Kleuring Protocols for Human pancreatische eilandjes

Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.

If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.

 

Summary

Deze video demonstreert de procedures voor de karakterisering van humane pancreatische eilandjes met hematoxyline en eosine (H & E) en immunohistochemie (IHC). Pancreas delen van het hoofd, lichaam en staart regio's worden gekleurd door zowel H & E en IHC te eilandje endocriene samenstelling (insuline, glucagon, en pancreas polypeptide), cel-replicatie (Ki67) en inflammatoire infiltraten (H & E, CD3) te bepalen. De uncinate regio is gelokaliseerd met behulp van IHC voor pancreas polypeptide.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Campbell-Thompson, M. L., Heiple, T., Montgomery, E., Zhang, L., Schneider, L. Staining Protocols for Human Pancreatic Islets. J. Vis. Exp. (63), e4068, doi:10.3791/4068 (2012).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Schattingen van eilandje gebied en nummers en endocriene cellen samenstelling in de volwassen menselijke pancreas variëren van enkele honderdduizenden tot enkele miljoenen-en beta-massa bereiken 500 tot 1500 mg 1-3. Met deze bekende heterogeniteit, is een standaard verwerking en kleuring procedure ontwikkeld, zodat de pancreas regio's duidelijk waren omschreven en eilandjes gekarakteriseerd met behulp van strenge histopathologie en immunolocalization examens.

Gestandaardiseerde procedures voor de verwerking van de menselijke alvleesklier hersteld van orgaandonoren zijn beschreven in deel 1 van deze serie. De alvleesklier wordt verwerkt in 3 grote regio's (hoofd, lichaam, staart), gevolgd door dwarsdoorsneden. Dwarsprofielen van de alvleesklier hoofd zijn verder onderverdeeld, zoals aangegeven op basis van grootte, en genummerd op alfabetische volgorde de onderafdelingen aan te duiden. Deze standaardisatie zorgt voor een volledige dwarsdoorsnede-analyse van het hoofd regio, waaronder de uncinate regio die bestaat uit eilandjes bevatvoornamelijk uit de pancreas polypeptide cellen naar de staart regio.

Het huidige rapport bevat deel 2 van deze serie en beschrijft de procedures die worden gebruikt voor seriële snijden en histopathologische karakterisering van de pancreas paraffinecoupes met de nadruk op eilandje endocriene cellen, replicatie, en T-cel infiltreert. Pathologie van de pancreas secties is bedoeld om zowel de exocriene, ductular, en endocriene componenten te karakteriseren. De exocrine compartiment wordt onderzocht op de aanwezigheid van pancreatitis (actieve of chronisch) atrofie, fibrose en vetten, alsmede het kanalensysteem, vooral in verband met de aanwezigheid van pancreatische intraductal neoplasie 4. Eilandjes worden beoordeeld op morfologie, de grootte en dichtheid, endocriene cellen, ontsteking, fibrose, amyloid, en de aanwezigheid van replicerende of apoptotische cellen met behulp van H & E en IHC vlekken.

Het laatste onderdeel beschreven in deel 2 is de bepaling van de gebrandschilderde afbeeldings in gedigitaliseerde objectglaasje beelden. De gedigitaliseerde dia's worden georganiseerd door het geval en de alvleesklier regio in een online databank pathologie het creëren van een virtuele biobank. Toegang tot deze online collectie is momenteel aan meer dan 200 clinici en wetenschappers die betrokken zijn bij type 1 diabetes onderzoek. De online database biedt de mogelijkheid voor een snelle en volledige uitwisseling van gegevens en voor de onderzoekers om blokken voor paraffine of ingevroren seriële secties te selecteren.

Protocol

1. Coupes voor het ongekleurde secties

  1. Stel waterbad en microtoom als voor standaard paraffine coupes. Gebruik positief geladen dia's en pre-label met zaaknummer, pancreas regio (monster) en slide nummer. Plaats paraffineblok in de microtoom boorkop met de cassette label aan de linkerkant.
  2. Volgens de normale procedures coupes, sectie in blok tot weefsel wordt gelijkmatig aangetroffen. Maak een lint van seriële secties (4 micrometer dik, 3-6 afhankelijk van het aantal vereiste initiële vlekken (zie arrest van Submission Form, bijlage 1)). Aparte secties in het lint, pick-up iedereen moet nemen om, en leg ze op dia's met om genummerd met potlood. Noem als een deel niet wordt gebruikt door de nummering secties in precies dezelfde volgorde. Houd dezelfde richting op de dia zoals gevonden in de cassette met de dia-label gericht op de links. Droog nacht bij kamertemperatuur vervolgens door te gaan met vlekken of distributie aan onderzoekers.
  3. Respaling oppervlak paraffineblok met dunne laag paraffine weefsel en archief bewaren bij kamertemperatuur of 20 ° C.
  4. Voor de volgende coupes, onderhouden nummering voor seriële secties op elk niveau als hierboven. Verkrijgen een extra dia en vlekken door H & E dia per ~ 100 uM niveau in elk blok.

