Name: Zirkulierende MicroRNA Quantifizierung der Basis von DNA-bindenden Farbstoff Chemie und Droplet Digital-PCR (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-06-26T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: Erfahren Sie die Quantifizierung zirkulierender MicroRNAs in Plasma oder Serum mittels Droplet Digital-PCR. Diese hochsensitive Methode ermöglicht die Detektion seltener MicroRNAs ohne Referenzgen und unterstützt die Krebsdiagnostik.

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Unterstützt von der italienischen Vereinigung der Finanzierung für Krebsforschung (AIRC) zu MF (MFAG 11676) und MN (Special Program Molecular Clinical Oncology -. 5 Promille n 9980, 2010/15) und aus dem italienischen Ministerium für Unterricht, Universitäten und Forschung FIRB 2011 MN (Projekt RBAPIIBYNP).

MicroRNA Isolierung von Plasma oder Serum Hinweis: Plasma und Serum Vorbereitung ist ein bedeutender Schritt in zirkulierenden miRNA Quantifizierung. Es gibt keine bevorzugte Verfahren für Plasma und Serumpräparat. Die einzige wichtige Sache zu prüfen ist, dass alle Proben aus dem gleichen Experiment muss genau den gleichen Workflow verarbeitet werden. Starten von 200 &amp; mgr; l Serum oder Plasma. Gesamt-RNA kann aus Serum oder Plasma unter Verwendung von kommerziell erhältlichen Kits isoliert werden. 1. Das Protokoll für Gesamt-RNA (einschließlich miRNA) Isolierung <ol><li> Thaw Serum / Plasma-Proben auf Eis. </li><li> 1 ml Lysis Reagent (z. B. QIAzol) bis 200 &amp; mgr; l Serum / Plasma. </li><li> Mix von Verwirbelung und legen Sie den Schlauch des Homogenats auf der Bank bei RT für 5 min enthält. </li><li> In 3 ul einer 4,16 nM Lösung des synthetischen miRNA Cel-miR-39-3p von C. elegans. </li><li> In 200 ul Chloroform. Das Röhrchen wird kräftig für 15 Sekunden. Platz the Rohr auf der Bank bei RT für 2 min. </li><li> Zentrifuge für 15 min bei 12000 xg bei 4ºC Phasen Trennung zu erhalten: Die obere wässrige Phase enthält RNA. </li><li> Übertragen Sie die wässrige Phase in ein neues Röhrchen, etwa 700 &amp; mgr; l, vermeiden Übertragung eines weißen Zwischenschichtmaterial. </li><li> 1 ml 100% Ethanol und mischen durch Umdrehen. </li><li> Pipettieren bis 700 &amp; mgr; l der Probe in einen Mini spin column auf einer 2 ml Sammelröhrchen gegeben. Schließen Sie den Deckel und Zentrifuge bei 12.000 g für 15 Sekunden. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. </li><li> Wiederholen Sie diesen Schritt, um die restliche Probe verwendet wird. </li><li> In 700 &amp; mgr; l Puffer RWT an den Mini-Spin-Säule, den Deckel schließen und Zentrifuge für 15 Sekunden bei 12.000 xg um die Säule zu waschen. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. </li><li> Pipettieren 500 ul Puffer RPE in die Mini-Spin-Säule. Schließen Sie den Deckel und Zentrifuge für 15 Sekunden bei 12.000 Umdrehungen pro Minute. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. Wiederholen Sie es noch einmal. </li><li> Zentrifugieren Sie die Mini-Spin-Säule mit voller Geschwindigkeit für 2 min, um die Spin-Säule zum TrocknenMembran aus restliche Ethanol. </li><li> Übertragen Sie die Mini-Spin-Säule in ein neues 1,5 ml Sammelröhrchen und Pipette 35 ul RNase-freies Wasser auf die Membran der Säule. </li><li> Zentrifugieren für 1 min bei 12000 xg um die RNA zu eluieren. </li><li> Lagern Sie die RNA bei -80 ° C. Hinweis: Da RNA-Konzentration nicht genau bestimmt werden kann, als Maß für Fixvolumen Eingangsgrße verwenden. </li></ol> 2. MicroRNA Reverse Transkription <ol><li> Tauen die reverse Transkription (RT) Reagenzienmix Komponenten: 5x