Summary
活体显微镜是一个功能强大的工具，使活体动物成像的各种生物过程。在本文中，我们提出了用于成像的亚细胞结构，如分泌颗粒，在活体小鼠的唾液腺的动力学的详细方法。
Abstract
在这里，我们描述了一个程序，在现场啮齿动物图像的亚细胞结构是基于使用共聚焦活体显微镜的。作为一个模型器官，我们使用活体小鼠的唾液腺，因为它们提供多个优点。首先，他们可以很容易地接触到使访问光学和稳定，以促进由于心跳和呼吸运动伪影的减少。这显著有利于成像和追踪小亚细胞结构。第二，大多数唾液腺的细胞群是来自器官的表面接触。这允许使用共焦显微镜，其具有更高的空间分辨率比已被用于活体成像的其它技术，如双光子显微镜。最后，唾液腺可以容易地控制药物学和基因，从而提供了一种稳健的系统在分子水平上研究生物过程。
在这个研究中，我们侧重于设计遵循在腺泡细胞分泌颗粒的胞吐作用和根尖质膜，其中分泌颗粒熔化后的β-肾上腺素能受体的刺激的动态动力学的协议。具体而言，我们所用的转基因小鼠，其共表达GFP的细胞溶质和膜靶向肽融合荧光蛋白串联番茄。然而，我们用于稳定和图像唾液腺的程序可以扩展到其他小鼠模型并耦合到其他的方法来标记在体内的细胞成分，使各个亚细胞结构，如内涵体，溶酶体，线粒体的可视化，并肌动蛋白细胞骨架。
Introduction
在过去的二十年活显微镜的出现和使用的荧光蛋白，导致在每一个细胞的过程可以想象的重大突破，从而推动我们的细胞生物学1的理解。这个领域已经从使用哺乳动物细胞培养是非常强大的模型系统，特别是当它涉及到实验操作中获益良多。然而，他们不经常提供复杂的多细胞生物2生物学的真实再现。这个问题已经开始通过活体显微镜（IVM）的发展来解决已经敞开了大门调查，如神经生物学，免疫学和肿瘤生物学3场关键的生物学问题。迄今为止，大多数基于IVM的研究已经进行了在组织和个体细胞的水平，而不提供关于亚细胞区室的动力学的任何信息。最近，我们的实验室和其他s有开发能力的成像亚细胞结构在活老鼠4-7，13-15，并允许在体内的药理和遗传操作的IVM技术。这种方法已被用于我们研究膜贩运体内 ，更具体内吞作用和胞吐作用调节6,7。
我们的实验模型系统是基于公开，稳定和麻醉成像啮齿动物的颌下腺唾液腺（SGS）。 SGS集团作为模型器官体外成熟的选择是由于这一事实，即腺体是通过执行一个小手术方便，可以外不影响他们生理和稳定，以减少因心跳和呼吸运动伪影。此外，SGS可以选择性基因通过在唾液腺导管8,9注射病毒性或非病毒为基础的载体操纵。最后，SGS是偏光epith组成的外分泌腺elial细胞，从而形成腺泡和导管，肌上皮细胞和基质细胞的复合物的人口。因为这个原因，它们是研究胞吐，胞吞作用，基因递送，和肌动蛋白细胞骨架，如在我们的最近研究10高亮显示，并提供研究细胞生物学的各个方面，如细 胞极性，细胞分裂，细胞的机会的良好模型细胞连接，和离子通道。
在本文中，我们详细描述了在活老鼠的超导重力仪的上皮细胞内实现分辨率的成像协议。具体来说，我们将展示如何将图像分泌颗粒中了SGS的腺泡细胞中调节胞吐作用。如前所示，在刺激时具有β-肾上腺素能受体激动剂，分泌颗粒熔合根尖质膜和逐渐塌陷，释放出它们的内容到腺泡小管6。我们的目标是提供基本的工具来调查有m在外科手术和动物处理inimal经验，使他们能够在亚细胞分辨率成功执行IVM。由于IVM的最具挑战性的部分是动物的准备，在这里我们专注于那些用来揭露和固定了SGS不影响它们的功能基本手术过程的描述。作为标记的亚细胞结构，一些策略，比如全身递送荧光探针，使用转基因动物，或两者的组合的程序，已在别处7,11说明。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
第1部分：显微镜及成像设置的制备
- 任何倒置共聚焦显微镜应适合于IVM。在此研究中在Olympus IX81倒置显微镜，装备有Fluoview-1000激光扫描共聚焦单元被使用。为了达到最佳的分辨率，使用高NA的目标，如浸水UPLSAPO 60x/1.20 NA和油浸计划载脂蛋白60x/1.42 NA建议。油浸目标具有较高的收集效率，尽管它们需要使用的组织和目标之间的盖玻片，它们提供了更好的成像质量内从表面15至20微米的用于图像的区域时。另外，使用的油消除了在更长的成像会为水蒸发的关注。为了保持该温度和湿度，在显微镜应完全封闭并用温水和加湿的空气供给。可选地，动物，显微镜载物台，并且目标必须通过其他方法来加热。例如，化学热垫可以用于动物和阶段，以及专门设计的目标加热器可用于该目的（ 图1A）。客观加热器应在启动程序前的30分钟进行切换。注意：当热垫是使用以保持动物温热纱布具有放置在垫与皮肤之间。对皮肤有烧伤进行监控。
