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Medicine

Roux-en-Y Gastric operación de bypass en las ratas

Published: June 11, 2012 doi: 10.3791/3940
Automatic Translation
1,2, 2,3, 4, 2,3, 4
1Department of Surgery, University Hospital Zürich, 2Zürich Centre for Integrative Human Physiology, University of Zürich, 3Institute of Veterinary Physiology, Vetsuisse Faculty, University of Zürich, 4Imperial Weight Centre, Department of Investigative Medicine, Imperial College London

Summary

Numerosos estudios con modelos de ratas de bypass gástrico se han llevado a cabo recientemente para descubrir los mecanismos fisiológicos de Roux-en-Y las operaciones de bypass gástrico. En este artículo se pretende demostrar y discutir los detalles técnicos y experimentales de nuestro modelo de rata de derivación gástrica publicada a entender las ventajas y limitaciones de esta herramienta experimental.

Abstract

En la actualidad, la terapia más efectiva para el tratamiento de la obesidad mórbida para inducir la pérdida de peso significativa y se mantiene con un beneficio comprobado de mortalidad es de 1,2 la cirugía bariátrica. En consecuencia, ha habido un aumento constante en el número de cirugías bariátricas realizadas en todo el mundo en los últimos años con la Roux-en-Y bypass gástrico (derivación gástrica) es la más comúnmente realizada la operación 3. En este contexto, es importante para comprender los mecanismos fisiológicos por los que el bypass gástrico induce y mantiene la pérdida de peso corporal. Estos mecanismos no están del todo claras, pero pueden incluir la reducción del hambre y el aumento de la saciedad 4,5 del gasto, aumento de la energía 6,7, la preferencia por la comida alterada alta en grasa y azúcar 8,9, la sal y el manejo del agua alterada del riñón 10 como así como alteraciones en la microbiota intestinal 11. Estos cambios observados después de bypass gástrico puede al menos en parte se derivan de la formala cirugía altera el entorno hormonal debido a bypass gástrico aumenta la liberación postprandial de péptido YY (PYY) y similar al glucagón péptido 1 (GLP-1), las hormonas que son liberadas por el intestino en presencia de nutrientes y que reducen el consumo 12.

Durante las dos últimas décadas numerosos estudios con ratas se han llevado a cabo para investigar más a fondo los cambios fisiológicos después del bypass gástrico. El modelo de derivación gástrica en ratas ha demostrado ser una herramienta valiosa no por ello menos experimental que imita el perfil de tiempo y la magnitud de la pérdida de peso humano, sino que también permite a los investigadores para controlar y manipular los factores críticos anatómicos y fisiológicos, incluyendo el uso de controles adecuados. Por consiguiente, existe una amplia gama de modelos de ratas bypass gástrico disponibles en la literatura crítica en otra parte con mayor detalle 13-15. La descripción de la técnica quirúrgica exacta de estos modelos varía ampliamente y difiere por ejemplo en términos de tamaño de la bolsa, una extremidadlongitud, y la preservación del nervio vago. Si se informan, las tasas de mortalidad parece ir de 0 a 35% 15. Además, la cirugía se ha llevado a cabo casi exclusivamente en ratas macho de diferentes cepas y edades. Las dietas pre y postoperatoria también varió significativamente.

Variaciones técnicas y experimentales publicados en modelos de ratas de bypass gástrico complicar la comparación e identificación de posibles mecanismos fisiológicos implicados en el bypass gástrico. No hay evidencia clara de que cualquiera de estos modelos es superior, pero hay una necesidad emergente para la estandarización del procedimiento para obtener datos consistentes y comparables. En este artículo se pretende, pues, para resumir y discutir los detalles técnicos y experimentales de nuestra previamente validado y publicado el modelo de rata de bypass gástrico.

Protocol

1. Cuidados preoperatorios

  1. Retire el alimento de la rata durante la noche antes de la cirugía.
  2. Inducir la anestesia en la cámara con 4.5% el flujo de isoflurano y el O2 de 2 l / min.
  3. Afeitado el abdomen desde el esternón hasta la pelvis con maquinilla de afeitar eléctrica.
  4. Coloque rata anestesiada en posición supina sobre la almohadilla de calor isotérmica.
  5. Aplicar pomada para los ojos (Vitagel) antes de poner el hocico de las ratas en la ojiva.
  6. Mantener la anestesia con isoflurano concentración de 2-3% y el flujo de O2 de 2 l / min.
  7. Desinfecte la piel con Betadine, solución.
  8. Confirme la profundidad de la anestesia con pizca pinza entre los dedos de las patas traseras.
  9. Administrar 5,7 mg / kg por vía intraperitoneal Enrofloxacina como profilaxis perioperatoria antibiótico, y 1 mg / kg de flunixina para analgesia.

