Inducerende Myointimal Hyperplasie Versus atherosclerose in Muizen: Een inleiding van twee geldige Models

* These authors contributed equally
Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Deze video toont twee modellen van intima plaque ontwikkeling in muizen slagaders en benadrukt de verschillen in myointimal hyperplasie en atherosclerose.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Stubbendorff, M., Hua, X., Deuse, T., Ali, Z., Reichenspurner, H., Maegdefessel, L., Robbins, R. C., Schrepfer, S. Inducing Myointimal Hyperplasia Versus Atherosclerosis in Mice: An Introduction of Two Valid Models. J. Vis. Exp. (87), e51459, doi:10.3791/51459 (2014).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Diverse in vivo laboratorium knaagdiermodellen voor de inductie van slagader stenose zijn ingesteld om ziekten die arteriële plaque vorming en vernauwing bevatten zoals waargenomen bijvoorbeeld ischemische hartziekte nabootsen. Twee zeer reproduceerbaar muismodellen - zowel resulterend in stenose, maar elke onderliggende waarde een andere weg van ontwikkeling - worden hier geïntroduceerd. De modellen zijn de twee meest voorkomende oorzaken van stenose; namelijk een muismodel voor elke myointimal hyperplasie, en atherosclerose worden getoond. Om myointimal hyperplasie, wordt een ballonkatheter letsel van de abdominale aorta uitgevoerd. Voor de ontwikkeling van atherosclerotische plaque, het ApoE - / - is muismodel combinatie met westerse vet dieet gebruikt. Verschillende model aangepast opties voor het meten en evalueren van de resultaten worden genoemd en beschreven in dit manuscript. De introductie en de vergelijking van deze twee modellen biedt information voor wetenschappers om de juiste slagader stenose model overeenkomstig de wetenschappelijke vraag kiezen.

Introduction

In geïndustrialiseerde landen blijft ischemische hartziekten een belangrijke oorzaak van sterfte 1. De oorzaken voor coronaire stenose zijn legio en omvatten myointimal hyperplasie evenals atherosclerose, met revascularisatie resterende de meest voorkomende behandeling strategie 2. Onderzoek modellen duidelijk onderscheid tussen de mechanistische paden van intimale hyperplasie en atherosclerose zijn essentieel voor de pathobiological en pathofysiologische processen arteriële plaque ontwikkeling te onderzoeken. In deze video twee verschillende muismodellen gebruikt om ofwel de ontwikkeling van myointimal hyperplasie of atherosclerose te bestuderen worden geïntroduceerd.

Myointimal hyperplasie wordt verondersteld te vormen via de "responstijd naar schade" paradigma oorspronkelijk beschreven voor atherosclerose 3. De mechanische verstoring van de endotheliale laag leidt tot een intensieve verbouwing versterkt door paracriene effecten. Er zijn verschillende different diermodellen vaak gebruikt om myointimal hyperplasie studeren. Sommige groepen gebruiken dan metaal in de omhooggaande aorta van ratten 4. De aorta erosie model uitgevoerd met een ballonkatheter wordt ook vaak gebruikt in laboratoriumratten 5,6. De intima hyperplasie model uitgevoerd in het laboratorium muizen 7 implementeert ligatie van de halsslagader en induceert myointimal laesies 8. In ons laboratorium, de abdominale aorta erosie model - evenals een gehumaniseerd stent restenose model 9 worden algemeen gebruikt - de ontwikkeling van myointimal hyperplasie bestuderen. Deze video benadrukt dat het kiezen van de juiste experimentele diermodel is cruciaal voor mechanistische of pathofysiologische studies van arteriële stenose.

Myointimal hyperplasie modellen moeten worden onderscheiden van atherosclerose modellen. Voor deze laatste, apolipoproteïne E deficiënte (ApoE - / -) muizen worden in combinatie met westerse dieet vaak gebruikt om atheroscl inducerenerotische laesies 10,11,12,13. Voorbeelden voor de inductie van beide soorten myointimal ziekte bij muizen hier, samen met verschillende model aangepast opties vat stenose 14 te analyseren.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Alle dierlijke werkzaamheden moeten worden uitgevoerd volgens relevante richtlijnen verzorging van dieren. Verkrijgen institutionele goedkeuring voor dierlijke werk vóór begin protocol.

