Summary
호흡 장애는 경추 척수 손상 후 사망의 주요 원인이다. 부분 자궁 경부 손상에 의해 유도 된 호흡의, 재생 가능한 정량화하고, 신뢰할 수있는 전임상 동물 모델을 갖는 것은 이후 호흡 및 비 호흡 신경 가소성을 이해하는 데 도움이 및 추정 복구 전략을 테스트 할 수 있습니다.
Abstract
자궁 경부 척수 손상은 영구적 인 마비를 유도하고, 종종 호흡 곤란에 이르게한다. 지금까지, 더 효율적인 치료제가 높은 자궁 경부 척수 손상 (SCI) 다음 호흡 부전을 개선 / 향상을 위해 개발되지 않았습니다. 여기에서 우리는 다양한 사후 병변 호흡 신경 가소성을 연구하는 자궁 경부 2 (C2) metameric 수준 높은 SCI의 쥐의 전 임상 모델을 제안한다. 이 기술로 인해 뇌간에있는 호흡 센터에서 횡격막 운동 신경원의 deafferentation에 다이어프램의 hemiparalysis을 유도 할 것이다 C2 수준의 수술 부분 부상으로 구성되어 있습니다. 부상의 반대쪽은 그대로 유지하고 동물 복구를 할 수 있습니다. (흉추 및 요추 수준에서) 전위의 기능에 영향을 미치는 다른 SCIS는 달리, 호흡 기능 동물 동기 부여를 필요로하지 않고, 적자 / 복구의 정량화 쉽게 (다이어프램 횡격막 신경 녹음을 수행 할 수 있습니다의, 몸 전체 환기). 이 전 임상 C2 SCI 모델은 서로 다른 수준 (생리학 분자)에서 다양한 호흡 및 비 호흡 신경 가소성 이벤트를 공부하고있는 호흡을 향상시킬 다양한 상상 속 치료 전략을 테스트하기 위해 강력하고 유용하고 신뢰할 수있는 전임상 모델 SCI 환자.
Introduction
척수 외상은 영구적 인 마비와 같은 극적인 발생률과 인구에서 관찰 된 일반적인 부상입니다. 그러나 부상의 심각성은 초기 외상의 수준과 정도에 따라 달라집니다. 호흡 부전은 상부 경추 척수 손상 (SCI) 1 다음과 사망의 주요 원인이다. 현재 유일한 치료 치료는 인공 호흡기의 도움하에 환자를 배치하는 것입니다. 소수의 환자로 인해 포스트 병변 지연 발생 자발적 회복, 환기 지원 2를 투약 할 수 있기 때문에, 새로운 혁신적인 비 침습 치료를 개발할 필요가 긴급 3입니다. , 상상 속 치료 전략의 응용 프로그램을 공부하고, 따라서 호흡 부전에 자궁 SCI의 효과를 조사하는 것이 표준화 된 전 임상 모델을 갖는 것은 필수적이다.
이 기술 문서에서는, 우리는 특정 전임상 쥐 모델 (을)를 설명F 호흡 장애는 C2 수준에서 부분 자궁 SCI에 의해 유도. 이 모델은 현재 (: 4-13 후기) 세계의 여러 실험실에서 사용됩니다. 그러나, 수술 과정에서 약간의 차이가 특정 경추 부상 뮤린 모델을 생성하기 위해 다른 연구자간에 관찰 될 수있다. 호흡 출력에 C2 SCI의 효과는 첫 번째 포터 (14)에 의해 1895 년에 설명했다. 자궁 hemisection 침묵 횡격막 신경의 활동과 이후의 다이어프램 마비로 이어지는, 부상의 동측에 (뇌간, 그림 1A에 rVRG에 위치) 중앙 드라이브에서 횡격막 운동 신경원의 deafferentation을 유도한다. 반대쪽은 그대로 유지하고 동물이 생존 할 수 있습니다. 낮은 척추 세그먼트 (C4 레벨 15에서 예를 들어 contusive 부상)에있는 다른 SCI는 달리, 양측 횡격막 motoneuron 핵의 무결성이 유지됩니다. cerv 후iCal의 C2 부상, 일부 자발적인 활동으로 인해 분절 수준 C3-C6 (교차 횡격막 경로, CPP, 그림 1B)에서 척추 중앙선을 넘어 반대편 침묵 시냅스 경로의 활성화에 (횡격막과 다이어프램) 동측에 관찰 할 수있다 . 인 CPP의 활성화는, 정의에 의해, 동측 부분 횡격막 신경의 회복을 유도 반대측 phrenicotomy와 결합 된 C2의 hemisection은 시간에서 주 후 부상 16-18로 발생할 수 있습니다. 호흡 회복이 CPP 통로의 실제의 유익한 효과는 (19)를 한정하고 추가 조사와 치료는 자발적 회복 (3)의 크기를 향상시키기 위해 개발되어야한다.