2. Laparotomía media

  1. Realizar incisión de línea media con bisturí comenzando justo debajo apófisis xifoides (hoja N º 10).
  2. Movilizar a la piel de forma circunferencial Subrayarying los músculos abdominales con unas tijeras de Metzenbaum.
  3. Abrir la cavidad abdominal.
  4. Instale separadores para facilitar la mejor exposición posible de la operación sobre el terreno.

3. Biliopancreática y el asa alimentaria

  1. Identificar dónde el yeyuno proximal, duodeno o pasa por debajo de los dos puntos.
  2. Corte transversal del intestino delgado de unos 10 cm aborally de aquí y de ligar los dos extremos del intestino (PDS 5-0).
  3. Coloque muñón proximal de los dos extremos en el cuadrante superior izquierdo del abdomen, ya que se utilizarán posteriormente para formar la extremidad biliopancreática de Roux-en-Y la reconstrucción.
  4. Coloque muñón distal de los dos extremos en el cuadrante superior derecho del abdomen, ya que se utilizarán posteriormente para formar el asa alimentaria de Roux-en-Y la reconstrucción.

4. Yeyuno-yeyunostomía

  1. Identificar ciego con válvula ileocecal y el íleon.
  2. Siga el íleon por vía oral durante aproximadamente 25 cm. El yeyuno-yeyunostomía se colocan aquí como punto de partidadel canal común de Roux-en-Y la reconstrucción.
  3. Recuperar la extremidad biliopancreática del cuadrante superior izquierdo del abdomen y colocarla al lado del canal común donde se va a realizar yeyuno-yeyunostomía.
  4. Extremidad biliopancreática segura y canal común con la retención de la puntada (PDS 6-0).
  5. Una incisión más de dos bucles de aproximadamente 10 mm por el uso de tijeras micro.
  6. Crear yeyuno-yeyunostomía mediante la realización de lado a lado de la anastomosis con suturas interrumpidas (PDS 6-0).
  7. En primer lugar el lado dorsal completa y cara ventral de la anastomosis.

5. Bolsa gástrica

  1. Identificar la unión gastro-esofágico.
  2. Movilizar a esta zona mediante la disección de los ligamentos gastro-hepáticos y gastrointestinales-esplénica con unas tijeras de Metzenbaum.
  3. Mueva arteria gástrica izquierda y fibras vagales de la izquierda para-esofágica paquete lateralmente para evitar las hemorragias importantes y el daño del nervio vago cuando pequeña bolsa gástrica se crea.
  4. Exponer gastro-esofágico junction mediante la colocación de algodón retro-oesophageally.
  5. Coagular pequeños vasos del estómago frontal mediante el uso de dispositivo de cauterio disponible en el mercado - también para prevenir las hemorragias.
  6. Transecto estómago aproximadamente 5 mm por debajo de la unión gastro-esofágico crear bolsa gástrica de un tamaño de no más de 2-3% del tamaño del estómago original usando tijeras delicadas y curvas.
  7. Cerca remanente gástrico (PDS 5-0).

6. Gastro-yeyunostomía

  1. Recuperar asa alimentaria en el cuadrante superior derecho del abdomen y colocarla junto a la bolsa gástrica.
  2. Crear Gastro-yeyunostomía mediante la realización de extremo-a-lado de la anastomosis (PDS 7-0).
  3. En primer lugar el lado posterior completa y luego parte frontal de la anastomosis.

7. El cierre abdominal

  1. Reducir la anestesia mediante la reducción de la concentración de isoflurano al 1,5%.
  2. Cerca de la capa muscular de la pared abdominal con sutura continua de PDS (4-0).
  3. Administrar 100 l de 0,3 mg / mlbuprenorfina por vía subcutánea una solución para la analgesia.
  4. Además reducir la concentración de isoflurano al 1%.
  5. Cerca de la piel con sutura (Vicryl 4-0).

8. Cuidado Postoperatorio

  1. Deje de isoflurano y continuar con O2.
  2. Administrar 5 ml de solución salina caliente para la reposición de líquidos en los tres depósitos subcutáneos.
  3. Posición rata bajo la luz roja hasta su completa recuperación.
  4. Volver a la rata de la jaula de su casa.