Reaktionspuffer, Nuklease-freies Wasser. Mix Umdrehen sanft die Rohre und auf Eis. Unmittelbar vor dem Gebrauch zu entfernen aus dem Gefrierschrank und auf Eis, das Enzym-Mix. Spin down alle Reagenzien. </li><li> Bereiten Sie die RT Reagenzienmix auf Eis , wie in Tabelle 1 beschrieben. Bereiten Sie mindestens 10% größer als Mischung. </li><li> Mischen Sie die Reaktion durch Pipettieren, und dann drehen nach unten. </li><li> Inkubieren für 60 min bei 42 ° C. </li><li> Hitze-Inaktivierung die Reverse Transkriptase für 5 min bei 95 ° C. </li><li> Sofort kühlen auf 4 ° C. </li><li> Lagern Sie die cDNA bei -20 ° C. </li></ol> 3. cDNA Verdünnung <ol><li> Verdünnen Sie die Menge an cDNA-Matrize, die für die geplanten ddPCR Reaktionen in nukleasefreiem Wasser. Verdünnen Sie die cDNA-Reaktion zwischen 1:50 und 1: 500 in Wasser, abhängig von Ziel-miRNA Hülle und Fülle. Die verdünnte cDNA bei -20 ° C. Die verdünnte cDNA nachgewiesen für mindestens 3 Monate bei -20 ° C stabil. </li></ol> 4. Tröpfchenerzeugung und PCR Hinweis: Tröpfchenerzeugung sollte auf 8 Proben gleichzeitig durchgeführt werden. Technische Replikate sind nicht erforderlich, aufgrund der hohen Reproduzierbarkeit dieser Technologie 12,15 .A Leerwert -Kontrolle (NTC) Probe in jeder Platte ausgeführt werden soll und für jede unterschiedliche ddPCR Zustand. <ol><li> Auftauen und den Master - Mix ins Gleichgewicht (z. B. EvaGreen Master Mix), microRNA - Primer - Set und cDNA bei RT. </li><li> Mischen Sie den Master Mix thoroughly durch das Rohr mehrmals umgekehrt wird. Spin down alle Reagenzien. </li><li> Bereiten Sie die ddPCR Mischung wie in Tabelle 2 beschrieben. Wenn mehrere ddPCR Reaktionen durchgeführt werden, bereiten eine ddPCR Arbeits-Lösung mischen. Bereiten Sie mindestens 10% größer als Mischung. </li><li> Nach dem Zusammenbau gründlich ddPCR Mix mischen und Spin-down. </li><li> Dispense 12 ul ddPCR mischen in eine 96-Well-PCR-Platte oder PCR-Röhrchen. </li><li> In 8 ul der verdünnten cDNA-Matrize in jedes Röhrchen / Vertiefung. </li><li> Legen Sie die Tröpfchengeneratorpatrone in die Halterung. </li><li> Transfer 20 ul jeder hergestellten Probe zu den Probenvertiefungen (mittlere Reihe) der Tröpfchengeneratorpatrone vorsichtig, während Luft am Boden des Bohrlochs Blasen zu vermeiden. </li><li> Füllen Sie jedes Öl gut (untere Reihe) mit 70 &amp; mgr; l Tropfengenerator Öl. </li><li> Haken Sie die Dichtung über den Patronenhalter und legen Sie in den Tröpfchengenerator. </li><li> Schließen Sie den Deckel Tropfenerzeugung zu beginnen nach Hersteller protocol. Wenn Tröpfchenerzeugung abgeschlossen ist, öffnen Sie den Deckel, die Einweg-Dichtung entfernen. Die oberen Vertiefungen der Patrone enthalten die Tröpfchen. </li><li> Pipettieren langsam und gleichmäßig 40 ul die Inhalte der acht Top-Brunnen (die Tröpfchen) in eine einzige Säule einer 96-Well-PCR-Platte. </li><li> Verschließen Sie die PCR-Platte mit Folie unmittelbar nach dem Tröpfchen übertragen Verdunstung zu vermeiden. Verwenden Sie durchstechbaren Folienplatte Dichtungen, die mit den Nadeln in der Tröpfchen Leser kompatibel sind. </li><li> Beginnen thermischen Zyklen (PCR) innerhalb von 30 Minuten von der Platte abdichten. </li><li> Führen Sie die Rad - Protokoll gemäß Tabelle 3. </li></ol> 5. Droplet Lese <ol><li> Schalten Sie den Tropfen Leser. </li><li> Bewegen Sie die Platte aus dem Thermocycler zum Tröpfchen Leser. </li><li> Legen Sie die 96-Well-PCR-Platte, die die Post-PCR-Tröpfchen in die Basis des Plattenhalters enthält. </li><li> Die Oberkante des Plattenhalters auf der PCR-Platte. Drücken Sie mit beiden FreigabezungenSie