1. Myointimal Hyperplasia Model (A)

Voor de intima hyperplasie model, kopen C57BL/6J (Voorraad nummer 000664, C57BL/6J) muizen op de leeftijd van 8 weken met een gewicht van ongeveer 25 g. Huis muizen voor deze experimenten onder gebruikelijke voorwaarden; voeden standaard muis muizen chow en bieden water ad libitum.

  1. Muis voorbereiding: Introduceer de muis om een verdoving staat met isofluraan (2%) gebruik van een inductie kamer.
    1. Verwijder de buik haar met een tondeuse, leg de muis op zijn rug en ter dekking van zijn neus en mond met het gezichtsmasker om de narcose te verzekeren.
    2. Met Provo-Jodium, ontsmet de buikstreek universeel, gevolgd door 80% ethanol, in twee cycli.
    3. Zorgen voor de afwezigheidvan reflexen door te knijpen de achterste ledematen om de voldoende diepte van de anesthesie te monitoren.
    4. Scheid de huid en spieren langs de linea alba in twee stappen om de buikorganen bloot.
    5. Leg de darmen in een zoutoplossing gehydrateerd handschoen. Wikkel de handschoen rond de darmen om ze vochtig te houden.
    6. Aandachtig duidelijk het vetweefsel bevloering de abdominale aorta weg. Expose de infrarenale aorta tot zijn vertakking, het verzorgen elke tak schepen niet te verwonden.
    7. Plaats eerst een microchirurgische klem op de proximale, infrarenale aorta het afsluiten van de bloedstroom. Nu, breng dan een tweede distale klem naast de aortabifurcatie.
    8. Wanneer de bloedstroom wordt onderbroken, een kleine incisie in de aorta dicht bij het proximale klem.
    9. Plaats de ballon-katheter, die is bevochtigd met 0,9% zoutoplossing en vooruit naar het distale klem van de aorta.
    10. Voor endotheelschade, beroven de aorta door het opblazen van de balloon voorzichtig en langzaam trekken van de katheter in de richting van het proximale klem.
    11. Herhaal de denudatie manoeuvre tweemaal.
    12. Verwijder de katheter en sluit de aorta incisie met 10-0 Prolene lopen hechtingen.
    13. Open de distale klem voorzichtig. In geval van een bloeding op de aortotomy plaats, sluit de klem weer, zoek het bloeden en zet extra onderbroken steken, als dat nodig is.
    14. Als er geen bloeden kan worden waargenomen, opent u langzaam de proximale klem.
    15. Een aorta-puls moet distaal zichtbaar vanaf de incisie. Nu de darmen kan worden geregeld terug in situ.
    16. Spoel de buikholte gebruik voorverwarmde steriele zoutoplossing.
    17. Sluit de buikwand te beginnen met de spierlaag behulp 6-0 Prolene lopen hechtingen.
    18. Vervolgens wordt de huid aan te passen bij het gebruik van 5-0 prolene uitvoeren van lopende hechtingen.
    19. Gedurende de tijd dat de muis nog verdoofd toepassing 4-5 mg / kg Carprofen via een subcutane injectie.
    20. Voeg Metamizol aan het drinkwater (50 mg Metamizol per 100 ml) voor pijnbestrijding en verder gedurende 3 dagen na de operatie. Monitor dier gedurende herstel.
      Opmerking: De observatieperiode voor dit model is 28 dagen.

2. Atherosclerose Model (B)

Voor de atherosclerose model, kopen apolipoproteïne E deficiënte (ApoE - / -) muizen (Voorraad nummer 002052, B6.129P2-Apoetm1Unc / J) op een leeftijd van 4 weken, en vervolgens gevoed voor 4-6 maanden. Huis muizen voor deze experimenten onder gebruikelijke voorwaarden; voeden muizen hoge lipide westerse dieet bij aankomst (Harlan Laboratories TD.88137) en zorgen voor water ad libitum voor een duur van 4 tot 6 maanden.

