Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

Een verbeterde chemotaxistest voor de snelle identificatie van rhizobacteriële chemoattractanten in wortelexsudaten

Published: March 25, 2022 doi: 10.3791/63249

Summary

Hier presenteren we een verbeterd chemotaxis-testprotocol. Het doel van dit protocol is om de stappen en kosten van traditionele bacteriële chemotaxismethoden te verminderen en te dienen als een waardevolle bron voor het begrijpen van plant-microbe interacties.

Abstract

Chemotaxis identificatie is erg belangrijk voor het onderzoek en de toepassing van rhizosfeer groeibevorderende bacteriën. We hebben een eenvoudige methode ontwikkeld om snel de chemoattractanten te identificeren die de chemotactische beweging van rhizosfeergroeibevorderende bacteriën op steriele glazen dia's via eenvoudige stappen kunnen induceren. Bacterieoplossing (OD600 = 0,5) en steriele chemoattractante waterige oplossing werden druppelsgewijs op de glasplaat toegevoegd met een interval van 1 cm. Een inentingslus werd gebruikt om de chemoattractante waterige oplossing met de bacteriële oplossing te verbinden. De glijbaan werd 20 minuten op kamertemperatuur gehouden op de schone bank. Ten slotte werd de chemoattractante waterige oplossing verzameld voor bacterieel tellen en microscopische observatie. In deze studie, door middel van meerdere vergelijkingen van experimentele resultaten, overwon de methode meerdere tekortkomingen van traditionele bacteriële chemotaxismethoden. De methode verminderde de fout van het tellen van platen en verkortte de experimentele cyclus. Voor de identificatie van chemoattractante stoffen kan deze nieuwe methode 2-3 dagen besparen in vergelijking met de traditionele methode. Bovendien stelt deze methode elke onderzoeker in staat om systematisch een bacterieel chemotaxis-experiment binnen 1-2 dagen te voltooien. Het protocol kan worden beschouwd als een waardevolle bron voor het begrijpen van plant-microbe interacties.

Introduction

Chemotaxis is belangrijk voor de kolonisatie van plantengroeibevorderende rhizobacteriële (PGPR) op wortels en voor het begrijpen van plant-microbe interacties1. Een klasse van verbindingen met een laag molecuulgewicht (chemoattractanten) in plantenwortelexsudaten induceert de chemotactische beweging van PGPR naar de rhizosfeer2. Appelzuur, citroenzuur en andere componenten in de wortelexsudaten stimuleren chemotaxis van Bacillus-stammen3. Glucose, citroenzuur en fumaarzuur in maïswortelexsudaten rekruteren bijvoorbeeld bacteriën naar het worteloppervlak4. D-galactose, dat is afgeleid van wortelexsudaten, induceert de chemotaxis van Bacillus velezensis SQR95. Organische zuren, waaronder fumaraat, appelzuur en succinaat, beïnvloeden chemotaxis en kolonisatie van verschillende PGPR in het Cajanus cajan - Zea mays intercropping-systeem6. Oleanolic acid in rijstwortel exsudaten, werkt als een chemoattractant voor de stam FP357. Andere plantenexsudaten (waaronder histidine, arginine en aspartaat) kunnen een cruciale rol spelen in de chemotactische respons van bacteriën8. Plantenexsudaten functioneren als een signaal om de beweging van bacteriën te sturen, wat de eerste stap is tijdens de kolonisatie van de rhizosfeer. Plantenkolonisatie door PGPR is een proces van enorme relevantie, omdat PGPR gunstig is voor de plantgastheer.

