Summary

RNAi Interferência por injeção dsRNA em Drosophila Os embriões

Published: April 11, 2011
doi:

Summary

Interferência de RNA tem se mostrado muito eficaz para analisar a função do gene em<em> Drosophila</em> Desenvolvimento traqueal. Um protocolo detalhado usada por Jiang laboratório para injetar dsRNA em embriões de voar para a expressão do gene knockdown é ilustrado. Esta técnica tem o potencial de genes de triagem necessária para o desenvolvimento de tecidos e órgãos em<em> Drosophila</em>.

Abstract

Screening genético é um dos métodos mais poderosos disponíveis para a obtenção de insights sobre processo biológico complexo 1. Ao longo dos anos muitas melhorias e ferramentas para a manipulação genética tornaram-se disponíveis em Drosophila 2. Logo após a descoberta inicial por Frie e Mello 3, que RNA de filamento duplo pode ser usado para knockdown a atividade de genes individuais em Caenorhabditis elegans, interferência de RNA (RNAi) foi mostrado para fornecer uma abordagem inversa genética poderosa para analisar funções de genes na Drosophila desenvolvimento dos órgãos 4, 5.

Muitos órgãos, incluindo pulmões, rins, fígado e sistema vascular, são compostas de redes tubulares ramificados que os fluidos vitais de transporte ou gases 6, 7. A análise da formação de Drosophila traqueal fornece um sistema de excelente modelo para estudar a morfogênese de outros órgãos tubulares 8. O Berkeley Drosophila projeto genoma revelou centenas de genes que são expressos no sistema traqueal. Para estudar o mecanismo molecular e celular de formação do tubo, o desafio é compreender o papel destes genes no desenvolvimento traqueal. Aqui, descrevemos um método detalhado de dsRNA injeção em Drosophila embrião para knockdown expressão de genes individuais. Com sucesso derrubado endógena dysfusion expressão gênica (dis) por injeção dsRNA. Disfunção é uma proteína bHLH-PAS expressa em células de fusão de traquéia, e é necessária para a fusão ramo traqueal 9, 10. dis-RNAi completamente eliminada expressão disfunção e resultou em defeito de fusão traqueal. Este método relativamente simples fornece uma ferramenta para identificar genes requried para tissure e desenvolvimento de órgãos em Drosophila.

Protocol

1. De colheita de embriões Configurar gaiolas a 25 ° C usando 2-4 dias de idade w placas de suco de 1118 flies.Grape são trocados a cada hora durante o dia para sincronizar a coleta de ovos ao longo de 1-2 período de dias antes da coleta Coletar embriões para 1h a 25 ° C Corte um pedaço retangular de ágar suco de uva, corte levemente no meio com uma lâmina de barbear, deixe uma linha no agar Use uma sonda de metal para transferência de embriões a partir de c…

Discussion

O dsRNA presentes método de injeção aqui permite uma análise muito sensível e rápido da função do gene em Drosophila desenvolvimento traqueal. Este método pode potencialmente ser aplicada para analisar a função do gene para outros tecidos e desenvolvimento do órgão.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Os autores gostariam de agradecer a Stephen Crews para dysfusion anticorpos, cDNA Dys e w voa 1118.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Halocarbon oil 700   Sigma-Aldrich H8898  
Picospritzer III picopump   Parker Precision Fluidics 051-0500-900  
Micro-pipettes   Fisher 21170M  
Microloaders   Eppendorf 930001007  

References

  1. St Johnston, D., Nusslein-Volhard, C. The origin of pattern and polarity in the Drosophila embryo. Cell. 68, 201-219 (1992).
  2. Venken, K. J., Bellen, H. J. Emerging technologies for gene manipulation in Drosophila melanogaster. Nat. Rev. Genet. 6, 167-178 (2005).
  3. Fire, A. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 391, 806-811 (1998).
  4. Kennerdell, J. R., Carthew, R. W. Use of dsRNA-mediated genetic interference to demonstrate that frizzled and frizzled 2 act in the wingless pathway. Cell. 95, 1017-1026 (1998).
  5. Misquitta, L., Paterson, B. M. Targeted disruption of gene function in Drosophila by RNA interference (RNA-i): a role for nautilus in embryonic somatic muscle formation. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 96, 1451-1456 (1999).
  6. Horowitz, A., Simons, M. Branching morphogenesis. Circ. Res. 103, 784-795 (2008).
  7. Hogan, B. L., Kolodziej, P. A. Organogenesis: molecular mechanisms of tubulogenesis. Nat. Rev. Genet. 3, 513-523 (2002).
  8. Ghabrial, A., Luschnig, S., Metzstein, M. M., Krasnow, M. A. Branching morphogenesis of the Drosophila tracheal system. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 19, 623-647 (2003).
  9. Jiang, L., Crews, S. T. Dysfusion transcriptional control of Drosophila tracheal migration, adhesion, and fusion. Mol. Cell. Biol. 26, 6547-6556 (2006).
  10. Jiang, L., Crews, S. T. The Drosophila dysfusion basic helix-loop-helix (bHLH)-PAS gene controls tracheal fusion and levels of the trachealess bHLH-PAS protein. Mol. Cell. Biol. 23, 5625-5637 (2003).
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Cite This Article
Iordanou, E., Chandran, R. R., Blackstone, N., Jiang, L. RNAi Interference by dsRNA Injection into Drosophila Embryos. J. Vis. Exp. (50), e2477, doi:10.3791/2477 (2011).

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