  1. Muis voorbereiding:
    1. Voeden de ApoE - / - muizen met westerse dieet te beginnen bij 4 weken oud. Dieetmanipulatie moeten rechtstreeks beginnen bij aankomst.
    2. Handhaaf westerse dieet gedurende de duur van het experiment. </ Li>

3. Analyse

  1. Myointimal hyperplasie model (A)
    Het gebied van belang in dit model is het "beschadigde oppervlak". Opties voor analyse omvatten luminale vernietiging, I / M-verhouding (intima / media verhouding), maximale myointima dikte myointimal gebied Trichrome kleuring voor fibrose, en H & E kleuring van mononucleaire cellen (zoals weergegeven in figuren 1A-1C). Volgens de wetenschappelijke vraag talrijke andere kleuringen zoals Picrosirius rood voor collageen, immunohistochemie en confocale werkwijzen kunnen worden toegepast.
  2. Atherosclerose model (B)
    De gebieden van belang in dit model zijn de aortaklep, de aortaboog en de dalende aorta. Opties voor analyse: Soedanrood kleuring voor lipiden en trichroomkleuring van de aortaklep, de aortaboog en de dalende aorta (zie figuur 1D).
    Dit model levert ook een verscheidenheid aan andere vlekken opties zoalsbijvoorbeeld Oil Red O voor neutrale lipiden, Picrosirius rood, immunohistochemie, en confocale methoden.
    1. Soedan rode vlekken: Voer de Soedan rode vlekken op vers geoogste aortaweefsel.
      1. Verwijder de voeding 6h voor de oogst.
      2. Introduceer de muis om een ​​verdoving staat met isofluraan (2%) met behulp van een inductie kamer. Verzekeren de afwezigheid van reflexen door te knijpen de achterste ledematen om de voldoende diepte van de anesthesie te monitoren.
      3. Open de kist; afgesneden van de apex van het hart en perfuseren via de linker ventrikel, eerst met zoutoplossing (3 ml), gevolgd door 4% PFA (3 ml) via de aortawortel de aorta vast.
      4. Bevrijd de aorta van de wortel naar de splitsing. Probeer om vetweefsel te verwijderen zoveel mogelijk.
      5. Snijd het hart en de aorta wortel, en bewaar ze in 4% PFA voor histologie.
      6. Voor histologie de aortawortel dient zorgvuldig in paraffine blok geplaatst in een rechtopstaande positie op het uitsnijden van de aor toestaantic wortel genereren dia's die alle 3 valvulaire folders weer te geven.
      7. Snijd het ene uiteinde van de aorta boom en zet hem op de siliconenlaag met fijne pennen. Open de aorta lengterichting en bevestig de aorta weefsel.
      8. Spoel het weefsel met 50% ethanol. Dompel het weefsel met Sudan III kleuring oplossing voor ongeveer 15 minuten.
      9. Licht spoelen met 50% ethanol om het overtollige Soedan III te verwijderen. (Let op: 50% ethanol kan de kleurstof weg te wassen.) Spoel met dH 2 O, en foto's te nemen voor verdere analyse.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Figuur 1 toont de verschillende analyse-opties en de geïnduceerde ziekte staat voor beide modellen. Voor de intima hyperplasie model, is de analyse van representatieve dwarsdoorsneden in trichroomkleuring getoond. Uit deze dwarsdoorsneden, kunnen de resultaten zoals I / M-verhoudingen, maximaal plaquedikte maximale dikte van de intima in de lumen luminale vernietiging in procenten, en plaque ruimte worden gemeten en berekend.

Om de resultaten van de atherosclerose model evalueren alle bovengenoemde werkwijzen worden gebruikt. Bovendien, de kwantitatieve plaque gebied in de abdominale aorta, de mate van plaquevorming in de aortaklep, de aortaboog en de dalende aorta kan worden gemeten via trichroomkleuring.

