Summary

En mus modell av cervikal ryggmärgsskada att studera efter lesional Respiratory Neuroplasticity

Published: May 28, 2014
doi:

Summary

Andningssvikt är den vanligaste dödsorsaken efter en cervikal ryggmärgsskada. Att ha en reproducerbar, kvantifierbar, och pålitlig prekliniska djurmodell av andningssvikt orsakas av en partiell cervikal skada kommer att bidra till att förstå den efterföljande respiratoriska och icke-andnings neuroplasticityen och låta testa förmodade reparationsstrategier.

Abstract

En cervikal ryggmärgsskada framkallar permanent förlamning, och ofta leder till andnöd. Hittills har inga effektiva terapier utvecklats för att förbättra / lindra andningssvikt efter hög cervikal ryggmärgsskada (SCI). Här föreslår vi en mus preklinisk modell av hög SCI vid livmoderhalscancer 2 (C2) metamera nivå för att studera skiftande post lesional andnings neuroplasticity. Tekniken består av en kirurgisk partiell skada på C2-nivå, vilket kommer att framkalla en hemiparalysering av membranet på grund av en deafferentation av phrenic motoneuroner från andningscentrum i hjärnstammen. Den kontralaterala sidan av skadan förblir intakt och tillåter djuret återhämtning. Till skillnad från andra områden av gemenskapsintresse som påverkar rörelsefunktionen (vid bröst-och ländryggen nivå), gör andningsfunktionen inte kräver djur motivation och kvantifiering av underskott / återhämtning kan lätt utföras (membran och phrenic nerv inspelnings, hela kroppen ventilation). Denna prekliniska C2 SCI-modellen är en kraftfull, användbar och tillförlitlig preklinisk modell för att studera olika respiratoriska och icke-respirator neuroplasticity händelser på olika nivåer (molekylära för fysiologi), och för att testa olika förmodade terapeutiska strategier som kan förbättra andningen i SCI patienter.

Introduction

Ryggmärgen trauma är en vanlig skada observerades i den mänskliga befolkningen med dramatiska incidenter, exempelvis permanent förlamning. Emellertid, svårighetsgraden av skadan beror på graden och omfattningen av det initiala traumat. Andningssvikt är den vanligaste orsaken till dödlighet efter övre cervikal ryggmärgsskada (SCI) 1. För närvarande är den enda terapeutiska behandlingen för att placera patienten under andningshjälp. Eftersom få patienter kan avvänjas från andningshjälp 2, på grund av spontan återhämtning som sker med post lesional försening, behovet av att utveckla nya innovativa icke-invasiv terapi är angeläget 3. Att ha en bra standardiserad preklinisk modell för att undersöka effekten av en cervikal SCI på respiratorisk insufficiens och därför, för att studera tillämpningen av förmodade terapeutiska strategier, är viktigt.

I den här tekniska artikeln beskriver vi en specifik preklinisk musmodell of respiratorisk försämring som orsakas av en partiell cervikal SCI på C2 nivå. Denna modell används idag av flera laboratorier runt om i världen (för recension: 4-13). Dock kan konstateras små skillnader i det kirurgiska ingreppet bland de olika utredarna att generera denna cervikal skada musmodell. Effekten av en C2 SCI på luftutgången beskrevs första gången 1895 av Porter 14. En cervikal hemisection inducerar en deafferentation av phrenic motoneuroner från deras centrala enhet (som ligger i rVRG i hjärnstammen, figur 1 A) på den ipsilaterala sidan av skada, vilket leder till en tyst phrenic nervaktivitet och den efterföljande membran förlamning. Den kontralaterala sidan förblir intakt och tillåter djuret att överleva. Till skillnad från annan SCI belägen i en nedre spinalsegment (exempelvis en Contusive skada vid C4-nivå 15), är integriteten för phrenic motoneuron kärna på båda sidor bevaras. Efter en Cervical C2 skada, kan observeras någon spontan aktivitet på den ipsilaterala sidan (phrenic och membranet) på grund av en aktivering av contra tysta synaptiska vägar som korsade ryggrads mittlinje på den segmentnivå C3-C6 (Korsade phrenic vägar, CPP, Figur 1B) . Aktiveringen av CPP, vilket är, per definition, en C2 hemisection kombineras med en kontralateral phrenicotomy som inducerar en ipsilateral partiell nervus phrenicus återhämtning, kan uppstå från timmar till veckor efter skada 16-18. Den verkliga positiva effekten av detta CPP väg på andnings återhämtningen är begränsad 19 och vidare utredning och behandling bör utvecklas för att förbättra omfattningen av spontana restaurering 3.

