burn wounds infected by Pseudomonas aeruginosa (PhagoBurn): a randomised, controlled, double-blind phase 1/2 trial. Lancet Infectious Diseases. 19 (1), 35-45 (2019).
  10. Phennicie, R. T., Sullivan, M. J., Singer, J. T., Yoder, J. A., Kim, C. H. Specific resistance to Pseudomonas aeruginosa infection in zebrafish is mediated by the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator. Infections and Immunity. 78, 4542-4550 (2010).
  11. Clatworthy, A. E., et al. Pseudomonas aeruginosa infection of zebrafish involves both host and pathogen determinants. Infections and Immunity. 77, 1293-1303 (2009).
  12. Bernut, A., et al. CFTR Protects against Mycobacterium abscessus Infection by Fine-Tuning Host Oxidative Defenses. Cell Reports. 26 (7), 1828-1840 (2019).
  13. Semler, D. D., Goudie, A. D., Finlay, W. H., Dennis, J. J. Aerosol phage therapy efficacy in Burkholderia cepacia complex respiratory infections. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. , 02388 (2014).
  14. Benard, E. L., et al. Infection of zebrafish embryos with intracellular bacterial pathogens. Journal of Visualized Experiments. (61), e3781 (2012).
  15. Doring, G., Gulbins, E. Cystic fibrosis and innate immunity: how chloride channel mutations provoke lung disease. Cellular Microbiology. 11, 208-216 (2009).
  16. Navis, A., Bagnat, M. Loss of cftr function leads to pancreatic destruction in larval zebrafish. Developmental Biology. 399, 237-248 (2015).
  17. Navis, A., Marjoram, L., Bagnat, M. Cftr controls lumen expansion and function of Kupffer’s vesicle in zebrafish. Development. 140, 1703-1712 (2013).
  18. Balloy, V., et al. Normal and cystic fibrosis human bronchial epithelial cells infected with Pseudomonas aeruginosa exhibit distinct gene activation patterns. PLoS One. 10, 0140979 (2015).
  19. Cafora, M., et al. Phage therapy against Pseudomonas aeruginosa infections in a cystic fibrosis zebrafish model. Science Reports. 9, 1527 (2019).
  20. Hershey, A. D., Kalmanson, G. M., Bronfenbrenner, J. Quantitative methods in the study of the phage-antiphage reaction. Journal of Immunology. 46, 267-279 (1943).
  21. Kimmel, C., Ballard, W., Kimmel, S., Ullmann, B., Schilling, T. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental Dynamics. 203, 253-310 (1995).
  22. Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. Microinjection of zebrafish embryos to analyze gene function. Journal of Visualized Experiments. (25), e1115 (2009).
  23. Traver, D., et al. The Zebrafish as a Model Organism to Study Development of the Immune System. Advances in Immunology. 81, 253-330 (2003).

Play Video

Cite This Article
Cafora, M., Forti, F., Briani, F., Ghisotti, D., Pistocchi, A. Phage Therapy Application to Counteract Pseudomonas aeruginosa Infection in Cystic Fibrosis Zebrafish Embryos. J. Vis. Exp. (159), e61275, doi:10.3791/61275 (2020).

View Video