이 프로토콜은 (이전과 횡격막 운동 신경원의 interneurons, 분자 및 cellula에서 호흡 생리학 다양한 수준에서 호흡 후 병변 가소성을 연구하는 전 임상 쥐 모델의 강력한 유형을 제공R, 예컨대 앞다리)의 운동뿐만 아니라 C2 부분 경추 척수 손상 후 호흡기 및 전위의 회복을 개선하는 목적 침습 및 비 침습성 치료 전략을 시험하는 모델.
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Protocol
이 프로토콜은 우수 (파리 수드, 보조금 협정 제 246556 대학)와 Université 드 베르사유 생 캉탱 앙 이블린의 RBUCE-UP 의자의 윤리위원회의 승인을 받았다.
살균 수술 도구의 1. 준비
- 실험실 세제로 수술 도구를 청소합니다.
- 수술 전에 악기를 압력솥.
- 수술 세션에서,이 수술 사이에 180 ° C에서 10 분 동안 뜨거운 구슬 살균기에 팁을 배치하여 도구를 소독.
약의 2. 준비
- 사전 마취제 칵테일 및 수술 후 약물 x 1 2 ㎖ 주사기를 준비합니다.
- Carprofen (5 ㎎ / ㎏), 부 프레 놀핀 (50 ㎍ / kg), Baytril (5 ㎎ / ㎏)과 Dexmedetomidine (0.5 ㎎ / ㎏) : 쥐의 무게에 따라, 사전 마취제와 주사기를 준비합니다. 락 테이트 화 링거 1 ML에 볼륨을 완료합니다.
- 의 준비다른 주사기 사전 마취제의 반전 : Atipamezole (500 ㎍ / kg).
쥐 3. 마취
- 동물에 2.2 단계에서 설명한 사전 마취 약물의 용액을 피하을 관리 할 수 있습니다. 그런 다음, 새장에 다시 동물을 넣어 진정 효과가 나타날 때까지 기다립니다.
- 100 % O 2 5 %의 이소 플루 란으로 채워 밀폐 된 챔버에 쥐를 놓고 호흡 리듬 (30 초 정도) 속도가 느려집니다 때까지 기다립니다. 그런 다음, 챔버에서 쥐를 제거하고 삽관 테이블에 배치합니다.
4. Orotracheal 삽관
- 그의 뒤쪽에 동물을 거짓말, 다음 표에 자신의 앞니에 부착 된 스트랩을 배치하여 머리를 고정합니다.
- 광섬유의 빛으로, 가슴 공간을 빛. 그런 다음, 동물의 입에 후두경 (또는 하나를 만들어 사용자 정의, 자세한 내용은 JOU 등. 20)를 배치합니다. 성대를 시각화.
- 하락전자와 (성대 사이의) 기관에 orotracheal 가이드를 배치합니다. 가이드에 orotracheal 관 (16 G 카테터 크기)를 밀어 넣습니다.
- 가이드를 제거하고 기관지 및하지 식도 관의 적절한 위치를 확인하고, 수분의 존재를 orotracheal 튜브의 끝에 배치 후두 미러와 검사.
- (683 설치류 호흡기, 하버드 장치) 설치류 인공 호흡기에 튜브를 연결하고 (100 % O 2) 2 %에 이소 플루 란의 농도를 조정합니다.
- 수술 테이프로 orotracheal 튜브를 고정합니다.
5. 척추 수술
- 외과 의사 90 ° 각도에서 가리키는 코, 가열 수술 접시에 복부 욕창 위치에 동물을 배치합니다. 수술 전반에 걸쳐 37.5 ° C의 주위에 체온을 유지한다.
- scapulas 사이 가위로 머리를 면도하고 거즈로 머리를 제거합니다.
- 다음 7, 베타 딘으로 피부를 청소0 %의 알코올. 이 단계의 3 배를 반복합니다.
- 발가락 핀치는 적절한 마취 깊이를 확인하기 위해 수술을 시작하기 전에 수행됩니다. 그런 다음, scapulas 사이 가위로 옆 피부 절개 rostro - 꼬리 쪽을 수행합니다.