Protokollet ger en kraftfull typ av prekliniska musmodell för att studera respiratorisk post lesional plasticitet på olika nivåer (andningsfysiologi från pre-och phrenic motoneuroner, intern, molekylär och cellular, förflyttning av den främre extremiteten till exempel) samt en modell för att testa invasiva och icke-invasiva terapeutiska strategier för att förbättra andnings-och rörelse återhämtning efter C2 partiell cervikal ryggmärgsskada.

Protocol

Protokollet godkändes av den etiska kommittén för RBUCE-UP stol of Excellence (universitetet Paris Sud, bidragsavtal nr 246.556) och Université de Versailles Saint-Quentin-en-Yvelines. 1. Beredning av Steriliserade kirurgiska instrument Rengör kirurgiska instrument med laboratorie tvättmedel. Autoklav instrumenten före operation. I en kirurgisk session, sterilisera de verktyg genom att placera spetsarna i en varm pärla autoklav under 10 minuter vid 180 …

Representative Results

Omfattning av skada Framgången och reproducerbarhet av denna experimentella modell är beroende av upplevelsen av varje manipulator / kirurg. Den efterföljande mängd av andnings återhämtning (nervus phrenicus aktivitet och membranaktivitet) efter en C2 skada är korrelerad med den återstående ventrolaterala skonas vita substansen 21. Eftersom skadan är "handgjort" och kräver lite övning från kirurgen, har omfattningen av varje skada som kontro…

Discussion

Tekniska problem att göra C2 Injury Model

C2 skada musmodell är ett intressant verktyg för att studera respiratorisk post lesional neuroplasticity. Men de åtgärder som behövs för att producera en reproducerbar och pålitlig modell är många och var och en skulle kunna påverka resultatet av studien. Till exempel, under intubation processen, är extrem försiktighet vidtas eftersom orotracheal röret kan producera en inflammation i luftstrupen, vilket kan leda till ol…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöds av medel från EU: s sjunde ramprogram (FP7/2007-2013) enligt bidragsavtal nr 246.556 (europeiska projektet RBUCE-UP), HandiMedEx fördelas av franska Public Investment Board. Marcel Bonay stöddes av Chancellerie des Universités de Paris (Ben Poix), Fonds de Dotation Recherche en Santé Respiratoire, och Centre d'Assistance Respiratoire à Säte d'Île de France (Cardif)

Materials

Animal
Male Sprague Dawley Rat Janvier 225-250g
Surgical Instruments
Student Dumont #5 forceps Fine Science Tool 91150-20
Student Standard Pattern Forceps Fine Science Tool 91100-12
Mayo-Stille Scissors Fine Science Tool 14013-15 Curved
Student Vannas Spring Scissors Fine Science Tool 91500-09 Straight
Spring Scissors – 8 mm Blades Fine Science Tool 15025-10 Straight Blunt/Blunt
Friedman Pearson Rongeur Fine Science Tool 16121-14 Curved
Dissecting Knife – Fine Tip Fine Science Tool 10055-12 Straight
Olsen-Hegar Needle Holder Fine Science Tool 12002-14 Serrated
Weitlaner-Locktite Retractor Fine Science Tool 17012-11 2×3 Blunt
Absorbable surgical sutures Centravet BYO001
Equipment
Hot Bead Steriliser Fine Science Tool 18000-45
Catheter  Centravet CAT188 16 gauge
Laryngoscope
Guide wire
Laryngeal mirror Centravet MIR011
Lactated Ringers Centravet RIN020
Syringe Centravet
Needle Centravet
O2 Air Liquid I1001M20R2A001
683 RodentT Ventilator 115/230V Havard Apparatus 55-0000
Stand-Alone Vaporizer WPI EZ-155
Thin line heated bed WPI EZ-211
Air canister WPI EZ-258
Drugs
Carprofen Centravet
Rimadyl Centravet RIM011
Buprenorphine Centravet BUP001
Baytril Centravet BAY001
Dexmedetomidine Centravet DEX010
Atipamezole Centravet ANT201
Betadine Solution Centravet VET002
Isoflurane Centravet VET066