2. H & E kleuring

  1. Plaats dan de eerste seriële coupes dia uit elk blok in een dia rek in de eerste lade op de Autostainer.
  2. Selecteer de standaard H & E vlek programma en ga verder zoals gewoonlijk.
  3. Wanneer u klaar bent vlekken, verwijdert u de dia's van Autostainer en plaats in de kap voor afdekken.
  4. Dekglaasje met standaard technieken. Goed afdrogen en label met een gedrukt etiket (zie paragraaf 12).

3. IHC Set-up

  1. Selecteer de Dako-programma voor dubbele vlekken en input aantal dia's. Bereid TBST en citraat buffers, antilichamen, en Reagouders op basis van gespecificeerde volumes (tabel 1). Laad het reagens lade en dia's. Rotatie van schone en afval lijnen zijn geprogrammeerd conform de aanbevelingen van de fabrikant.
  2. Als het uitvoeren van deze testen handmatig, bereiden geschatte volumes. Incubeer dia's in een vochtige kamer om dia's uit bij elke stap het drogen te voorkomen. Volg dezelfde procedure voor alle reagentia als bij gebruik voor Autostainer.

4. IHC Deparaffinization en Antigen Retrieval

  1. Zet dia's in xyleen gedurende 5 minuten. Herhaal een keer. Zorg ervoor dat de dia's om uit te drogen op een later moment tot aan aangegeven, omdat dit zal resulteren in overmatige achtergrond en slechte kleuring.
  2. Breng dia's op 100% ethanol gedurende 2 minuten. Herhaal een keer.
  3. Slides in vers bereide 3% H 2 O 2 in methanol gedurende 10 minuten.
  4. Dip dia's in 90% ethanol en vervolgens plaatsen in 90% ethanol gedurende 3 minuten.
  5. Transfer schuift aan70% Ethanol gedurende 1 minuut.
  6. Spoel de objectglaasjes in gedeïoniseerd water.
  7. Verwarm de steamer en citraat buffer in stoompan gedurende 5 minuten.
  8. Voeg dia's om buffer citraat in de stoompan en stoom gedurende 30 minuten.
  9. Onmiddellijk overbrengen dia's om water te houden, tot de dia's afkoelen tot kamertemperatuur (~ 20 minuten).
  10. Zet dia's aan het Dako Autostainer racks op basis van volgorde (figuur 1) vlekken op en voer de dubbele kleuring programma. De belangrijkste stappen van het Autostainer programma zijn zo vermeld dat handmatige runs kunnen dupliceren.

5. Eerste Primaire antilichamen (Ki-67, CD3-, pancreas polypeptide)

  1. Blokkeer dia's met Sniper oplossing gedurende 15 minuten. Was twee keer met TBST.
  2. Incubeer dia's in primaire antilichaam gedurende 30 minuten. Was twee keer met TBST.
  3. Incuberen met Mach2 geit anti-muis (Ki-67) of anti-konijn (CD3, pancreas polypeptide) mierikswortelperoxidase (HRP) polymeer 30 minuten. Was twee keer met TBST.
  4. Breng 3,3-diaminobenzidine tetrahydrochloride (DAB) om dia's voor 4 minuten. Was twee keer met water.
  5. Dia geïncubeerd met pancreas polypeptide gehouden op Dako wanneer wordt gelijktijdig getest en TBST bij alle volgende stappen terwijl de overige dia worden geïncubeerd met de tweede primaire antilichamen. Als alternatief voor het handmatig testen, gaat u naar hoofdstuk 6.

