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Medicine

Modell Netzhautablösung in Nagetiere durch subretinale Injektion von Natriumhyaluronat

Published: September 11, 2013 doi: 10.3791/50660
Automatic Translation
1, 1, 1
1Retina Service, Angiogenesis Laboratory, Department of Ophthalmology, Massachusetts Eye and Ear Infirmary, Harvard Medical School

ERRATUM NOTICE

Summary

Erstellen experimentellen Netzhautablösungen mit einer reproduzierbaren und anhalt Höhe Ablösung, und ohne subretinalen Blutung, ist wichtig für die Erforschung der Pathophysiologie der Photorezeptorzellverlust in der Netzhauterkrankungen und Bewertung potenzieller therapeutischer Interventionen. Hier ist ein solches Verfahren im Detail beschreiben wir.

Abstract

Subretinale Injektion von Hyaluronsäure ist ein weithin akzeptiertes Verfahren zur Induktion der Netzhautablösung (RD). Jedoch kann die Höhe und Dauer der RD oder das Auftreten von subretinaler Blutung Photorezeptorzelltodes in der Netzhautablösung beeinflussen. Vorteilhaft Daher ist es um reproduzierbare RDS subretinalen Blutung ohne Photorezeptor für die Bewertung Zelltod erstellen. Wir bereits berichtet eine modifizierte Methode, um bullösen und anhalt RDS in reproduzierbarer Lage mit seltenen Auftretens von subretinalen Blutung erstellen. Der kritische Schritt in diesem modifizierten Verfahren ist die Schaffung eines selbstdicht Skleraeinschnitt, die Leckage von Natriumhyaluronat nach Injektion in den subretinalen Raum verhindern. Um das selbstdicht Skleraeinschnitt ein Skleratunnel erstellt wird, gefolgt von skleralen Eindringen in die Aderhaut mit einer 30 G Nadel machen. Obwohl choroidalen Blutung kann während dieses Schrittes auftreten, astriction mit einem chirurgischen Speer reduziert die Rate der choroidalen Saumorrhage. Diese Methode ermöglicht eine reproduzierbare und zuverlässige Modell der Photorezeptor Tod in Krankheiten, die RD wie rhegmatogener RD, Frühgeborenen-Retinopathie, diabetische Retinopathie, Zentral RCS und altersbedingte Makuladegeneration (AMD) zu beteiligen.

Introduction

Photorezeptorzelle Tod und die anschließende visuelle Rückgang tritt auf, wenn die Photorezeptoren werden von der zugrunde liegenden retinalen Pigmentepithel getrennt. Räumliche Trennung von Photorezeptoren in verschiedenen Netzhauterkrankungen, einschließlich der altersbedingten Makuladegeneration (AMD), Zentral serosa, diabetische Retinopathie und Frühgeborenen-Retinopathie, sowie rhegmatogener (dh durch einen Bruch in der Netzhaut verursacht) Netzhautablösung (gesehen RD). Subretinale Injektion von Hyaluronsäure ist ein weithin akzeptiertes Modell, eine RD, die Photorezeptorzelle Tod führt, die einen Einblick in die Pathophysiologie der Photorezeptordegeneration 1-15 erstellen.

Photorezeptordegeneration durch subretinale Injektion Hyaluronsäure induziert, zuerst in 2001 7 eingeführt wird, hat den Vorteil eines angemessenen Zeitkurs (Tage bis Wochen). Allerdings kann es erhebliche Variabilität der Photorezeptorzelle Verlust von Tier zu haben animal auf zwei wichtige Faktoren, die Photorezeptorzelle Tod nach RD beeinflussen: 1) Höhe und Dauer der RD, und 2) das Auftreten von subretinalen Blutung. Es ist eine steile technische Lernkurve der Methode, die beide Faktoren beiträgt. Photorezeptorzelldegeneration steigt mit der Höhe des RD, wie der Abstand zwischen dem retinalen Pigmentepithel (RPE)-Schicht und die Photorezeptoren erhöht 16-17. Im Einklang mit dieser Berichte zeigte unsere bisherigen Experimente mehr Photorezeptor Tod bullösen RDS als flache RDS. Es wurde auch berichtet, dass subretinaler Blutung ist giftig für Photorezeptorzellen und betrifft Photorezeptor Zelltod 18-21. Ebenso haben wir mehr Photorezeptor Tod im RDS mit subretinalen Blutung als RD ohne subretinale Blutungen beobachtet. Daher haben Techniken, um die Variabilität zu minimieren, um auf die Erzielung konsistenter Höhen von RD unter Vermeidung subretinalen Blutung zu konzentrieren.