9. Los resultados representativos

Los animales y la vivienda

Hombre ratas Wistar (Harlan Laboratories, Inc., Blackthorn, Reino Unido;. Elevage Janvier, Le-Genest-St Isle, Francia) con un peso entre 350 y 500 g fueron alojados individualmente en un 12 h / 12 h ciclo luz-oscuridad a una temperatura ambiente de 21 ± 2 ° C. Agua y comida estándar ad libitum, a menos que se indique lo contrario. Todos los experimentos se realizaron bajo una licencia emitida por la Ofi Inicioce, Reino Unido (PL70-6669) o aprobados por la Oficina Veterinaria del Cantón de Zurich, Suiza. Todas las ratas se les dio una semana de aclimatación antes de ser asignados al azar a un bypass gástrico o la operación simulada. Después de la cirugía, las ratas recibieron la dieta líquida durante 3 días antes de que el acceso a la comida normal se vuelve a instalar.

El peso corporal

Los datos de nuestro modelo de rata de bypass gástrico son consistentes con los hallazgos previos de que la cirugía de bypass gástrico es eficaz para reducir el peso corporal y, sobre todo para mantener la pérdida de peso corporal (Figura 2). Promedio de pre-quirúrgica de peso corporal de las ratas utilizadas para el bypass gástrico y la farsa de las operaciones fue similar (simulada: 433,4 ± 8,3 g vs bypass: 420,7 ± 8,4 g, p = 0,28). Cinco días después de la cirugía de simulacro que funcionan con los controles de peso significativamente mayor en comparación con las ratas de bypass gástrico (simulado: 422,2 ± 8,3 g vs bypass: 374,7 ± 7,6 g, p <0,001). El día después del 60, la diferencia en el peso corporal fue casi de 170 g (tratamiento simulado: 533,2 ± 8,1 g vs bypass: 366,2 ± 10,8 g, p <0,001).

La ingesta de alimentos

La ingesta de alimentos siguieron patrones similares como el peso corporal y se redujo en ratas de bypass gástrico en comparación con el simulacro que funciona con ratas alimentadas ad libitum. La Figura 3 muestra el promedio de ingesta diaria de alimentos para ambos grupos (día del postoperatorio 1-60). Ingesta diaria de alimentos fue consistentemente más baja después del bypass gástrico (simulado: 29,9 ± 0,2 g vs bypass: 25,7 ± 0,3 g, p <0,001).

Gut hormonas

La sangre de todas las ratas se recogió el día de la terminación del estudio 8,16. Los animales tuvieron acceso ad libitum de alimentos la noche anterior y fueron decapitados al comienzo del ciclo de luz de día postoperatorio 60. Se obtuvo sangre, inmediatamente se centrifuga a 3000 rpm durante 10 minutos a 4 ° C, y se almacenó a -20 ° C hasta que las muestras fueron analizadas por duplicado en una sola tanda. PYY-como inmunoreactividad fue medidamedido con un radioinmunoensayo específico y sensible, que mide, tanto la longitud completa (PYY1-36) y el fragmento (PYY3-36). GLP-1 se midió mediante establecida en las casas radioinmunoensayos 17,18. Las diferencias en la ingesta de alimentos puede explicarse en parte por el aumento de los niveles plasmáticos postprandiales de péptido YY (PYY) y péptido similar al glucagón 1 (GLP-1) como las ratas de bypass gástrico mostraron niveles significativamente más altos de PYY (tratamiento simulado: 26 ± 2 pmol / l frente a . de derivación: 141 ± 14 pmol / L, p <0,001) y GLP-1 (tratamiento simulado: 40 ± 5 pmol / l vs bypass: 215 ± 23 pmol / L, p <0,001; Figura 4).

Figura 1
Figura 1. Anatomía del bypass gástrico. Representación esquemática de la anatomía del intestino delgado antes (A) y después (B) la operación de bypass gástrico. Los diferentes tonos de rojo representan aproximadamente segmentos correspondientes del intestino delgado con el rojo que representa la media del intestino anterior(Esófago, duodeno, el estómago y el yeyuno proximal), la luz roja que representa el intestino (yeyuno proximal y medio, íleon proximal) y la de color rojo oscuro que representa el intestino grueso (íleon, ciego).

Figura 2
Figura 2. . Pérdida de peso corporal después de la cirugía de bypass gástrico en ratas cambio de peso corporal de un grupo representativo de las ratas después del bypass gástrico (-) (n = 52) y el simulacro de accionamiento ratas (-) (n = 52) a lo largo de un período de observación de la 60 días. Se combinaron los datos de anteriores publicaciones 6,8-10 y se muestran como valores medios ± SEM (*** = p <0,001).