die PCR-Platte in der Halterung zu befestigen. </li><li> Starten Sie die Software aus dem System PC. <ol><li> Klicken Sie auf Setup, um das Experiment (Absolute Quantifizierung) dann auf Ausführen zu definieren klicken Sie auf die Tröpfchen Lesen zu beginnen. </li><li> Wenn Tröpfchen Lesen abgeschlossen ist, klicken Sie auf &quot;Analysieren&quot;, um die Daten zu öffnen und zu analysieren. </li><li> Verwenden Sie die 2D - Amplitude Grundstück in der Analyse - Software , die positiven Tröpfchen (Lasso - Werkzeug) (Abbildung 1B) zu wählen. </li><li> Verwenden Sie die Registerkarte Ereignisse die Anzahl der positiven und insgesamt Tröpfchen zu überprüfen. Eine Gesamtzahl von 18.000 - 21.000 Tröpfchen wird in der Regel mit ddPCR ohne Sonden erreicht. </li><li> Sobald die positive Tröpfchen ausgewählt werden, exportieren die Konzentrationswerte miRNA der Export CSV-Option aus dem Konzentrations Reiter. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Arroyo, J. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Argonaute2+complexes+carry+a+population+of+circulating+microRNAs+independent+of+vesicles+in+human+plasma%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Argonaute2 complexes carry a population of circulating microRNAs independent of vesicles in human plasma.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 108, 5003-5008 (2011).</li>
<li>Skog, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glioblastoma+microvesicles+transport+RNA+and+proteins+that+promote+tumour+growth+and+provide+diagnostic+biomarkers%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Glioblastoma microvesicles transport RNA and proteins that promote tumour growth and provide diagnostic biomarkers.</a> Nat Cell Biol. 10, 1470-1476 (2008).</li>
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<li>Schwarzenbach, H., Nishida, N., Calin, G. A., Pantel, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+relevance+of+circulating+cell-free+microRNAs+in+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Clin+Oncol%22%5BJournal%5D)">Clinical relevance of circulating cell-free microRNAs in cancer.</a> Nat Rev Clin Oncol. 11, 145-156 (2014).</li>
<li>Moldovan, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methodological+challenges+in+utilizing+miRNAs+as+circulating+biomarkers%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Methodological challenges in utilizing miRNAs as circulating biomarkers.</a> J Cell Mol Med. 18, 371-390 (2014).</li>
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<li>Mangolini, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnostic+and+prognostic+microRNAs+in+the+serum+of+breast+cancer+patients+measured+by+droplet+digital+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Biomarker+Research%22%5BJournal%5D)">Diagnostic and prognostic microRNAs in the serum of breast cancer patients measured by droplet digital PCR.</a> Biomarker Research. , (2015).</li>
<li>Hindson, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Absolute+quantification+by+droplet+digital+PCR+versus+analog+real-time+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Absolute quantification by droplet digital PCR versus analog real-time PCR.</a> Nat Methods. 10, 1003-1005 (2013).</li>
<li>Mestdagh, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+quantitative+miRNA+expression+platforms+in+the+microRNA+quality+control+%28miRQC%29+study%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">Evaluation of quantitative miRNA expression platforms in the microRNA quality control (miRQC) study.</a> Nat Methods. 11, 809-815 (2014).</li>
</ol>

Die Autoren haben nichts offenzulegen.

Zirkulieren miRNAs sind im Blut bei extrem niedrigen Konzentrationen und die Menge an RNA, die aus Plasma und Serumproben extrahiert werden kann, ist gering. Aus diesem Grund sind sie schwierig mit anderen Techniken wie Mikroarray und RNA-Sequenzierung zu quantifizieren. Darüber hinaus gibt es eine verallgemeinerte keine Einigung über die Datennormalisierung und die Anwesenheit von endogenen &quot;Referenz&quot; miRNAs im Blut. In diesem Zusammenhang ist eine sensible Technik wie Tröpfchen digitale PCR, der fähig ist, d...

MicroRNAs (miRNAs) werden von potenziell allen Zellen des Organismus in den Blutkreislauf freigesetzt, als Folge der aktiven Freisetzung oder nekrotischer und apoptotischer Prozesse. Zellfreie miRNAs wurden im Blutkreislauf entweder als freie stabile Moleküle nachgewiesen oder an Lipoproteine gebunden oder in Exosomen und Mikrovesikeln 1-3 umhüllt. Es wird angenommen, dass sie als Zell-zu-Zell-Kommunikatoren fungieren 4, und ihre Menge ändert sich bei Krebs, Herzerkrankungen oder Autoimmunerkrankungen 5-7. Ihre genaue und reproduzierbare Quantifizierung ist die Grundlage für ihre Bewertung als Krankheitsbiomarker. Aus mehreren Gründen, die bereits an anderer Stelle beschrieben wurden 8,9, könnte die miRNA-Quantifizierung in Serum oder Plasma sowie in anderen Körperflüssigkeiten jedoch eine große Herausforderung darstellen 10,11. Wir haben kürzlich eine Methode zur absoluten Quantifizierung zirkulierender miRNAs entwickelt, die auf miRNA-spezifischen LNA-Primern und der DNA-bindenden Farbstofftröpfchen-Digital-PCR (ddPCR)-Technologie basiert 12. Diese Methodik wurde zur Validierung von miRNA-Biomarkern für Brustkrebs angewendet 13,14. 
Nach der Partitionierung jedes rückwärts transkribierten miRNA-Moleküls in einem nanolitergroßen Tröpfchen ist es möglich, die Kopienzahl jeder miRNA in jeder Probe zu zählen, wobei im Grunde die Anzahl der grünen und daher positiven fluoreszierenden Tröpfchen gezählt wird. Sobald eine PCR-Reaktion auftritt, wird eine positive Zählung erreicht, ohne dass eine Standardkurve erstellt oder die PCR-Effizienz bei der Berechnung der Zielmenge berücksichtigt werden muss, wie dies bei der quantitativen RT-PCR (RT-qPCR) der Fall ist. Darüber hinaus erwies sich die ddPCR bei der Quantifizierung zirkulierender miRNA als sensitiver und genauer als die RT-qPCR 15. In diesem Artikel stellen wir das detaillierte Protokoll dieser Methodik vor, diskutieren die wichtigsten Schritte und berücksichtigen insbesondere klinische Serum- und Plasmaproben.

<table><tbody><tr><td>miRNeasy Mini Kit</td><td>Qiagen</td><td>217004</td><td>Säulen für Gesamt-RNA, einschließlich miRNA, Extraktion aus Serum/Plasma</td></tr><tr><td>100 nmol RNA-Oligo Cel-miR-39-3p</td><td>Integrated DNA Technologies</td><td>Custom</td><td>Sequence: UCACCGGGUGUAAAUCAGCUUG</td></tr><tr><td>Universal cDNA Synthesis Kit II, 8-64 rxns</td><td>Exiqon</td><td>203301</td><td>Kit für die reverse Transkription</td></tr><tr><td>von microRNA MicroRNA LNA PCR Primer Set&nbsp;</td><td>Exiqon</td><td>204000-206xxx und 2100000-21xxxxx</td><td>Primer für die miRNA-Amplifikation in Tröpfchen</td></tr><tr><td>QX200 Tröpfchengenerator</td><td>BioRad</td><td>186-4002</td><td>Gerät zur Tröpfchenlesung</td></tr><tr><td>QX200 Tröpfchenleser</td><td>BioRad</td><td>186-4003</td><td>Gerät zur Tröpfchenerzeugung</td></tr><tr><td>QuantaSoft-Software</td><td>BioRad</td><td>186-3007</td><td>Software zur Datenerfassung und -analyse</td></tr><tr><td>PX1 PCR-Plattenversiegeler</td><td>BioRad</td><td>181-4000</td><td>Plattenversiegeler</td></tr><tr><td>DG8 Tröpfchengenerator-Kartuschen und -Dichtungen</td><td>BioRad</td><td>186-4008</td><td>Kartuschen zum Mischen von Probe und Öl zur Erzeugung von Tröpfchen</td></tr><tr><td>QX200 ddPCR EvaGreen Supermix</td><td>BioRad</td><td>186-4033/36</td><td>PCR-Supermix</td></tr><tr><td>QX200 Tröpfchengeneratoröl für EvaGreen-Farbstoff</td><td>BioRad</td><td>186-4005</td><td>Öl zur Tröpfchenerzeugung</td></tr></tbody></table>