Unsere modifizierte Methode der inducing RD reproduzierbare bullösen und anhalt RD an der gleichen Position des Auges mit seltenen Auftretens von subretinalen Blutung zu machen. Wir durchgeführte Operation mit einer zeitlichen Ansatz, weil es einfacher ist, einen größeren operativen Bereich zu erreichen, verglichen mit anderen Websites. Nach Bindehautschnitt wird eine selbstdicht skleralen Einschnitt unter Verwendung einer 30 G-Nadel vorgenommen. Ein Skleratunnel erstellt wird, gefolgt von skleralen Eindringen in die Aderhaut. Wenn choroidalen Blutung in diesem Schritt stattfindet, wird die Blutung das Auge durch das sklerale Wunde zu beenden, und die Blutung durch astriction mit einem chirurgischen Speer gestoppt werden. Eine vordere Kammer Einstich wird dann von der Hornhaut durchgeführt, um den Augeninnendruck zu senken. Dies ist ein wichtiger Schritt, weil subretinale Injektion allein wird zu erhöhter Augeninnendruck mit daraus resultierenden Arterienverschluss und Ischämie der inneren Netzhaut führen. Eine 33 G-Nadel in eine 10 &mgr; l Hamilton-Spritze verbunden wird dann in den subretinalen Raum eingelegt und 3,5 μ; L Natriumhyaluronat wird sanft eingespritzt, um die neurosensorischen Netzhaut von der zugrunde liegenden RPE zu lösen. Im Gegensatz zu anderen Verfahren zur Induktion RD, die unter Fundusbeobachtung durchgeführt werden, wird diese Technik unter direkter Sicht durchgeführt. Da die sklerale Wunde ist selbstdichtend wird Natriumhyaluronat nicht austreten nach der Injektion. Schliesslich wird Klebstoff auf die sklerale Wunde gelegt und die Bindehaut in ihre ursprüngliche Position wieder befestigt. Diese Schritte dauert das Risiko von Natriumhyaluronat Reduzierung der Leckage auch. Die Injektion von 3,5 &mgr; l Natriumhyaluronat schafft reproduzierbare RDS (50% der Netzhaut) in den Augen von 8 Wochen alten Mäusen. Erstellen des selbstdichtende Wunde ist der wichtigste Schritt in unserer modifizierten Verfahren, weil es verhindert, dass der eingespritzte Hyaluronsäure Auslaufen aus dem Auge, so dass reproduzierbare bullösen und anhalt RDS.

Protocol

Alle Tierversuche wurden in Übereinstimmung mit der Association for Research in Vision and Ophthalmology Erklärung für die Nutzung von Tieren in Ophthalmic und Vision Research durchgeführt und die Richtlinien und Vorschriften von der Massachusetts Eye and Ear Infirmary Animal Care Ausschuss dargelegt.

1. Vorbehandlung

  1. Betäuben einen 8 Wochen alten Maus mit einer intraperitonealen Injektion einer Mischung von 60 mg / kg Ketamin und 6 mg / kg Xylazin.
  2. Schneiden Sie die Barthaare. Dies wird gemacht, weil sie mit der Visualisierung und Instrumenten Platzierung stören.
  3. Dilatation der Pupille mit 5% und 0,5% Phenylephrin Tropicamid.
  4. Schneiden Sie die Zilien. Dies wird auch getan, weil sie mit der Visualisierung und Instrumenten Platzierung stören.
  5. Bewerben Lokalanästhesie (0,5% Proparacain Hydrochlorid-Augentropfen).

2. Chirurgie unter dem Mikroskop

  1. Stellen Sie die Maus in einer seitlichen posITION mit der Nase in Richtung des Chirurgen. Eine Zehe Prise durchgeführt, um chirurgische Anästhesie zu bestätigen, und sterile Handschuhe sind vor Beginn der Operation angelegt.
  2. Inzision die zeitliche Bindehaut am hinteren Limbus und trennen Sie die Bindehaut von der Lederhaut. Vermeiden Sie das Eindringen der Lederhaut. Nach diesem Schritt erfassen die Bindehaut am Limbus mit einer Pinzette, um das Auge zu steuern.
  3. Machen Sie ein selbstdicht Skleraeinschnitt mit der Spitze einer 30 G-Nadel mit dem Kegel deutete. Machen Sie eine Skleratunnel durch die Lederhaut und dringen in die Lederhaut in die Aderhaut (Abbildung 1). Vermeiden Eindringen in die Netzhaut. Wenn choroidalen Blutung auftritt und kommt durch die Sklerawunde, führen Sie eine astriction mit einem chirurgischen Speer, bis die Blutung aufhört. Diese Sklerawunde wird Selbst-versiegelt mit Augeninnendruck sein.
  4. Die Punktion der Hornhaut mit einem 30-G-Nadel, um den Augeninnendruck senken. Verwenden Sie die Nadel parallel zur Iris nicht zu verletzen die Iris und Linse während entry in die Vorderkammer. Der Augeninnendruck führt dazu, dass die Wunde auf Selbstdichtung.
  5. Legen Sie eine 33 G-Nadel auf eine 10 ul Hamilton-Spritze in den subretinalen Raum mit der Kegel zeigte nach unten (in Richtung der inneren Auge) verbunden ist, und spritzen 3,5 ul Natriumhyaluronat sanft, um die neurosensorische Netzhaut von der zugrunde liegenden RPE zu lösen. Vermeiden Eindringen in die Netzhaut mit der 33 G-Nadel, weil Hyaluronsäure wird in die Glaskörperraum, aber nicht den subretinalen Raum zu gehen, wenn die Netzhaut eingedrungen. Vermeiden Sie auch schnelle Injektion, weil es eine mündliche Tränen erstellen und Hyaluronsäure wird in die Vorderkammer austreten.
  6. Lassen Sie das Kammerwasser abfließen von der Hornhautpunktion, indem die Hornhaut um das Hornhautpunktion mit einer Pinzette, um den Augeninnendruck einzustellen.
  7. Abwesenheit von Leckagen aus der Sklerawunde Bestätigen Sie mit einer chirurgischen Speer.
  8. Um das Risiko von Natriumhyaluronat Reduzierung der Leckage, legen Cyanacrylat chirurgische Kleber aufdie Lederhautwunde.
  9. Bringen Sie die Bindehaut in ihre ursprüngliche Position mit Cyanacrylat chirurgische Kleber. Dies wird das Risiko von Natriumhyaluronat Leckage.
  10. Überprüfen Sie den Fundus mit einem Deckglas und bestätigen die Schaffung eines bullösen RD ohne subretinalen Blutung.

3. Nach der Behandlung

  1. Bewerben Bacitracin antibiotische Salbe für die Augen, um das Risiko einer Infektion zu verringern.
  2. Halten Sie die Maus auf einem Heizkissen, um die Anästhesie (Mischung aus Ketamin und Xylazin) aus verursacht niedrige Körpertemperatur im Anschluss an niedrigem Blutdruck zu verhindern.
  3. Legen Sie die Maus zurück in die Tierkäfig, nachdem sie aus der Narkose erwachen. Überwachen Sie die Mäuse täglich für Komplikationen. Wenn keine Komplikationen auftreten, einschläfern die Mäuse wie unten beschrieben.

4. Sacrifice

  1. Euthanize die Mäuse durch zervikale Dislokation nach intraperitonealer Injektion von 100 mg / kg Natrium-Pentobarbital und enucleate der Augen zu geeigneten Zeitpunkten für jedes Experiment (nicht gezeigt). Üben Sie keinen Druck auf das Auge während der Entkernung, weil Natriumhyaluronat austreten. Bullöse RDS sollte mindestens 14 Tage hartnäckig sein.

Representative Results

Um die Persistenz der RD von diesem Protokoll gemacht zu beurteilen, wurden Gefrierschnitte an den Tagen 3, 7 gemacht, und 14 nach Induktion der RD. Sechs Augen wurden für jeden Zeitpunkt verwendet. Hämatoxylin und Eosin (HE)-Färbung wurde verwendet, um die Abschnitte zu visualisieren. Alle Abschnitte zeigten eine bullösen RD nähert sich der Linse (Abbildung 2). Ein Auge zeigte subretinalen Blutung am 7. Tag. Keine Augen zeigten keine Anzeichen einer Infektion oder Linsenverletzung.

Figur 1
Fig. 1 ist. Erstellen eines selbstdicht Skleraeinschnitt. Dieses Schema zeigt ein Querschnittsbild einer normalen Maus Auge. Rote Linie zeigt den selbstdicht Skleraeinschnitt. Ein Skleratunnel gefolgt von skleralen Eindringen in die Aderhaut mit einer 30 G-Nadel erzeugt eine selbstdicht Skleraeinschnitt. Diese Sklerawundewird selbst versiegelt mit Augeninnendruck, die eine Leckage von Natriumhyaluronat nach Injektion in den subretinalen Raum zu verhindern und zu erreichen persistent bullöse Hautablösungen kann.

Figur 2
2. Zeitlicher Verlauf der Netzhautablösung. Dieses Foto zeigt einen Fundus bullösen Hautablösung ohne subretinalen Blutung unmittelbar nach der Operation. Gefrierschnitte mit Hämatoxylin und Eosin (HE)-Färbung zeigen anhalt bullösen Hautablösung ohne subretinalen Blutung durch mindestens 14 Tage.

Discussion

Mehrere Verfahren zur Gründung einer RD-Modell in Nagetier-Augen wurde berichtet, 3-15, 22. Die meisten von ihnen nutzen subretinalen Injektion von Natriumhyaluronat, weil es ein viskoses Material, das üblicherweise während einer intraokularen Operation bei Menschen verwendet, und es ist nicht mit irgendeinem bekannten okulare Toxizität 1-15 zugeordnet. Natriumhyaluronat, anstatt normaler Kochsalzlösung oder Phosphat-gepufferter Salzlösung (PBS), erhöht sich die Dauer der RD.

Die Methoden für das subretinale Injektion von Hyaluronsäure eine von zwei Ansätze: a transvitreal Ansatz 3-6 oder ein transskleralen Ansatz 7-15. Beide Verfahren werden mit der Beobachtung des Augenhintergrunds durchgeführt. Im transvitreal Ansatz wird ein subretinalen Injektor in den Glaskörperhohlraum eingebracht, ein Retinotomie in der peripheren Netzhaut erzeugt und das Natriumhyaluronat in den subretinalen Raum eingespritzt. In diesem Verfahren werden zwei Netzhautrisse gebildet, die das Risiko von Retina erhöhtl Blutung, die in den subretinalen Raum gehen könnten. Darüber hinaus besteht die Gefahr von Verletzungen, wenn die Linse Retinotomie erzeugt. Es gibt mehrere Methoden für die modifizierte transskleralen Ansatz. In den meisten dieser Verfahren 7-12, nach der Verringerung des Augeninnendrucks mit einer Vorderkammerpunktion einer 30 G-Nadel in eine Spritze gefüllt mit Natriumhyaluronat wird direkt in den subretinalen Raum durch die Bindehaut, Lederhaut, Aderhaut und RPE eingesetzt ist. Die Natriumhyaluronat wird dann in den subretinalen Raum eingespritzt. Die Gefahr von Netzhautschäden Tränenlinse und mit diesen transskleralen Verfahren ist geringer als die mit der transvitreal Ansatz. Jedoch ist das Loch in die Sklera durch eine 30 G-Nadel groß gemacht, insbesondere für die Augen der Maus, und das Natriumhyaluronat in den subretinalen Raum injiziert leicht leckt aus dem Auge durch das sklerale Wunde. Dies führt zu einer niedrigeren, weniger hartnäckig RD und variabler Photorezeptorzelle Tod. Außerdem, wenn in der Aderhautblutungen auftrittdie Lederhaut Perforation Schritt wird die Blutung in den subretinalen Raum ausbreiten, weil der Augeninnendruck hat vor dem subretinalen Hyaluronat Injektion reduziert.

Mehrere Faktoren können die Wirkung von RD auf der Netzhautablösung zu beeinflussen, einschließlich subretinaler Blutung, und die Höhe und Persistenz von RD 16-21. Photorezeptor Zelltod mit zunehmender Höhe RD 16, 17 und Photorezeptorzellschädigung kann wegen der verringerten Diffusion von Sauerstoff und essentiellen Nährstoffen aus der Choriokapillaris mit höheren RD Vergleich zu flachen RD umfangreicher sein. Subretinalen Blutung ist auch giftig für Photorezeptorzellen 18-21, mögliche Mechanismen dieser Toxizität in der Netzhautablösung sind Hypoxie und metabolische Störungen durch subretinalen Blutung als Diffusionsbarriere und die direkte Neurotoxizität von Blutkomponenten (wie zB Eisen) induziert. Linsenverletzung, von der berichtet wurde, um eine Schutzwirkung auf reti habennal Ganglienzellen 23, kann auch Auswirkungen auf Photorezeptorzelltodes nach Induktion der RD. Darüber hinaus, wenn der Eintrag Wunde ist nicht versiegelt, Hyaluronsäure kann mit Auge Manipulationen während Enukleation auslaufen. Dies kann zu fehlerhaften Klassifizierung eines RD so flach führen, was wiederum Auswirkungen auf die Interpretation der Ergebnisse.

Wir modifizierten die transskleralen Verfahren für subretinale Injektion von Hyaluronsäure, um die Reproduzierbarkeit RD erhöhen und die Rate der subretinalen Blutung. Der kritische Schritt in diesem Protokoll ist die Schaffung einer selbstdicht skleralen Einschnitt unter Verwendung einer 30 G-Nadel, die eine Leckage von Natriumhyaluronat nach dem Einspritzen verhindert. Im Gegensatz zu bisherigen Verfahren wird dieses Protokoll ohne Beobachtung des Augenhintergrundes durchgeführt, mehr Aufmerksamkeit auf die sklerale Wunde bezahlt. Aufbringen von Klebstoff verhindert auch das Natriumhyaluronat Austreten des Auges. Nach unserer Erfahrung ist die Rate der subretinalen Blutung mit diesem Protokoll wals deutlich geringer als bei anderen Protokollen. Wenn choroidalen Blutungen während der Skleraeinschnitt Schritt auftritt, wird es das Auge durch das sklerale Wunde zu verlassen, da dieser Schritt vor der Verringerung des Augeninnendrucks durchgeführt. Wenn choroidalen Blutung nach der Reduktion des Augeninnendrucks und Ablösung der Netzhaut neuro auftreten, wird das Blut in den subretinalen Raum zu sezieren. Wir fanden, dass dies geschieht in etwa 5% der Fälle im Gegensatz zu 10-20% mit den anderen Techniken. Diese Tiere sollten von der Analyse ausgeschlossen werden.

Diese Technik kann auch für die subretinale Injektion von Vektor-vermittelten Gentransfer verwendet werden, um Ziel-Photorezeptor oder RPE-Zellen 24, 25 werden. Da die typischen Fahrzeug (PBS, Kochsalzlösung) für diese Injektionen deutlich weniger viskos als Natriumhyaluronat werden Standard-Techniken, die von mehr Lecks geplagt. Die hier beschriebene Technik, durch Reduzierung dieses Risikos macht Vektor Transferexperimente mehr reproduzierbar undzuverlässig.

Disclosures

Die Massachusetts Eye and Ear Infirmary hat eine Beteiligung in drei US-Patente auf die Verwendung von Verteporfin gerichtet. Darüber hinaus ist die Massachusetts Eye and Ear Infirmary hat Anteile an der selektiven Zerstörung von subretinalen choroidalen Gefäßneubildung zur Behandlung von Makuladegeneration und anderen Erkrankungen gerichtet bestimmte Patentanmeldungen. Die Massachusetts Eye and Ear Infirmary Lizenzgebühren als Folge dieser Patente und Patentanmeldungen und Dr. Miller erhält einen Anteil an der gleichen in Übereinstimmung mit der Massachusetts Eye and Ear Infirmary institutionellen Patentpolitik und Verfahren, die lizenz-Sharing-Bestimmungen enthält. Der Autor, Dr. Joan W. Miller, ist ein ehemaliges Vorstandsmitglied und ehemaliger Gesellschafter der Alcon, Inc., und ist derzeit als Berater für Alcon dient; Imagen Biotech, Inc.; ISIS Pharmaceuticals; Kalvista Pharmaceuticals; Neron Pharmaceuticals, Inc. und ONL Therapeutics, LLC. Dr. Demetrios G. Vavvas dientals Berater für Roche, Genentech, Kala Pharmaceuticals.

Acknowledgments

Wir danken Wendy Chao für ihre Unterstützung in kritischen Bewertung. Diese Arbeit wurde von Bausch & Lomb Vitreoretinal Fellowship (HM), National Eye Institute Zuschuss EY014104 (JWM), Forschung unterstützt werden, um Blindness Foundation (DGV), Lions Eye Research Fund (DGV) und eine großzügige Spende der Familie Yeatts (JWM verhindern und DGV).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Ketaject Phoenix 2010025
AnaSed LLOYD 4004821
5% Phenylephrine / 0.5% Tropicamide Massachusetts Eye and Ear Pharmacy
0.5% Proparacaine Hydrochloride Ophthalmic Solution AKORN 17478-263-12
Provics Alcon 8065183085
Webglue Patterson Veterinary 07-8566128
Microscope Leica MG90
30G1/2 PrecisionGlide Needle BD 305106
Weck-Cel Eye Spears Beaver-Visitec 0008685
10 Microliter Syringe Hamilton 7635-01
33 gauge, 0.5 inch needle Hamilton 7803-05
18x18mm Cover Glass Fisher Scientific 18-548A

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References

  1. Anderson, D. H., Guerin, C. J., Erickson, P. A., Stern, W. H., Fisher, S. K. Morphological recovery in the reattached retina. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 27, 168-183 (1986).
  2. Cook, B., Lewis, G. P., Fisher, S. K., Adler, R. Apoptotic photoreceptor degeneration in experimental retinal detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 36, 990-996 (1995).
  3. Zacks, D. N., et al. Caspase Activation in an Experimental Model of Retinal Detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 44, 1262-1267 (2003).
  4. Zacks, D. N., Han, Y., Zeng, Y., Swaroop, A. Activation of Signaling Pathways and Stress-Response Genes in an Experimental Model of Retinal Detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 47, 1691-1695 (2006).
  5. Nakazawa, T., et al. Characterization of cytokine responses to retinal detachment in rats. Mol. Vis. 12, 867-878 (2006).
  6. Nakazawa, T., et al. Tumor Necrosis Factor-Mediates Photoreceptor Death in a Rodent Model of Retinal Detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 52, 1384-1391 (2011).
  7. Hisatomi, T., et al. Relocalization of apoptosis-inducing factor in photoreceptor apoptosis induced by retinal detachment in vivo. Am. J. Pathol. 158, 1271-1278 (2001).
  8. Hisatomi, T., et al. Critical role of photoreceptor apoptosis in functional damage after retinal detachment. Curr. Eye Res. 24, 161-172 (2002).
  9. Nakazawa, T., et al. Monocyte chemoattractant protein 1 mediates retinal detachment-induced photoreceptor apoptosis. Proc. Natl. Acad. Sci. 104, 2425-2430 (2007).
  10. Trichonas, G., et al. Receptor interacting protein kinases mediate retinal detachment-induced photoreceptor necrosis and compensate for inhibition of apoptosis. Proc. Natl. Acad. Sci. 107, 21695-21700 (2010).
  11. Roh, M. I., Murakami, Y., Thanos, A., Vavvas, D. G., Miller, J. W. Edaravone, an ROS Scavenger, Ameliorates Photoreceptor Cell Death after Experimental Retinal Detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 52, 3825-3831 (2011).
  12. Mantopoulos, D., et al. Tauroursodeoxycholic acid (TUDCA) protects photoreceptors from cell death after experimental retinal detachment. PLoS One. 6, e24245 (2011).
  13. Yang, L., Bula, D., Arroyo, J. G., Chen, D. F. Preventing retinal detachment-associated photoreceptor cell loss in Bax-deficient mice. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 45, 648-654 (2004).
  14. Cebulla, C. M., Ruggeri, M., Murray, T. G., Feuer, W. J., Hernandez, E. Spectral domain optical coherence tomography in a murine retinal detachment model. Exp. Eye Res. 90, 521-527 (2010).
  15. Secondi, R., Kong, J., Blonska, A. M., Staurenghi, G., Sparrow, J. R. Fundus Autofluorescence Findings in a Mouse Model of Retinal Detachment. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 53, 5190-5197 (2012).
  16. Machemer, R. Experimental retinal detachment in the owl monkey. IV. The reattached retina. Am. J. Ophthalmol. 66, 1075-1091 (1968).
  17. Ross, W., Lavina, A., Russell, M., Maberley, D. The correlation between height of macular detachment and visual outcome in macula-off retinal detachments of < or = 7 days' duration. Ophthalmology. 112, 1213-1217 (2005).
  18. Glatt, H., Machemer, R. Experimental subretinal hemorrhage in rabbits. Am. J. Ophthalmol. 94, 762-773 (1982).
  19. Toth, C. A., Morse, L. S., Hjelmeland, L. M., Landers, M. B. 3rd Fibrin directs early retinal damage after experimental subretinal hemorrhage. Arch. Ophthalmol. 109, 723-729 (1991).
  20. Benner, J. D., Hay, A., Landers, M. B. 3rd, Hjelmeland, L. M., Morse, L. S. Fibrinolytic-assisted removal of experimental subretinal hemorrhage within 7 days reduces outer retinal degeneration. Ophthalmology. , 101-672 (1994).
  21. Bhisitkul, R. B., et al. Neuroprotective effect of intravitreal triamcinolone acetonide against photoreceptor apoptosis in a rabbit model of subretinal hemorrhage. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 49, 4071-4077 (2008).
  22. Zeng, R., Zhang, Y., Shi, F., Kong, F. A Novel Experimental Mouse Model of Retinal Detachment: Complete Functional and Histologic Recovery of the Retina. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 53, 1685-1695 (2012).
  23. Leon, S., Yin, Y., Nguyen, J., Irwin, N., Benowitz, L. I. Lens injury stimulates axon regeneration in the mature rat optic nerve. J. Neurosci. 20, 4615-4626 (2000).
  24. Murakami, Y., et al. Inhibition of choroidal neovascularization via brief subretinal exposure to a newly developed lentiviral vector pseudotyped with Sendai viral envelope proteins. Hum. Gene Ther. 21, 199-209 (2010).
  25. Kong, F., et al. Self-complementary AAV5 vector facilitates quicker transgene expression in photoreceptor and retinal pigment epithelial cells of normal mouse. Exp. Eye Res. 90, 546-554 (2010).

Tags

Medizin Sehzellen Rodentia Netzhautdegeneration Netzhautablösung Tiermodelle Neurowissenschaft Augenheilkunde Netzhaut Maus Photorezeptorzelle Tod Retinopathie altersbedingte Makuladegeneration (AMD)

Erratum

Formal Correction: Erratum: Retinal Detachment Model in Rodents by Subretinal Injection of Sodium Hyaluronate
Posted by JoVE Editors on 01/30/2014. Citeable Link.

A correction was made to Retinal Detachment Model in Rodents by Subretinal Injection of Sodium Hyaluronate. The footnotes were removed from the abstract due to redundancy in the introduction.

Subretinal injection of sodium hyaluronate is a widely accepted method of inducing retinal detachment (RD)1-15. However, the height and duration of RD or the occurrence of subretinal hemorrhage can affect photoreceptor cell death in the detached retina16-21.

to:

Subretinal injection of sodium hyaluronate is a widely accepted method of inducing retinal detachment (RD). However, the height and duration of RD or the occurrence of subretinal hemorrhage can affect photoreceptor cell death in the detached retina.

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Matsumoto, H., Miller, J. W.,… More

Matsumoto, H., Miller, J. W., Vavvas, D. G. Retinal Detachment Model in Rodents by Subretinal Injection of Sodium Hyaluronate. J. Vis. Exp. (79), e50660, doi:10.3791/50660 (2013).

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