Figura 3
Figura 3. Ingesta media de alimentos después de la cirugía de bypass gástrico en ratas. Ingesta diaria de alimentos de un grupo representativo de las ratas después del bypass gástrico (negro, n = 52) y las ratas sham-operados (blanco, n = 52) a través de unapostoperatorio de 60 días. Se combinaron los datos de anteriores publicaciones 6,8-10 y se muestran como valores medios ± SEM.

Figura 3
Figura 4. Postprandial PYY y GLP-1 los niveles séricos después de la cirugía de bypass gástrico en ratas. Postprandial de PYY y el nivel de GLP-1 en suero de ratas de bypass gástrico (negro, n = 18) y la farsa que funciona con ratas (blanco, n = 22). Se combinaron los datos de las publicaciones anteriores 8,16 y se muestran como valores medios ± SEM.

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Discussion

El procedimiento de Roux-en-Y bypass gástrico en humanos fue descrito por primera vez por Mason en 1967 y modificada a su forma actual por Torres en 1983 19. Actualmente, el procedimiento consiste en una pequeña bolsa gástrica y la derivación del intestino delgado proximal. Una ilustración esquemática de la anatomía pre y post-operatorio se da en la Figura 1.

El bypass gástrico en humanos induce y mantiene la pérdida de peso corporal de aproximadamente 15-30% 2. La mayor parte del peso del cuerpo se pierde durante los primeros meses después de la cirugía, en parte debido a la ingesta reducida de alimentos, preferencias alimentarias alteradas y los gastos presuntamente aumento de la energía 4-6,8-10. De manera similar a lo que se ha observado en humanos, nuestro modelo de rata de derivación gástrica induce una reducción significativa en la ingesta de alimentos y el peso corporal. Por el contrario, los modelos de bypass gástrico de los demás muestran un peso constante en paralelo a recuperar el peso corporal de farsa que funciona con controles poco después de estómagopasar por alto, sin diferencias en la ingesta de alimentos entre derivación simulacro de accionamiento y gástrico operado ratas 20.

Variaciones en el curso postoperatorio de peso corporal y la ingesta de alimentos entre los modelos de rata publicados pueden ser en parte relacionada con las diferencias en los tamaños de bolsa gástrica. Los tamaños grandes bolsa han sido reportados por causar la pérdida de peso insuficiente o la recuperación de peso en los seres humanos 21. La creación de una pequeña bolsa gástrica en ratas es técnicamente exigente pero factible y una variedad de técnicas diferentes que se ha descrito 15. El tamaño de la bolsa de modelos de bypass gástrico en la literatura rata va desde <5% a más del 20% del tamaño del estómago inicial 15. Mientras que utilizamos tijeras curvas de microcirugía, la mayoría de los autores seccionar el estómago por el uso de dispositivos humanos grapadora resultantes en una bolsa conservado gástrico de al menos 20% del volumen original de estómago 7,15,20,22-24. Esto está en contraste con la forma del procedimiento de bypass gástrico es UsuaLLY realiza en los seres humanos, donde al menos el 90% del estómago se omite 25 y muchos cirujanos informan que sólo 1-2% del estómago se deja contiguos con el intestino delgado 26. Nuestro modelo de rata de bypass gástrico por lo tanto, se asemeja mucho a la técnica quirúrgica empleada en los seres humanos mediante la creación de una bolsa gástrica muy pequeña y se compone de <5% del volumen del estómago 27 original. Así, en nuestro modelo de rata y en pacientes humanos, el alimento se mueve directamente en el yeyuno en lugar de ser diluida en la bolsa por otros alimentos y fluidos antes de que sea transportado a continuación con mayor lentitud en el yeyuno. Por lo tanto, si se deja demasiado grande, la bolsa gástrica puede retener alguna capacidad de almacenamiento, trayendo como consecuencia un estado fisiológico diferente en comparación con el bypass gástrico humano. En consecuencia, las ratas de bypass gástrico con un tamaño de la bolsa de 20% o más del tamaño del estómago original se han mostrado para retener todavía medio de contraste se ingiere en su bolsa mucho tiempo después de la ingestión se ha detenido 7. Curiosamente, diferencias en el tamaño de la bolsa gástrica también se han demostrado que afectan a la pérdida de peso en los seres humanos 21. Por lo tanto, las diferencias en los tamaños de bolsa gástrica puede afectar el tiempo de tránsito de los alimentos al intestino delgado, que a su vez podría influir en la ingesta de alimentos y las preferencias de los alimentos después de un bypass gástrico.