6. Tweede Primaire antilichamen (insuline, glucagon)

  1. Incubeer dia's in Deeb gedurende 20 minuten. Was twee keer met TBST.
  2. Blok met 10% normaal geitenserum in 20% avidine blokker in TBST (insuline) of Sniper (glucagon) in TBST gedurende 20 minuten. Was twee keer met TBST.
  3. Incubeer met insuline of glucagon primaire antilichaam gedurende 15 minuten. Was twee keer met TBST.
  4. Insuline: Incubate dia's in gebiotinyleerd geit anti-cavia bij 1:300 verdunning gedurende 30 minuten. Was twee keer met TBST. Incubeer met standaard vector ABC-AP reagens voor 30 minuten. Was twee keer met TBST.
  5. Glucagon: incuberen dia in buffer gedurende 30 minuten gevolgd door geit anti-muis alkalische fosfatase (AP) polymeer gedurende 30 minuten. Was twee keer met TBST.
  6. Terwijl de dia's worden geïncubeerd in conjugaten, warmen de LPR-buffer op kamertemperatuur. Voeg 1 druppel vloeistof permanent rood (LPR) per 3 ml buffer direct voor het gebruik en de plaats in Dako reagens rek. Incubeer dia's in LPC gedurende 4 minuten. Was twee keer met water.
  7. Incubeer dia's in hematoxyline gedurende 1 minuut. Twee keer spoelen met water.
  8. Incubeer dia's in TBS pH 7,6 gedurende 1 minuut. Twee keer spoelen met water.
  9. Unload dia's van DAKO Autostainer.
  10. Onmiddellijk drogen dia's gekleurd voor pancreas polypeptide. Voor alle dubbele glas dia's, droog voor minstens 1 uur dan uitdrogen.

7. Uitdroging

  1. Plaats de glaasjes in 80% ethanol gedurende 1 minuut.
  2. Dompel dia's in 95% ethanol. Houd dia in 95% ethanol gedurende 30 seconden.
  3. Breng dia's op 100% ethanol en houd 1 minuut. Herhaal.
  4. Dip dia's in xyleen.
  5. Houd dia's in xyleen gedurende 1 minuut. Herhaal.
  6. Onmiddellijk monteren dekglaasjes op dia's met behulp van cytoseal.

8. Slide Labeling

  1. Geef de geval gebeurd de identificatie informatie, inclusief orgel en bloknummer, vlek, en de datum en print. Serial sectie nummer is optioneel voor de eerste dia vlekken van elk blok. Volgende niveaus worden aangeduid met nummering.
  2. Plaats etiketten op dia's.

9. Dia's scannen

  1. Plaats in lood dia's in de scanner lade en scannen op basis van instrumentatie.
  2. Organiseer dia's door donor en weefseltype (pancreas hoofd, lichaam, staart, de milt).
  3. Archief gebrandschilderde dia's bij kamertemperatuur en de resterende ongekleurde dia's bij -20 ° C tot gebruik.

10. Representative resultaten

Deze vlekken procedures werden ontwikkeld voor de JDRF Network for Pancreatic orgaandonoren met diabetes (nPOD) met de uitgangswaarde karakterisering van paraffine en vers bevroren blokken te bieden. Elke donor heeft een uitgangswaarde karakterisering uitgevoerd bestaat uit vlekken 2 blokken van elk alvleesklier regio (hoofd, lichaam en staart) en de milt (Figuur 1, zie ook zaak indienen vorm, bijlage 1). De H & E kleuring wordt uitgevoerd met behulp van een Autostainer geprogrammeerd als voor een klinische faciliteit met klinische-grade oplossingen gebruikt in. Als extra donor-blokken zijn coupes, elk heeft een glijbaan genomen voor H & E om weefsel morfologie te laten zien. Bij het blokken zijn weer coupes, als voor distributie naar de onderzoekers, zal diepere niveaus ook dia's genomen voor representatieve H & E dia's aan het hele blok van weefsel morfologie documenteren en nummering seriële secties op elk niveau. Stained dia's zijn voorzien vangeval gebeurd de identificatie, de alvleesklier regio, bloknummer, vlek en datum (figuur 2) en gescand in de online pathologie informatie management systeem. Representatieve beelden van een controle-donor zijn weergegeven in figuur 3 bij zowel lage als hoge vergrotingen te verwachte resultaten tonen deze procedure. De slede gekleurd met pancreas polypeptide (D, H) werd bepaald op een andere dag de assay uitgevoerd handmatig toont verminderde intensiteit van de kleuring hematoxyline tegenkleuring. Verschillen in kleuringsintensiteit primaire antilichamen of tegenkleuring tussen assays wordt vermeden vooral bij gebruik beeldanalyse anders glijdt met afzonderlijke kleurcorrectie dezelfde cel gebieden of tellingen te bereiken.