- 在大多数市售的共焦显微镜的标准级具有用于插入用来容纳滑动，培养皿，并且不同尺寸的板的各种人的开口。为了进行体外成熟，标准的载物台插入35毫米培养皿上下颠倒，覆盖40毫米的玻璃幻灯片，然后在高真空硅脂或胶带（ 图1A）作抵押。自定义插件，也可以由3毫米厚的铝板制造。玻璃表面则cleaned用70％乙醇和刷用的Kimwipe。
- 制作一个定制的持有人了SGS固定（稳定剂）。持有人的目的是为了稳定到位了SGS和严格对夫妇，他们在舞台上和盖玻片。保持器可从60毫米的塑料陪替氏培养皿进行。首先，在盘子的底部脱离的壁，切成约15×10mm的矩形。然后，边用细砂纸打磨圆润打磨。四垫片（1.5-2毫米）通过去除1毫升注射器活塞的橡胶提示建。通过使用细砂纸，隔离物的表面与四角塑料片进行研磨。的间隔物，然后通过使用凝胶状瞬间粘合剂胶接，并用细砂纸在一个平面上以后进行平滑处理。注意，对于老年动物，持有人的尺寸和间隔件可能必须增加，以适应稍大腺体。
- 制备的光学耦合凝胶。 0.3％卡波姆-940（表2）凝胶是由升温100毫升的超纯水，并溶解5.47克D-山梨醇的制备。然后，0.3克卡波姆-940的加入。烧杯应覆盖并放置在搅拌下加热板（最低热定形）为几个小时，或直到所有的卡波姆团块完全溶解。最后，Trietanolamine被逐滴加入，同时轻轻搅拌，直至pH为约7.4为止。将凝胶贮存在4℃下13。
第2部分：动物和麻醉
- 之前进行的动物实验中任何的协议，应该由当地的动物保健和伦理委员会的批准。重要的是，研究人员应受过适当训练来执行外科手术和在继续操作之前，与当地的动物保护委员会或机构的兽医应咨询。
- 在这项研究中，小鼠模型（GFP / mTomato鼠）衍生的通过杂交FVB小鼠可溶性表达绿色荧光蛋白（GFP小鼠）的Wi表达的膜靶向肽融合荧光蛋白串联番茄（mTomato小鼠）第6 C57B6小鼠中使用。注意：它通常需要20到30分钟的动物成为完全麻醉，并准备向成像
- 小鼠被安置在一个受控制的环境中的动物设施和被允许在实验前适应环境一周。这一步是必要的成像超导重力仪，因为任何痛苦的结果增强分泌活动12。水和食物提供自由采食 。从2-5个月大的雄性用于成像实验（20-30克）。
- 前麻醉，权衡动物，以确定麻醉的适当剂量。
- 自诱导注射麻醉剂的施用的应力，可能会损害超导重力的分泌活性，诱导麻醉前由异氟醚吸入，接着注射麻醉剂。为了这个目标，将小鼠轻轻地进入蒸发器室中，并打开氧气流量（800-900毫米汞）。设定的异氟醚的水平至3％以启动预麻醉诱导。
- 一旦动物是无意识的，注射100毫克/公斤氯胺酮的混合物20毫克/公斤甲苯噻嗪进入腹膜腔（25号针头）。麻醉剂是通过稀释100毫克/毫升的甲苯噻嗪以20毫克/毫升的盐水中，然后用氯胺酮混合而新鲜制备。该混合物进一步1:1稀释用盐水和适量是基于动物的体重注射。这种稀释有助于防止意外用药过量。注意，该混合物在20分钟后失去其有效性。
- 观察动物的觉醒的迹象，如果他们（每隔一小时的初始剂量约75％在45分钟第一次注射后，50％以后）现身麻醉注入更多的麻醉剂。按捏爪子，观察反应检查麻醉深度，每隔15分钟。注意：始终管理眼药膏，以防止眼睛干涩。
- 麻醉诱导体温，这会影响该实验的再现性和动物的健康。因此，鼠标应该保持下的热灯或加热垫实验的整个持续时间。注意：热灯应至少12-18英寸从动物，以防止燃烧
- 动物的体温必须用配备有直肠温度探头温度计监测。
第3部分：动物手术和定位的活体显微镜
- 准备工作区所有的手术器械（ 表1），应该是干净和无菌。
- 用电动推剪剃光的小鼠的颈部区域。擦拭麻醉的小鼠的颈部区域的腹侧用纱布海绵浸泡在70％乙醇中。擦干多余了的Kimwipe。
- 随着沉闷的弯曲镊子举起一小块皮肤在中线（近似mately在咬肌肌肉的下端），并作一小切口（ 图1B）。
- 插入剪刀到开口和通过打开剪刀片分开皮肤远离下面的组织。避免通过指向剪刀向上朝向皮肤的下侧损坏下层的腺体组织。重复此步骤几次，直到皮肤从更深的组织（ 图1B）隔开。
- 用剪刀，剪出松动皮肤约3毫米宽，10毫米长的条状。皮肤应切断，使得开口所在的神经，导管及血管的压盖连接到身体的其他部分的超导重力底部附近开始。清洗伤口区域后，所得到的开口将是椭圆形的，并测量大约8×12毫米。开幕（ 图1B）后两个SGS将是可见的。
- 用注射器光学耦合凝胶应用到切的中间，擦拭它往用无菌纱布外面。清洁片纱布应当用于每个擦防止引入的头发或血液进入暴露组织。直到所有的血液和松散的头发被删除重复此步骤。