Figuur 1
Figuur 1. Denuded muis aorta's worden geoogst, paraffine ingebed, en een representatieve dwarsdoorsnede wordt getoond in trichroomkleuring (A). I / M ratio's worden berekend op trichroom gekleurde coupes door het meten van de intima en media dikte met behulp van computer-analyse gevolgd door de berekening van de ratio (B). Maximum plaque dikte wordt gemeten als de maximale dikte van de intima in het lumen door computer morfometrie (B). Luminal uitwissen (in procenten) wordt bepaald door het aftrekken van de nieuwe binnenste lumen van de voormalige lumen, gedeeld door het voormalige lumen, vermenigvuldigd met 100% (C). De plaque gebied wordt bepaald door het aftrekken van de nieuwe binnenste lumen van de voormalige lumen (C). De dalende aorta, longitudinaal geopend lipofiele structuren en gekleurd met Sudan rood weergegeven (D). Om de kwantitatieve plaquette gebied te bepalen, Soedan rood gekleurde letsels evenals de totale aorta gebied, worden gemeten en anazed behulp van software voor beeldanalyse. Dwarsdoorsneden van paraffine ingebedde monsters van de aortaklep, de aortaboog en de dalende aorta trichroom afgebeeld (E). Luminal uitwissen, plaque gebied, en maximum plaquedikte worden berekend zoals hierboven beschreven. Klik hier om een grotere versie van deze afbeelding te bekijken.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Hoewel beide ziekten daarmee soortgelijke symptomen bij de patiënt, de onderliggende mechanismen van plaque ontwikkeling en derhalve de behandeling benaderingen erg verschillend 2. In verschillende vormen van arteriële stenose klinische bevindingen bij de patiënten en de looptijd van plaqueontwikkeling afhankelijk van het onderliggende mechanisme.

Afhankelijk van de klinische bevindingen in de patiënt moeten verschillende methoden monsteranalyse worden uitgevoerd 5,15. Het is noodzakelijk de analyse aangepast aan de kenmerkende bevindingen van de ziekte die wordt nagebootst door het model 14. Vice versa, afhankelijk van de ziekte die wordt onderzocht, de meest haalbare en geschikte diermodel worden gekozen. Bovendien is het cruciaal dat nieuwe geneesmiddelen mechanistisch dient voor model.

Beide modellen geïntroduceerd in deze publicatie zijn snel en eenvoudig uit te voeren en zeer reproduceerbaar. Er zijn een aantal major verschillen tussen de modellen. Bijvoorbeeld, de observatietijd in myointimal hyperplasie model 28 dagen 16, terwijl atherosclerotische plaque ontwikkeling moet vier tot zes maanden 17.

Een ander belangrijk verschil is de toepasbaarheid op verschillende muisspanningen. De atherosclerose model is gebaseerd op het ApoE - / - of LDL - / - muizen en daarom alleen in muizen die deze specifieke knockout worden uitgevoerd. / - - Aan muizen die zowel de ApoE maken en een andere gewenste knock-out is zeer tijdrovend. De myointimal hyperplasie inducerende ballonletsel operatie kan worden uitgevoerd in elke muis. De myointimal hyperplasie model geeft meer mogelijkheden om de muis stam van belang te wijzigen, terwijl de atherosclerotische model geconfronteerd met een strikte beperking tot muizen die het ApoE - / -.

De intensiteit van de ballon ontbloting is cruciaal voor de uitkomst van de myointimal hyperplasie laesies. Als de katheter schade te agg uitgevoerdressively, misschien aneurysmavorming optreden; Als de erosie te voorzichtig wordt uitgevoerd, kan plaque ontwikkeling te zwak om verschillen tussen groepen te zien. In deze procedure is het handig als alle operaties binnen een studie worden uitgevoerd door dezelfde persoon. Het voordeel van het ballonletsel naar andere technieken die de invoering van stijve of scherpe obstakels zoals draden nodig, de flexibiliteit en de mogelijkheid om de grootte en de druk van de ballon te passen via het opblazen van de ballon-katheter. Verder is de opgeblazen ballon-katheter is dun en kan via een relatief kleine incisie in vergelijking met dikkere, stijvere erosie onderdelen in de aorta worden geplaatst. Voor de atherosclerotische plaquevorming model kan cruciaal zijn om te beginnen voeden van de westerse dieet op jonge leeftijd van de muizen omdat een grote invloed op de ernst van de laesies hebben. Sinds laesies in beide geïntroduceerd modellen te ontwikkelen in zowel vrouwelijke als mannelijke muizen, kan het geslacht ADAPTE zijnd de eisen van het experiment.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgments

De auteurs danken Christiane Pahrmann voor technische ondersteuning. SS ontving gelden van de Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) (SCHR992/3-2 en SCHR992/4-2).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Thyoglycollate Broth 3% Fluka 70157 powder
PFA 4% Electron Microscopy Sciences #157135S 20%
Sudan III staining solution Sigma Aldrich S4131 powder
mouse C57BL/6J Jackson Laboratories Stock # 0006664
mouse ApoE -/- Jackson Laboratories Stock #002052
Western Diet Harlan Laboratories TD.88137
hair clipper WAHL 8786-451A ARCO SE
Forene Abbott Isoflurane
microsurgical clamp Fine Science Tools 18055-04 Micro-Serrefine - 4 mm
clamp applicator Fine Science Tools 18056-14
catheter
10-0 prolene suture Ethicon 788G
6-0 prolene suture Ethicon 8709H
5-0 prolene suture Ethicon EH7229H
Rimadyl Pfizer Carprofen
Metacam 1.5 mg/ml Boehringer Ingelheim Metamizol

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Manuel, D. G., Leung, M., Nguyen, K., Tanuseputro, P., Johansen, H. Burden of cardiovascular disease in Canada. Can J Cardiol. 19, 997-1004 (2003).
  2. ER, O. B., Ma, X., Simard, T., Pourdjabbar, A., Hibbert, B. Pathogenesis of neointima formation following vascular injury. Cardiovasc Hematol Disord Drug Targets. 11, 30-39 (2011).
  3. Ross, R. The pathogenesis of atherosclerosis: a perspective for the 1990s. Nature. 362, 801-809 (1993).
  4. Meng, X., Zhang, F., Valji, K., et al. Ultrasound guidance for the creation of a small animal model of aortic injury. J Vasc Interv Radiol. 22, 1193-1197 (2011).
  5. Deuse, T., Koyanagi, T., Erben, R. G., et al. Sustained inhibition of epsilon protein kinase C inhibits vascular restenosis after balloon injury and stenting. Circulation. 122, 170-178 (2010).
  6. Schrepfer, S., Deuse, T., Sultan, K. R., et al. Inhibition of restenosis development after mechanical injury: a new field of application for malononitrilamides. Cardiology. 108, 128-137 (2007).
  7. Tao, M., Mauro, C. R., Yu, P., et al. A simplified murine intimal hyperplasia model founded on a focal carotid stenosis. Am J Pathol. 182, 277-287 (2013).
  8. Kumar, A., Lindner, V. Remodeling with neointima formation in the mouse carotid artery after cessation of blood flow. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 17, 2238-2244 (1997).
  9. Hua, X., Deuse, T., Michelakis, E. D., et al. Human internal mammary artery (IMA) transplantation and stenting: a human model to study the development of in-stent restenosis. J Vis Exp. 3663 (2012).
  10. Daugherty, A., Whitman, S. C. Quantification of atherosclerosis in mice. Methods Mol Biol. (2003).
  11. Nakashima, Y., Plump, A. S., Raines, E. W., Breslow, J. L., Ross, R. ApoE-deficient mice develop lesions of all phases of atherosclerosis throughout the arterial tree. Arterioscler Thromb. 14, 133-1340 (1994).
  12. Zhang, Y., Li, L., You, J., Cao, J., Fu, X. Effect of 7-difluoromethyl-5, 4'-dimethoxygenistein on aorta atherosclerosis in hyperlipidemia ApoE(-/-) mice induced by a cholesterol-rich diet. Drug Des Devel Ther. 7, 233-242 (2013).
  13. Rudolph, T. K., Rudolph, V., Edreira, M. M., et al. Nitro-fatty acids reduce atherosclerosis in apolipoprotein E-deficient mice. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 30, 938-9345 (2010).
  14. Rondelet, B., Kerbaul, F., Motte, S., et al. Bosentan for the prevention of overcirculation-induced experimental pulmonary arterial hypertension. Circulation. 107, 1329-1335 (2003).
  15. Zeibig, S., Li, Z., Wagner, S., et al. Effect of the oxLDL binding protein Fc-CD68 on plaque extension and vulnerability in atherosclerosis. Circ Res. 108, 695-703 (2011).
  16. Painter, T. A. Myointimal hyperplasia: pathogenesis and implications. 2. Animal injury models and mechanical factors. Artificial organs. 15, 103-118 (1991).
  17. Nitschke, Y., Weissen-Plenz, G., Terkeltaub, R., Rutsch, F. Npp1 promotes atherosclerosis in ApoE knockout mice. Journal of cellular and molecular. 15, 2273-2283 (2011).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics