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January 13, 2022
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该协议对于想要使用杆状病毒 – 昆虫细胞培养系统开发AAV生产和纯化方法的研究人员非常有用。使用杆状病毒-昆虫细胞培养系统生产AAV是一种具有成本效益的方法,易于放大,并且与当前的良好生产规范兼容。该协议的某些部分将由我实验室的研究助理Alan Heizer演示。
首先解冻一小瓶Sf9细胞,并立即将它们接种在15毫升昆虫细胞培养基中。在轨道振荡器培养箱中以125 RPM和28摄氏度在圆底烧瓶中以松散的盖子培养Sf9细胞,用于交换空气。在含有200毫升培养基的一升烧瓶中繁殖细胞,以获得足够的细胞用于TIPS细胞生产。
在两个烧瓶中,以2倍10向每毫升第6个功率电池添加50毫升Sf9细胞。用0.5毫升杆状病毒-AAV2-GFP感染一个Sf9细胞瓶,用0.5毫升杆状病毒-AAV2-rep-cap感染另一个烧瓶细胞。三天后,收获一小块等分试样的杆状病毒感染的Sf9细胞,也称为TIPS细胞。
用0.5微克小鼠抗杆状病毒gp64抗体在100微升封闭缓冲液中在100微升封闭缓冲液中在黑暗的环境温度下染色2次10至5次方的未感染和杆状病毒感染的Sf9细胞。用PBS洗涤细胞以除去抗体后,将染色的细胞重新悬浮在含有0.5牛血清白蛋白的300微升PBS中。使用流式细胞术分析细胞上的杆状病毒gp64表达。
当细胞存活80%至90%时,随着直径的增加,收获细胞并在一毫升昆虫培养基中冷冻保存1倍10至7个功率细胞,在负80摄氏度的慢速冷冻容器中用10%胎牛血清和10%二甲基亚砜代替。第二天,将含有TIPS细胞的管转移到液氮冰箱中长期储存。在含有400毫升昆虫细胞培养基的两升烧瓶中,在腺相关病毒或AAV生产所需的振荡器培养箱中,以2倍10至每毫升28摄氏度培养至第6个功率电池,培养并培养幼稚的Sf9细胞。
三到四天后,细胞密度增加到每毫升10到第6次方电池的5至6倍。对于在轨道振荡器培养箱中的烧瓶中生产AAV,请使用移液器或蠕动泵以每毫升10至第6个功率细胞的2倍将400毫升Sf9培养物无菌地接种到两升烧瓶中。将轨道振动器设置为125 RPM和28摄氏度。
解冻每个杆状病毒-AAV-GFP和杆状病毒-AAV-rep-cap TIPS细胞的一小瓶。用20毫升昆虫培养基稀释细胞,并使用台盼蓝对细胞进行活力计数。相对于在摇瓶或生物反应器中培养的幼稚Sf9细胞,以1比10, 000的比例接种两个TIPS细胞。
第二天,无菌收获一毫升Sf9培养物,并用台盼蓝染料染色,以分析细胞计数,活力和形态。在第三天,重复第二天执行的步骤,并在染色Sf9细胞后检查杆状病毒感染的状态。在第五天,重复第二天执行的步骤,然后在Sf9活力降至50%左右时收获培养基和细胞旋转后收集上清液和细胞沉淀,并将其储存在负80摄氏度。
一旦AAV生产者细胞沉淀解冻,加入细胞裂解缓冲液并剧烈混合。在环境温度下孵育重新悬浮的沉淀30分钟以释放AAV颗粒。离心后,将细胞裂解物转移到新容器中。
解冻后混合细胞裂解物和细胞培养物上清液。向细胞裂解物中每毫升20单位的核酸酶和10毫摩尔氯化镁以消化DNA和RNA,并在37摄氏度下孵育2至4小时。使用泵通过0.8微米和0.2微米聚醚砜双过滤系统过滤裂解物。
将澄清的细胞裂解物储存在四摄氏度下过夜,或立即纯化AAV。将10毫升AVB Sepharose柱安装到色谱机上,并将管道插入AAV样品,洗涤缓冲液和洗脱缓冲液中。将管插入色谱机的馏分收集槽中,以收集含有AAV颗粒的柱直通溶液,洗涤缓冲液和洗脱缓冲液的馏分。
以每分钟5毫升的流速将AVB Sepharose柱与五列体积的PBS平衡。使用配备样品泵的色谱机将含有AAV颗粒的过滤细胞裂解物加载到AVB Sepharose亲和柱上。以每分钟3毫升的流速运行样品。
以每分钟3毫升的流速运行PBS,直到280纳米处的紫外线吸光度曲线返回基线并变得稳定。用50毫摩尔柠檬酸钠缓冲液pH 3以每分钟3毫升的流速洗脱AVB Sepharose柱中的AAV颗粒。立即用五分之一体积的500毫摩尔Tris HCl pH 8.0稀释AAV上清液,以中和含有AAV的酸性洗脱缓冲液。
这可以防止酸性pH 3.0洗脱缓冲液可能发生的pH介导的降解。然后用PBS将AAV上清液稀释十倍,使AAV颗粒在生理缓冲液中。储存每列跑过样品的一毫升,洗涤缓冲液和100微升洗脱的AAV上清液,以评估靶细胞感染引起的AAV的存在。
设置切向流过滤系统,配备具有100千道尔顿分子量截止值的聚醚砜膜盒以浓缩AAV。运行200毫升PBS10分钟,以平衡切向流过滤模块。通过控制泵的流量来加载AAV样品,直到样品减少到所需的体积。
用100毫升PBS透析滞留物。将AAV样品浓缩至所需体积后,收集AAV样品,通过0.2微米聚醚砜过滤器过滤,并等分。然后将AAV样品储存在负80摄氏度。
由于多轮感染,大多数Sf9细胞在三到四天内感染杆状病毒,杆状病毒糖蛋白gp64表达证明。大多数细胞也显示出直径的增加。细胞的直径增加,细胞病变效应,大约一半的细胞在感染后五天内死亡,这是AAV生产完成的迹象。
在用对应于AAV级分的酸性缓冲液洗脱时观察到蛋白质的峰值。纯化的AAV样品在SDS-PAGE和银染色后显示出三种不同的衣壳蛋白:VP1,VP2和VP3。最关键的步骤是在冷冻保存之前收获TIPS细胞,当大多数细胞感染杆状病毒时,细胞死亡次数最少。
我们在这里描述了血清型2的AAV载体的生产和纯化作为模型。然而,该协议也可以应用于其他AAV血清型。
在该协议中,通过将 Spodoptera frugiperda(Sf9) 昆虫细胞与杆状病毒(BV)-AAV2-绿色荧光蛋白(GFP)或治疗基因和BV-AAV2-rep-cap感染的Sf9细胞在悬浮培养物中共同培养来产生AAV2载体。使用洗涤剂从细胞中释放AAV颗粒,澄清,通过亲和柱色谱纯化,并通过切向流过滤浓缩。
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Nasimuzzaman, M., Villaveces, S., van der Loo, J. C. M., Alla, S. Process Development for the Production and Purification of Adeno-Associated Virus (AAV)2 Vector using Baculovirus-Insect Cell Culture System. J. Vis. Exp. (179), e62829, doi:10.3791/62829 (2022).
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