Veel methoden zijn gebruikt voor het analyseren van bacteriële chemotaxis. De zwemplaatmethode is een van de eerder beschreven methoden9. Bij deze methode werden platen gemaakt met een halfvast medium. Een chemotactische buffer met agar (1,0%, w/v) werd aan de plaat toegevoegd. De buffer wordt verwarmd en vervolgens gemengd met het chemoattractant. Vervolgens werd 8 μL bacteriesuspensie druppelsgewijs aan het midden van de plaat toegevoegd en werd de plaat bij 28 °C in een incubator geplaatst. De plaat werd regelmatig geobserveerd en gefotografeerd. De experimentele cyclus van de zwemplaatmethode was echter erg lang. Bij de capillairachtige methode10 dient een pipetpunt als kamer voor het vasthouden van 100 μL bacteriële suspensie. 1 ml spuitnaald werd gebruikt als capillair. Een spuitnaald met chemoattractanten met verschillende concentratiegradiënten werd in de pipetpunt van 100 μL ingebracht. Na incubatie bij kamertemperatuur gedurende 3 uur werd de naald van de spuit verwijderd, de inhoud werd verdund en op het medium verguld. De bacteriële accumulatie in de spuit werd weergegeven door kolonievormende eenheden (CFU's) in de platen. De experimentele fout binnen replicaties voor de capillair-achtige methode was echter groot. Een andere methode gebruikte een microfluïdisch SlipChip-apparaat11. Kortom, runderserumalbumine (BSA) oplossing werd in alle kanalen geïnjecteerd en verwijderd met behulp van een vacuüm. De oplossingen die verschillende chemoattractanten bevatten (1 mM concentratie alleen voor kwalitatieve detectie), bacteriële cellen gesuspendeerd in fosfaat-gebufferde zoutoplossing en fosfaat gebufferde zoutoplossingbuffer (negatieve controle) werden toegevoegd aan respectievelijk de bovenste, middelste en onderste microwells. Incubatie werd vervolgens uitgevoerd in een donkere omgeving bij kamertemperatuur gedurende 30 minuten. De bacteriële cellen werden vervolgens gedetecteerd in de microwells. Het microfluïdische SlipChip-apparaat was echter duur. Daarom had elk van de hierboven beschreven methoden voor- en nadelen.

We hebben een verbeterde chemotaxis-test vastgesteld voor de snelle identificatie van rhizobacteriële chemoattractanten in wortelexsudaten met behulp van steriele glasglaasjes zonder ingewikkelde stappen. In deze studie, door middel van meerdere vergelijkingen van experimentele resultaten, overwon de methode meerdere tekortkomingen van traditionele bacteriële chemotaxismethoden. De methode verminderde de fout van het tellen van platen en verkortte de experimentele cyclus. Daarom kan deze nieuwe methode, indien gebruikt om een chemoattractante stof te identificeren, 2-3 dagen besparen en de kosten van experimentele materialen verlagen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Materialen en uitrusting

OPMERKING: Bacillus altitudinis LZP02 (CP075052) werd voor deze studie geïsoleerd uit de rhizosfeer van rijst in het noordoosten van China12,13.

  1. Cultuur B. altitudinis LZP02 in Luria-Bertani (LB) medium (pepton, 10 g L-1; NaCl, 8 g L-1 en gistextract, 5 g L-1) gedurende 10 uur. Verzamel cellen door centrifugering bij 9.569 x g gedurende 2 minuten bij 4 °C. en bewaar met 15% glycerol bij -80 °C.
    OPMERKING: Voor dit experiment werden rijstzaden (Oryza sativa Longgeng 46) geleverd door het Rice Research Institute van de Heilongjiang Academy of Agricultural Sciences.

2. Verzameling van wortelexsudaten

  1. Verdeel rijstzaden willekeurig in een groeikamer.
    OPMERKING: Rijstzaden werden gesteriliseerd met 30% H2O2 gedurende 30 minuten en 's nachts in water gedrenkt. De omstandigheden waren als volgt: de gecontroleerde lichtcyclus (16/8 uur licht/donker cyclus), temperatuur (22 ± 2 °C) en relatieve vochtigheid (͂70%).
  2. Kweek rijstzaden gedurende een week en voeg twee keer steriel water toe.
  3. Selecteer rijstzaailingen van vergelijkbare grootte en plant in 50 ml Murashige en Skoog (MS) vloeibaar medium. Incubeer gedurende 48 uur bij 22 °C onder aseptische omstandigheden.
    OPMERKING: Rijstwortelexsudaten worden vrijgegeven in het MS-medium14,15,16.

