Summary

Eksperimentelle og Imaging Teknikker for Undersøke fibrinkoagel Structures i Normal og Syke States

Published: April 01, 2015
doi:

Summary

In this manuscript, experimental techniques, including blood preparation, confocal microscopy, and lysis rate analysis, to examine the morphological differences between normal and abnormal clot structures due to diseased states are presented.

Abstract

Fibrin is an extracellular matrix protein that is responsible for maintaining the structural integrity of blood clots. Much research has been done on fibrin in the past years to include the investigation of synthesis, structure-function, and lysis of clots. However, there is still much unknown about the morphological and structural features of clots that ensue from patients with disease. In this research study, experimental techniques are presented that allow for the examination of morphological differences of abnormal clot structures due to diseased states such as diabetes and sickle cell anemia. Our study focuses on the preparation and evaluation of fibrin clots in order to assess morphological differences using various experimental assays and confocal microscopy. In addition, a method is also described that allows for continuous, real-time calculation of lysis rates in fibrin clots. The techniques described herein are important for researchers and clinicians seeking to elucidate comorbid thrombotic pathologies such as myocardial infarctions, ischemic heart disease, and strokes in patients with diabetes or sickle cell disease.

Introduction

Skade på en blodåre er endothelial fôr er reparert gjennom hemostatiske respons, eller dannelse av en blodpropp. Når blodgjennomsyrer i det ekstracellulære matrise, vev faktorer aktiverer blodplater i blodet som letter initiering av koagulasjonskaskaden. Nøkkelen mekaniske komponent av dette helbredelsesprosessen er den fibrin-matrise, som består av fibrin fibre som er meget elastiske og kan tåle store krefter 1-4. Mange forskere har studert formasjonen struktur og funksjon av fibrin i stor utstrekning i de siste tiår 5-13.

Pasienter med sykdommer slik som diabetes mellitus og sigdcelle har en økt risiko for utvikling av trombotiske komplikasjoner som myokardinfarkt, iskemisk hjertesykdom, slag og 14-19. Over 2 millioner mennesker er nylig diagnostisert med diabetes mellitus hvert år i USA. Det er to typer av diabetes: Type I, derkroppen ikke klarer å fremstille tilstrekkelige mengder av insulin, og type II, hvor kroppen blir motstandsdyktig mot insulin. Blant pasienter med diabetes, er kardiovaskulær sykdom (CVD) på grunn til 80% av sykelighet og dødelighet i forbindelse med sykdommen 20,21.

Sigdcelleanemi (SCD) er en genetisk blodsykdom som rammer mer enn 100.000 mennesker i USA 22. SCD er en punkt-mutasjoner sykdom som fører til de røde blodcellene blir halvmåneformet, noe som gjør det vanskelig for cellene til å passere gjennom blod vaskulaturen 23. Begge disse sykdomstilstander øker sjansene for å utvikle aterotrombotiske tilstander i kroppen. En av grunnene til dette er et resultat av endret fibrin struktur og funksjon i syke tilstander 14,24-26.

I begge diabetes og sigdcelleanemi, er det hyperkoagulasjon og hypofibrinolysis aktivitet som induserer aterotrombose og kardiovaskulær sykdom (CVD) sammenlignet med friske pasienter 17,27,28. Det er kjent at hypofibrinolysis fremmer åreforkalkning progresjon og skaper tilbakevend iskemiske hendelser for pasienter med tidlig koronarsykdom 29. I dagens manuskript, undersøkte vi rollen som fibrin fysiske egenskaper i denne innstillingen. Fibrinkoagel strukturer i ikke-syke pasienter som er sammensatt av tynne fibre, større porer, og generelt mindre tett 14,24. Den økede porøsitet og mindre tette fibrinkoageler hos friske pasienter har blitt funnet å lette fibrinolyse 16. I hyperthrombotic tilstander slik som diabetes og sigdcelleanemi, er det en økning i fibrinogen produksjon, forårsaker fibrinogen-konsentrasjon til å øke mot normale nivåer av 2,5 mg / ml hos friske pasienter 30-33. Fibrinkoageler dannet i diabetiske pasienter har blitt funnet å være mindre porøs, stivere, har flere forgreningspunkter, og tettere sammenlignet med friske, ikke-diaBetic pasienter 14,24,33-35. Den endrede fibrin strukturen er et resultat av glycation mekanismer som forekommer i proteiner som er involvert i dannelse av blodpropper. Enzymatisk (irreversible) glykering oppstår når glukose molekyler binder seg til lysinrester på fibrinogen molekyl, som hemmer menneskelig faktor Xllla (FXIIIa) fra ordentlig kryss kobling glutamin og lysinrester 33,36,37.