Elk laboratorium dient te verwachten dat de concentraties aan antistoffen te optimaliseren als lot-to-lot variatie en andere reagentia en voorwaarden kunnen vlekken intensiteit en specificiteit beïnvloeden. Met de aanschaf van nieuwe reaheren, zijn kleuringen gevalideerd met bekende positieve en negatieve controlemonsters in dezelfde mate van de vlek intensiteit te bereiken als met oud-reagentia. Extra antilichamen geoptimaliseerd in de pathologie nPOD kern worden in tabel 2 als referentie en zijn gebruikt voor multilabeling immunofluorescentie assays voor confocale microscopie.

Figuur 1
Figuur 1. Dako vlekken net. Dit schema toont een routine-analyse van een nPOD donor alvleesklier uitgevoerd op een Dako Autostainer. De nPOD donoren zijn gecodeerd met een 4-cijferig identificatienummer. Twee dia's laden worden getoond met dia's, georganiseerd door vlek. Alternatieve slide configuraties worden verwacht, afhankelijk van het aantal donoren dia's. Positieve controles zijn onder andere opname van een bekende positieve donor voor de twee dubbele vlekken en donor milt voor Ki-67 en CD3. Negatieve controles is tweeledig en bestaat uit twee slides ene donoralvleesklier blok geïncubeerd met immunoglobuline (Ig) van de gastheersoort van de primaire antilichamen en twee dia's van donor milt voor insuline en glucagon.

Figuur 2
Figuur 2. Vertegenwoordiger dubbel glas glijbaan. Een typische afgewerkte dia wordt weergegeven met glijbaan etikettering parameters en weefsel plaatsing voor digitaal scannen wordt uitgevoerd.

Figuur 3
Figuur 3. Vertegenwoordiger van H & E en IHC vlekken in de pancreas secties. Artikelen uit de pancreas van een volwassen vrouwtje orgaandonor (6096-04 Panhead) waren gekleurd en digitale scans uitgevoerd zoals beschreven in het protocol. Verkrijgt men beelden met het ImageScope die programma van de gehele sectie (AD) en van een eiland (EH). De verwachte eilandje vlek intensiteiten voor insuline, glucagon, en pancreas polypeptide zijnwaargenomen voor secties BD als sectie D schetst dat dit alvleesklier hoofd blok een klein deel van de uncinate regio of ventrale pancreas lob als alle eilandjes vooral de pancreas polypeptide-positieve cellen bevatten bevat. Merk op dat de hematoxyline tegenkleuring in het paneel D is te licht, terwijl de hematoxyline tegenkleuring intensiteiten in B-en C-optimaal zijn. Panelen EH tonen een eilandje van het dorsale lob met de verwachte verdeling van de β-cellen en α-cellen. Een paar pancreas polypeptide cellen worden aangetroffen in de linker deel van het eilandje (H). A, E-H &E; B, F-Ki67 + insuline, C, G-CD3 + Glucagon, D, H-pancreas polypeptide. AD, 0,2 x, EH-12.8x.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Standaardisatie van IHC-procedures is van cruciaal belang voor het imago van de analyse, met name bij het gebruik van computer-gebaseerde algoritmen in een groot aantal dia's in de tijd. De IHC kleuring procedure zoals beschreven in dit rapport zal batch analyse van de monsters een bepaalde donor met behulp van een Autostainer binnen een 8-urige werkdag en worden aangepast van een eerder verslag 5. Gedigitaliseerde hele dia's van elk glas dia's ter beschikking gesteld van nPOD-gelieerde onderzoekers via het web-based online pathologie systeem. Onderzoekers kunnen beoordelen donor demografie, laboratoriumgegevens, en andere relevante klinische geschiedenis samen met de dia's en zijn in staat om te kiezen blokkeert het meeste geschikt is voor hun studie (zie http://www.jdrfnpod.org/online-pathology.php voor meer informatie) . Een dergelijke online pathologie systeem dient als een "virtuele biobank". Een verdere verbetering van het systeem worden uitgevoerd whereby slide labels zijn voorzien van een barcode naar seriële secties en niveaus voor elk blok te volgen met een uiteindelijke doel van de 3-D reconstructie van de alvleesklier.

De twee dubbele kleuring procedures werden in de eerste plaats gekozen om eilandje β-cel samenstelling (insuline) te bepalen in onderling overleg met cellulaire replicatie (Ki-67), gezien het belang van het begrijpen van de mechanismen voor volwassen β-cel regeneratie in type 1 diabetes 5,6. Als tweede dubbele IHC assay uitgevoerd op seriecoupes de eerste, elk eiland gekenmerkt zowel β-cel (insuline) en α-cel samenstelling (glucagon). Bovendien is de aanwezigheid van T-lymfocyten (CD3) bepaald in overeenstemming met α-cel kleuring om twee redenen. De basis van T-cel gemedieerde auto-immuniteit in progressie van type 1 diabetes is duidelijk op prijs gesteld maar de aard van het initiëren van agenten (viraal, bacterieel, inflammatoire cellen) of de samenstelling van de chronische infiltreren met resultTANT β-cel dysfunctie en ondergang zijn nog moet worden vastgesteld (herzien in 7,8). Ten tweede, donoren met type 1 diabetes hebben een goed gekarakteriseerde tekort aan β-cellen, zodat combinatie van de CD3 en glucagon vlekken zorgt voor de identificatie van eilandjes, zelfs wanneer β-cel verlies is ernstig 9.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Geen belangenconflicten verklaard.