- 출혈을 방지하기 위해 건에 따라 acromiotrapezius 근육 rostro - 꼬리 쪽을 잘라. 다음 (척추 주변) spinalis 근육에 액세스 할 수 능형 근육을 떼어 놓다.
- C3 척추에 C1에서 spinalis 근육을 철회. C2의 척추는 눈에 띄는 융기와 하나입니다.
- 멸균 면봉을 사용하여 척추의 등 부분의 주위에 근육을 청소합니다.
- rongeur으로 조심스럽게 C2의 융기를 제거하기 시작합니다. 등의 척수가 노출 될 때까지, 꼼꼼하게 계속합니다. 그 후궁 절제술는 등의 헤미의 후궁 절제술 있는지 확인하십시오. 이 지역의 주변에있는 척수 및 동맥을 둘러싸는 경질에주의를 기울이십시오.
- # 55 포셉, ROS를 해부접근 금지 - 꼬리 쪽 C2 따라 두라는 다음 각 주동이와 꼬리쪽에 옆으로 계속합니다.
- 뇌척수액을 스폰지.
- microscissors와 자궁 경부 후근 2 번 아래 측면 부분을 확인합니다. 병변의 정도는 척수 (부상 등의보기에 대한 그림 2A 참조)의 중간 선에 도달 할만큼 가까이하는 마이크로 메스 확인합니다. 그렇지 않다면, 다른 컷 부상을 완료 할 수 있었다. 출혈의 경우, 멸균 면봉을 사용합니다. 그렇지 않으면, 동물이 부상에서 회복되지 않고 호흡을해야합니다, 반대쪽으로 이동하지 않도록주의하십시오.
- 보호 층으로 근육을 봉합하고, 피부를 봉합 확대. 베타 딘 포화 멸균 거즈로 상처를 청소합니다.
- 이소 플루 란 기화기을 끄고 반전 약물 주입 (Atipamezole을 [500 ㎍ / kg, IM), 체온을 확인합니다.
- 동물은 인공 호흡기에 호흡을 시작하면,인공 호흡기에서 기관 튜브를 분리 한 다음 orotracheal 튜브를 제거합니다. 복구를위한 가열 새장에 동물을 배치합니다.
6. 수술 후 관리
수술 후, 동물은 복구를위한 최상의 환경을 보장하기 위해 지속적으로 모니터링됩니다. 항생제 (Baytril, 5 ㎎ / ㎏), 항 염증 (Carprofen, 5 ㎎ / ㎏)와 프레 놀핀은 (50 ㎍ / kg) 약은 감염을 방지하고 발생을 줄이기 위해 처음 2 일째에 수술마다 12 시간을 부여 수술 후 통증. 쥐 부드러운 음식과 물 (또는 1 차 수술 후 하루 jellified 물)에 대한 액세스 임의로있다. 피하 유체는 처음 몇 수술 일에 탈수를 방지하기 위해 사용될 수있다. 체중 및 음식 섭취량은 매일 모니터링된다. 이들의 환경은 실험 시간 후 상해 (자신의 새장 이중 주택, 튜브)에 걸쳐 충실.
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Representative Results
부상의 정도
성공이 특정 실험 모델의 재현성 각 조작 / 외과 의사의 경험에 따라 달라집니다. 나머지 ventrolateral는 흰색 물질 21을 아끼지과 C2 부상 다음 호흡 복구 (횡격막 신경 활동과 다이어프램 활동)의 연속적인 양의 상관 관계가있다. 부상은 "핸드 메이드"이고 외과에서 연습을 필요로하기 때문에, 각 부상의 정도는 정확한 크기를 결정하기 위해 조직 학적 기술 (파라 포름 알데히드와 조직 4 %, 냉동 조직 슬라이스, 크레 실 바이올렛 염색 고정)에 의해 확인되어야한다 의 손상된 조직 (그림 2B).
전기 생리학 녹음
C2 SCI 후, 동측의 횡격막 신경의 활동이 폐지된다 (그림 3A, VINIT 등. 17 참조방법론에 대한). 반대측 횡격막 신경의 활동은 부상의 영향과 동물의 생존 (그림 3B)를 허용하지 않습니다. 칠일 후 부상, 약간의 활동이 주로 반대쪽 (그림 3a 및 3b)에서 중간 선을 넘어 CPP에, 어떤 동물의 동측에 기록 할 수 있습니다. 비슷한 결과는 7 일 동측 (그림 3C)에 후 부상에서 약간의 활동과, 다이어프램 활동 (그림 3C 및 3D)에서 관찰 할 수있다. 이 활동은 시간 후 부상에 강화 (도시되지 않음) 몇 개월 후 모든 동물에서 관찰 할 수있다.
그림 1. 쥐의 호흡 해부학의 개략도.다이어프램에 자신의 축삭 프로젝트 rVRG (뇌간)에 위치한 횡격막 사전 운동 신경원과 횡격막 핵 C6에 (C3)에 위치한 횡격막 운동 신경원과 주요 흡기 조직의) 측면보기. B) 회로도 등의 호흡 하강 경로에 C2 부분 부상의 효과를 볼 수 있습니다. 횡격막 핵 분절 수준에서 중앙선을 건너 반대쪽에서 교차 횡격막 경로의 존재를 참고. 더 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.
쥐의 C2 부분 손상 2. 그림을 그림. 수술 사이트의) 지느러미 그림. 화살표는 INJ의 사이트를 도시URY. C2 척추 (지느러미 부분), 척수 (왼쪽 사진)의 횡단 섹션에서 C2 부상의 정도 회색 (오른쪽 그림 정도)의. B) 재건의 부재를합니다. 스케일 바 :. 1,000 μm의 큰 이미지를 보려면 여기를 클릭하십시오.
그림 3. 호흡 출력에 C2 손상의 생리적 효과. A) C2 부분 손상은 동측의 횡격막 신경 활동을 폐지. 때문에 C2 부상 즉시 반대측 횡격막 신경 활동에 영향을주지 않습니다 교차 횡격막 경로 (CPP). B) 7 일째 부상에서 동측의 횡격막 신경 활동의 부분 복원을 참고7 일 후 부상. C)에서 C2 부분 부상 동측 다이어프램 활동을 폐지. 약간의 활동은 주로 CPP 활동으로 인해 7 일 이후 부상에 나타납니다. 동측에 관찰 된 신호의 리듬 편향은 C2 부상, 반대측 다이어프램 활동이 부상 이전과 동일하게 유지하고, 생존을 위해 동물을 수에 따라) 심전도. D의 인공적인 기록에 의한 것입니다. 여기를 클릭하여 큰 이미지를 볼 수 있습니다.
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Discussion
C2 상해 모델을 만들기의 기술적 인 문제
C2 손상 쥐 모델은 호흡 후 병변 신경 가소성을 연구하는 재미있는 도구입니다. 그러나, 재현성 및 신뢰성있는 모델을 생성하기 위해 필요한 단계는 다수이고 각 하나 연구의 결과에 영향을 미칠 수있다. 예를 들어, 삽관 과정에서 극도의주의가 orotracheal 튜브 등으로 인해 부상 자체 초기 호흡 부전 이외에 폐쇄성 호흡기 장애 등 다양한 합병증을 초래할 수있는 기관지의 염증을 생산할 수 있기 때문에 수행 될 . 또한, 수술 절차 동안 척수에 대한 액세스는 동물의 복구를 위해 중요 할 수있다. 모든 단계 (근육의 해부 / 후퇴, 지느러미 후궁 절제술, durotomy, 부상 자체) 때문에 수술 사이트 주위 척추에 다양한 동맥의 존재에 매우주의 수행해야코드. 광범위한 출혈은 수술 후 회복이 혈액 손실에 의해 방해 될 수 있고, 척수 허혈 손상 외에 발생할 수 있기 때문에 피해야한다.
주의해야 할 또 다른 중요한 부분은 악기의 청결과 수술이 수행되는 방입니다. 항생제는 "의사 멸균"조건이 수술 중에 사용 된에 대한 동물과 극도의주의를 주입하고 있다는 사실에도 불구하고, 세균 감염이 발생하고 전체 연구는이 모델에 대해 수행 할 계획에 영향을 미칠 수 있습니다. 예를 들어, 리포 다당류 주사에 의해 유발 된 전신 염증 호흡기 신경 가소성 (22)를 폐지하고, 후속 자발적 신경 가소성 또는 추정 회복 전략의 효과에 영향을하고 /하거나 숨길 수있다. 이 절차 내내 체온의 모니터링은 또한이 실험 모델을 만드는 성공에 참여할 수있다. 실제로, 저체온증은 역할을 할 수급성 척수 손상에 대한 europrotectant 어떤 유익한 효과 (검토 아마드 등. 23 참조)을 유도 할 수있다.
쥐 모델에서 자궁 경부 2 절 장애 (운동) 기간의 급격한 모델입니다. 이 때문에 동물 편마비하고 음식과 물에 도달하기 어려움을 경험한다는 사실로 부상 다음 일주 체중 감소를 관찰하는 것이 일반적이다. 해당 도움말은 체중 감소가 초기 중량 (수동 급지)의 약 20 %임을 확인하기 위해 수술 후 조작자에 의해 수행된다. 따라서, 모델의 종점은 주에서 초기 체중의 30 %의 중량 강하이다. 약 일주일 후 수술, 동물 천천히 그들에게 자신을 먹이 체중을 회복 (전위 복구 연구 로벳 - 바 등. 24 참조) 할 수있는 능력을 허용하는 부분적인 운동을 복구 할 수 있습니다.
연구의 끝에서 C2 부상은 "하 때문에의사에 의한 ndmade "는 모델의 재현성 및 안정성을 위해, 각 부상의 정도는 조직 학적 기법으로 재구성되어야한다. 호흡 신경 가소성을 연구 할 때 특히, 풀러 등. (21)는 C2 부상 다음 호흡 복구의 양이 남아있는 아끼지 복부 흰색 물질과 상관 것을 보여 주었다.
호흡 후 병변 신경 가소성을 연구하는 C2 상해의 쥐 모델을 사용의 이점
호흡 부전을 복원 / 개선하기 위해 사후 병변 호흡 생리학 및 / 또는 추정 전략을 연구하는 C2 쥐 모델은 이후 많은 장점을 제공합니다 : 1) 쥐 세계의 상업 육종에서 쉽게 사용할 수 있습니다; 2) 때문에 그들의 작은 크기와 짧은 수명으로 환경 조건을주의 깊게 모니터링 할 수 엄격 출생부터 성인으로 제어; 3) 쥐 최고의 모델 O되고있다전통적인 모델, 고양이를 교체 F 호흡 신경 생물학,. 따라서, 광범위한 데이터는 실험 결과를 수행하고 해석하는 컨텍스트를 제공, 쥐의 신경 해부학, 신경 화학, 신경 생리학 및 반사 환기 반응에 관한 문헌에서 사용할 수 있습니다; 4) 시판 래트 균주들 (상대적으로) 낮은 유전 적 이질성 통계적 전력을 달성하는 데 필요한 동물의 수의 감소를 허용하고, 상이한 실험실 사이의 결과의 비교를 용이하게한다; 5) 래트 통계적 전력에 필요한 동물의 수를 감소 경추 척수 손상 후 매우 낮은 사망율을 가지고; 6) 래트 예컨대 자궁 척수 손상 (대 고양이, 개 또는 영장류) 다음 매우 빠른 모터 회수율이있다. 따라서, 쥐의 사용은 동물 (예 등, 방광 식 유체 투여) 수술 후 집중 치료를 필요로하는 시간을 감소시키고, 최소동물 대상의 고통을 imizes; 7) 운동 기관의 기능과는 달리, 호흡 기능 동물 동기 부여를 필요로 (다이어프램 EMG, 횡격막 신경 ENG, 호흡량 및 주파수) 쉽게 정량화하지 않습니다 8) 하나의 중요한 측면은 "교차 횡격막 현상"(CPP)입니다. 이 특정 항목 (. 리뷰를 작성 Goshgarian 등 5,16 참조) 모델로 쥐를 사용하여 광범위한 출간 된 문헌이있다; 9) 쥐와 인간은 쥐의 자궁 SCI12 다음 호흡 부전을 연구 할 수있는 좋은 전임상 모델을 만들어 자신의 호흡 제어 시스템, 많은 공통 기능을 공유 할 수 있습니다. 또한, 하나의 실험이 성공적으로 마우스 모델 25 C2의 hemisection을 개발하기 시작했다. 이 방법은 형질 전환 동물의 미래 사용에 대한 큰 열정을 제공합니다.
더 많은 임상 관련 동물 모델은 자궁 레벨 26 ~ 28의 contusive 부상입니다. 그러나, 상처의 재현성 incons이다주로 하강 호흡기 경로의 위치와 광범위한 타박상 (비약적 동물의 생존율을 감소되는) 할 불가로 istent. 더 많은 작품은 영구 적자 contusive 부상을 유도 할 수있는 적절한 방법을 결정하기 위해 contusive 모델의 정교화에서 수행해야합니다.
C2 상해 쥐과 모델에 사용
이 C2 SCI 모델 가소성의 다양한 유형의 연구에 특히 관련된 것이다. 예를 들어, 뇌간 (rVRG 핵) 29뿐만 아니라 deafferented 횡격막 운동 신경원에있는 부상을 식별 사전 운동 신경원에서 분자 및 세포 변화는 30-32 공부 한 수준. 이후 염증 과정 (33)와 cytoarchitectural 변경 (perineuronal 순 10 변경) C2 SCI에 따라 조사되었다. 척추의 구조적 변화 (한 대체 PA의 의미thways (34)과 척추의 interneurons 8) 또는 격막 모터 엔드 플레이트 (4)의 미세 구조 변화의 참여도 적극적으로 C2 SCI 다음 호흡 활동의 자연 복원에 참여하고 있습니다. 마취 준비가 횡격막 신경 활동 17, 격막, 즉의 C2 SCI 모델에 대한 대부분의 연구 주제는 (전체 호흡기 (호흡량, 비 마취 된 동물 (24)의 주파수) 및 그 이후의 자연 회복 초기 손상의 생리적 결과입니다 활성 16,17 그리고 최근 늑간 활동 35). 이 C2 SCI 쥐 모델은 뒷다리의 손상 및 이후의 자연 회복을 연구하는 데 사용하고 비 침습적 (간헐적 hypoxias 24) 다음 복구를 유도하고있다.
결론
C2 SCI 쥐 모델은 강력한입니다ND 유용한 사전 임상 모델 호흡 및 비 호흡 신경 가소성을 연구하고 SCI 환자의 호흡을 향상시킬 수 있습니다 다양한 상상 속 치료 전략을 테스트 할 수 있습니다.
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Disclosures
저자는 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.
Acknowledgments
이 작품은 부여 계약 번호 246556 (유럽 프로젝트 RBUCE-UP)에서 유럽 연합의 일곱 번째 프레임 워크 프로그램 (FP7/2007-2013)에서 자금이 지원되고, HandiMedEx 프랑스의 공공 투자위원회에 의해 할당. 마르셀 Bonay는 Chancellerie 데 Universités 드 파리 (다리 Poix), 상테 Respiratoire EN 퐁 드 Dotation 공들인 및 센터 디부 지원 Respiratoire à 소재지 일드 프랑스 (CARDIF)에 의해 지원되었다
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Animal | |||
| Male Sprague Dawley Rat | Janvier | 225-250 g | |
| Surgical Instruments | |||
| Student Dumont #5 forceps | Fine Science Tool | 91150-20 | |
| Student Standard Pattern Forceps | Fine Science Tool | 91100-12 | |
| Mayo-Stille Scissors | Fine Science Tool | 14013-15 | Curved |
| Student Vannas Spring Scissors | Fine Science Tool | 91500-09 | Straight |
| Spring Scissors - 8 mm Blades | Fine Science Tool | 15025-10 | Straight Blunt/Blunt |
| Friedman Pearson Rongeur | Fine Science Tool | 16121-14 | Curved |
| Dissecting Knife - Fine Tip | Fine Science Tool | 10055-12 | Straight |
| Olsen-Hegar Needle Holder | Fine Science Tool | 12002-14 | Serrated |
| Weitlaner-Locktite Retractor | Fine Science Tool | 17012-11 | 2x3 Blunt |
| Absorbable surgical sutures | Centravet | BYO001 | Suture size 4-0 |
| Equipment | |||
| Hot Bead Steriliser | Fine Science Tool | 18000-45 | |
| Catheter | Centravet | CAT188 | 16 G |
| Laryngoscope | |||
| Guide wire | |||
| Laryngeal mirror | Centravet | MIR011 | |
| Lactated Ringers | Centravet | RIN020 | |
| Syringe | Centravet | ||
| Needle | Centravet | ||
| O2 | Air Liquid | I1001M20R2A001 | |
| 683 RodentT Ventilator 115/230V | Harvard Apparatus | 55-0000 | |
| Stand-Alone Vaporizer | WPI | EZ-155 | |
| Thin line heated bed | WPI | EZ-211 | |
| Air canister | WPI | EZ-258 | |
| Drugs | |||
| Carprofen | Centravet | ||
| Rimadyl | Centravet | RIM011 | |
| Buprenorphine | Centravet | BUP001 | |
| Baytril | Centravet | BAY001 | |
| Dexmedetomidine | Centravet | DEX010 | |
| Atipamezole | Centravet | ANT201 | |
| Betadine solution | Centravet | VET002 | |
| Isoflurane | Centravet | VET066 | |
References
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