Den strukturelle analysen av fibrin nettverk har blitt studert inngå nylig. Spesielt har forskere benyttet elektronmikroskopi og 3D rekonstruksjon av fibrin-nettverk 38, som er undersøkt hvordan både intravaskulære (endotelceller) celler og ekstravaskulære (fibroblaster og glatte muskelceller) celler påvirker fibrin struktur 39, benyttet viskoelastisk og spektralanalyse for å analysere fibrin-strukturer 40, og utviklede sammenhenger mellom fibrin struktur og mekaniske egenskaper ved hjelp av eksperimentell og beregningsorientert tilnærminger 41 </sup>. Fokuset i denne studien var å formulere blodpropp strukturer under simulerte diabetiker og sigdcelle trombose forhold og å bruke konfokalmikroskopi for undersøkelse av struktur og funksjon av blodpropp i sykt stater. Fibrinkoageler ble dannet fra humant fibrinogen, humant trombin, og FXIIIa. De klumper ble lysert ved hjelp av plasmin. Å simulere diabetic forhold, ble økt konsentrasjon av fibrinogen inkuberes i glukoseoppløsning for å indusere in vitro fibrinogen glykering. Å simulere sigdcelleanemi clotting forhold, ble økt fibrinogen konsentrasjoner blandet med sigdcelle hematokrit innsamlet fra pasienter som gjort tidligere av vår gruppe 42. Disse metodene ble anvendt for å undersøke strukturen og funksjonene som er involvert i fibrin-klumpdannelse og fibrinolyse i henhold syke betingelser, samt mekanismer som induserer CVD. Basert på oppdatert informasjon om disse sykdommene, de glykerte fibrinkoagel strukturer var tettere med færre ennd mindre porer. De fibrinkoageler med røde blodceller fra pasienter med sigdcelle (RBC) ble også tettere og vist aggregering av de røde blodlegemer og fibrin agglomererte klaser. Dette er et veletablert fenomen som har blitt bestemt tidligere 43. Det ble også en hypotese om at fibrinolyse raten ville være betydelig lavere i glykerte fibrinkoageler med og uten redusert plasmin i forhold til sunn, normal fibrin. Resultatene viste at for glykerte fibrinkoageler, signifikant forskjellige lyse sats resultater ble observert kun under betingelser med redusert plasmin konsentrasjon. Denne eksperimentelle teknikken med å bruke konfokalmikroskopi gir betydelige fordeler fremfor andre avbildningsmetoder fordi cellene og proteiner forblir i sin opprinnelige tilstand, noe som gjør det mulig å fange av sanntids video av clotting aktivitet. Denne metoden for syntetisk induserende blodpropp er også billigere og mer tidseffektiv enn å skaffe pasientprøver og filtrere ut enkelteproteiner og enzymer. Videre, ved hjelp av separerte proteiner og enzymer for å syntetisere propper ble klumper standardisert, slik at det ikke var variasjonen mellom prøver som et resultat av andre proteiner i plasma.

Protocol

MERK: Følgende protokoll følger de retningslinjer fastsatt av Institutional Review Board (IRB) ved Georgia Tech. 1. Blodprøvetaking og røde blodceller Isolation Prosedyre Samle 40-120 ml blod fra givere i 10 ml hepariniserte vacutainerrør. Starte PBMC (perifert blod mononukleærerte celle) isolasjon innen 4 timer av samlingen. I løpet av denne tiden holde blodet ved RT. MERK: O / N lagring av blod i RT eller i 4 ° C anbefales ikke da dette vil result…

Representative Results

Konfokalmikroskopi Analyse av glykosylert fibrinkoagel Structures De Konfokalmikroskopi bilder av normale og glykerte blodpropper er presentert i figur 3. Konfokalmikroskopi analyse av de normale og glykerte blodpropper avslører at glykerte blodpropper er tettere med mindre porer enn de normale klumper både med og uten tilsetning av FXIIIa under koagel polymerisasjon. I figur 3A og 3B, er det en lavere konsentrasjon fibrin som skapte en mi…

Discussion

For å oppnå meningsfylte data om strukturen av clotting mekanismer i sykdomstilstander, er det viktig å isolere de faktorer som er involvert i koagulering for å bestemme effekten av proteiner og celler i disse tilstandene. Denne protokollen ble utviklet for det formål å undersøke strukturen av fibrinklump i diabetiske og SCD tilstander in vitro.

Det er nødvendig å forstå mekanismene som er involvert i fibrindannelse og fibrinolyse i sykdomstilstander siden endrede betingel…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors would like to thank the Lam Lab at Georgia Tech for many helpful discussions in developing the experimental assays. Research reported in this publication was supported by the National Heart, Lung, and Blood Institute of the National Institutes of Health under Award Number K01HL115486 and by New Innovator Grant 1DP2OD007433-01 from the Office of the Director, National Institutes of Health. The content is solely the responsibility of the authors and does not necessarily represent the official views of the National Institutes of Health.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
PBS Life Technologies 10010031
Ficoll-Paque (hydrophilic polysaccharide) GE Healthcare 45-001-749
10 ml heparinized vacutainer tubes BD Biosciences 366643
Human Fibrinogen Enzyme Research Laboratories N/A
Alexa Fluor 488 human fibrinogen conjugate Molecular Probes F13191
0.5 mL graduated microcentrifuge tube Fisher Scientific 05-408-120
Glucose powder Life Technologies 15023-02
FXIIIa Enzyme Research Laboratories N/A
VIS Confocal Microscope Zeiss LSM 510 LSM 510
50 mM Tris Lonza S50-642
Calcium Chloride (CaCl2) Sigma Aldrich 449709-10G
Vybrant DiD cell-labeling solution Life Technologies L7781
Plasmin Enzyme Research Laboratories N/A
Sodium Chloride (5 M NaCl) Life Technologies AM9759
Statistical Modeling Software IBM SPSS Statistics 22