Los niveles alterados de hormonas intestinales después del bypass gástrico en los seres humanos han demostrado de forma consistente 4,5,28, mientras que algunos pero no todos los modelos de rata publicadas de bypass gástrico reportado alteraciones en los niveles de hormonas intestinales 15. Si investigado, los niveles elevados de PYY y GLP-1 se encuentra tanto en las ratas alimentadas con el ayuno y después del bypass gástrico 15, que está de acuerdo con los resultados de nuestro modelo de bypass gástrico 8,16,27. Los niveles elevados de PYY y GLP-1 han sido previamente demostrado para aumentar la saciedad y reducir el hambre, en parte, mediada a través de acciones en el núcleo arqueado del hipotálamo y el núcleo paraventricular, respectivamente, 29 </ Sup>, pero también en parte a través de las vías aferentes vagales 30. Sin embargo, no queda claro si pasar por el duodeno hormonalmente activos y el yeyuno proximal, o si el aumento de la entrega de la bilis sin diluir y alimentos no digeridos en el intestino delgado distal, o ambas cosas, estimular la enteroendocrinas las células L a segregar más hormonas intestinales, como PYY y GLP -1 después de bypass gástrico 31,32. El efecto de la cirugía de bypass gástrico en los niveles de la hormona intestinal ha sido sistemáticamente examinado en otro lugar 33.

El impacto de las longitudes de las extremidades diferentes intestinales en términos de pérdida de peso corporal en los seres humanos sigue siendo polémico debate 34-36, y también hay considerables diferencias en la longitud de las extremidades a través de los modelos de rata de bypass gástrico disponibles con una longitud de asa alimentaria que varía entre 10 cm y 50 cm, la longitud de las extremidades biliopancreática que oscila entre 10 cm y 40 cm y un canal común entre 18 cm y 34 cm 15. Un c relativamente cortoCOMÚN canal de 25-30 cm caracteriza a nuestro modelo de bypass gástrico que puede sugerir que la pérdida de peso observada en parte puede ser el resultado de la mala absorción de calorías, sin embargo, creemos que la mala absorción de calorías no es un mecanismo importante de pérdida de peso corporal en nuestro modelo de rata por calorimetría de bomba no mostró diferencias en la masa fecal y fresco contenido calórico entre el bypass gástrico y la farsa que funciona con el control de ratas cuando se alimentaron con comida normal, baja la grasa 6. Sin embargo, otros informaron de un pequeño grado de mala absorción de grasa en los modelos de bypass gástrico con un canal más común (~ 50 cm) cuando las ratas se les dio una dieta alta en grasas 7. Por lo tanto, la mala absorción de calorías puede relacionarse más con el contenido de grasa de la dieta que a la longitud de las extremidades.

Hasta la fecha, la relevancia del nervio vago para la pérdida de peso corporal después del bypass gástrico no es totalmente comprendida. Por lo tanto, separar selectivamente y ligar los vasos gástricos izquierdos en nuestro modelo de bypass gástrico por dos razones: En primer lugar,para evitar las hemorragias importantes y en segundo lugar, para preservar las fibras vagales en el tronco vagal dorsal. Hemos podido demostrar que esta técnica selectiva conduce a la pérdida mayor y más sostenida de peso corporal en ratas de bypass gástrico que sugieren que la preservación de fibras vagales del tronco vagal dorsal durante las operaciones de derivación gástrica puede ser importante 27. Esta observación es consistente con informes anteriores que muestran que la ablación de la vía vagal-tronco-hipotalámico atenúa los efectos inhibitorios de PYY y GLP-1 sobre la ingesta de alimentos 30, y que desaferenciación vagal específica suprime el efecto inhibitorio de la alimentación por vía intraperitoneal de GLP-1 37 . Sin embargo, mientras que una menor interferencia con el estómago presumiblemente causan menos daño al nervio vago, el grado en que las vías aferentes vagales son dañados por los modelos con una bolsa gástrica más grande que nuestro modelo aún no se ha probado de forma explícita 27.

El bypass gástrico relacionado con mortadad de nuestro modelo es de aproximadamente 15% 27. Las tasas de mortalidad después de las operaciones de bypass gástrico en ratas rara vez se afirman los autores, pero parece que van de 0 a 35% 15. En nuestras manos la mortalidad se debe principalmente a fugas o estenosis de la anastomosis gastro-yeyunal, el sangrado después de la transección del estómago, complicaciones de la herida, los incidentes anaesthesiological y persistente pérdida de peso excesiva que conduce al bienestar animal en peligro 15.