Acknowledgments

De auteurs danken de donateurs de familie en de Organ Procurement Organisaties die betrokken zijn bij dit onderzoek en Emily Montgomery, Robert Pietras, Ann Fu, Mitali Agarwal, en Roshan Agarwal voor hun deskundige hulp. Dit werk werd gefinancierd door de Juvenile Diabetes Research Foundation (MC-T.) ter ondersteuning van het netwerk voor Pancreatic Organ Donors met diabetes.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
30% Hydrogen Peroxide (H2O2) Fisher Scientific H325-500 Endogenous peroxidase blocking
ABC-Alkaline Phosphatase (AP) Vector Laboratories AK-5000 AP conjugate
Antibody Diluent Invitrogen 003218 Primary antibody
Avidin blocker Vector Laboratories SP-2001 Block endogenous biotin
Biotinylated Goat anti-guinea pig Vector Laboratories BA-7000 Secondary antibody
Bluing Reagent Fisher Scientific 7301 Leica autostainer
Citrate buffer, pH 6.0 BioGenex HK086-9K Antigen retrieval
Clarifier 1 Fisher Scientific 7401 Leica autostainer
Cytoseal XYL Fisher Scientific 8312-4 Coverslip mountant
DAB Vector Laboratories SK-4100 HRP chromogen
DEEB Dako S2003 Endogenous AP blocking reagent
Eosin Y Alcoholic Fisher Scientific 71204 Leica autostainer
Ethanols- 100%, 95%, 90%, 70% Fisher Scientific Various Deparaffinization and coverslipping
Hematoxylin Dako S3301 Dako autostainer
Hematoxylin 7211 Fisher Scientific 7211 Leica autostainer
IgG (all host species for primary antibodies) Various Various Negative controls for primaries
Liquid Permanent Red (LPR) Dako K0640 AP chromogen
Mach2 AP Biocare Medical MALP521L Goat anti-Mouse AP conjugate
Mach2 HRP Biocare Medical MHRP520L Goat anti-Mouse HRP conjugate
Mach2 HRP Biocare Medical RHRP520L Goat anti-Mouse HRP conjugate
Methanol Fisher Scientific Various H2O2 diluent
Normal goat serum Vector Laboratories S-1000 IHC blocking reagent
Sniper Biocare Medical BS966M IHC blocking reagent
TBST 20X Thermo Fisher Scientific, Inc. TA-999-TT IHC buffer
Triology 20x Cell Marque 920P-06 Antigen Retrieval
Xylene Fisher Scientific Various Deparaffinization and coverslipping
Table 1. Specific reagents.
Name Company Catalog Number Comments
Paraffin
Amylase Santa Cruz Biotechnology, Inc. SC-46657 Mouse
Amylin Serotec MCA11267 Mouse
Carbonic anhydrase 19.9 Abcam ab15146 Mouse
Caspase-3, cleaved Cell Signaling Technology 9961 Rabbit
CD20 Dako M0755 Mouse
CD3 Dako A0452 Rabbit
CD34 Cell Signaling Technology 3569 Mouse
CD4 Dako M7310 Mouse
CD45 Dako M0754 Mouse
CD68 Dako M0876 Mouse
CD8 Dako M7103 Mouse
Chromogranin A Dako A0430 Rabbit
CK17 Dako M7046 Mouse
CK19 Dako M0772 Mouse
CK7 Dako M7018 Mouse
C-peptide Cell Signaling Technology 4593 Rabbit
Foxp3 e Bioscience 14-4776-80 Rat
Ghrelin Santa Cruz Biotechnology, Inc. SC-10386 Goat
Ghrelin Abcam ab85104 Rabbit
Glucagon Dako A0565 Rabbit
Glucagon Abcam ab10988 Mouse
Glucagon Bachem T-5037 Guinea Pig
Glut-1 Abcam ab40084 Mouse
Glut-2 Santa Cruz Biotechnology, Inc. SC-9117 Rabbit
Insulin Dako A0564 Guinea Pig
Ki-67 Dako M7240 Mouse
Mafa Novus Biological NB400-137A Rabbit
Pancreatic polypeptide Invitrogen 18-0043 Rabbit
Pdx-1 Abcam ab47308 Guinea Pig
Proinsulin Novocastra NCL-proin-1G4 Mouse
Proinsulin Developmental Studies Hybridoma Bank GS-9A8 Mouse
Secretagogin Sigma-Aldrich HPA 006641 Rabbit
Smooth muscle actin Abcam ab5694 Rabbit
Somatostatin Dako A0566 Rabbit
Synaptophysin Dako M0776 Mouse
Fresh Frozen
CD11b Abcam ab6332 Rat
CD11c Serotec AHP1226 Rabbit
CD25 Novus Biological NB 600-564 Mouse
CD94 Abcam ab61874 Mouse
GAD65 Santa Cruz Biotechnology, Inc. SC-130569 Mouse
HLA-ABC Dako M0736 Mouse
Table 2. Primary antibodies.
Name Company Catalog Number Comments
Aperio Scanscope CS Aperio Technologies Digital slide scanner
DAKO Autostainer Plus Dako IHC stains
Label Matrix printing software BioCarta LM7UP57 Slide label software
Leica XL Autostainer Leica Microsystems H&E stains
Premium Coverglass Fisher Scientific 12-548-5J Coverslip
Spectrum Information Manager Aperio Technologies Scanner software
Superfrost Plus slides Fisher Scientific 12-550-15 Positively charged slides
Vegetable steamer Black and Decker Various Antigen retrieval
Zebra TLP 3742 CDWG TLP3742 Slide label printer
Table 3. Specific supplies and equipment.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. In't Veld, P., Marichal, M. Microscopic anatomy of the human islet of Langerhans. Adv. Exp. Med. Biol. 654, 1-19 (2010).
  2. Matveyenko, A. V., Butler, P. C. Relationship between beta-cell mass and diabetes onset. Diabetes Obes. Metab. 10, Suppl . 4. 23-31 (2008).
  3. Saisho, Y. Pancreas volumes in humans from birth to age one hundred taking into account sex, obesity, and presence of type-2 diabetes. Clin. Anat. 20, 933-942 (2007).
  4. Hruban, R. H. Pancreatic intraepithelial neoplasia: a new nomenclature and classification system for pancreatic duct lesions. Am. J. Surg. Pathol. 25, 579-586 (2001).
  5. Campbell-Thompson, M. Pancreatic adenocarcinoma patients with localised chronic severe pancreatitis show an increased number of single beta cells, without alterations in fractional insulin area. Diabetologia. 52, 262-270 (2009).
  6. Meier, J. Beta-cell replication is the primary mechanism subserving the postnatal expansion of beta-cell mass in humans. Diabetes. 57, 1584-1594 (2008).
  7. Rowe, P. A., Campbell-Thompson, M. L., Schatz, D. A., Atkinson, M. A. The pancreas in human type 1 diabetes. Semin. Immunopathol. 33, 29-43 (2011).
  8. Veld, I. n't, P, Insulitis in human type 1 diabetes: The quest for an elusive lesion. Islets. 3, 131-138 (2011).
  9. van Belle, T. L., Coppieters, K. T., von Herrath, M. G. Type 1 diabetes: etiology, immunology, and therapeutic strategies. Physiol Rev. 91, 79-118 (2011).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics