Author Produced

Brachialis arterien Catheterization i svin

Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Videoen beskriver i detalj catheterization fra distale brachialis arterien i svin. Denne fremgangsmåten nøyaktig måler arterielt blodtrykk og er en enkel og rask metode å samle eksempler for arterial blod gass målinger.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Uwiera, R. R., Toossi, A., Everaert, D. G., Uwiera, T. C., Mushahwar, V. K. Brachial Artery Catheterization in Swine. J. Vis. Exp. (145), e59365, doi:10.3791/59365 (2019).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Videoen beskriver i detalj catheterization fra distale brachialis arterien i svin. Denne teknikken gjør at forskerne å måle arterial blodtrykket kontinuerlig og arteriell blod prøver å vurdere arterial blod gass målinger. Arterial blod trykk og arteriell blod gasser er viktige fysiologiske parametere til å overvåke under eksperimentelle prosedyrer. I svin nattestid fire vanlige metoder for arteriell catheterization, inkludert catheterization av carotis, femur, auricular og mediale saphenous arteriene. Hver av disse teknikkene har fordeler, for eksempel enkel tilgang for auricular arterien og ulemper med dype vev disseksjon for arteria carotis catheterization. Beskrevet er alternativ arteriell catheterization i svin, catheterization av den distale del av brachialis arterien, en rask prosedyre som krever relativt liten vev disseksjon og inneholder informasjon som er i tråd med data samlet fra andre arteriell catheterization nettsteder. Fremgangsmåten bruker en mediale tilnærming langs en skrå flyet av de lavere brachium, plassert mellom olecranon og bøyer aspektet av albueleddet, og denne tilnærmingen kan forskere styrkene uhindret frihet for prosedyrer som involverer den caudoventral, caudodorsal tilbake eller bakbeina av grisen. På grunn av plasseringen av øvre forlemen av catheterized fartøyet og potensielle utfordringer effektiv homeostasis etter kateter fra arteria, kan denne teknikken være begrenset til ikke-gjenopprettingsprosesser.

Introduction

Kirurgiske inngrep er brukt i eksperimentell forskning for å utvikle dyremodeller som forbedrer vitenskapelige utvikling. Den vitenskapelige litteraturen er fylt med eksempler på romanen kirurgisk dyr modeller1,2,3. Kirurgiske prosedyrer er en komplisert prosess som involverer ikke bare manipulering av anatomiske strukturer, men også komplisert fysiologiske interaksjon med ulike rusmidler kreves for anestesi og analgesi. Dette samspillet kan indusere store endringer i fysiologiske prosesser i dyret og krever som årvåken overvåking av dyr4. Klinisk vellykket kirurgisk resultatene har vært forbundet med målinger av arteriell blod gasser og arteriell blod trykk5. Parameterne klinisk krever evne til å måle arterial blodtrykket og samle arteriell blod effektivt, som i sin tur krever den vellykkede catheterization en arterie6,7.

Arterial catheterization samle arteriell blod og måle press er brukt i ulike dyrearter5,6,7,8,9,10, 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 og dyr på ulike aldersgrupper utvikling19,20,21 og har vært rettet mot både utvinning (klinisk og diagnostiske)4,5, 6,7,8 og ikke-utvinning (eksperimentell) prosedyrer14,15,16,17,18. Videre er den arteriell hjelpemiddel og plasseringen av arterien i sammenheng med den kirurgiske prosedyren også viktige hensyn når du velger en arterie for arterial blod målinger. Er for eksempel median caudal arterien i hunder og ansikts arterien i hester, samt pedal arterien i både hunder og hester, brukes til diagnostiske måling og overvåking under gjenoppretting prosedyrer6,7, 8. derimot carotis og femoral arterier er ofte catheterized i svin for enten ikke-utvinning eller langsiktig kateter implantasjon eksperimenter14,15,18.

I svin, har arteriell catheterization måle enten arterielt blodtrykk eller samle arteriell blod rutinemessig ansatt enten carotis, femur, mediale saphenous eller auricular arterier22,23. For spesialiserte ikke-rutine prosedyrer, har andre mer uvanlige arterier blitt brukt, inkludert subclavian og iliaca arteriene, å måle brachialis arterien anatomiske tortuosity17 og bilde aorta16, henholdsvis. Uansett hvilken arterien er valgt for catheterization, hver arterien har iboende fordeler og ulemper for bruken. For eksempel auricular arterien er anatomisk enkel tilgang, men bruken kan være begrenset til sin nærhet til den marginale øre årer11,12. Sammenligning arteria carotis er relativt stor og robust24, men det ligger dypt i den jugulare fure og krever materielle vev disseksjon25. Slik er identifisere en arterie som kan være catheterized for å måle arterieblodtrykk og samle arteriell blod garantert. Denne video- og manuskriptet beskriver i detalj catheterization fra distale brachialis arterien i svin, en teknikk som kan brukes til ikke-gjenopprettingsprosesser. Spesielt ble gris brachialis arterien catheterization brukt til å måle arterielt blodtrykk og arterial blod gass parametere under en lumbalcolumna kirurgi med baklem mål (data fra denne delen av operasjonen ikke er presentert).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Alle prosedyrer på forsøksdyr beskrevet i både videoen og manuskriptet ble godkjent av institusjonelle Animal Care og bruk komiteen av University of Alberta

1. kirurgisk anestesi og kirurgisk utarbeidelse av griser.

  1. Premedicate 50 kg Landrace-Yorkshire kommersielle griser intramuskulært med bedøvende stoffet cocktail som inneholder ketamin hydrochloride (22 mg/kg,), xylazine hydroklorid (2,2 mg/kg) og glycopyrrolate hydroklorid (10 µg/kg).
  2. Definere alt utstyr med overvåking klinisk parametre på slutten av tabellen nær gris hode. Sikre utstyret ikke vil begrense tilgangen til grisen. Produsere nøyaktig arterial blodtrykket måling ved å plassere trykktransduceren på et horisontalt plan, nivå med hjertet.
  3. Bedøve griser med inhalert isoflurane gass (4-5% isoflurane på 500-1000 mL/min O2) med en riktig størrelse ansiktsmaske. Visualisere stemmebåndene med en veterinær laryngoskop (17-25 cm lange rette blad) og bruke aktuelle 10% lidocaine spay til vokal ledninger å begrense risikoen for laryngospasm og luftveier obstruksjon.
  4. Intubate griser ved å sette inn en cuffed endotracheal tube (9.0 mm indre diameter (ID)) gjennom stemmebåndene og vedlikeholde anestesi med isoflurane gass (0,5% - 3.0% isoflurane på 1000-2000 mL/min O2). Ventilere grisen på en mekanisk ventilator (18-22 åndedrag/min) og sikre alle utløpte bedøvende gass er scavenged og ventilert ute kirurgisk suite. Vurdere anestesi kjeven tone, og både pedal og palpebral refleks svar.
    Merk: Administrere intravenøs Lactated Ringer i løsning (LRS, 10-50 mL/kg/t; se trinn 1.6) å forsterke hemodynamic funksjon og redusere isoflurane gass anestesi indusert depresjon av kardiovaskulære utgang i svin26.
  5. Sikre en puls oksymeter til mucosal overflaten av tungen med medisinsk tape skjermen hjertefrekvens og metning perifert blod oxygenation (SpO2). Sett inn en temperatur sonde ca 2-4 cm i nesehulen overvåke kroppstemperatur. Plass griser på et oppvarmet bord å vedlikeholde normal kroppstemperatur (38-40 ° C) under kirurgiske prosedyren.
  6. Sikre kirurgisk sterilitet riktig vev forberedelser.
    1. Rengjøre eksterne øret forberede venøs catheterization med 10% povidon-jod kirurgisk scrub løsning og tillate løsningen på luften tørr.
    2. Med en 20 G, 1 tomme intravenøs kateter, catheterize en marginal øret venen å levere enten intravenøs væsker (LRS; 10-50 mL/kg/t) eller tillegg av andre bedøvende agenter.
    3. Forbedre gris anestesi og analgesi hvis nødvendig for invasiv prosedyrer med kontinuerlig intravenøs remifentanil hydroklorid infusjon (0,05-0.14 µg/kg/min).
  7. Plassere grisen i en lateral tilbakelent posisjon og forsiktig utvide foran Ben ca 10 til 12 cm fra skulderen. Klippet håret på huden overflaten av den mediale aspekten av brachium (øvre forlemen). Landemerke distale brachialis arterien pulsen ved palpasjon.
    Merk: Landmarked plasseringen av arterien ligger langs en skrå fly med brachium ca 9 cm fra olecranon og 5 cm fra den bøyer aspekten av albueleddet. Brachialis arterien reiser proximally mot caudal tredje i skulderblad traversering humerus.
  8. Tilsvarende for å gå 1.6, sikre kirurgisk sterilitet riktig vev forberedelser. Ren hudoverflaten med 10% povidon-jod kirurgisk skrubbe løsning og tillate løsningen på luften tørr. Drapere brachialis arterien catheterization området med fire små disponibel kirurgisk gardiner.

2. vev disseksjon og catheterization fra brachialis arterien

  1. Gjør en 6 cm huden snitt med skalpell blad å utsette underliggende vev. Rett ut dissekere med Metzenbaum saks langs mediale overflater av biceps brachii, dypere dissection, til pulserende arterien er funnet.
  2. Bruk bomull vattpinner å forsiktig erte bort adventitia fra brachialis arterien, median nerve og brachialis blodåre; strukturer som er i nærheten og i samme fascial fly. Mild disseksjon er nødvendig, viktigere sikrer minimal skade median nerve under prosedyren. Brachialis arterien ligger ca 2.0-2.5 cm under huden og er mediale m.coracobrachialis og lateral til tensoren fasciae antibrachii og overlies en liten del av medial hodet av triceps muskel27,28.
    Merk: Sett et festepunkt å holde huden snitt åpne, enklere tilgang til brachialis arterien. Plass en andre festepunkt (valgfritt) til videre bistå fartøyet eksponering.
  3. Fukt alle vev med varmt saltvann (37 ° C) for hele dissection beholde bedre konstruksjonssikkerhet og forbedret vev behandling under prosedyren.
  4. Opprette en tunnel under arterien med avstumpet tang, og deretter sende tre 2-0 polyglactin suturer under arterien. Med vilje, la endene av denne Sutur relativt lang (3-4 cm) til å sikre kateter arterien. Legge til en "løs Sutur tie" muliggjør rask kateter festing, til to første bildet som skilles 1.0 cm fra hverandre og er ca 1.5-2.0 cm proksimale til den tredje distale Sutur. Ligate det mest distale suture først å occlude arterien.
  5. Sett inn en 22 G, 1 tomme perifert venekateter til arterien og avansere til kateter (helt til kateter hub) av stylet i fartøyet. Delvis ut stylet fra kateter visualisere arteriell blod, sikre riktig fartøyet plasseringen av kateter. Deretter sikre fast kateter i fartøyet ved å binde den midterste Sutur. Fjern stylet og raskt cap kateter for å minimere blødning.
  6. Tømme snitt og kateter med varmt saltvann (37 ° C). Binde det mest proksimale suture og viktigere sikre at den distale Sutur tett er festet rundt kateter navet som dette forbedrer kateter stabiliteten og reduserer utilsiktet aktivitetsforsinkelser kateter fra arteria (dvs. i gris reposisjonering).
    Merk: Hvis den første plasseringen av kateter inn arterien mislykkes, eller fartøyet er skadet, sette kateter inn i arterien på en posisjon ca. 0,25 cm proksimale til første kateter innsetting området.
  7. Raskt knytte LRS fylt intravenøs forlengelsesslangen med tilkoblede arteriell trykktransduceren kateter og deretter lavage kirurgiske området med varmt saltvann (37 ° C), holde vev fuktig, og rengjør alle blod som sølt i de omkringliggende vev . Tømme kateter med saltvann å sikre kateter patency og hindre blodpropper dannes langs kateter veggen.
    Merk: Se etter svinger arterial blodtrykket linje feil (dvs. lekkasjer), opprette svinger planlagte ved nullstilling arteriell press skjermen målinger og sikre riktig arterial blodtrykket bølge formasjoner.
  8. Sikre fortsatt kateter patency ved å opprettholde flush porten på forlengelseslinjen trykk over 250 mmHg, med et trykk infuser bag levere 3-5 mL/min LRS.
    1. Valgfritt: Plassere to 2-0 polypropylen eller to 2-0 polyglactin suturer rundt kateter huben eller intravenøs forlengelsen linje hub å forbedre kateter stabilitet i arterien.

3. vev nedleggelse og kroppen posisjonering

  1. Lukk muskelen lag med en enkel Sutur kontinuerlig mønster med en 2-0 polyglactin Sutur på en klippe eller konisk nål og lukke huden i en enkel avbrutt Sutur mønster med en 2-0 polypropylen Sutur på en klippe nål.
    Merk: Om hverandre, 2-0 polyglactin eller 2-0 polypropylen suturer kan brukes å lukke muskler og hud.
  2. Plass grisen i ventrale recumbency ved å rotere magen av en lateral tilbakelent gris mot kirurgisk bordet. En venstre sidede lateral tilbakelent gris roteres med klokken, mens en høyre sidede lateral tilbakelent gris roteres i en teller urviseren.
  3. Plass catheterized forlemen i 40° vinkel til midtlinjen av virvelsøylen for grisen. Forlemen plasseringen genererer beste arteriell blodstrømmen og mest nøyaktige arterial blodtrykksmålinger.

4. overvåking klinisk parametere

  1. Måle hemodynamic og respiratoriske samt temperatur gjennom hele anestesi og kirurgiske prosedyren bruker riktig overvåking utstyr.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Brachialis arterien catheterization tillater kontinuerlig overvåking av arterial blodtrykket og intermitterende prøvetaking arteriell blod under utvidet kirurgiske prosedyrer i svin. Målte parametere ble Hentet fra syv 50 kg Landrace-Yorkshire kommersielle griser som beskrevet. Totaltiden krevde å catheterize brachialis arterien var 35,2 ± 4.4 min fra første arterien landmarking til siste kirurgisk snitt nedleggelse (figur 1). De arteriell målt over 120 min og systolisk, diastolisk, og mener arteriell presset var 102.9 ± 1,76, 61.2 ± 0,92 og 74.8 ± 0.89 mmHg, henholdsvis (figur 2). Data fra figur 2 viser en forbigående nedgang i systolisk blodtrykk på 75 min og 120 minutter under prosedyren med etterfølgende gjenoppretting. Dette er en vanskelig observasjon å forklare som hendelsen hadde kort og synes ikke å ha noen skadelige effekter på griser. Det er mulig kulminasjonen av langvarig kirurgi, kombinasjon av anestesi (isoflurane gass) og analgetika (remifentanil hydroklorid) påvirket systolisk blodtrykk, men ytterligere undersøkelser er nødvendig for å avgjøre den mechanism(s) resulterende i denne observasjonen. Viktigere, var disse målt presset lik arteriell press i griser anesthetized med enten en kombinasjon av injeksjon syntetiske narkotiske og isoflurane gass eller isoflurane gass alene29,30,31 . Målt arterial blod gass komponentene over 120 min er vist i tabell 1 og inkluderer kjemiske parametere for å evaluere syre base balanse, hemoglobin innhold og elektrolytt konsentrasjoner. Verdiene presentert var dokumentert arterial blodtrykket og klinisk kjemi referanse områder for svin18,32,33,34; men et betydelig funn ble økt anion gapet og reduserte totale hemoglobin 120 minutter. Disse endringene i verdier var sannsynligvis knyttet fysiologiske endringer som kan forekomme under en vesentlige inngrep fremgangsmåte. Viktigst, og i forbindelse med arteriell catheterization, informasjonen understrekingstegn nøyaktig måler av arteriell press og arteriell blod kjemi er lett oppnådd fra brachialis arterien catheterization.

Figure 1
Figur 1 : Tidskrav: Catheterization fra brachialis arterien i griser. Resultatene er uttrykt som betyr ± SEM (n = 7). Solid bar = gjennomsnitt og skyggelagt = SEM.

Figure 2
Figur 2 : Brachialis arteriell press i griser. Systolisk = systolisk arteriell trykk; Diastolisk = diastolisk arterielt blodtrykk; KART = mener arteriell press. Resultatene er uttrykt som betyr ± SEM (n = 7).

Tid
(min)
pH HCO3
(mmol/L)
AnGap
(mmol/L)
Base overflødig
(mmol/L)
PCO2
(mmHg)
Totalt Hb
(g/dL)
Na+
(mmol/L)
K+
(mmol/L)
CL-
(mmol/L)
0 7.50 ± 0,03 24.8 ± 1,9 11.5 ± 1.1 3.0 ± 1.7 34.3 ± 3.2 13,1 ± 1.1 141.0 ± 1.1 4.5 ± 0,5 109.2 ± 1.5
120 7.47± 0,03 25.0 ± 2.7 14.0 ±1.2 2.0 ± 1.3 34.0 ± 3.9 10.3 ± 0,8 139.4 ± 0,6 5.0 ± 0,4 107.5 ± 0,6

Tabell 1: Brachialis arterial blod målinger i griser. Resultatene er uttrykt som betyr ± SEM (n = 7).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Arterial catheterization å måle arterielt blodtrykk og samle blodprøver for arterial blod gass målinger er opprettet i en rekke dyrearter5,6,7,8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21. fastsettelse av hvilken arterien velge for catheterization er ofte regissert av enten minnediagnostiseringsprogrammet, eksperimentelle protokollen eller arterien hjelpemiddel. Faktisk disse faktorene endre valget for arterien catheterization og benyttes ikke jevnt over dyrearter. Som et eksempel, median caudal (coccygeal) og pedal arterier har vært catheterized i hunder under vanlige kirurgiske prosedyrer i en klinisk setting6,8. Tilsvarende brukes ansikts og pedalbåter arteriene i hester for å måle arterieblodtrykk på grunn av den relative brukervennligheten i store dyrearter, som equids4,7. I motsetning til hundene, men er median caudal arterien catheterization ikke en vanlig sted i hester. Hensyn for anvendelsen av arteriell catheterization brukes også til å fastslå arteria velger catheterize i svin, selv om mer esoteriske arterier har vært catheterized for høyt spesialisert prosedyrer16, 17. generelt fire felles tilnærminger har blitt brukt til å måle arteriell press og samle arterial blod gasser i svin. Femur, carotis og mediale saphenous arteriene brukes de vanligste i store grisen teknikker, mens auricular arterien er brukt grisunger og miniatyr griser22,23. Denne videoen beskriver en annen metode for å måle arterielt blodtrykk og samle arterial blod gass prøver griser via catheterizing den distale del av brachialis arterien.

Selv om catheterization av femur, carotis, mediale saphenous og auricular arterier gjør nøyaktig måling av arteriell press og arteriell blod gasser i svin, er det noen potensielle ulemper til hver teknikk. Arteria carotis catheterization krever dype vev disseksjon, med ofte begrenset sikt av dype strukturer og arterien, risk skaden å vena jugularis, vagosympathetic nerve bagasjerommet og tilbakevendende nerve25,35 . Femoral arterien er den største arterien av fire vanlige arteriene catheterized og bør tillate lett catheterization36. Videre, på grunn av sin relativt overfladiske beliggenhet, mindre vev disseksjon kreves til arteria femoral sammenlignet arteria carotis. Likevel tilgang til arterien på skallen aspekt av indre hind lem eller i nærheten av arteriell catheterization lysken regionen kan begrense bruken. Femoral arterien catheterization ville faktisk være en upraktisk prosedyre i eksperimenter eller operasjoner som involverer de caudoventral, caudodorsal tilbake eller bakbeina. Medialt saphenous er en moderat størrelse arterien og kan tillate relativt lett catheterization. Ligner femoral arterien, hvor anatomiske mediale saphenous arterien, det går gjennom den mediale distale del av hind lem, ville begrense sin søknad om prosedyrer som involverer den nedre kroppen griser13. Auricular catheterization er en rask metode for å måle arteriell press på grunn av overfladiske plasseringen i øret11. En potensiell begrensning med denne teknikken er vanskeligheten med å sikre kateter innen fartøyet, som det er en begrenset mengde tykk hud i gris øret å plassere bo suturer. En annen begrensning er at auricular arterien er også en liten arterie, og dette kan forårsake mer tekniske problemer for catheterization prosedyren12 og levedyktighet under lang forskning prosedyrer. Enda viktigere, er den største ulempen av catheterizing auricular arterien marginale øret årer11,12 som ofte primære fartøyene brukes til å gi intravenøs væsker og administrere medisiner for anestesi under kirurgiske prosedyrer. Nærheten til auricular arterien og marginale øret årer, gjør den samtidige catheterization vene og arterien teknisk utfordrende og kan forstyrre både arterial blod målinger og administrasjon av narkotika og væsker. Catheterization fra distale brachialis arterien overvinner noen av disse ulempene. Først krever isolasjon fra brachialis arterien mindre vev disseksjon enn isolering av arteria carotis. Brachialis arterien er også anatomisk ligger nærmere til overflaten, slik at en lettere catheterization, sammenlignet med den dypere arteria carotis. Dernest catheterization av brachialis arterien er en relativt rask prosedyre og selv om ikke så fort som auricular arterien, plassering i fartøyet tillater ubegrenset tilgang til marginale øret årer; en viktig forutsetning for rehydrering terapi og administrasjon av intravenøs narkotika og anestesi under operasjonen. Endelig, en betydelig fordel av distale brachialis arteriell catheterization, forhold til femur og mediale saphenous arterien catheterization, er at prosedyren ikke forstyrrer kirurgisk eller eksperimentelle prosedyrer som involverer caudoventral, og caudodorsal tilbake, eller bakbeina.

Som med alle eksperimentelle metoder er det avgjørende skritt behøvde for det vellykkede resultatet av prosedyren. Det er tre viktige prosesser som krever spesiell oppmerksomhet under brachialis arteriell catheterization. Første, nøyaktige topografiske landmarking ved palpasjon av byens svake distale brachialis arterien er nødvendig. Avvik på riktig plassering av fartøyet i forlemen vil endre retning av vev disseksjon å isolere fartøyet og forårsake unødvendig vev disseksjon og skade. Andre, forsiktig vev disseksjon og kateter innsetting kreves. Dette inkluderer mild separasjon av arterien fra omkringliggende fascia juxtaposed brachialis venen og median nerve (minimere skader median nerve), samt kateter innsetting i fartøyet med tillegg av oppholdet ligaturer på sikre kateter i fartøyet. Spesielt, selv om brachialis arterien er et mellomstort robust fartøyet17, røff håndtering av arterien kan føre til utvikling av microhemorrhages i fartøyet intima og potensielt skape blodpropp langs skadet fartøyet, dermed øke sjansen for catheterization feil37. Endelig er riktig posisjonelle justering av catheterized forlemen avgjørende for nøyaktig og konsekvent arteriell press målinger. Spesielt gitt utvide forlemen i 40° vinkel fra midtlinjen av virvelsøylen de beste resultatene. Plassere catheterized lem midt thorax og sammen med kroppen, eller utvide forlemen direkte fremover og parallelt midtlinjen av ryggen kan forårsake en beskjeden reduksjon i arterial press og kan være mer utsatt for intermitterende tap av arterieblodtrykk målinger.

Alle kirurgiske prosedyrer har iboende begrensninger og catheterization fra distale brachialis arterien er intet unntak. Identifisere, lokalisere, isolere og catheterizing arterien er en prosedyre som krever privatpersoner til å ha en god forståelse av ikke bare topografiske og vascular anatomi, men også gode tekniske og kirurgiske ferdigheter. Personer med denne knowledge base og kompetanse vil sannsynligvis være mer vellykket med catheterizing brachialis arterien enn personer med begrenset tidligere erfaring. Mest vesentlige begrensning av denne fremgangsmåten er at brachialis arterien catheterization kan være begrenset til ikke-eksperimentelle gjenopprettingsprosesser. Bruke denne teknikken på en prosedyre ville kreve enten fjerning av den distale Sutur sikre kateter til fartøyet eller utelate plassere den distale Sutur under prosedyren med mulighet for påfølgende tap av stabilitet. I tillegg for å sikre kateter navet på utsiden av sutured muskler og hud, ville et lengre kateter være nødvendig. Endelig ville en gjenopprettingsprosess kreve fjerning av kateter fra fartøyet. Denne aktiviteten kan føre til merket hemorrhaging Hvis tilstrekkelig hemostasen ikke ble innhentet; en prosess som kan være spesielt vanskelig for relativt dyp fartøy av lemmer av store dyrearter. Videre, hvis tilstrekkelig hemostasen ble oppnådd, er det mulig de nyopprettede koagulere kunne fortrenge under bevegelse eller fra mindre innvirkning (i.e. mot penn veggen), fører til dyp og farlige livet arteriell hemorrhaging.

Avslutningsvis er brachialis arteriell catheterization en utmerket metode for å måle arterielt blodtrykk og samle arteriell blod for blod målinger. Denne metoden produsert resultater i tråd med observasjoner av arteriell blod parameteren målinger fra catheterization av ulike arterier på grisen. Denne fremgangsmåten er spesielt nyttig i ikke-eksperimentelle gjenopprettingsprosesser som involverer caudoventral, caudodorsal tilbake, og bakbeina av grisen i svin.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Forfatterne ikke avsløre.

Acknowledgments

Dette arbeidet ble støttet av den kanadiske institutter for helseforskning og Canada grunnlaget for innovasjon tilskudd til V. K. Mushahwar. A. Toossi ble støttet av en Vanier Canada Graduate Scholarship, Alberta fornyer - helse løsninger Graduate Studentship og Queen Elizabeth II Graduate stipend. V.K. Mushahwar er en Canada forskning stol i funksjonelle restaurering. Vi ønsker å erkjenne Mr. J. Stack Moss Street produksjoner for hans hjelp med lydproduksjon og stab av kirurgisk medisinske Research Institute for deres hjelp med prosedyrene.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
0.9% NaCl (Saline) Solution EMRN JB1322P 1 x1 liter bag
10% Lidocaine spray AstraZeneca DIN:02039508 / 1 x  50 ml  bottle
10% Povidone-Iodine scrub Purdue Pharma 521232 1 x 500 ml bottle 
20 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381433 1 x angiocatheter
2-0 polyglactin suture (Vicryl) Ethicon J339H 2-0 vicryl / 1 packet of suture
2-0 polypropylene suture (Prolene)  Ethicon 8833H 2-0 prolene / 1 packet of suture
22 ga 1-inch angiocatheter Becton Dickinson 381423 1 x angiocatheter
9 ID mm endotracheal tube Jorvet J0835P 1 x endotracheal tube
Arterial blood pressure IV line Argon Medical Devices 112411 1 x arterial blood pressure IV line
Disposable drapes Halyard Sales LLC 89731 4-8 x disposable drapes 
Glycopyrrolate hydrochloride  Sandoz DIN:02039508 / 1 x 20ml vial
Isoflurane Abbott Animal  Health 05260-5 1 x 250ml bottle
Kelly forceps-curved (14cm) Stevens 162-7-38 8-10  instruments
Ketamine hydrochloride Vetoquinol DIN:02374994 / 1 x 10ml vial
Lactated Ringer's Solution Hospira 0409-7953-09 4 x1 liter bag
Metzenbaum scissors Fine Science 14518-18
Miller laryngoscope blade Welch Allyn 68044 182 mm length  / 1 instrument
Nasal temperature probe Surgivet V3417 1 probe
Needle Drivers Stevens 162-V98-42 2 instruments
Q tip applicators Fisher Scientific 22-037-960 20-40  app
Remifentanil hydrochloride TEVA DIN:0234432 / 1 mg vial
Surgivet advisor: Vital signs monitor Surgivet V9203 1 monitor
Weitlaner retractor Stevens 162-11-602  2 retractors
Xylazine hydrochloride Bayer DIN:02169606 1 x 50ml bottle

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214, (2), 155-164 (2001).
  2. Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
  3. Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
  4. Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
  5. Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now? Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43, (3), 242-255 (2016).
  6. McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35, (2), 59-65 (2013).
  7. Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
  8. Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
  9. Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology - Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295, (4), R1251-R1262 (2008).
  10. Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
  11. Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36, (5), 457-463 (2009).
  12. Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17, (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
  13. Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26, (6), 360-363 (2013).
  14. Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
  15. Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
  16. Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47, (2), 215-221 (2017).
  17. Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34, (4), E36-E38 (2013).
  18. Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
  19. Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183, (6), 1549-1553 (2000).
  20. Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26, (4), 541-553 (2017).
  21. Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214, (2), e270-e271 (2016).
  22. Malavasi, L. M. Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. 5, John Wiley & Sons Inc. New Jersey. (2015).
  23. Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12, (3), 663-691 (1996).
  24. Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
  25. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 636-638 (1930).
  26. Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
  27. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 302-304 (1930).
  28. Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31, (5), 405-411 (2002).
  29. Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95, (2), 699-702 (2013).
  30. Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50, (6), 644-648 (2000).
  31. Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57, (4), 376-381 (2018).
  32. Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
  33. Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
  34. Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39, (2), 221-226 (2010).
  35. Sisson, S. The Anatomy of the Domestic Animals. 2, W. B. Saunders Company. Philadelphia. 804-810 (1930).
  36. Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50, (5), 628-634 (2011).
  37. Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics