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Neuroscience
Un modelo neonatal de inyección venosa retroorbitaria en roedores
Un modelo neonatal de inyección venosa retroorbitaria en roedores
JoVE Journal
Neuroscience
Author Produced
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
A Neonatal Rodent Model of Retroorbital Vein Injection

Un modelo neonatal de inyección venosa retroorbitaria en roedores

Full Text
9,795 Views
04:39 min
February 23, 2024

DOI: 10.3791/65386-v

Eridan Rocha-Ferreira1, Syam Nair1, Owen Herrock1, Erik Axel Andersson2, Carl Joakim Ek2, Carina Mallard2, Henrik Hagberg1

1Centre of Perinatal Medicine and Health, Institute of Clinical Sciences, Department of Obstetrics and Gynecology, Sahlgrenska Academy,University of Gothenburg, 2Centre of Perinatal Medicine and Health, Institute of Neuroscience and Physiology, Sahlgrenska Academy,University of Gothenburg

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol highlights a reproducible retro-orbital injection method for intravenous drug administration in neonatal rats and mice. The technique facilitates compound delivery into the venous circulation, which is particularly crucial for preclinical studies mimicking neonatal care unit conditions.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Pharmacology
  • Animal models

Background

  • Intravenous administration is commonly used in neonatal intensive care units.
  • Injections via the tail vein are difficult in neonates, making alternative routes necessary.
  • The retro-orbital route is simpler and can be used effectively for compound administration.
  • This method allows for real-time monitoring of injection success through visible dye tracking.

Purpose of Study

  • To optimize intravenous drug administration techniques in neonatal rodents.
  • To provide a reliable method for compound delivery that can be used in various preclinical settings.
  • To enhance reproducibility and outcomes in rodent studies related to neonatal care.

Methods Used

  • The retro-orbital injection method is demonstrated using trypan blue dye.
  • Subjects include neonatal rats and mice under anesthesia during the procedure.
  • New sterile syringes are utilized for each animal to prevent contamination.
  • Injection occurs at the medial canthus of the eye at a 40-degree angle.
  • Recovery protocols ensure the well-being of the animals post-injection.

Main Results

  • The protocol enables successful visualization of compounds in the venous system.
  • Effective tracer administration allows for assessment of vascular responses after injury.
  • These results highlight the potential for quantifying vascular leakage and injury assessment.
  • The method does not cause adverse effects when performed properly.

Conclusions

  • This study establishes the retro-orbital injection as a reliable method for drug administration in neonatal rodents.
  • The technique presents significant clinical relevance in translational research.
  • Enhanced understanding of venous drug delivery mechanisms supports future studies in neonatal pharmacology.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using the retro-orbital injection method?
The retro-orbital injection method simplifies intravenous administration in neonatal rodents, providing a more accessible alternative to tail vein injections, which can be challenging.
How is the retro-orbital injection performed?
The injection is performed with the animal under anesthesia, using a 29 to 31 gauge needle positioned at the medial canthus of the eye, angled appropriately to access the venous plexus.
What types of data can this method help obtain?
The method allows for real-time monitoring of compounds in the blood circulation, enabling assessments of tracer distributions and vascular responses.
Can this method be adapted for other substances?
Yes, this injection technique can be used for various compounds, including antibodies, cells, and other therapeutic agents directly into the venous circulation.
Are there any limitations to this injection method?
Care must be taken to ensure proper needle placement to avoid complications, and the procedure should only be performed by trained individuals for optimal animal welfare.
How does this study contribute to neonatal pharmacology?
The study presents a reliable method for intravenous drug administration that can improve translational research on drug effects in neonatal care settings.

Este protocolo tiene como objetivo demostrar una vía de administración venosa reproducible que pueda ser utilizada en ratas y ratones durante todo el período neonatal. Este procedimiento es importante para los estudios preclínicos en roedores que desean reflejar la administración de fármacos en las unidades de cuidados neonatales, principalmente mediante la administración intravenosa.

La inyección retroorbitaria es un método de inyección especializado que se utiliza para administrar compuestos en la circulación venosa. La investigación con animales es un paso importante hacia el trabajo clínico. Como parte de la investigación con animales, existe la necesidad de administrar diferentes tipos de compuestos a través de diferentes vías.

Algunas de estas vías son la subcutánea, la intraperitoneal y la intravenosa. La inyección intravenosa es la vía más utilizada en los recién nacidos que se encuentran en la unidad de cuidados intensivos neonatales. Sin embargo, en la investigación con roedores, particularmente en roedores adultos, las inyecciones intravenosas se realizan de forma rutinaria en la vena de la cola.

En los recién nacidos, es extremadamente difícil realizar una inyección en la vena de la cola con éxito y de forma reproducible. Por lo tanto, la ruta retroorbital se puede utilizar como una alternativa más fácil. En primer lugar, demostraremos el uso de un tinte, el azul de tripano, para que el espectador pueda ver claramente el tinte que entra en la circulación venosa.

La rata neonata se coloca bajo anestesia completa, con la cabeza apoyada de lado, descansando sobre una fuente de luz, de modo que el ojo y la vasculatura lateral queden expuestos y visibles. La aguja se inserta en la parte frontal de la cuenca del ojo, el equivalente al canto medial. Inyecte la solución con un movimiento suave, suave y fluido.

Para reproducir mejor este procedimiento, es importante comprender la anatomía venosa orbitaria. En la rata, hay una red de varias venas justo debajo del ojo, que permiten un acceso fácil y directo al plexo venoso. En ratas albinas neonatas, también es visible tanto en las venas temporales superficiales como en las faciales.

Este procedimiento se puede realizar exactamente de la misma manera. En ratones neonatos. Utiliza una aguja con un calibre de 29 a 31 de alrededor de 0,30 milímetros.

Para obtener volúmenes precisos, extraiga la solución que se va a inyectar a partir de un volumen pipeteado. Coloque a los animales sobre una superficie plana en decúbito lateral. Inducir anestesia con isoflurano en todo el cuerpo.

5% de inducción, 3% de mantenimiento. Verifique la profundidad de la anestesia utilizando el método del reflejo de extracción de tracción. Con la cabeza hacia la derecha, administrar la inyección en el seno retroorbitario derecho.

Inserte el bisel de la aguja hacia abajo en la parte delantera de la cuenca del ojo, el equivalente al canto central, en un ángulo de aproximadamente 40 grados. Este ángulo permite que la aguja se dirija a la parte posterior de la órbita del ojo. Inyecte con un movimiento suave, suave y fluido.

Espere un breve momento antes de retirar la aguja, lentamente, para evitar el reflujo. Utilice una jeringa estéril nueva para cada animal para evitar la contaminación. Coloque al cachorro en la caja de recuperación, descansando sobre un dispositivo de calentamiento protegido, alrededor de 35 a 37 grados centígrados.

Espere a que se recupere y verifique si hay signos de angustia antes de devolver al cachorro a la madre. Esta técnica se utilizó para administrar el trazador biotina-dextrano en la vasculatura del cerebro de animales que habían sufrido hemorragia de matriz germinal. Los animales que recibieron una inyección de solución salina como control no muestran tinción visible de la vasculatura dentro del cerebro.

La inyección retroorbitaria exitosa del trazador de biotina-dextrano permitió evaluar su presencia en la vasculatura cerebral dentro de los 10 minutos posteriores a la administración retroorbitaria. Esta técnica se utilizó para detectar la fuga vascular del trazador a nivel de los vasos sanguíneos individuales en los animales lesionados por GMH. Este resultado permite, por ejemplo, cuantificar la lesión cuantificando la cantidad de vasos sanguíneos que tienen fugas después de una lesión cerebral GMH.

Además, este procedimiento también se puede realizar sin una fuente de luz, lo que lo convierte en una técnica simple, directa y reproducible que permite la administración de compuestos directamente en la circulación venosa de ratas y ratones neonatos. Cuando se realiza correctamente, este procedimiento no debería provocar ningún efecto adverso. Esta raíz de administración permite inyecciones de anticuerpos, células y otros compuestos directamente en la circulación venal de los animales neonatos.

Esta vía es de mayor relevancia clínica en comparación con otras vías, como las inyecciones intraperitoneales o subcutáneas.

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Neuroscience Número 204 rata ratón recién nacido inyección venosa retroorbitaria administración de compuestos intravenosa

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