- 使用＃7镊子，分离结缔组织远离右侧颌下腺一路腺体的底部（或者该协议可以用在左SGS）。首先，找到SG的尖端和抢结缔组织几毫米腺体的顶端的上方。撕裂周围的腺体结缔组织不损伤其实质。 （ 图1B）。一旦腺露出，轻轻地从腺分离结缔组织。如果发生出血，用生理盐水洗血了。确保所有的结缔组织分开，腺体完全暴露。保持湿润的腺体，定期应用光学耦合凝胶。
- 在此之前使动物的显微镜，将一块厚纱布和HEA吨包到显微镜载物台保持38±2℃的温度下化学热组的温度可以通过使内袋暴露于大气中的切口的大小进行调整。纱布提供从金属舞台热敷袋的一些绝缘。盖上薄薄的纱布热敷袋的顶部为好。
- 将动物在其一侧（右侧为右侧腺）和上纱。与颌下腺放置在盖玻片（ 图1C）的中间位置的动物。
- 动物应该固定在压盖前固定并稳定在这个位置。将一块遮蔽胶带上的鼠标的前右足的腹侧面。由丝线缝合（ 图1C，插图）挂钩鼠标的门牙。创建丝线和爪子之间的一些紧张和他们通过胶带附着走上舞台。神光应的中间自然会休息盖玻片。头部和胸部应该由塑料楔，可耦合到所述阶段被额外稳定。
- 将一小片镜头清洁纸在腺体（ 图1C）。延长腺体稍放置一个定制的持有人在密封管。紧密结合的稳定剂用胶带阶段。耦合可以由一个金属夹子连接到所述阶段（ 图1C）而得到提高。紧张和尖锐的角度，应避免，因为它们可能会影响血液的流动。紧随稳定检查血流无论是在视觉上检查压盖（它应该保留粉红色着色）或通过荧光。在GFP /米 - 番茄鼠标，毛改变血液流动的可以很容易地计算，由于血管和一些血细胞的两个被标记为与m番茄。
- 覆盖动物用纱布和温水垫。通过使用装有瓦特温度计测量的露出腺的温度第i小的柔性热电偶探头放置在与露出的压盖的一侧接触。
第4部分：成像参数
- 腺体表面上使用萤光照明的重点不是通过使用GFP或RFP的过滤器设置。找到SG的表面上，并评估血流在毛细血管和组织的整体形态。组织损伤的症状包括细胞膜起泡或大液泡的外观。
- 可通过落射荧光或通过预扫描选定的区域评估的组织的稳定性。一个稳定的制剂是必需的，因为大部分的运动伪影不能在后处理数据分析被删除或修正。如果准备不稳固，都需要调整。
- 为了找到合适的焦平面图像预扫描模式（1X变焦）腺体，并逐渐将目标朝向盖玻片直到腺泡结构，分泌颗粒和plasma膜变得清晰可见（ 图2）。
- 对于时间推移的摄像参数取决于个人的实验。对图像中的分泌颗粒的动态使用0.5-2秒/帧的扫描速度，和256×256象素用0.2微米/像素的空间尺度（视野约50微米×50微米的区域）。为了最佳地可视化的颗粒与质膜，光学厚度应为0.9-1.2微米的范围内设置。来激发GFP和上述串联番茄，人们可以使用的488纳米和561纳米的波长，分别。峰值功率被设置大约0.5毫瓦的488纳米和1毫瓦的561纳米。这将确保最小的漂白。
- 探测器的设置必须被调整到的动态范围内保持的信号，并且依赖于样品的亮度。
- 一旦所有的参数都设置，成像可以开始。首先，利用图被用作参考点的电场的快照。而成像时间的推移，可能会出现在XY和Z组织的漂移。这可以通过调整扫描区域和Z位置可以手动补偿。该调整应逐步由小的增量，以避免工件进行。此外，该参考图像可以被用来确定光漂白是否发生。如果显著漂白检测（荧光减少超过15％-20％），0.1毫瓦降低激光功率。
- 刺激的胞外分泌，皮下注射0.1毫克/公斤异丙在盐水新鲜制备的溶液中。胞吐作用触发在注射后约1分钟。分泌颗粒与质膜融合将通过增加GFP荧光的周围的颗粒和上述串联番茄肽扩散到它们的限定膜（ 图3）被检测到。我们建议收购在同一地区3-4延时序列，每次10 min。
- 成像会议结束后，安乐死的ANE通过CO 2吸入在安乐死室（10-12毫米汞柱，10分钟）sthetized动物。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
在GFP / mTomato鼠标，腺泡显示为明显不同的结构，这表示细胞内GFP和膜定位的串联番茄肽（ 图2中 ，虚线）。在个别腺泡，腺泡细胞通过上述串联番茄肽划定。 GFP是在清晰可见的腺泡细胞内（ 图2中，箭头）的细胞核也检测到。胞质GFP被排除出现约1-1.5微米，直径为暗圆形小泡（ 图2，小图，箭头）的分泌颗粒。为了形象化胞吐的事件，我们专注于富含分泌颗粒质膜的一个区域（ 图3，星号）。皮下注射0.1毫克/千克异丙肾上腺素后，我们观察到增加的GFP荧光的周围的一些分泌颗粒是在靠近质膜（ 图3，绿色箭头）的水平。为previously显示，这些颗粒融合与细胞膜，并聘请厚的肌动蛋白网状结构，保留细胞质绿色荧光蛋白6。此外，融合与质膜后，上述串联番茄肽扩散进入分泌颗粒（ 图3，红色箭头）的限制性膜。后30〜40秒的分泌颗粒逐渐塌陷和其限制性膜被集成到根尖质膜。
图1。显微镜设置，外科手术，以及动物的定位。 A.一个阶段插入旨在容纳35毫米培养皿覆盖40毫米盖玻片。插入件被放置在显微镜载物台是预热用加热垫（橙色椭圆形）和一个加热灯。目标是预加热用客观加热器（温度设定：38℃）。B.外科手术暴露唾液腺。使用干净的剪刀，一个切口是在颈部区域上方的皮肤上。剪刀被插入到开口于皮肤从下面的组织中分离出来。的皮肤，然后除去，结缔组织轻轻地从使用镊子的腺体1剥离。C.该动物被放置在其一侧上的预加热阶段和腺轻轻拉出并放置在盖玻片的中间。门牙都迷上了舞台用丝线（插图）。一小片的镜头清洁纸被夹在腺体和器官的支架之间。器官保持器然后稳定与被固定在舞台上用胶带（绿色）的夹具。
oad/50558/50558fig2.jpg“/>
图2。一个活GFP / mTomato小鼠的唾液腺的成像区域的代表图像 。腺泡是在GFP通道（绿色虚线），很好地突出。单个细胞通过的TD-番茄肽，其被定位在质膜（红色虚线）划定。将GFP定位于细胞质和细胞核（箭头），但不包括在分泌颗粒（小图，箭头）。酒吧，10微米。
图3代表时间序列表示的分泌颗粒后注射0.1毫克/公斤异丙肾上腺素的胞吐作用。分泌颗粒进行成像接近质膜（星号）。融合与质膜，GFP的周围的分泌颗粒的电平后s显著增加（绿色箭头），以及TD-番茄肽扩散到他们的限制膜（红色箭头）。分泌颗粒慢慢折叠和它们的膜被集成到根尖质膜。酒吧，5微米。
表1。材料
表2。仪器
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
到目前为止，亚细胞结构已经拍摄主要是在体外 （ 如细胞培养）或体外 （ 即器官培养，组织切片，腺泡制剂）模型系统，往往不复述的完整的活组织6的特性。在这方面，这里提出的方法是一个重大的突破，因为它使成像的特定膜运输步骤（ 即调节的胞吐作用）的动力在活小鼠。
这个协议代表具有方面来设计用于体内成像的SG或其他器官的在体腔内10,11,13-15其他程序显著进步。一些我们以前的研究是在大鼠是更有弹性的外科手术，有较大的机关进行，并且相比，小鼠降低心脏速率。虽然，在小鼠的程序是很难成立，它们提供了几个ADVAntages包括用的疾病模型，转基因和基因敲除动物具有更广谱的可能性。此外，这种方法成功地最小化的运动伪影，提供了更好的控制施加到暴露的器官从而降低风险的压力：ⅰ）降低血流量，ⅱ）损伤的组织架构，以及iii）损害正常功能的器官。这是我们通过消除器官持有人所产生的约束，并引入稳定剂10,11解决的一个重大问题。
一在该协议中最关键的步骤之一是保持适当的温度无论是在动物和在暴露的器官。事实上，麻醉引起严重低体温，保持适当的体温显著减少死亡的几率在实验完成前。此外，暴露的器官中均手术PROC迅速地交换热量与外部环境edures和成像。由于局部温度降低的严重减慢的胞吐步骤的动力学，这是至关重要的，以防止它通过使用加热灯，客观加热器，并通过保持湿润腺无论是与耦合凝胶或温盐水。与环境室显微镜的全封闭也是控制温度很好的解决方案。另一个关键步骤是实现稳定和维持血流之间的适当平衡。事实上，在制备未正确稳定的，这是非常难以跟随分泌颗粒，其大小为在微米范围内的动力学。另一方面，血液供应导致的大液泡或一个显著抑制调节的胞吐作用的形成的减少。为了实现这一平衡，不断地监测血液流量，并检查细胞损伤的迹象，同时适用于稳定器官的压力是很重要的。
虽然本研究中，我们选择了一个转基因小鼠，使同步想象力分泌颗粒和根尖质膜纳克，这里描述的过程可以被扩展来研究几种其他细胞内过程。这可以通过使用荧光标记的分子的标记特异性的细胞结构，可全身或直接给药到超导重力来实现。备选地，表达荧光标记分子的新的转基因小鼠模型已经被开发，如葡萄糖转运GLUT4的，在F-肌动蛋白标记LifeAct，核标记物的组蛋白2B鼠标和自噬标记LC3-GFP。最后，我们开发了高分辨率，用于固定及图像SGS的基本策略可以潜在地扩展到其他器官（ 如胰腺，肝脏，肾脏和乳腺），通过引入在大小数修改或稳定的形状。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Acknowledgments
这项研究是由牙齿和颅面的研究国家研究所院内研究计划的美国国立卫生研究院的，支持的。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Reagent | |||
| Isoflourane (Forane) | Baxter | 101936-40 | Handle under chemical hood |
| Ketamine (ketaved) | Fort Dodge Animal Health | 57457-034-10 | Stock solution 100 mg/ml |
| Xylazine (Anased) | Akorn, Decatur | 61311-481-10 | Stock solution 100 mg/ml |
| Neomycin/Polymyxin B | Bausch and Lomb | 24208-785-55 | Use to lubricate the eye of the mouse |
| Carbomer-940 | Ashalnd, Inc. | 4607-1 | |
| D-Sorbitol | Sigma-Aldrich | S1876 | |
| Triethanolamine | Sigma-Aldrich | 90279 | Add drop wise to prevent the solution to solidify |
| Isoproternol | Sigma-Aldrich | 16504 | Prepare fresh solutions in saline when needed. Stocks can be stored at -20 °C |
| Instrument | |||
| Isoflurane V 1.9 (Vaporizer) | Braintree Scientific | 190AF | |
| Portable Downdraft table equipped with HEPA filter | Hazard Technology | PDDT | |
| Heat lamp, Model HL1 | Braintree Scientific | HL-1 US | |
| MicroTherma 2T Thermometer | Braintree Scientific | TW2 | |
| Operating Scissors (11.5 cm straight | World Precision Instruments | 5003708-12 | |
| #7 curved tip tweezers | World Precision Instruments | 14187 | |
| Microscissors | World Precision Instruments | 503365 | |
| Black Braided Silk suture #4.0 | George Tiemann Co | 160-1219-4 | |
| Gauze sponges 2" x 2" | Tyco Healthcare | 9022 | |
| Lens cleaning tissue | Olympus | CL-TISSUE (M97) AX6476 | |
References
- Lippincott-Schwartz, J. Emerging in vivo analyses of cell function using fluorescence imaging (*). Annu Rev Biochem. 80, 327-332 (2011).
- Cukierman, E., Pankov, R., Stevens, D. R., Yamada, K. M. Taking cell-matrix adhesions to the third dimension. Science. 294, 1708-1712 (2001).
- Weigert, R., Sramkova, M., Parente, L., Amornphimoltham, P., Masedunskas, A. Intravital microscopy: a novel tool to study cell biology in living animals. Histochem Cell Biol. 133, 481-491 (2010).
- Dunn, K. W., et al. Functional studies of the kidney of living animals using multicolor two-photon microscopy. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 283, C905-C916 (2002).
- Masedunskas, A., Porat-Shliom, N., Weigert, R. Regulated exocytosis: novel insights from intravital microscopy. Traffic. 13, 627-634 (2012).