References

  1. Averett, R. D., et al. A Modular Fibrinogen Model that Captures the Stress-Strain Behavior of Fibers. Biophysical Journal. 103, 1537-1544 (2012).
  2. Carlisle, C. R., et al. The mechanical properties of individual, electrospun fibrinogen fibers. Biomaterials. 30, 1205-1213 (2009).
  3. Falvo, M. R., Gorkun, O. V., Lord, S. T. The molecular origins of the mechanical properties of fibrin. Biophysical Chemistry. 152, 15-20 (2010).
  4. Guthold, M., Cho, S. S. Fibrinogen Unfolding Mechanisms Are Not Too Much of a Stretch. Structure. 19, 1536-1538 (2011).
  5. Gerth, C., Roberts, W. W., Ferry, J. D. Rheology of fibrin clots II: Linear viscoelastic behavior in shear creep. Biophysical Chemistry. 2 (74), 208-217 (1974).
  6. Nelb, G. W., Kamykowski, G. W., Ferry, J. D. Rheology of fibrin clots. v. shear modulus, creep, and creep recovery of fine unligated clots. Biophysical Chemistry. 13 (81), 15-23 (1981).
  7. Roberts, W. W., Kramer, O., Rosser, R. W., Nestler, F. H. M., Ferry, J. D. Rheology of fibrin clots. I.: Dynamic viscoelastic properties and fluid permeation. Biophysical Chemistry. 1, 152-160 (1974).
  8. Ryan, E. A., Mockros, L. F., Weisel, J. W., Lorand, L. Structural Origins of Fibrin Clot Rheology. Biophysical Journal. 77, 2813-2826 (1999).
  9. Weisel, J. W. Fibrin assembly. Lateral aggregation and the role of the two pairs of fibrinopeptides. Biophysical Journal. 50, 1079-1093 (1986).
  10. Weisel, J. W. The mechanical properties of fibrin for basic scientists and clinicians. Biophysical Chemistry. 112, 267-276 (2004).
  11. Wolberg, A. S. Thrombin generation and fibrin clot structure. Blood Reviews. 21, 131-142 (2007).
  12. Wolberg, A. S., Campbell, R. A. Thrombin generation, fibrin clot formation and hemostasis. Transfusion and Apheresis Science. 38, 15-23 (2008).
  13. Yeromonahos, C., Polack, B., Caton, F. Nanostructure of the Fibrin Clot. Biophysical Journal. 99, 2018-2027 (2010).
  14. Dunn, E. J. Fibrinogen and fibrin clot structure in diabetes. Herz. 29, 470-479 (2004).
  15. Gladwin, M. T., Sachdev, V. Cardiovascular abnormalities in sickle cell disease. Journal of the American College of Cardiology. 59, 1123-1133 (2012).
  16. Collet, J. P., et al. Altered Fibrin Architecture Is Associated With Hypofibrinolysis and Premature Coronary Atherothrombosis. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 26, 2567-2573 (2006).
  17. Carr, M. E. Diabetes mellitus: a hypercoagulable state. Journal of Diabetes and its Complications. 15, 44-54 (2001).
  18. Ajjan, R. A., Ariëns, R. A. S. Cardiovascular disease and heritability of the prothrombotic state. Blood Reviews. 23, 67-78 (2009).
  19. Standeven, K. F., Ariëns, R. A. S., Grant, P. J. The molecular physiology and pathology of fibrin structure/function. Blood Reviews. 19, 275-288 (2005).
  20. Alzahrani, S., Ajjan, R. Review article: Coagulation and fibrinolysis in diabetes. Diabetes and Vascular Disease Research. 7, 260-273 (2010).
  21. Stuart, M. J., Nagel, R. L. Sickle-cell disease. The Lancet. 364, 1343-1360 (2004).
  22. Dunn, E. J., Ariëns, R. A. S., Grant, P. J. The influence of type 2 diabetes on fibrin structure and function. Diabetologia. 48, 1198-1206 (2005).
  23. Dunn, E. J., Philippou, H., Ariëns, R. A. S., Grant, P. J. Molecular mechanisms involved in the resistance of fibrin to clot lysis by plasmin in subjects with type 2 diabetes mellitus. Diabetologia. 49, 1071-1080 (2006).
  24. Famodu, A., Reid, H. Plasma fibrinogen levels in sickle cell disease. Tropical and geographical medicine. 39, 36-38 (1987).
  25. Richardson, S., Matthews, K., Stuart, J., Geddes, A., Wilcox, R. Serial Changes in Coagulation and Viscosity during Sickle-Cell Crisis. British journal of haematology. 41, 95-103 (1979).
  26. Ataga, K. I., Orringer, E. P. Hypercoagulability in sickle cell disease: a curious paradox. The American Journal of Medicine. 115, 721-728 (2003).
  27. Collet, J. P., et al. Altered fibrin architecture is associated with hypofibrinolysis and premature coronary atherothrombosis. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 26, 2567-2573 (2006).
  28. Barazzoni, R., et al. Increased Fibrinogen Production in Type 2 Diabetic Patients without Detectable Vascular Complications: Correlation with Plasma Glucagon Concentrations. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 85, 3121-3125 (2000).
  29. Ceriello, A. Coagulation activation in diabetes mellitus: the role of hyperglycaemia and therapeutic prospects. Diabetologia. 36, 1119-1125 (1993).
  30. Mayne, E. E., Bridges, J. M., Weaver, J. A. Platelet adhesiveness, plasma fibrinogen and factor VIII levels in diabetes mellitus. Diabetologia. 6, 436-440 (1970).
  31. Weisel, J. W. Fibrinogen and fibrin. Advances in protein chemistry. 70, 247-299 (2005).
  32. Collet, J., et al. Influence of Fibrin Network Conformation and Fibrin Fiber Diameter on Fibrinolysis Speed Dynamic and Structural Approaches by Confocal Microscopy. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 20, 1354-1361 (2000).
  33. Jörneskog, G., et al. Altered properties of the fibrin gel structure in patients with IDDM. Diabetologia. 39, 1519-1523 (1996).
  34. Svensson, J., et al. Acetylation and glycation of fibrinogen in vitro occur at specific lysine residues in a concentration dependent manner: A mass spectrometric and isotope labeling study. Biochemical and Biophysical Research Communications. 421, 335-342 (2012).
  35. Pieters, M., et al. Glycation of fibrinogen in uncontrolled diabetic patients and the effects of glycaemic control on fibrinogen glycation. Thrombosis Research. 120, 439-446 (2007).
  36. Baradet, T. C., Haselgrove, J. C., Weisel, J. W. Three-dimensional reconstruction of fibrin clot networks from stereoscopic intermediate voltage electron microscope images and analysis of branching. Biophysical journal. 68, 1551-1560 (1995).
  37. Campbell, R. A., Overmyer, K. A., Selzman, C. H., Sheridan, B. C., Wolberg, A. S. Contributions of extravascular and intravascular cells to fibrin network formation, structure, and stability. Blood. 114, 4886-4896 (2009).
  38. Curtis, D. J., et al. A study of microstructural templating in fibrin-thrombin gel networks by spectral and viscoelastic analysis. Soft Matter. 9, 4883-4889 (2013).
  39. Kim, E., et al. Correlation between fibrin network structure and mechanical properties: an experimental and computational analysis. Soft Matter. 7, 4983-4992 (2011).
  40. Keegan, P. M., Surapaneni, S., Platt, M. O. Sickle cell disease activates peripheral blood mononuclear cells to induce cathepsins k and v activity in endothelial cells. Anemia. 2012, 201781 (2012).
  41. Allison, A. Properties of sickle-cell haemoglobin. Biochemical Journal. 65, 212 (1957).
  42. Kuehl, R. O. . Design of experiments : statistical principles of research design and analysis. , (2000).
  43. Lindman, H. R. . Analysis of variance in experimental designs. , (1992).
  44. Pan, W., Galkin, O., Filobelo, L., Nagel, R. L., Vekilov, P. G. Metastable Mesoscopic Clusters in Solutions of Sickle-Cell Hemoglobin. Biophysical Journal. 92, 267-277 (2007).
  45. Wootton, D. M., Popel, A. S., Alevriadou, B. R. An experimental and theoretical study on the dissolution of mural fibrin clots by tissue-type plasminogen activator. Biotechnology and bioengineering. 77, 405-419 (2002).
  46. Sazonova, I. Y., et al. 127 Mathematic model of fibrin clot lysis by plasmin. Fibrinolysis and Proteolysis. 12, 45 (1998).

Play Video

Cite This Article
Fan, N. K., Keegan, P. M., Platt, M. O., Averett, R. D. Experimental and Imaging Techniques for Examining Fibrin Clot Structures in Normal and Diseased States. J. Vis. Exp. (98), e52019, doi:10.3791/52019 (2015).

View Video