References

  1. Frankel, H. L., et al. Long-term survival in spinal cord injury: a fifty year investigation. Spinal Cord. 36, 266-274 (1998).
  2. Ramer, M. S., Harper, G. P., Bradbury, E. J. Progress in spinal cord research – a refined strategy for the International Spinal Research Trust. Spinal Cord. 38, 449-472 (2000).
  3. Zimmer, M. B., Nantwi, K., Goshgarian, H. G. Effect of spinal cord injury on the respiratory system: basic research and current clinical treatment options. J Spinal Cord Med. 30, 319-330 (2007).
  4. Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Neuromuscular adaptations to respiratory muscle inactivity. Respir Physiol Neurobiol. 169, 133-140 (2009).
  5. Goshgarian, H. G. The crossed phrenic phenomenon and recovery of function following spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169, 85-93 (2009).
  6. Nantwi, K. D. Recovery of respiratory activity after C2 hemisection (C2HS): involvement of adenosinergic mechanisms. Respir Physiol Neurobiol. 169, 102-114 (2009).
  7. Sandhu, M. S., et al. Respiratory recovery following high cervical hemisection. Respir Physiol Neurobiol. 169, 94-101 (2009).
  8. Lane, M. A., Lee, K. Z., Fuller, D. D., Reier, P. J. Spinal circuitry and respiratory recovery following spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169, 123-132 (2009).
  9. Seeds, N. W., Akison, L., Minor, K. Role of plasminogen activator in spinal cord remodeling after spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169, 141-149 (2009).
  10. Alilain, W. J., Horn, K. P., Hu, H., Dick, T. E., Silver, J. Functional regeneration of respiratory pathways after spinal cord injury. Nature. 475, 196-200 (2011).
  11. Vinit, S. Cervical spinal cord injuries and respiratory insufficiency: a revolutionary treatment. Med Sci (Paris. 28, 33-36 (2012).
  12. Kastner, A., Gauthier, P. Are rodents an appropriate pre-clinical model for treating spinal cord injury? Examples from the respiratory system). Exp Neurol. 213, 249-256 (2008).
  13. Vinit, S., Lovett-Barr, M. R., Mitchell, G. S. Intermittent hypoxia induces functional recovery following cervical spinal injury. Physiol Neurobiol. 169, 210-217 (2009).
  14. Porter, W. T. The Path of the Respiratory Impulse from the Bulb to the Phrenic Nuclei. J Physiol. 17, 455-485 .
  15. Nicaise, C., et al. Phrenic motor neuron degeneration compromises phrenic axonal circuitry and diaphragm activity in a unilateral cervical contusion model of spinal cord injury. Exp Neurol. 235, 539-552 (2012).
  16. Goshgarian, H. G. The crossed phrenic phenomenon: a model for plasticity in the respiratory pathways following spinal cord injury. J Appl Physiol. 94, 795-810 (2003).
  17. Vinit, S., Gauthier, P., Stamegna, J. C., Kastner, A. High cervical lateral spinal cord injury results in long-term ipsilateral hemidiaphragm paralysis. J Neurotrauma. 23, 1137-1146 (2006).
  18. Fuller, D. D., Johnson, S. M., Johnson, R. A., Mitchell, G. S. Chronic cervical spinal sensory denervation reveals ineffective spinal pathways to phrenic motoneurons in the rat. Neurosci Lett. 323, 25-28 (2002).
  19. Dougherty, B. J., Lee, K. Z., Lane, M. A., Reier, P. J., Fuller, D. D. Contribution of the spontaneous crossed-phrenic phenomenon to inspiratory tidal volume in spontaneously breathing rats. J Appl Physiol. 112, 96-105 (2012).
  20. Jou, I. M., et al. Simplified rat intubation using a new oropharyngeal intubation wedge. J Appl Physiol. 89, 1766-1770 (2000).
  21. Fuller, D. D., et al. Graded unilateral cervical spinal cord injury and respiratory motor recovery. Respir Physiol Neurobiol. 165, 245-253 (2009).
  22. Vinit, S., Windelborn, J. A., Mitchell, G. S. Lipopolysaccharide attenuates phrenic long-term facilitation following acute intermittent hypoxia. Respir Physiol Neurobiol. 176, 130-135 (2011).
  23. Ahmad, F., Wang, M. Y., Levi, A. D. Hypothermia for Acute Spinal Cord Injury-A Review. World Neurosurg. , (2013).
  24. Lovett-Barr, M. R., et al. Repetitive intermittent hypoxia induces respiratory and somatic motor recovery after chronic cervical spinal injury. J Neurosci. 32, 3591-3600 (2012).
  25. Minor, K. H., Akison, L. K., Goshgarian, H. G., Seeds, N. W. Spinal cord injury-induced plasticity in the mouse–the crossed phrenic phenomenon. Exp Neurol. 200, 486-495 (2006).
  26. Baussart, B., Stamegna, J. C., Polentes, J., Tadie, M., Gauthier, P. A new model of upper cervical spinal contusion inducing a persistent unilateral diaphragmatic deficit in the adult rat. Neurobiol Dis. 22, 562-574 (2006).
  27. Golder, F. J., et al. Breathing patterns after mid-cervical spinal contusion in rats. Exp Neurol. 231, 97-103 (2011).
  28. Lane, M. A., et al. Respiratory function following bilateral mid-cervical contusion injury in the adult rat. Exp Neurol. 235, 197-210 (2012).
  29. Vinit, S., et al. Axotomized bulbospinal neurons express c-Jun after cervical spinal cord injury. Neuroreport. 16, 1535-1539 (2005).
  30. Guenther, C. H., Windelborn, J. A., Tubon, T. C., Yin, J. C., Mitchell, G. S. Increased atypical PKC expression and activity in the phrenic motor nucleus following cervical spinal injury. Exp Neurol. 234, 513-520 (2012).
  31. Mantilla, C. B., Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. Motoneuron BDNF/TrkB signaling enhances functional recovery after cervical spinal cord injury. Exp Neurol. 247, 101-109 (2013).
  32. Vinit, S., Darlot, F., Aoulaiche, H., Boulenguez, P., Kastner, A. Distinct expression of c-Jun and HSP27 in axotomized and spared bulbospinal neurons after cervical spinal cord injury. J Mol Neurosci. 45, 119-133 (2011).
  33. Windelborn, J. A., Mitchell, G. S. Glial activation in the spinal ventral horn caudal to cervical injury. Respir Physiol Neurobiol. 180, 61-68 (2012).
  34. Vinit, S., Stamegna, J. C., Boulenguez, P., Gauthier, P., Kastner, A. Restorative respiratory pathways after partial cervical spinal cord injury: role of ipsilateral phrenic afferents. Eur J Neurosci. 25, 3551-3560 (2007).
  35. Dougherty, B. J., et al. Recovery of inspiratory intercostal muscle activity following high cervical hemisection. Respir Physiol Neurobiol. 183, 186-192 (2012).

Play Video

Cite This Article
Keomani, E., Deramaudt, T. B., Petitjean, M., Bonay, M., Lofaso, F., Vinit, S. A Murine Model of Cervical Spinal Cord Injury to Study Post-lesional Respiratory Neuroplasticity. J. Vis. Exp. (87), e51235, doi:10.3791/51235 (2014).

View Video