zirkulierende microrna quantifizierung der basis von dna-bindenden farbstoff chemie und droplet digital-pcr

Circulating MicroRNA Quantification Using DNA-binding Dye Chemistry and Droplet Digital PCR

Zirkulierende (zellfreier) microRNAs (miRNAs) von Zellen in den Blutstrom freigesetzt. Die Menge der spezifischen mikroRNAs im Zirkulations wurde einem Krankheitszustand verbunden und hat das Potential als Krankheits Biomarkers verwendet werden. A sensitive und genaue Methode MikroRNA Quantifizierung zum Zirkulieren eines farbstoffbasierte Chemie und digitalen PCR Technologie Tröpfchens wurde vor kurzem entwickelt. Insbesondere Locked unter Verwendung Nukleinsäure (LNA) miRNA-spezifische Primer mit einem grünen fluoreszierenden DNA-bindenden Farbstoff in einem kompatiblen digital Tröpfchen PCR System -basierte es ist möglich, die absolute Quantifizierung von spezifischen miRNAs zu erhalten. Hier beschreiben wir, wie diese Technik darstellende miRNA Menge in biologischen Flüssigkeiten, zu beurteilen, wie Plasma und Serum, ist sowohl möglich als auch effektiv.

Die absolute Menge an spezifischen miRNAs pro ml Plasma oder Serum können mit einem grün fluoreszierenden DNA-bindenden Farbstoff und Tröpfchen digitale PCR - Technologie bestimmt werden. Abbildung 1 den Prozess der positiven Tröpfchen Auswahl präsentiert, die die endgültige miRNA - Konzentration bestimmt (Kopien / ul ) in der Amplifikationsreaktion durch die Analysesoftware berechnet. Die Menge jeder miRNA im Blut ist ganz anders, als andere einige miRNA-Arten häufiger ...

Es wird eine empfindliche und genaue Methode zur Quantifizierung zellfreier microRNAs unter Verwendung einer farbstoffbasierten Chemie und einer digitalen Tröpfchen-PCR-Technologie beschrieben.

Zirkulierende MicroRNA Quantifizierung der Basis von DNA-bindenden Farbstoff Chemie und Droplet Digital-PCR

