Summary

एक माउस मॉडल में ऊतक इंजीनियर वेसल्स का सृजन और कलम बांधने का काम

Published: March 18, 2015
doi:

Summary

यहाँ, हम डबल बोने आंशिक रूप से प्रेरित स्टेम सेल से चूहों में कलम बांधने का काम के लिए कार्य कर रहे हैं कि ऊतक इंजीनियर पोत ग्राफ्ट उत्पन्न करने के लिए एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत (PiPSC) – एक decellularized पोत पाड़ बायोरिएक्टर पर व्युत्पन्न endothelial कोशिकाओं – चिकनी मांसपेशियों की कोशिकाओं और PiPSC निकाली गई।

Abstract

The construction of vascular conduits is a fundamental strategy for surgical repair of damaged and injured vessels resulting from cardiovascular diseases. The current protocol presents an efficient and reproducible strategy in which functional tissue engineered vessel grafts can be generated using partially induced pluripotent stem cell (PiPSC) from human fibroblasts. We designed a decellularized vessel scaffold bioreactor, which closely mimics the matrix protein structure and blood flow that exists within a native vessel, for seeding of PiPSC-endothelial cells or smooth muscle cells prior to grafting into mice. This approach was demonstrated to be advantageous because immune-deficient mice engrafted with the PiPSC-derived grafts presented with markedly increased survival rate 3 weeks after surgery. This protocol represents a valuable tool for regenerative medicine, tissue engineering and potentially patient-specific cell-therapy in the near future.

Introduction

संवहनी नाली का निर्माण हृदय रोगों से उत्पन्न क्षतिग्रस्त और घायल जहाजों की शल्य चिकित्सा की मरम्मत के लिए एक बुनियादी रणनीति है। , Allografts, ऑटोलॉगस ऊतक (पेरीकार्डियम या saphenous नस) और xenografts 1; तिथि करने के लिए, सर्जरी में इस्तेमाल भ्रष्टाचार सामग्री biocompatible है सिंथेटिक पॉलिमर ([गोर-टेक्स ePTFE] या पॉलीथीन terephthalate [Dacron] polytetrafluoroethylene [Teflon], विस्तारित polytetrafluoroethylene) शामिल हैं। कृत्रिम ग्राफ्ट (जैसे, गोर-टेक्स और Dacron) सबसे अधिक इस्तेमाल कर रहे हैं, whilst इन सामग्रियों की संभावना एक प्रकार का रोग, कैल्शियम बयान, thrombo-embolization और संक्रमण शामिल है कि कई छोटी और लंबी अवधि जटिलताओं के कारण। साथ मौजूद जैविक grafts के साथ रोगियों thrombo-embolic की घटनाओं में कमी आई है, वे अभी भी इस तरह कड़ा हो जाना गिरावट 2 के कारण माध्यमिक भ्रष्टाचार असफलता और छोटा स्थायित्व के रूप में सीमाओं मुठभेड़। इसलिए, शल्य टी में महत्वपूर्ण सुधार के बावजूदसाल, शोधकर्ताओं और चिकित्सकों से अधिक echniques अभी भी संवहनी रोगों के लिए आदर्श नाली की पहचान करने के लिए की जरूरत के बोझ तले दब रहे हैं। हाल ही में, संवहनी ऊतक इंजीनियरिंग के अनुसंधान के क्षेत्र कोशिकाओं सफल ग्राफ्टिंग एक के लिए एक कार्यात्मक पोत के प्रतीक हैं कि एक biomimetic माहौल बनाने के उद्देश्य के साथ, biodegradable के scaffolds के रूप में शामिल कर रहे हैं, जिसमें एक अवधारणा उत्पन्न किया है। मूलरूप में, संवहनी निर्माणों की सफलता के तीन आवश्यक घटकों पर निर्भर करती है; यानी पाड़, एक endothelial सेल भीतरी परत और एक चिकनी पेशी सेल परत, देशी वाहिका संरचना करने के लिए तुलनीय यांत्रिक गुणों प्रदान करने के लिए उपयुक्त बाह्य मैट्रिक्स युक्त एक चबूतरा है, और / विनियमन की शुरुआत के लिए आवश्यक है कि सेलुलर / आणविक संकेत दे कि शामिल कोशिकाओं मरम्मत।

