Este vídeo demonstra toda montagem imuno-histoquímica, um método pelo qual o padrão de expressão espacial e temporal de um antígeno pode ser visualizada em embriões de galinha jovens. Este método foi originalmente introduzido por Jane Dodd e Tom Jessell.
Abstract
O embrião de galinha é uma ferramenta valiosa no estudo do desenvolvimento embrionário precoce. Sua transparência, acessibilidade e facilidade de manipulação, torná-lo uma ferramenta ideal para estudar a expressão de anticorpos no desenvolvimento do cérebro do tubo, neural e somito. Este vídeo demonstra as diferentes etapas no todo-mount coloração anticorpos, por meio HRP conjugados anticorpos secundários; Primeiro, o embrião é dissecada do ovo e fixados em paraformaldeído. Peroxidase, segundo endógena é inativada; O embrião é, então, expostas ao anticorpo primário. Depois de várias lavagens, o embrião é incubada com anticorpo secundário conjugado com HRP. Atividade da peroxidase é revelada através de reação com o substrato diaminobenzidina. Finalmente, o embrião é fixo e processados para a fotografia e corte. A vantagem deste método sobre o uso de anticorpos fluorescentes é que os embriões podem ser processados para o seccionamento de cera, possibilitando o estudo de locais de antígeno em seção transversal. Este método foi originalmente introduzido por Jane Dodd e Jessell Tom<sup> 1</sup>.
Protocol
I. Visão geral esquemática: Este vídeo demonstra as diferentes etapas imunohistoquímica montar todo em embrião de galinha. Primeiro, o embrião é fixado em PFA [IHC1]. Então, a atividade da peroxidase endógena se apaga [IHC2]. O embrião é, então, incubadas em anticorpo primário [IHC3]. Depois de várias lavagens, o embrião é incubado em anticorpo secundário [IHC4]; Reação de cor é revelada usando DAB [IHC5] e coloração de anticorpos parece laranja [IHC6]. <p class="jove…
Discussion
Este vídeo demonstra as diferentes etapas na realização de todo-mount coloração de anticorpos em embriões de galinha jovens. Este protocolo é essencialmente utilizado para a caracterização espacial e temporal de anticorpos romance em pinto 2,3, bem como para o uso de marcadores antigênicos conhecidos para determinar malformações embrionárias seguintes insulto 4.
Acknowledgements
Os anticorpos monoclonais (15.3B9, Pax7), desenvolvido por (J. Dodd, TM Jessell e A. Kawakami) foram obtidos do Banco de Desenvolvimento Hibridoma Estudos desenvolvidos sob os auspícios do NICHD e mantido pela Universidade de Iowa, Departamento de Ciências Biológicas , Iowa. DP é destinatário de Ruth Award Kirschstein DA021977 1F32-01A1 do Instituto Nacional sobre Abuso de Drogas. Este trabalho foi financiado pela M. Margaret Alkek Fundação RHF.
Materials
Material Name
Type
Company
Catalogue Number
Comment
Eggs
Charles River Laboratories
Premium Fertile
Fertilized, HH4 (16 hr)
Stereomicroscope
Microscope
Leica Microsystems
MZ9.5 or similar
Marsh Automatic Incubator
Other
Lyon
RX
Curved Forceps (1)
Tool
Electron Microscopy Sciences
72991-4C
Forceps (2)
Tool
Fine Science Tools
11002-13
Fine scissors
Tool
Fine Science Tools
14161-10
Plastic dishes
Tool
Falcon
353001
Rubber Bulb
Tool
Electron Microscopy Sciences
70980
Pasteur Capillary Pipette
Tool
Electron Microscopy Sciences
70950-12
round edge under flame
Microdissecting knife
Tool
Fine Science Tools
10056-12
Use to cut embryo from surrounding membranes following fixation
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base
Reagent
Dow Corning
0001986475
Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
16% PFA
Reagent
Electron Microscopy Sciences
15710
30% H2O2
Reagent
Sigma
H1009
BSA
Reagent
Sigma
A3803
NGS
Reagent
Jackson Immuno
005-000-121
Primary Antibodies
Reagent
Developmental studies Hybridoma Bank
4G11, 15.3B9, PAX7
For these antibodies, investgators used mouse donnors
Peroxidase conjugated-Goat Anti-Mouse IgG (H+L)
Reagent
Jackson Immuno
115-035-003
3,3’-diaminobenzidine tetrahydrochloride
Reagent
Pierce
34001
Store at -20; Allow bottle to warm to RT before use.