Circulating (of cell-free) microRNAs (miRNAs) are released from cells into the blood stream. The amount of specific microRNAs in the circulation has been ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, zirkulierende microRNAs in biologischen Flüssigkeiten wie Plasma oder Serum mithilfe der Tropfen-Digital-PCR-Technologie zu quantifizieren. Die Methode kann dazu beitragen, Fragen im Bereich der Biomarkerforschung zu beantworten, indem diagnostische und prognostische Biomarker für Krebserkrankungen identifiziert werden.Der Hauptvorteil dieser Technik liegt in der hohen Empfindlichkeit. Sie kann verwendet werden, um auch seltener vorkommende microRNAs zu quantifizieren, ohne ein androgenes Referenzgen zu benötigen. Die Bedeutung dieser Methode erstreckt sich auf die Krebsdiagnostik, da sie das Potenzial besitzt, Personen mit Krebs im Frühstadium zu identifizieren.Sie kann auch auf andere Erkrankungen wie neurologische oder kardiale Störungen angewendet werden. Im Allgemeinen müssen die Personen auf die Handhabung der Tropfen vor dem thermischen Zyklierungsschritt achten, um deren Zerstörung zu vermeiden. Daher ist eine visuelle Demonstration der Tropfenbildung entscheidend, da die Tropfen durch unsachgemäße Handhabung oder zu schnelles Pipettieren zerstört werden können.Beginnen Sie dieses Verfahren mit der Isolierung von mikroRNAs aus Plasma oder Serum. Anschließend führen Sie die Reverse Transkription durch und verdünnen die Proben, wie in dem begleitenden Dokument beschrieben. Entnehmen Sie das EvaGreen-Mastermix-mikroRNA-Primer-Set und die cDNA aus dem Gefrierschrank und lassen Sie sie bei Raumtemperatur auftauen.Nach dem Auftauen den Master-Mix-Schlauch mehrmals umdrehen und anschließend alle Reagenzien kurz zentrifugieren. Bereiten Sie eine Verdünnungslösung für den Tropfen-Digital- oder ddPCR-Mix gemäß den Anweisungen im beigefügten Dokument vor.Bereiten Sie ausreichend für bis zu acht Proben vor, jeweils mit einer No-Template-Kontrolle pro Bedingung sowie einem Überschuss von 10 %. Nach dem Zusammenstellen gründlich mischen und die ddPCR-Mischung kurz zentrifugieren. Beachten Sie, dass technische Wiederholungen aufgrund der hohen Reproduzierbarkeit dieser Technologie nicht erforderlich sind. Nach der Zentrifugation jeweils 12 Mikroliter der ddPCR-Mischung in jede Vertiefung einer 96-Loch-PCR-Platte pipettieren.Fügen Sie acht Mikroliter verdünnte cDNA-Vorlage zu jedem Well hinzu. Danach setzen Sie die Tropfengenerator-Kassette in den Kassettenhalter ein. Übertragen Sie vorsichtig jeweils 20 Mikroliter jeder vorbereiteten Probe in die mittlere Reihe der Tropfengenerator-Kassette.Vermeiden Sie das Einführen von Luftblasen an den Boden der Vertiefung. Füllen Sie jede der Ölwannen in der unteren Reihe mit 70 Mikrolitern Tröpfchengeneratoröl. Haken Sie die Dichtung über den Kartuschenhalter.Setzen Sie die Kartusche in den Tropfengenerator ein und schließen Sie den Deckel, um die Tropfenbildung zu starten. Wenn die Tropfenbildung abgeschlossen ist, öffnen Sie den Deckel, nehmen Sie die Kartusche aus dem Tropfengenerator heraus und entfernen Sie die Einwegdichtung. In den oberen Vertiefungen der Kartusche befinden sich die Tropfen.Übertragen Sie langsam und gleichmäßig 40 Mikroliter aus jedem der acht oberen Vertiefungen in eine einzelne Spalte einer 96-Loch-PCR-Platte. Versiegeln Sie die Platte sofort mit Folie, um Verdunstung zu vermeiden. Innerhalb von 30 Minuten nach dem Versiegeln der Platte beginnen Sie den thermischen Zyklenvorgang gemäß dem in Tabelle drei des beigefügten Dokuments beschriebenen PCR-Protokoll.Schalten Sie den Tröpfchenleser ein. Bringen Sie dann die Platte vom Thermocycler zum Tröpfchenleser. Setzen Sie die 96-Loch-PCR-Platte mit den PCR-Tröpfchen in die Basis des Plattenhalters im Tröpfchenleser ein.Platzieren Sie die Oberseite des Plattenhalters auf der PCR-Platte. Drücken Sie beide Entriegelungsknöpfe fest nach unten, um die PCR-Platte im Halter zu sichern. Starten Sie die QuantaLife-Software über den System-PC. Klicken Sie auf „Setup“ und öffnen Sie die Vorlagendatei, die Informationen über die Proben, Zielgene und Assays enthält.Wählen Sie in der Navigationsleiste auf der linken Seite „Run“ aus. Ein Fenster mit den Ausführungsoptionen wird angezeigt. Wählen Sie im Menü „Dye Set“ den Eintrag „EVA“ aus und klicken Sie auf „OK“, um das Auslesen der Tropfen zu starten.Wenn der Durchlauf abgeschlossen ist, verwenden Sie das 2D-Amplituden-Diagramm in der Analyse-Software, um die positiven Tröpfchen auszuwählen. Verwenden Sie dazu das Lasso-Werkzeug in der Navigationsleiste auf der linken Seite. Klicken Sie anschließend auf den Reiter „Ereignisse“, um die Anzahl der positiven und der gesamten Tröpfchen zu überprüfen.In der Regel werden mit der probefreien ddPCR insgesamt 18.000 Tröpfchen erzielt. Klicken Sie anschließend auf den Reiter „Konzentration“, um die endgültige Probe der Konzentration zu visualisieren. Verwenden Sie abschließend die Exportfunktion.CSV zur Exportierung der Mikro-RNA-Konzentrationswerte. Die mRNA miR-181a-5p wurde in zwei Plasma-Proben, S1 und S2, unter Verwendung von 0,5 und einem Mikroliter Primerkonzentration bei Annealing-Temperaturen von 58 und 60 Grad Celsius quantifiziert. Diese Abbildung zeigt die Kopienzahl der Mikro-RNA pro Mikroliter in der Amplifikationsreaktion für jede Bedingung.PCR-positive Tröpfchen für jede Probe sind blau dargestellt, und negative Tröpfchen sind schwarz dargestellt. Wie hier zu sehen ist, weist die Kontrollprobe wie erwartet keine positiven Tröpfchen auf. Die Durchführung der PCR bei 60 Grad Celsius unter Verwendung entweder 0,5 oder eines Mikroliters Primer führte zu einer besseren Trennung von positiven und negativen Tröpfchen.In dieser Abbildung stellen die Fehlerbalken das Poisson-95%-Konfidenzintervall dar. Hier werden die Anzahl der positiven Tröpfchen, dargestellt in Blau, mit der Gesamtanzahl der Tröpfchen, dargestellt in Grün, verglichen. Insgesamt zeigen diese Daten, dass die Tröpfchen-Digital-PCR verwendet werden kann, um die absolute Anzahl von Kopien von Mikro-RNA pro Mikroliter einer biologischen Flüssigkeit zu bestimmen.Nachdem Sie sich dieses Video angesehen haben, sollten Sie ein gutes Verständnis dafür haben, wie eine mRNA-Quantifizierung mittels digitaler Tropfen-PCR durchgeführt wird. Sobald die Methode beherrscht ist, können 96 Proben innerhalb weniger Stunden analysiert werden, was eine optimale Ausbeute für einen klinischen Einsatz darstellt. Mit jeder Weiterentwicklung ebnet diese Technik den Weg für das Gebiet der flüssigen Biopsie, um microRNA und andere Nukleinsäuren als Biomarker für Krankheiten zu untersuchen.

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Forschung

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Bioengineering

Biotechnik

Hier beschreiben wir eine optimierte Multiplex-Reverse-Transkriptase-quantitative PCR (qRT-PCR)-Protokoll in Kombination mit einer mikrofluidischen Plattform als zeit-und kosteneffektiver High-Throughput-Screening-Tool für microRNA (miRNA) Expression, besonders beim Arbeiten mit geringen Mengen der Probe.

High Throughput MicroRNA Profiling: Optimierte Multiplex qRT-PCR in Nanoliter-Maßstab auf dem Fluidigm Dynamische ArrayTM IFCs

In diesem Video präsentieren wir eine Schritt-für-Schritt-Anleitung zur Erzeugung von emulgierten Nanotröpfchen zum Nachweis von Zielnukleinsäuren durch digitale Polymerase-Kettenreaktion oder dPCR.

Tröpfchen-Digitalpolymerase-Kettenreaktion: Eine Methode zur Erzeugung von Nanotröpfchen-PCR-Reaktionen zum Nachweis seltener Tumormutationen

In diesem Video demonstrieren wir die Duplex-Digital-PCR (ddPCR)-Technik — eine Modifikation der traditionellen PCR-Technik, die nützlich ist, um zwei verschiedene genetische Marker gleichzeitig zu detektieren. Eine einzelne PCR-Reaktion wird in nanolitergroße emulgierte Tröpfchen aufgeteilt, die unabhängig voneinander amplifiziert werden, und der Nachweis verschiedenfarbiger Fluoreszenzamplifikationssignale aus der Tröpfchenfraktion wird verwendet, um die Anfangskonzentration der Zielsequenzen...

Digitale Duplex-PCR zur gleichzeitigen Quantifizierung dualer genetischer Marker

MicroRNAs (miRNAs) sind eine weit verbreitete Klasse von regulatorischen Molekülen. Hier beschreiben wir eine miRNA-Klonierungsmethode, die auf zwei potenten Ligationsschritten beruht, gefolgt von einer Hochdurchsatz-Sequenzierung. Unsere Methode ermöglicht eine genaue genomweite Quantifizierung von miRNAs.

Hoch effiziente Ligation kleine RNA-Moleküle für MicroRNA Quantifizierung von Hochdurchsatz-Sequenzierung

Zirkulierende microRNAs haben in letzter Zeit als vielversprechend und neue Biomarker für verschiedene Krebsarten und anderen Krankheiten. Das Ziel dieses Artikels ist es, drei verschiedene Sonden-basierten Echtzeit-PCR-Plattformen und Methoden, die zur Verfügung zu quantifizieren und zu bestimmen, die Fülle der zirkulierenden microRNAs sind zu diskutieren.

Sonde-basierte Echtzeit-PCR Ansätze zur quantitativen Messung von microRNAs

Wir beschreiben einen digitalen Endpunkt-Assay zur Quantifizierung von Nukleinsäuren mit einer vereinfachten (analogen) Auslesung. Wir messen die Massenfluoreszenz von tröpfchenbasierten digitalen Assays mit einem Standard-qPCR-Gerät anstelle von speziellen Instrumenten und bestätigen unsere Ergebnisse durch Mikroskopie.

Einfache Massen Auslesen des digitalen Nukleinsäure Quantifizierung Assays

Dieser Bericht beschreibt ein Protokoll zur Messung der absoluten Werte der Plasma MiRNA, quantitative Real-Time reverse Transkription PCR verwenden, mit oder ohne Vorverstärkung. Dieses Protokoll bietet besseres Verständnis für die Menge an Plasma MiRNAs und qualitative Bewertung der entsprechenden Daten aus verschiedenen Studien oder Labors ermöglicht.

Absolute Quantifizierung von MicroRNA-Plasmaspiegel bei Cynomolgus Affen, über Quantitative Real-Time Reverse Transkription PCR

Zirkulierenden MicroRNAs haben Versprechen als Biomarker für kardiovaskuläre Erkrankungen und akute Myokardinfarkte gezeigt. In dieser Studie beschreiben wir ein Protokoll für die MiRNA-Extraktion, reverse Transkription und digitale PCR für die absolute Quantifizierung von MiRNAs im Serum von Patienten mit kardiovaskulären Erkrankungen.

Digitale PCR zur Quantifizierung der zirkulierenden MicroRNAs in akuten Myokardinfarkt und kardiovaskulären Erkrankungen

Hier stellen wir ein Protokoll zum Nachweis von tumorsomatischen Mutationen in zirkulierender DNA in biologischen Flüssigkeiten (Biofluide) vor. Unsere Droplet-Methode zur digitalen Polymerase-Kettenreaktion (dPCR) ermöglicht die Quantifizierung der Tumormutations-Allelfrequenz (MAF) und ermöglicht eine minimalinvasive Ergänzung zur Diagnose und zeitlichen Überwachung der Tumorreaktion.

Nachweis und Überwachung von tumorassoziierter zirkulierender DNA in Biofluiden von Patienten

Hier stellen wir ein Protokoll zur Messung der absoluten mitochondrialen (mt)DNA-Kopienzahl und der mtDNA-Deletionsheteroplasmie in einzelnen Zellen vor.

Messung der einzelligen mitochondrialen DNA-Kopienzahl und Heteroplasmie mittels digitaler Tröpfchenpolymerase-Kettenreaktion

Dieses Protokoll beschreibt die detaillierte Methode der digitalen Tröpfchen-PCR (dd-PCR) zur präzisen Quantifizierung von zirkulären RNA (circRNA)-Spiegeln in Zellen unter Verwendung divergenter Primer.

Quantifizierung zirkulärer RNAs mittels digitaler Tröpfchen-PCR

Erfahren Sie die Quantifizierung zirkulierender MicroRNAs in Plasma oder Serum mittels Droplet Digital-PCR. Diese hochsensitive Methode ermöglicht die Detektion seltener MicroRNAs ohne Referenzgen und unterstützt die Krebsdiagnostik.

Zirkulierende MicroRNA Quantifizierung der Basis von DNA-bindenden Farbstoff Chemie und Droplet Digital-PCR

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