दीर्घकालिक भ्रष्टाचार प्रत्यक्षता और नव-ऊतकों के निरंतर विकास, वें scaffolds के प्रभावी सेल बोने पर अत्यधिक निर्भर हैंereby महत्व का सेल प्रकार के निर्णय प्रतिपादन। कई रिपोर्टों छोटे व्यास नाली 3-6 विकसित करने के लिए परिपक्व endothelial और विभिन्न स्रोतों से चिकनी मांसपेशियों की कोशिकाओं के उपयोग के प्रदर्शन। होनहार हालांकि, पर्याप्त ऑटोलॉगस जहाजों की कमी परिपक्व endothelial और चिकनी मांसपेशियों की कोशिकाओं एक काफी बोझ रहना प्राप्त करने के लिए। अभी हाल ही में विभिन्न स्रोतों से स्टेम कोशिकाओं संवहनी ऊतक इंजीनियरिंग अनुप्रयोगों के लिए शोषण किया गया है। दरअसल, भ्रूण स्टेम कोशिकाओं 7 सहित स्टेम सेल प्रकार की एक किस्म, प्रेरित स्टेम कोशिकाओं (IPSCs) 8,9, PiPSC 10,11, अस्थि मज्जा व्युत्पन्न कोशिकाओं mononuclear 12, mesenchymal स्टेम सेल 13, endothelial पूर्वज कोशिकाओं और वयस्क पोत दीवार स्टेम व्युत्पन्न सेल प्रतिजन-1 (एससीए -1) + 14,15 सभी परिभाषित मीडिया के जवाब में कार्यात्मक एन्दोथेलिअल या चिकनी मांसपेशियों या तो कोशिकाओं में भेदभाव करने में सक्षम होने के लिए प्रदर्शन किया गया है स्टेम / पूर्वपुस्र्ष कोशिकाओं औरसंस्कृति की स्थिति। इसके अलावा, स्टेम कोशिकाओं की असीमित आत्म नवीकरण क्षमता उन्हें परिपक्व endothelial और केवल विकास गिरफ्तारी और वार्धक्य से गुजरने के पहले के समय की एक निश्चित संख्या के लिए विभाजित कर सकते हैं जो चिकनी मांसपेशियों की कोशिकाओं के विपरीत बेहतर उम्मीदवार बनाती है।

ग्राफ्टिंग ऐसे biocompatibility, बायोमैकेनिकल गुण, और बायो़डीग्रेडेशन की दर के रूप में कई कारकों पर निर्भर करता है के लिए पाड़ सामग्री का चयन सफल ऊतक इंजीनियर पोत उत्पन्न करने के लिए। मूलरूप में, सामग्री, biodegradable होना चाहिए ग्राफ्ट के लिए scaffolds बनाने के लिए प्रयोग किया जाता है और अनावश्यक प्राप्तकर्ता प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया माउंट नहीं होगा। इसके अतिरिक्त, यह सेल लगाव और बाद के अस्तित्व के लिए एक उपयुक्त सरंध्रता और microstructure धरना चाहिए। तिथि करने के लिए, संवहनी ऊतक इंजीनियरिंग में scaffolds के लिए इस्तेमाल सबसे आम सामग्री polyglycolic एसिड, polylactic एसिड, और पाली ε-caprolactone 16 की पॉलिमर शामिल हैं। हाल ही में, decellularized जैविक सामग्री हैयह भी कुछ सफलता के साथ लागू किया गया। कई प्रयोगशालाओं ऑटोलॉगस कोशिकाओं के साथ decellularized मानव, कुत्ते या सुअर का वाहिकाओं बोने के थक्के और intimal हाइपरप्लासिया 17-19 विरोध कि एक जैविक भ्रष्टाचार प्रदान की जाती है कि पता चला है। संवहनी ऊतक इंजीनियरिंग में अन्य रणनीतियों पाड़ समर्थन 20, 21 बिना जैसे बाह्य मैट्रिक्स प्रोटीन आधारित संवहनी ग्राफ्ट, आतंच जेल में 13 बोने कोशिकाओं और पैदा करने सेल पत्रक शामिल हैं।

मौजूदा प्रोटोकॉल कार्यात्मक endothelial और चिकनी मांसपेशियों की कोशिकाओं, गंभीर संयुक्त इम्यूनो में ऊतक इंजीनियर वाहिकाओं के एक कार्यात्मक PiPSC व्युत्पन्न नाड़ी कोशिकाओं बंदरगाह के लिए एक decellularized पोत पाड़ से मिलकर बायोरिएक्टर, और ग्राफ्टिंग की पीढ़ी (SCID में मानव PiPSC के भेदभाव को दर्शाता है ) चूहों। PiPSC इन कोशिकाओं को चूहों में ट्यूमर फार्म या नैतिक बढ़ा नहीं है क्योंकि पोत grafts के ऊतक इंजीनियरिंग के लिए उपयोग करने के लिए एक इष्टतम सेल प्रकार के होते हैं औरallo-प्रतिरक्षा प्रतिक्रिया। इसके अलावा, हम पिप्स-endothelial कोशिकाओं और पिप्स-चिकनी मांसपेशियों की कोशिकाओं को उत्पन्न करने के लिए रणनीति कुशल और 10,11 प्रतिलिपि प्रस्तुत करने योग्य है कि पता चला है। इसके बाद, हम इस प्रकार ग्राफ्टिंग और अस्तित्व प्रभावकारिता को बढ़ाने, बारीकी से एक देशी पोत के भीतर मौजूद है कि मैट्रिक्स प्रोटीन की नकल करने PiPSC व्युत्पन्न नाड़ी कोशिकाओं के बोने के लिए एक decellularized पोत बनाया गया है। इसके अलावा, पूर्व PiPSC बोने के लिए जहाजों की decellularization ऐसे मैक्रोफेज के रूप में प्रतिरक्षा सेल प्रकार से मुहिम शुरू की भड़काऊ प्रतिक्रियाओं की घटना को रोकता है। इससे भी महत्वपूर्ण बात, इस प्रोटोकॉल केवल मनुष्य में अनुवाद के लिए संवहनी नाली का वादा उत्पन्न करने के लिए एक पद्धति का प्रतिनिधित्व नहीं करता है, लेकिन यह भी अध्ययन और माउस मॉडल के माध्यम से संवहनी ऊतक पुनर्जनन को नियंत्रित करने वाले आणविक तंत्र को समझने के मूल्यवान साधन प्रदान करता है।

Protocol

प्रयोगशाला पशुओं के उपयोग और देखभाल के लिए संस्थागत समिति द्वारा अनुमोदित प्रोटोकॉल के अनुसार सभी पशु प्रयोगों प्रदर्शन। संस्कृति मीडिया के 1. तैयारी एफ-12K मध्यम, 10% भ्रूण गोजातीय सीरम (FBS) और 100 यू /…

Representative Results

PiPSC के सफल पीढ़ी 4 प्रतिलेखन कारक, OCT4, Sox2, KLF4 और सी-MYC (OSKM) ले जाने के एक linearized pCAG2LMKOSimO प्लाज्मिड के साथ मानव fibroblasts nucleofecting के बाद चार दिनों की पुष्टि की थी। PiPSC fibroblasts (2A चित्रा) की तुलना में जब एक स्पष्ट रूप से अलग फेनोटा?…

Discussion

मौजूदा प्रोटोकॉल कार्यात्मक ऊतक इंजीनियर वाहिकाओं मानव fibroblasts से PiPSC का उपयोग कर उत्पन्न किया जा सकता है, जिसमें एक ध्वनि, तेज, सरल, कुशल और प्रतिलिपि प्रस्तुत करने की रणनीति का संकेत है। इस तकनीक को निकट भ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by The British Heart Foundation and The Oak Foundation.

Materials

Human Fibroblasts CCL-153 ATCC CCL-153 Prenatal human embryonic fibroblasts
ATCC F-12K Medium (Kaighn's Modification of Ham's F-12 Medium) ATCC 30-2004
Fetal Bovine Serum ATCC 30-2020
Knockout DMEM medium optimized for embryonic stem cells Life technologies (Gibco) 12660-012
Knockout Serum Replacement Life technologies (Invitrogen) 10828-028
Human Basic FGF-2  Miltenyi Biotech 130-093-837
alpha-MEM medium Life technologies (Invitrogen) 32571093
Human PDGF R&D System 120-HD-001
Gelatin Solution 2% Sigma G1393
Plasmid 20866: pCAG2LMKOSimO (SOX2, OCT4, KLF4, C-MYC) Addgene 20866
 PvuI Restriction Enzyme New England Biolabs RO150S
SureClean Plus Bioline BIO-37047
Nucelofection Kit (NHDF Kit) LONZA VPD-1001
Neomycin SIGMA G418 Selection of 
KL 1500 LCD, Illumination for Stereo Microscopy SCHOTT KL 1500 LCD Cold light illumination for stereo microscopy
Nikon Zoom Steromicroscope SMZ800 Nikon SMZ800
Heparin sodium salt Sigma H3393
10% SDS Stock Solution Molecular Biology Reagent Severn Biotech CAS 151-21-3
Dulbecco's Phosphate Buffered Saline Sigma D8537
Matrigel (10mg/ml) BD A6661
Shaker IKA Vibrax with Shaking platform VX 7  Jepson Bolton's, Janke&Kunkel S32-102
Masterflex L/S Digital Pump Drive Cole-Parmer WZ-07523-80
Masterflex L/S 6-channel, 6-roller cartridge pump head Cole-Parmer EW-07519-15
Masterflex L/S large cartridges for pump head Cole-Parmer EW-07519-75
Masterflex platinum-cured silicone pump tubing, L/S 14, 25 ft Cole-Parmer  WZ-96410-14 Tubing goes through the peristaltic pump
0.5mm ID, 0.8 mm OD Silicone Tubing SILEX N/A Tubings connect incubation chamber, media reservoir and compliance chamber 
Fitting Reducer 0.5 to 1.6, natural Polypropyline Ibidi 10829 Adapter connect above two types of tubings
1/32" Tubing, ID 0.01" (250µm) Material: PEEK LabSmith T-132-010P Tubing through the incubation chamber wall which connects the graft with outside tubing
One-Piece Fittings  LabSmith T-132-100 Fix the above tubings through the incubation chamber wall
Nylon tubes (OD 0.9mm, ID 0.75mm)  Smiths Medical N/A Tubings insert into two ends of the aorta graft
NOD.CB17-Prkdcscid/NcrCrl mouse Charles River
Surgical sutures, 8-0  silk ETHICON W819
Hypnorm Vetapharm Vm21757/4000 Neuroleptanalgesic for use in mice
Hypnovel (Midazolam) Roche 59467-70-8 Induction of anaesthesia
Dissecting microscope Carl Zeiss Stemi 2000
Nylon Tubing Portex LTD 800/200/100/200 0.65 mm in diameter and 1 mm in length; to make artery cuff
Electrocoagulator Martin  SN 54.131 Ligation of artery branches on aorta
Bipolar micro hemostat forceps Martin 80-91-12-04 Fixation of vessel ends
Vessel Dilator S&T JFX-7
Vessel Dilator S&T JFL-3dZ
Vessel Dilator S&T D-5aZ
Mini applier  AESCULAP FE572K
Micro hemostats clips AESCULAP FE720K
Surgical sutures, 6-0 VICRYL ETHICON V489

References

  1. Kurobe, H., Maxfield, M. W., Breuer, C. K., Shinoka, T. Concise Review: Tissue-Engineered Vascular Grafts for Cardiac Surgery: Past, Present, and Future. Stem Cells Transl Med. 1 (7), 566-571 (2012).
  2. Jonas, R. A., Freed, M. D., Mayer, J. E. Long-term follow-up of patients with synthetic right heart conduits. Circulation. 72, II77-II83 (1985).
  3. Heureux, N., et al. Technology insight: the evolution of tissue-engineered vascular grafts-from research to clinical practice. Nat Clin Pract Cardiovasc Med. 4, 389-395 (2007).
  4. Zhang, W. J., Liu, W., Cui, L., Cao, Y. Tissue engineering of blood vessel. J Cell Mol Med. 11, 945-957 (2007).
  5. Cearbhaill, E. D., et al. Response of mesenchymal stem cells to the biomechanical environment of the endothelium on a flexible tubular silicone substrate. Biomaterials. 29, 1610-1619 (2008).
  6. Gong, Z., Niklason, L. E. Small-diameter human vessel wall engineered from bone marrow-derived mesenchymal stem cells (hMSCs). FASEB J. 22, 1635-1648 (2008).
  7. Wong, M. M., et al. Over-expression of HSP47 augments mouse embryonic stem cell smooth muscle differentiation and chemotaxis. PLoS One. 9 (1), e86118 (2014).
  8. Park, S. W., et al. Efficient differentiation of human pluripotent stem cells into functional CD34+ progenitor cells by combined modulation of the MEK/ERK and BMP4 signaling pathways. Blood. 116, 5762-5772 (2010).
  9. Samuel, R., et al. Generation of functionally competent and durable engineered blood vessels from human induced pluripotent stem cells. Proc Natl Acad Sci USA. 110, 12774-12779 (2013).
  10. Margariti, A., et al. Reprogramming of fibroblasts into endothelial cells capacble of angiogenesis and reendothelialization in tissue-engineered vessels. Proc Natl Acad Sci USA. 109, 13793-13798 (2012).
  11. Karamariti, E., et al. Smooth muscle cells differentiated from reprogrammed embryonic lung fibroblasts through DKK3 signaling are potent for tissue engineering of vascular grafts. Circ Res. 112, 1433-1443 (2013).
  12. Udelsman, B., et al. Development of an operator-independent method for seeding tissue-engineered vascular grafts. Tissue Eng Part C Methods. 17 (7), 731-736 (2011).
  13. Cearbhaill, E. D., Murphy, M., Barry, F., McHugh, P. E., Barron, V. Behavior of human mesenchymal stem cells in fibrin-based vascular tissue engineering constructs. Ann Biomed Eng. 38 (3), 649-657 (2010).
  14. Wong, M. M., et al. Macrophages control vascular stem/progenitor cell plasticity through tumor necrosis factor-α-mediated nuclear factor-κB activation. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 34 (3), 635-643 (2014).
  15. Wong, M. M., et al. Sirolimus stimulates vascular stem/progenitor cell migration and differentiation into smooth muscle cells via epidermal growth factor receptor/extracellular signal-regulated kinase/β-catenin signaling pathway. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 33 (10), 2397-2406 (2013).
  16. Lee, J., Cuddihy, M. J., Kotov, N. A. Three-dimensional cell culture matrices: State of the art. Tissue Eng Part B Rev. 14, 61-86 (2008).
  17. Hung, H. S., Hsu, S. H. Current Advances of stem cell-based approaches to tissue-engineering vascular grafts. OA Tissue Engineering. 1 (1), 2 (2013).
  18. Quint, C., et al. Decellularized tissue-engineered blood vessel as an arterial conduit. Proc Natl Acad Sci USA. 108 (22), 9214-9219 (2011).
  19. Zhang, X., Xu, Y., Thomas, V., Bellis, S. L., Vohra, Y. K. Engineering an antiplatelet adhesion layer on an electrospun scaffold using porcine endothelial progenitor cells. J Biomed Mater Res A. 97 (2), 145-151 (2011).
  20. Hibino, N., et al. Evaluation of the use of an induced puripotent stem cell sheet for the construction of tissue-engineered vascular grafts. J Thorac Cardiovasc Surg. 143 (3), 696-703 (2012).
  21. Zhao, J., et al. A novel strategy to engineer small-diameter vascular grafts from marrow-derived mesenchymal stem cells. Artif Organs. 36 (1), 93-101 (2012).
  22. Tsai, T., et al. Contribution of stem cells to neointimal formation of decellularized vessel grafts in a novel mouse model. Am J Pathol. 181 (1), 362-373 (2012).
  23. Kasimir, M. T., et al. Comparison of different decellularization procedures of porcine heart valves. Int J Artif Organs. 26 (5), 421-427 (2003).
  24. Stephenson, E., et al. Derivation and propagation of human embryonic stem cell lines from frozen embryos in an animal product-free environment. Nature Protocols. 7, 1366-1381 (2012).
  25. Takahashi, K., Okita, K., Nakagawa, M., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from fibroblast cultures. Nature Protocols. 2, 3081-3089 (2007).
  26. McCall, F. C., et al. Myocardial infarction and intramyocardial injection models in swine. Nature Protocols. 7, 1479-1496 (2012).
  27. Olausson, M., et al. Transplantation of an allogeneic vein bioengineered with autologous stem cells: a proof-of-concept study. Lancet. 380 (9838), 230-237 (2012).

Play Video

Cite This Article
Wong, M. M., Hong, X., Karamariti, E., Hu, Y., Xu, Q. Generation and Grafting of Tissue-engineered Vessels in a Mouse Model. J. Vis. Exp. (97), e52565, doi:10.3791/52565 (2015).

View Video