- Masedunskas, A., et al. Role for the actomyosin complex in regulated exocytosis revealed by intravital microscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 13552-13557 (2011).
- Masedunskas, A., Weigert, R. Intravital two-photon microscopy for studying the uptake and trafficking of fluorescently conjugated molecules in live rodents. Traffic. 9, 1801-1810 (2008).
- Sramkova, M., Masedunskas, A., Parente, L., Molinolo, A., Weigert, R. Expression of plasmid DNA in the salivary gland epithelium: novel approaches to study dynamic cellular processes in live animals. Am. J. Physiol. Cell Physiol. 297, C1347-C1357 (2009).
- Sramkova, M., et al. Current Frontiers and Perspectives in Cell Biology. Najman, S. , Intech. (2012).
- Masedunskas, A., et al. Everything you need to know about intravital microscopy: A practical guide on imaging intracellular structures in live animals. Bioarchitecture. 2, (2012).
- Masedunskas, A., Sramkova, M., Parente, L., Weigert, R. Intravital microscopy to image membrane trafficking in live rats. Methods Mol. Biol. 931, 153-167 (2013).
- Babbey, C. M., Ryan, J. C., Gill, E. M., Ghabril, M. S., Burch, C. R., Paulman, A., Dunn, K. W. Quantitative intravital microscopy of hepatic transport. Intravital. 1, 44-53 (2012).
- Rothstein, E. C., Nauman, M., Chesnick, S., Balaban, R. S. Multi-photon excitation microscopy in intact animals. J. Microsc. 222, 58-64 (2006).
- Klinger, A., Orzekowsky-Schroeder, R., von Smolinski, D., Blessenohl, M., Schueth, A., Koop, N., Huettmann, G., Gebert, A. Complex morphology and functional dynamics of vital murine intestinal mucosa revealed by autofluorescence 2-photon microscopy. Histochem. Cell Biol. 137, 269-278 (2012).
- Peter, B., Van Waarde, M. A., Vissink, A., s-Gravenmade, E. J., Konings, A. W. Degranulation of rat salivary glands following treatment with receptor-selective agonists. Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 22, 330-336 (1995).