3. Vloeistofchromatografie-massaspectrometrie analyse van wortelexsudaten

  1. Verzamel 100 μL van het monster (MS-medium dat wortelexsudaten bevat) in een centrifugebuis van 1,5 ml. Voeg 20 μL van het extractiemiddel toe (acetonitril-methanol-water, 2:2:1, inclusief interne standaard). Homogeniseer het monster op 45 Hz gedurende 4 minuten, gevolgd door ultrasone trillingen op ijs gedurende 5 minuten in een waterbad.
  2. Herhaal de homogenisatie en ultrasone cyclus drie keer. Incubeer het monster bij -20 °C gedurende 1 uur, gevolgd door centrifugeren bij 133.778 x g en 4 °C gedurende 15 minuten.
  3. Breng het resulterende supernatant over naar LC-MS injectieflacons en bewaar bij -80 °C tot UHPLC-QE-analyse. Bereid de QC-monsters (Quality Control) voor door gelijke delen van het supernatant van alle monsters te mengen.
    OPMERKING: Elk monstervolume was 600 μL (zes replicaties per experiment) in het gepresenteerde experiment.
  4. Voer LC-MS/MS-analyses uit met behulp van het UHPLC-systeem, de UPLC HSS T3-kolom (2,1 mm x 100 mm, 1,8 μm) en Q Exactive12.
    1. Gebruik 0,1% mierenzuur waterige oplossing en 5 mmol/L ammoniumacetaat waterige oplossing als mobiele fase A en acetonitril als mobiele fase B. Gebruik mierenzuur en ammoniumacetaat als respectievelijk positieve en negatieve ionmodi.
    2. Stel de elutiedriënt als volgt in: 0 min, 1% B; 1 min, 1% B; 8 min, 99% B. 10 min, 99% B. 10,1 min, 1% B; 12 min, 1% B. Stel het debiet en het injectievolume in op respectievelijk 0,5 ml/min en 2 μL.
      OPMERKING: Het macromolecuul (>1.000 Dalton) kan niet worden gedetecteerd.

4. Chemotaxis assay

  1. Bereid de chemoattractante waterige oplossing. Zorg ervoor dat het steriel is. Filter de chemoattractieve oplossing met een bacteriefilter van 0,22 μm.
    OPMERKING: De chemoattractante waterige oplossing was de enige stof die werd verkregen uit de LC-MS-onderzoeken opgelost in water. De concentratie en het volume kunnen op de juiste manier worden aangepast volgens verschillende onderzoeken. Citroenzuuroplossing werd als voorbeeld gebruikt. Alle acties moeten aan de zijkant van een lamp worden uitgevoerd.
  2. Markeer de middelste positie van de glasplaat met een interval van 1 cm. Zorg ervoor dat de glasplaat meerdere keren op de vlam wordt gesteriliseerd.
  3. Voeg de 30 μL chemoattractieve oplossing toe aan de linkerkant van de glasplaat. Zorg ervoor dat bacteriën werden gekweekt tot het logaritmische stadium (2 x 108 CFU / ml) in LB-medium. Voeg 30 μL van de bacteriële oplossing toe aan de rechterkant van de glasplaat.
    OPMERKING: Bereid een negatieve controlegroep voor met een gelijk volume steriel water. De zoutoplossing (0,9% NaCI) werd gebruikt als positieve controle om de veranderingen veroorzaakt door intermoleculaire kracht op het experiment te elimineren.
  4. Steriliseer een entlus meerdere keren op de vlam. Gebruik de entlus om de chemoattractante waterige oplossing aan te sluiten op de bacteriële oplossing en houd deze gedurende 20 minuten op kamertemperatuur op een schone bank.
    OPMERKING: Het experiment moet worden uitgevoerd in een windstille omgeving. Pas de tijd voordat u de verbindingslijn loskoppelt voor stammen met verschillende atletische vermogens op de juiste manier aan.
  5. Koppel na 20 minuten de verbindingsleiding los met filterpapier.
  6. Zorg ervoor dat de centrifugebuis van 1,5 ml steriel is. Verzamel de chemoattractante waterige oplossing aan de linkerkant van de glasplaat. Breng de oplossing over in de steriele centrifugebuis van 1,5 ml.
  7. Voeg het juiste volume safranine toe aan de centrifugebuis. Verzamel na 2 minuten de mengbare vloeistoffen voor het tellen van bacteriën en microscopische observatie met een bloedtelkamer.

5. Resultaten analyse

  1. Bepaal het aantal levensvatbare micro-organismen dat wordt aangetrokken met behulp van de volgende vergelijking:
    Equation 1
    waarbij NBC: Totaal aantal bacteriecellen; N: Aantal bacteriën in 80 roosters.
    OPMERKING: Statistische analysesoftware werd gebruikt voor gegevensanalyse. De fout was gebaseerd op drie verschillende gerepliceerde experimentele waarden en werd berekend met behulp van eenrichtings-ANOVA gevolgd door de post-hoc analyse van Turkije. P ≤ 0,05 werd als significant beschouwd.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

In totaal werden 584 en 937 bekende metabolieten gedetecteerd in respectievelijk de positieve en negatieve ionenindices. Eerdere studies hebben aangetoond dat chemoattractanten meestal organische zuren, aminozuren en koolhydraten zijn17,18.

In deze studie werden 16 soorten chemoattractanten uit de LC-MS studies in de rijst rhizosfeer exsudaten geselecteerd voor latere experimenten (tabel 1). Met behulp van de zwemplaatmethode screenden we de verbindingen met een laag molecuulgewicht die door de wortel werden uitgescheiden op een lokstof van de rhizosferische B. altitudinis LZP02. Om de sterktes van de verschillende chemoattractanten te vergelijken, werd de chemotaxisindex (RCI) geïntroduceerd, die de verhouding tussen de gemiddelde behandelingsbacteriën en de overeenkomstige controle weergeeft19. Een hogere RCI duidt op een sterkere reactie op het chemoattractivum. De resultaten gaven aan dat 100 μM citroenzuur (RCI = 2,34) en 100 μM cafeïnezuur (RCI = 1,85) de hoogste chemotaxis-indices hadden (figuur 2). Representatieve beelden toonden aan dat de zwermgebieden van citroenzuur en cafeïnezuur meer waren in vergelijking met CK (figuur 3).

Met behulp van de nieuwe chemotaxis-testmethode (figuur 1) toonden de resultaten aan dat de bacteriële concentratie van de citroenzuur-, cafeïnezuur- en galactose-experimenten (100 μM) significant hoger was dan die van de negatieve en positieve controlegroepen. Citroenzuur was het sterkste chemoattractant. De experimentele resultaten (figuur 4 en tabel 2) kwamen overeen met de resultaten van de traditionele zwemplaatmethode (figuur 2). Representatieve microscopische beelden van de nieuwe chemotaxistest zijn weergegeven in figuur 5.

Vergeleken met de zwemplaatmethode bevestigden onze resultaten de haalbaarheid van de nieuwe chemotaxis-test. Deze techniek kan veel tijd besparen, de kosten van reagentia verlagen en fouten in het resultaat verminderen. De resultaten van de nieuwe methode waren intuïtief en de methode toonde de beweeglijkheid van bacteriën.

Figure 1
Figuur 1: Schematisch diagram van de nieuwe chemotaxistest. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 2
Figuur 2: Resultaten van de zwemplaatmethode. (A) Chemotactische respons van B. altitudinis LZP02 tot toenemende concentraties van organische zuren, fenolzuren en koolhydraten. (B) Chemotactische respons van B. altitudinis LZP02 tot toenemende concentraties van aminozuren. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 3
Figuur 3: Resultaten van de zwemplaatmethode. Vergelijking van de chemotactische respons van B. altitudinis LZP02 naar organische zuren. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 4
Figuur 4: Resultaten van de nieuwe chemotaxis testmethode. NBC: Totaal aantal bacteriecellen. Chemotactische respons van B. altitudinis LZP02 tot toenemende concentraties citroenzuur, cafeïnezuur en galactose. De resultaten worden uitgedrukt als het gemiddelde van ten minste drie assays voor elke bepaling. Foutbalken geven de SSD's aan op basis van drie verschillende gerepliceerde experimentele waarden. Kolommen geïdentificeerd door verschillende letters zijn significant verschillend op P ≤ 0,05 volgens eenrichtings-ANOVA gevolgd door de post-hoc analyse van Turkije. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Figure 5
Figuur 5: Resultaten van de nieuwe chemotaxis-testmethode. De beelden werden verkregen onder een lichtmicroscoop. (A) CK, (B) zoutoplossing, (C) citroenzuur. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Index Naam Partituur Overvloed
POS01062 Citroenzuur 0 200471.6
NEG00016 Appelzuur 0.9944492 2093440.97
NEG00038 2,5-dihydroxybenzoëzuur 0.8886685 114774.98
POS01763 Cafeïnezuur 0 6195.5
POS00154 Ferulazuur 0.4725294 12723.95
POS02156 Fructose 0 6767.81
POS01289 Galactose 0 871476.14
NEG00021 Mannose 0.9898174 683176.34
POS00037 Valine 0.9660872 5985865.24
POS00018 Proline 0.9887274 2739147.17
POS00124 Fenylalanine 0.6106034 11940645.8
POS00092 Glycine 0.7418478 22787114.1
POS00079 Threonine 0.8086754 1039040.18
NEG00010 Leucine 0.9962673 3546561.95
POS00266 Histidine 0 3010220.41
POS01993 Serine 0 645602.04
Opmerking: POS en NEG in de eerste kolom geven respectievelijk een positieve en negatieve ionenindex aan. Derde kolom geeft aan, welk het tweede niveau spectrum werd gebruikt om database matching te scoren en de niet-gegradeerde chemoattractanten werden gematcht door het eerste orde spectrum. De score varieert van 0 tot 1.

Tabel 1: 16 soorten chemoattractanten uit de LC-MS studies in de rijst rhizosfeer exsudaten.

Chemoattractant RCI
NaCl 1.95±0.03 uur
Citroenzuur 3.63±0.12 uur
Cafeïnezuur 2.71±0.26 uur
Galactose 2.56±0.16 uur

Tabel 2: Chemotaxis index (RCI) van de nieuwe chemotaxis assay methode.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Toenemend onderzoek wijst uit dat interacties tussen plant en bacteriën voornamelijk in de rhizosfeer voorkomen en worden beïnvloed door wortelexsudaten20,21,22,23,24. Plantenwortelexsudaten omvatten een breed scala aan primaire metabolieten, waaronder fenolzuren, organische zuren en aminozuren, evenals complexere secundaire verbindingen25,26,27. Voor elke bacterie is aangetoond dat specifieke stoffen rekruteringseffecten hebben in rhizosfeerexsudaten. In dit onderzoeksveld zijn veel van de chemotaxismethoden die in de literatuur worden gerapporteerd, sterk assay-afhankelijk. Er zijn rapporten over verschillende benaderingen, die allemaal specifieke voor- en nadelen hebben.

In de huidige studie hebben we ons gericht op het introduceren van een verbeterde chemotaxis-test voor de snelle identificatie van rhizobacteriële chemoattractanten in wortelexsudaten. In dit protocol werden alle experimenten uitgevoerd onder aseptische omstandigheden. In stap 4 gebruikten we de entlus om de chemoattractante waterige oplossing met de bacterieoplossing te verbinden en hielden we de dia gedurende 20 minuten op kamertemperatuur. Het is vermeldenswaard dat de breedte van de verbindingslijn werd geregeld tot ongeveer 2 mm en dat het experiment moet worden uitgevoerd in een windstille omgeving.

Er moeten passende wijzigingen worden aangebracht in overeenstemming met de experimentele stam die wordt gebruikt. De logaritmische kweektijd moet worden geselecteerd op basis van de groeicyclus van verschillende stammen. Voor stammen met verschillende zwermcapaciteiten kan de tijd voor het loskoppelen van de verbindingslijn op de juiste manier worden aangepast. Kleine bacteriesoorten die niet onder een lichtmicroscoop kunnen worden waargenomen, zijn niet geschikt voor deze methode. Nanobacteriën kunnen bijvoorbeeld zo klein zijn als 80 nm in diameter en kunnen alleen worden gezien door een elektronenmicroscoop. Deze methode is geschikt voor stammen met flagellen.

De nieuwe methode vermindert de fout van het tellen van platen en verkort de experimentele cyclus. Voor de identificatie van chemoattractante stoffen kan de nieuwe methode 2-3 dagen besparen. De nieuwe methode stelt elke onderzoeker in staat om systematisch een bacterieel chemotaxis-experiment binnen 1-2 dagen te voltooien. In vergelijking met het microfluïdische apparaat is de nieuwe methode goedkoper. Het protocol overwint ook enkele tekortkomingen van traditionele bacteriële chemotaxismethoden. Bovendien kan de nieuwe methode op verschillende andere manieren worden gebruikt. We moeten deze methode bijvoorbeeld gebruiken om snel bacteriën in de bodem te identificeren die worden gestimuleerd door signalen van specifieke plantenwortelexsudaten. De nieuwe methode is eenvoudig van ontwerp, gemakkelijk uit te voeren en heeft een grote toepassingswaarde. Dit protocol kan worden gepresenteerd als een waardevolle bron voor de identificatie en het begrip van plant-microbe interacties.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgments

Dit werk werd ondersteund door de National Natural Science Foundation of China (nrs. 31870493), de belangrijkste onderzoeks- en ontwikkelingsprojecten in Heilongjiang, China (GA21B007) en de basisonderzoekskosten van universiteiten in de provincie Heilongjiang, China (nr. 135409103).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
2,5-dihydroxybenzoic acid Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 490-79-9
Acetonitrile CNW Technologies 75-05-8
Ammonium acetate CNW Technologies 631-61-8
Caffeic acid Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 331-39-5
Centrifuge Thermo Fisher Scientific Heraeus Fresco17
Citric acid Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 77-92-9
Clean bench Shanghai Boxun Industrial Co., Ltd. BJ-CD
Ferulic acid Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 1135-24-6
Formic acid CNW Technologies 64-18-6
Fructose Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 57-48-7
Galactose Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 59-23-4
Glycine Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 56-40-6
Grinding Mill Shanghai Jingxin Industrial Development
Co., Ltd.
JXFSTPRP-24
Histidine Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 71-00-1
Internal standard: 2-Chloro-L-phenylalanine Shanghai Hengbai Biotech C.,Ltd. 103616-89-3
Leucine Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 61-90-5
Malic acid Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 6915-15-7
Mannose Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 3458-28-4
Mass Spectrometer Thermo Fisher Scientific Q Exactive Focus
Methanol CNW Technologies 67-56-1
Optical Microscope Olympus BX43
Phenylalanine Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 63-91-2
Proline Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 147-85-3
Scales Sartorius BSA124S-CW
Serine Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 56-45-1
Threonine Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 72-19-5
UHPLC Agilent 1290 UHPLC
Ultrasound Instrument Shenzhen Leidebang Electronics
Co., Ltd.
PS-60AL
Valine Beijing InnoChem Science & Technology C.,Ltd. 7004-03-7