Somos conscientes del hecho de que nuestro modelo de bypass gástrico conlleva diversas limitaciones. En primer lugar, a pesar de un fervoroso partidario de la formación de una bolsa gástrica pequeña, no hay una prueba formal si la bolsa contiene todavía la mucosa gástrica se ha hecho todavía. Además, el impacto real del tamaño de la bolsa gástrica como una sola variable no ha sido analizado. En segundo lugar, la alta demanda técnica de la técnica pequeña bolsa en nuestro modelo en comparación con la técnica utilizada por otros grapadora puede limitar su disponibilidadcapacidad de los grupos de investigación que cuentan con un operador debidamente capacitado y calificado en su disponibilidad. En tercer lugar, muchos grupos de investigación se centran en los cambios en la homeostasis de la glucosa después de la cirugía de bypass gástrico. Sin embargo, hasta ahora, no hemos utilizado nuestro modelo para investigar la glucosa post-operatorio o de los perfiles de lípidos, por lo que la idoneidad de nuestro modelo para responder a estas preguntas sigue siendo desconocido. Por último, la mayoría de nuestros experimentos se realizaron en animales alimentados con un nivel bajo en grasa dieta chow.

En conclusión, existe una gran variedad de modelos de bypass gástrico de rata. Varios componentes que actúan en concierto conducir a los cambios observados fisiológicos después del bypass gástrico, pero la contribución relativa de estos componentes y su interacción sigue siendo desconocido. La variedad de modelos publicados de bypass gástrico de rata complica la identificación de determinados mecanismos fisiológicos implicados en la pérdida de peso corporal después de un bypass gástrico. Así pues, existe una necesidad emergente para la normalización del procedimiento a unChieve datos consistentes y comparables. Hasta el momento no hay evidencia de que ninguno de los modelos es superior.

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Disclosures

No hay conflictos de interés declarado.

Acknowledgments

Marco Bueter y Seyfried Florian con el apoyo de la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG). Thomas A. Lutz fue apoyada por la Fundación Nacional Suiza para la Investigación (SNF). Marco Bueter y Thomas Un. Lutz aún reciben financiamiento del Instituto Nacional de Salud (NIH) y del Centro de Zúrich de Fisiología Humana Integral (ZIHP) Carel le Roux W fue apoyado por un Departamento de Salud Clínico Scientist Award. Imperial College de Londres recibe el apoyo del sistema de financiación NIHR de Investigación Biomédica de Centro.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Enrofloxacin Baytril 2.5% Provet AG 1036
Flunixin Finadyne Graeub 908040
Buprenorphin Temgesic Reckitt Benckiser 138976
Isoflurane IsoFlo Graeub 902035
Vitamin A Vitagel Bausch & Lomb 690
Iodine solution Betadine Puredue Pharma Mundipharma 111141
NaCl 0.9% NaCl 0.9% B. Braun 534534
Table 1. Drugs.
PDS II 4-0 Ethicon Z924H
PDS II 5-0 Ethicon Z925H
PDS II 6-0 Ethicon PUU2971E
PDS II 7-0 Ethicon Z1370E
Vicryl 4-0 Ethicon V451H
Table 2. Sutures.
Scalpel handle No. 3 Aesculap BB073R
Scalpel blades No. 10 Swann-Morton 0301
Needle holder Aesculap BM124R
Tissue forceps Aesculap BD555R
Metzenbaum scissors, straight Aesculap BC022R
Metzenbaum scissors, curved Aesculap BC023R
Delicate scissors, curved Aesculap BC061R
Artery forceps, curved Aesculap BH109R
Artery forceps, curved, 1x2 teeth Aesculap BH121R
Probe, double-ended Aesculap BN113R
Micro needle holder Aesculap FM 541R
Micro forceps Aesculap FM571R
Micro scissors Aesculap FM470R
Disposable eye cautery John Weiss International 0111122
Cotton buds Hartmann AG 9679369
Table 3. Surgical equipment.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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Roux-en-Y Gastric operación de bypass en las ratas
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Bueter, M., Abegg, K., Seyfried, F., Lutz, T. A., le Roux, C. W. Roux-en-Y Gastric Bypass Operation in Rats. J. Vis. Exp. (64), e3940, doi:10.3791/3940 (2012).

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