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Belas, R. Biofilms, flagella, and mechanosensing of surfaces by bacteria. Trends in Microbiology. 22 (9), 517-527 (2014).
  2. Haichar, Z., Santaella, C., Heulin, T., Achouak, W. Root exudates mediated interactions belowground. Soil Biology and Biochemistry. 77 (7), 69-80 (2014).
  3. Zhang, N., et al. Effects of different plant root exudates and their organic acid components on chemotaxis, biofilm formation and colonization by beneficial rhizosphere-associated bacterial strains. Plant and Soil. 374 (1-2), 689-700 (2014).
  4. Zhang, N., et al. Whole transcriptomic analysis of the plant-beneficial rhizobacterium Bacillus amyloliquefaciens SQR9 during enhanced biofilm formation regulated by maize root exudates. BMC Genomics. 16 (1), 685 (2015).
  5. Lui, Y., et al. Induced root-secreted D-galactose functions as a chemoattractant and enhances the biofilm formation of Bacillus velezensis SQR9 in an mcpa-dependent manner. Applied Microbiology and Biotechnology. 104 (17), 785-797 (2020).
  6. Vora, S. M., Joshi, P., Belwalkar, M., Archana, G. Root exudates influence chemotaxis and colonization of diverse plant growth-promoting rhizobacteria in the Cajanus cajan - Zea mays intercropping system. Rhizosphere. 18 (12), 100331 (2021).
  7. Sampedro, I., et al. Effects of halophyte root exudates and their components on chemotaxis, biofilm formation and colonization of the halophilic bacterium halomonas anticariensis FP35T. Microorganisms. 8 (4), 575 (2020).
  8. Liu, X. L., Raza, W., Ma, J. H., Huang, Q. W., Shen, Q. R. A dual role amino acid from sesbania rostrata seed exudates in the chemotaxis response of Azorhizobium caulinodans ORS571. Molecular Plant-Microbe Interactions. 32 (9), 1134-1147 (2019).
  9. Ling, N., Raza, W., Ma, J. H., Huang, Q. W., Shen, Q. R. Identification and role of organic acids in watermelon root exudates for recruiting Paenibacillus polymyxa SQR-21 in the rhizosphere. European Journal of Soil Biology. 47 (6), 374-379 (2011).
  10. Rudrappa, T., Czymmek, K. J., Pare, P. W., Bais, H. P. Root-secreted malic acid recruits beneficial soil bacteria. Plant Physiology. 148 (3), 1547-1556 (2008).
  11. Shen, C., et al. Bacterial chemotaxis on Slipchip. Lab on a Chip. 14 (16), 3074-3080 (2014).
  12. Liu, H., et al. Bacillus pumilus LZP02 promotes rice root growth by improving carbohydrate metabolism and phenylpropanoid biosynthesis. Molecular Plant-Microbe Interactions. 33 (10), 1222-1231 (2020).
  13. Goswami, M., Deka, S. Isolation of a novel rhizobacteria having multiple plant growth promoting traits and antifungal activity against certain phytopathogens. Microbiological Research. 240, 126516 (2020).
  14. Kaiira, M., Chemining'Wa, G., Ayuke, F., Baguma, Y., Nganga, F. Profiles of compounds in root exudates of rice, cymbopogon, desmodium, mucuna and maize. Journal of Agricultural Sciences Belgrade. 64 (4), 399-412 (2019).
  15. Shi, Y., et al. Effect of rice root exudates and strain combination on biofilm formation of Paenibacillus polymyxa and Paenibacillus macerans. African Journal of Microbiology Research. 6 (13), 3343-3347 (2012).
  16. Lee, H. W., Ghimire, S. R., Shin, D. H., Lee, I. J., Kim, K. U. Allelopathic effect of the root exudates of K21, a potent allelopathic rice. Weed Biology and Management. 8 (2), 85-90 (2008).
  17. Belimov, A. A., et al. Rhizobacteria that produce auxins and contain 1-amino-cyclopropane-1-carboxylic acid deaminase decrease amino acid concentrations in the rhizosphere and improve growth and yield of well-watered and water-limited potato (Solanum tuberosum). Annals of Applied Biology. 167 (1), 11-25 (2015).
  18. Ankati, S., Podile, A. R. Metabolites in the root exudates of groundnut change during interaction with plant growth promoting rhizobacteria in a strain-specific manner. Journal of Plant Physiology. 243, 153057 (2019).
  19. Gordillo, F., Chavez, F., Jerez, C. A. Motility and chemotaxis of Pseudomonas sp. B4 towards polychlorobiphenyls and chlorobenzoates. FEMS Microbiology Ecology. 60 (2), 322-328 (2007).
  20. Bais, H. P., Weir, T. L., Perry, L. G., Gilroy, S., Vivanco, J. M. The role of root exudates in rhizosphere interactions with plants and other organisms. Annual Review of Plant Biology. 57, 233-266 (2006).
  21. Badri, D. V., Vivanco, J. M. Regulation and function of root exudates. Plant Cell Environment. 32 (6), 666-681 (2009).
  22. Badri, D. V., Weir, T. L., Lelie, D., Vivanco, J. M. Rhizosphere chemical dialogues: plant-microbe interactions. Curr Opin Biotech. Current Opinion in Biotechnology. 20 (6), 642-650 (2009).
  23. Kamilova, F., Kravchenko, L. V., Shaposhnikov, A. I., Makarova, N., Lugtenberg, B. Effects of the tomato pathogen Fusarium oxysporum f. sp. radicis-lycopersici and of the biocontrol bacterium Pseudomonas fluorescens WCS365. Molecular Plant-Microbe Interactions. 19 (10), 1121-1126 (2006).
  24. Kamilova, F., et al. Organic acids, sugars, and L-tryptophane in exudates of vegetables growing on stonewool and their effects on activities of rhizosphere bacteria. Molecular Plant-Microbe Interactions. 19 (3), 250-256 (2006).
  25. Badri, D. V., Vivanco, J. M. Regulation and function of root exudates. Plant Cell Environment. 32 (6), 666-681 (2009).
  26. Hao, W. Y., Ren, L. X., Ran, W., Shen, Q. R. Allelopathic effects of root exudates from watermelon and rice plants on Fusarium oxysporum f.sp. Niveum. Plant and Soil. 336 (1-2), 485-497 (2010).
  27. Hao, Z. P., Wang, Q., Christie, P., Li, X. L. Allelopathic potential of watermelon tissues and root exudates. Scientia Horticulturae. 112 (3), 315-320 (2007).

Tags

Biologie Nummer 181 chemotaxis chemoattractant plantenwortelexsudaten plantengroeibevorderende rhizobacteriën
Een verbeterde chemotaxistest voor de snelle identificatie van rhizobacteriële chemoattractanten in wortelexsudaten
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Jiao, H., Lyu, C., Xu, W., Chen, W., More

Jiao, H., Lyu, C., Xu, W., Chen, W., Hu, Y., Wang, Z. An Improved Chemotaxis Assay for the Rapid Identification of Rhizobacterial Chemoattractants in Root Exudates. J. Vis. Exp. (181), e63249, doi:10.3791/63249 (2022).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter