Summary
该协议的目的是将DNA氧化标志物的检测，8-氧代-7,8-二氢-2'-脱氧鸟苷（8-氧dGuo）通过HPLC-ED，从培养的细胞或动物组织的DNA。
Abstract
氧化应激与许多生理和病理过程，以及生物外源性代谢相关，导致生物大分子的氧化，包括DNA。因此，高效的检测DNA氧化是多种学科的研究，包括药物和毒物的重要。氧化损伤的DNA的一个共同的生物标志物是-8-氧代-7,8-二氢-2'-脱氧鸟苷（8-氧代dGuo;经常误称为8-羟基-2'-脱氧鸟苷（8-OH-dGuo或8氧代dG的））。对于-8-氧代dGuo测量用高压液相色谱电化学检测器（HPLC-ED）几个协议已被描述。然而，这些主要适用于具有促氧化剂处理纯化DNA。此外，由于实验室之间方法上的差异，主要是由于在分析设备的差异，采用用于检测-8-氧代dGuo通过HPLC-ED公布的方法需要由每个实验室仔细优化。一个全面的协议，描述这样一个优化过程，是缺乏。这里，一个详细的协议是从培养的细胞或动物组织中所述的8-氧dGuo通过HPLC-ED的检测，在DNA中。它说明了如何DNA样品制备能够容易且快速地优化，以尽量减少可能发生的样品制备过程中不希望的DNA的氧化。这个协议显示了如何检测-8-氧代dGuo与氧化剂溴酸钾3处理培养的人肺泡腺癌细胞（ 即 ，A549细胞），以及从暴露在多环芳烃二苯并（ 闪避，p）的屈小鼠的脾脏（DBC，前身为二苯（A，L）芘，DALP）。总体来说，这一工作说明了如何用HPLC-ED方法可以用于-8-氧代dGuo生物样品中的检测可以容易地优化。
Introduction
活性氧（ROS），其稳态水平期间许多病理学病症和xenotoxic代谢能增加，有助于氧化性DNA损伤的频率增加。在几个可能的核碱基的氧化产物，氧化性DNA损伤可容易地使用稳定标记测量-8-氧代-7,8-二氢-2'-脱氧鸟苷（8-氧dGuo），它是2的氧化形式之一' -deoxyguanosine（dGuo）1。 -8-氧代dGuo是最丰富的DNA损伤2，因此，已研究以更详细的DNA氧化标志物尽管多种DNA氧化产物3的存在。在人类中，这种损伤可以通过碱基切除修复了8羟基鸟嘌呤糖苷酶1（hOGG1基因）4修复。如果左未修理，8-氧dGuo可以向形成的碱基对替代突变（ 即 ，G到T颠换）4。重要的是，8-氧dGuo是一个既定的标记FO- [R DNA损伤有关的启动和促进癌变2。因此，8-氧代- dGuo准确定量是氧化性DNA损伤5的有用和理想的生物标志物。
人们普遍混乱关于对氧化损伤的形式的2-脱氧鸟苷，此外，化合物（S）的正确名称常规测量作为氧化性DNA损伤6的生物标志物的正确名称的文献。的8-氧dGuo（ 图1中示出）的6,8-二酮和6-烯醇，8-酮互变异构形式都在文献5,7中讨论的两个最突出的互变异构体。的6,8-二酮的形式是在7.4的生理pH值的最突出的形式，并且是最突出的DNA氧化产物7。因此，8-氧dGuo，而不是8羟基dGuo是用于该氧化产物6的最适当的名称。同样重要的是要注意，2-脱氧鸟苷（dGuo），而不是nucleob酶鸟嘌呤（卦）或核糖鸟苷（国），分别是由大多数方法6检测。
精确检测和8-氧代dGuo量化是具有挑战性的，原因是：在该DNA样品的消化ⅰ）变异，ⅱ）dGuo的不定氧化成8-氧dGuo可能发生样品制备过程中，和iii）需要在分析HPLC-ED法8验证有效。在这个协议中，我们通过提供条件，有利的完整的DNA消化和ii）通过包含金属螯合剂和螯合剂处理的溶液和一种特殊的DNA分离试剂，而ⅲ）仅部分通过包含寻址旨在实现ⅰ）阳性对照，从而提供了该方法能够检测-8-氧代dGuo生物样品中。进一步验证超出了本文的范围。但是，我们相信，这一协议将有助于准用户确定在何种程度上他们需要正式验证协议，这取决于它们的目的。所需的方法的正式验证步骤的清单还设置。在8氧dGuo检测方法的开发和部署，公布的方法进行了回顾和巩固。因此，该方法消除了需要从几个公布来源往往缺乏重要的实验细节，同时还提供测试快速和简单的方式，如果该方法用于-8-氧代dGuo的检测和定量已成功地采用了收集信息。这种适应方法采用成功地分析DNA样本培养细胞和小鼠组织。这个视频文章将有助于其他群体建立一种有效的方法可靠的检测和8-氧dGuo定量用HPLC-ED。
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Protocol
确保所有牧，住房，处理和实验遵守当地的法律和法规，而且实验的协议之前，开始任何研究批准。对于所描述的实验中，动物护理，处理和治疗批准了加拿大卫生署动物管理委员会。见“试剂表”，供应商的信息。
1.采集生物样品
- 细胞或动物组织
- 生长在含有10％胎牛血清，青霉素100单位/ ml和链霉素100μg/ ml的F12-K媒体人肺泡腺癌A549细胞。
- 种子细胞在每一个10厘米的板约100万细胞。对于每个试验，使用一组12片在总（每一种生物复制x四剂三个板），以提供足够的DNA（80微克），用于酶促消化并HPLC分析。
- 当细胞密度达到大于约imately板面面积的70％，除去培养基并用4ml磷酸盐缓冲盐水（PBS），pH 7.4中洗涤细胞两次。
- 用于培养的动物细胞，可以使用溴酸钾3作为阳性对照。
注：溴酸钾3浓度和8-氧dGuo频率之间的正线性关系已在文献中报道9。 - 在PBS溶解溴酸钾3。确保了在细胞培养基中的终浓度大于1毫米，以获得在-8-氧代dGuo相对于未暴露的细胞中有统计学显著增加。添加溴酸钾3同样浓度系列中的（ 例如 ，12 10厘米板）每块板。
- 孵育板3小时，在37℃。取出纸张，用PBS洗一次。
- 加入1毫升的胰蛋白酶溶液（原液浓度为2.5g / ml）和孵育3分钟，在37℃。
- 用4毫升的PBS洗涤，收集每个设置成一个50ml锥形polystyr细胞烯离心管中，并离心在1000×g离心5分钟，在4℃。
- 除去PBS并保存细胞沉淀在-80℃直至进一步分析。人造DNA的氧化可以通过核孤立的进一步减少，因为其他地方的10说明。
- 动物组织
- 由于所需剂量的动物。对于这个协议，成年（10周龄），每日治疗男性木塔鼠标口服灌胃，连续三天20毫克DBC /千克体重每天溶于橄榄油。
注：该转基因动物港口工程λ噬菌体和突变LacZ报告基因从大肠杆菌大肠杆菌 11用于转基因啮齿动物突变分析12。 - 执行动物尸检例如，麻醉小鼠可以使用异氟醚，然后通过颈椎脱位其次是胸腔开放安乐死。立刻闪冻组织在液氮中。商店组织在-80℃直至分析。
注：安乐死的处理后的定时可以是另外一个重要的变量（例如，DNA的氧化是最大的在大鼠脑和肝13噪音暴露后72小时）。
- 由于所需剂量的动物。对于这个协议，成年（10周龄），每日治疗男性木塔鼠标口服灌胃，连续三天20毫克DBC /千克体重每天溶于橄榄油。
2. DNA提取，沉淀和冲洗（对于组织直接进行2.2）
- 均化收集的细胞在50ml锥形聚苯乙烯离心管中，用1ml的DNA分离剂如DNAzol。使用一个1000微升枪头驱散细胞沉淀，直到该溶液均匀。转移匀浆到一个新的1.5 ml离心管。在冰上孵育10-20分钟。继续执行2.3。
- 均质15-20 mg组织中含有500微升的DNA隔离剂1毫升手持不粘玻璃匀浆。轻轻抬起，并约1分钟下均质;较软的组织会需要更少的时间。温和的治疗，确保DNA的较小的剪切。储存在冰匀浆约10-20分钟。
- 丸匀浆离心10,000×g离心10分钟，并在1.5毫升锥形离心管中4℃。
- 将得到的上清液小心转移到一个新的1.5 ml离心管仔细注意避免接触沉淀。
- 通过加入0.5ml的100％EtOH中每1ml匀浆沉淀从匀浆的DNA。倒置试管10次，以确保分离试剂和EtOH充分混合。
- 在这一点上，DNA的沉淀物为粘稠，线轴它到塑料枪头（ 如 ，用200μl的最大保持容量），然后转移到一个新的1.5毫升锥形离心管中。
注意：快速离心可以用来从分离的DNA除去任何剩余的溶胞产物。
（DNA洗涤和增溶） - 加入1毫升75％乙醇的分离的DNA。反相管10倍彻底暂停DNA沉淀。
- 小心倒出从管的乙醇。确保日ê的DNA沉淀粘在管的一侧。存储管垂直1-2分钟，并使用移液管从管底除去任何过量的乙醇。
- 重复该DNA洗一次以上，并且无论在EtOH样品储存在-20℃（稳定数个月），或立即进行消化。
- 溶解DNA的消化缓冲液（如下所述），然后量化使用标准光谱方法（ 即 ，260nm处的吸光度使用的NanoDrop分光光度计）。
3.酶消化
- 制备“消化缓冲液”通过组合适当体积（取决于样品的数量被消化）的50mM的磷酸二氢磷酸钠（含有2.0毫米氯化钾，1.0mM的desferal（DFO）和200毫米氯化镁2）用50mM二元磷酸钠（还含有2.0毫米氯化钾，1.0mM的DFO和200mM的MgCl 2的）。每个样品需要4.0微升一元和17.0微升磷酸氢溶液。 <李>从管和风干样品的底部去除任何残留的EtOH为约5分钟。确保DNA不完全风干。
- 解散80微克提取的DNA 21.0微升消化缓冲液中，加入1单位的DNase I溶解在2.0微升消化缓冲。
- 涡轻轻实现充分混合和孵育1.5小时，37℃。
- 在温育期结束时，添加216.4微升二元50含有2.0毫米氯化钾，1.0mM的DFO和200mM的MgCl 2的毫磷酸钠溶液。
- 制备“消化缓冲-2”通过组合的消化缓冲液一体积与九卷二元的，50毫磷酸钠（2.0毫米氯化钾，1.0mM的DFO和200mM的MgCl 2的）。
- 添加0.025单位的磷酸二酯酶（PDE）我酶16.3微升消化缓冲-2。移液器上下几秒钟，然后涡旋轻轻实现彻底混合并孵育1.5小时，在37℃。
- 添加00.4单位碱性磷酸酶（AP）在8.0微升的消化缓冲-2。移液器上下几秒钟，然后涡旋轻轻实现彻底混合并孵育1.5小时，在37℃。添加33.0微升HPLC级甲醇。
- 运行消化的DNA样品在HPLC上，如下面所述，马上或储存在-80℃直至使用，以减少氧化。注：这里建议是基于这样的间隔1.5小时的消化步骤其他9和研究结果表明，类似的协议实现完整的DNA消化9。因此，它被认为是唯一的限制因素，以实现完全的消化时间和酶抑制和样品的不均匀性可以忽略不计。
4. HPLC运行：流动相，仪器仪表安装和维护的制备
- 用超纯水制备所有的缓冲液和具有高粘结强度树脂（ 如 CHELEX 100治疗：苯乙烯divinylbe亚氨基二乙酸与共聚物nzene离子与高亲和力螯合过渡金属），以尽量减少样品制备过程中金属污染物和DNA氧化。
- 制备250mM的磷酸钠缓冲液，pH 6.2。使用的比例为1：3.6957的磷酸氢二钠（FW =177.99克/摩尔），以磷酸二氢钠（FW =119.98克/摩尔）。
实施例：因此，对于一个3升原液结合70.81克的一元和28.43克二元粉末，加水到例如，2.8升，并验证该溶液的pH为6.2。调节pH值用250毫单或磷酸氢二钠溶液，分别地和不准备浓缩的酸或碱。添加2.24克氯化钾，得到10mM的氯化钾的浓度。 - 制备流动相在三瓶，至少1 L各自含有：溶剂B - HPLC级甲醇，溶剂 - B超纯水和溶剂C - 从步骤4.2的磷酸盐缓冲液。将高效液相色谱流动相供电管线入瓶; remaini毫微管也必须浸在瓶（ 例如，溶液C）之一，即使它们不需要混合底漆。
- 在运行过程中，混合的流动相溶液作为6％溶剂A，74％溶剂B至20％溶剂C实现的50mM磷酸钠缓冲液（pH 6.2）与2.0毫米氯化钾，和6％的MeOH最终溶液。
- 从电化学检测器分离的电极，拆解和干净的参考电极和工作电极与电极清洗溶液和制造商建议的抛光盘。冲洗清洁的表面用超纯水，轻轻将水擦干，并保证检测是转向系统之前干。
- 重新组装检测器，流动相入口连接到电极。打开的流动和允许流动相填满电极附接出口流动相管之前。安装前的优化开始一个新列。请确保安装在正确的方向和follows所有制造商的建议。
- 打开仪器HLPC样品遥遥领先（ 例如，1小时）进行分析，以便平衡并减少基线噪音。请参阅表1中建议的设置;背压极限应设置为3000 psi至避免色谱柱损坏。打开真空脱气机。继续吸泵和设置溶剂梯度。
- 干素根据制造商的说明泵。为此，当一个流动相已被替换或油管的入口暴露于空气中以润湿线。
- 找到启动光盘，然后将10-15毫升的塑料注射器在那里。确保注射器打开前行完全插入。要打开行简单地把盘逆时针的一个转机。
- 开始用适当的HPLC接口选择的素数。轻轻拉动注射器将流体抽入的行。一旦流体流动，首要是完整的;允许程序完成运行。重复所有行（通常是四个，取决于仪器）。
- 或者，当线已经从早期的干素润湿湿素（见下文）。
注意：当大量的时间用途（ 例如 ，2周或更多）之间已经过去时，以干质被推荐。 - 流动相溶剂成分的组合物改变为每个使用的HPLC用户界面的25％。从界面中，选择“直接功能”选项，然后选择“湿总理”选项。这将素都在同一时间的行。
- 确保所有空气从系统中通过观察湿黄金线在进入废物容器。好后素，确保没有气泡被留在该行。如果泡沫依然存在，重复吸。
- 一旦泵启动，开始移动的HPLC流动相。使用的HPLC接口向移动相的组成手动更改至6％甲醇（溶剂A）和94％的水（溶剂B），并选择为0.9毫升/分钟的流速。允许5分钟以清除任何来自甲醇塔清洗步骤。
- 5分钟后，改变组合物中以6％甲醇（溶剂A），74％水（溶剂B），20％缓冲液（溶剂C），增加的流速为1.0毫升/分。如归纳于表1，并设置背压限制到3000 psi至避免柱损坏设置其他参数。
注：潜在的问题与HPLC设置，包括基线漂移，分裂峰减弱信号强度。这些通常可以通过清洗列中的每个使用，频繁电极清洗后，并确保缓冲溶液是无污染来克服（ 例如 ，颗粒物质或微生物生长）。 - 运行流动相为约1-1.5小时，从而实现稳定的基线信号。
- 使用仪器的软件接口，如表1所示，并设定运行时间为15分钟，选择参数。注入SAMPLE。使用增加的运行时间复杂样品（通过观察峰值的存在或不存在超出15分钟间隔测定该凭经验）。
注：仪器软件允许样品运行情况的编程和设置自动进样。 - 的运行已完成之后，使用该检测器的接口关闭的检测器单元。遵循制造商的建议有关的检测器处理不当断电和关闭会损坏仪器是很重要的。不要通过切换器的背面，因为这可能会损坏仪器无法关闭电池。
- 手动改变流动相组合物至6％甲醇和94％的水。运行5分钟。
- 手动降低流速0.7毫升/分钟，紧接在组合物改变至50％MeOH和50％的水。运行至少20分钟。失败运行中推荐的时间，可能会损坏到柱和检测器这一步。关闭流，一个ð然后关闭真空脱气机。
5.编写标准
- 制备流动相缓冲液为在上述步骤4.1-4.3所述。使用的HPLC流动相配制标准，以避免来自不同的解决方案的样品注入后混合所得的峰是很重要的。
- 稀释此溶液，五分之一的超纯水在使用前，而最终的溶液必须含有6％甲醇。
- dGuo标准
注意：需要的dGuo检测高氧化电势可以增加测量干扰电化合物的风险。这可以通过验证，例如，UV检测dGuo的在260nm处的标准曲线，并比较它与EC检测所创建的标准曲线。如果两个对准孔（ 例如 ， 补充图1）和样品基体效应已被考虑进去，人们可以在260处继续进行dGuo检测通过UV，而不是EC检测。- 涡高速，直到dGuo完全溶解。这是主要的股票;储存在-20℃下进行数周。
- 创建辅助dGuo股票（0.5毫米），稀143微升的主要dGuo股票在857微升HPLC流动相。储存在冰，直到使用，并准备每天新鲜。
- 作进一步稀释来创建标准曲线（ 例如 ， 表2）。冰上存储解决方案，并准备每天新鲜。串联实验样品运行标准。
- 在此之前运行，使用不同股票的最高浓度，以找到最佳的电压检测器的电压。
- -8-氧代dGuo标准
- 测量1.0毫克8-氧dGuo在1.5ml微量离心管中。添加0.1毫升HPLC级甲醇。涡流在高速直到-8-氧代dGuo完全溶解。这是-8-氧代dGuo主存量。储存在-20℃下SEVERAL周。
- 在一个单独的试管中，结合2.9微升的主要股票和997.1微升的高效液相色谱流动相缓冲液，旋涡。这是次要的股票（10,000纳米）。
- 要创建标准曲线（250 nm）的有效的解决方案，结合24.4微升二次股和975.6微升流动相缓冲。
- 执行进一步的稀释，以提供创建标准曲线所要求的解决方案（ 例如 ， 表3）。冰上存储解决方案，并准备每天新鲜。与实验样品运行标准。
- 定量
- 曲线下整合的区域为两个-8-氧代dGuo和dGuo使用标准软件（作为液相色谱-计算机接口的一部分;见补充图2A）。
- 构建标准曲线（每种分析物与面积的曲线（ 补充图2B）下的已知浓度。使用标准曲线的方程，计算出的比率为8-氧dGuo / dGuo每个样品。
6.琼脂糖凝胶电泳
注：琼脂糖凝胶电泳可被执行以验证DNA酶切的完整性。
- 制备50倍Tris-乙酸-EDTA（TAE）缓冲液，通过在750ml超纯水中溶解242克Tris碱（FW = 121.14）。添加57.1毫升冰醋酸和100ml的0.5M EDTA（pH值8.0; EDTA会完全溶解时将溶液pH调节至8.0与如氢氧化钠）和超纯水加至1升商店的终体积在RT，稀释使用前该溶液50倍。
- 称量1g琼脂糖和溶解在100ml 1×TAE缓冲液，加热，在微波1-2分钟。戴上护目镜和防护设备以避免与沸腾的琼脂糖接触。
- 冷却液，直到约50℃，加入5微升溴化乙锭（注意：诱变剂），倒入琼脂糖凝胶运行装置。插入梳子。
- 等到溶液凝固，倒TAE缓冲液在凝胶和装载样品（体积取决于梳大小;通常情况下，10-20微升DNA样品装载，与6X运行染料混合，可视化和方便装）。
- 运行凝胶直至染料迁移的凝胶的约2/3的长度（ 例如 ，45分钟，在150V）。可视化下的紫外线DNA条带。
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Representative Results
dGuo观察到有4.7分钟而-8-氧代dGuo具有约6.4分钟（ 图2A和B）的保留时间，保留时间。有一个在两种分析物之间的峰高约1000倍的差异，如在图2C中看到的。伏安-8-氧代dGuo和dGuo通过运行标准在+0.2的范围内的工作电位，获得至1.1 V的最佳工作电位为-8-氧代dGuo被确定为+ 0.5V，和0.9 v对于dGuo（ 图3）。这些电位是与文献14,15中所述的其它玻璃碳电极的协议。检测和8-氧dGuo和dGuo电化学检测的动态范围的限制被报道为在飞摩尔和纳摩尔范围，分别8,9。标准曲线dGuo和8-氧dGuo应每天运行，以确保线性检测跨越一个合适的浓度范围和适当的执行仪器ANCE（ 图4）。标准曲线是通过绘制的峰面积作为已知分析物浓度（ 补充图2），允许一个计算从标准曲线产生的方程和样品中的分析物浓度的函数构成。
完成DNA的消化需要的8-氧dGua次数几个基因组DNA消化的方法的准确测量已建议8,15,16。在必要时，DNA提取和消化的功效可以用琼脂糖凝胶电泳（ 图5A）和HPLC-ED（ 图5B）进行验证。泳道与图5A中明显的DNA涂片（ 如 ，泳道2，4，6，9，11，和13）表明未消化DNA的存在，同时与消化的DNA片段的样品跑出凝胶并且因而是未被发现。在图5B的高原表明进一步incubati对DNA消化酶的超出1.5小时不会导致dGuo的检测，提示1.5小时后几乎完全的消化量更大。此外，这两个琼脂糖凝胶电泳和HPLC-ED被用来测试这里使用的磷酸酯类的DNA消化缓冲液的效用。这个缓冲器被很好地匹配的HPLC流动相，并且不归属于不同的溶液混合产生不期望的检测器噪声（数据未显示）。因此，从缓冲开关在文献中建议的（ 即 ，Tris-盐酸8）的磷酸钠缓冲液被推荐用于此协议（左与右侧图5A的）。请注意，进行DNA消化的优化的基本假设是该酶抑制和样品的不均匀性可以忽略不计和消化时间是唯一的限制因素，如上所述。一种可能性，即不完整的DNA消化导致碎片太小是DETE反恐执行局在琼脂糖凝胶遗体。尽管这样的系统误差会影响所有的样品同样，进一步的实验（ 例如 ，治疗的培养细胞与放射性标记的促氧化剂10）可同时进行，以完全排除这种可能性。
不同于标准的解决方案，消化的DNA，不管是从分离的细胞或小鼠组织，产生几个另外的峰（ 图6A和6B）。这些是从-8-氧代dGuo和dGuo峰遥远，但扣球实验如在讨论中概述核实活动的一部分，需要检查是否附加峰（ 即 ，样品杂质由于基体效应，例如）干扰与量化。 8氧代dGuo峰是由与标准的保留时间对应确认;而且，从细胞或动物，经历促氧化剂处理的样品（ 图7增加在-8-氧代dGuo峰）。促氧化剂溴酸钾3参与从鸟嘌呤通向-8-氧代dGuo形成17单电子抽象。值得注意的是，在没有助氧化剂应激，2.4分子-8-氧代dGuo每10 7 dGuo A549细胞（ 图7A）进行检测。这可比的8-氧dGuo / 10 7 dGuo 4.5分子中观察到的A549细胞中检测到使用另一种选择，基于质谱的方法，旨在解决所述的HPLC-ED法9的潜在缺点。 DBC治疗（ 即 ，每日20.0毫克的DBC /千克体重每天三天）增加到-8-氧代dGuo水平在小鼠脾脏的DNA。这也是预期的结果，因为活性氧是已知的多环芳香烃的体内 8的代谢过程中产生的。的8-氧dGuo在未受力的动物的脾的相对水平为8.3-9.4 -8-氧代dGuo / 10 6 dGuo（ 图7B），这是在良好的agreemen吨四-8-氧代dG的分子/ 10 6 dGuo的标准条件下的小鼠脾细胞中通过HPLC-ED 18测定的公布值。 图6和7表明，8-氧代- dGuo高于基线水平是非常小的。因此，如果DNA被氧化以较低水平比这里观察到的，8-氧代 - dGuo的水平可能是从基线，应牢记由准协议用户难以区分。
图8-氧代dGuo 1.结构和它的互变异构体的8-OH-dGuo。注意-8-氧代dGuo而非8-OH-dGuo是在pH 7.4的主要互变异构体。
图2.保留时间dGuo（A）和8-氧dGuo（B）的HPLC-ED色谱图由10.0微升注射任dGuo的获得，（1.0纳摩尔数量）或8-氧dGuo（1000 fmol的数量），并在0.9伏（A）或0.5伏（B）中检测到。对于dGuo保留峰为大约为-8-氧代dGuo 4.7分钟（A）和，这是大约6.4分钟（B）。在2-3分钟的宽峰可能是由注射干扰从（A）中描述的两个独立的注射，并造成与不受影响（ 即 ，始终存在于类似强度）由8-氧代dGuo的浓度。（C）的叠加的色谱（B）的紫外（260毫微米）检测出来。该标准是在使用相同的运行条件下的同一天运行。 请点击此处查看该图的放大版本。
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图3.优化检测器电压。dGuo（A）的伏安（最终浓度1纳摩尔）在一个范围内的0.7-1.1五（B）的8-氧dGuo伏安通过HPLC-ED分析检测（终浓度500飞摩尔）在一个范围内的三个独立实验0.3-0.7 V.手段通过HPLC-ED分析检测（N = 3）±所示的标准偏差。在某些情况下，误差棒比绘图符号小。
图4.标准曲线dGuo（A）和8-氧dGuo（B）中。将10微升要么dGuo或-8-氧代dGuo的注入，并通过HPLC-ED在0.9伏（A）或0.6V的测量（乙）。三个独立实验的装置（N = 3）±所示的标准偏差。在某些情况下，误差线是SM阿列尔比绘图符号。
图5.优化DNA消化。 （A）的八十微克鲑睾丸的DNA中的Tris-HCl中描述8消化，甘氨酸-醋 酸缓冲液（左）或磷酸钠缓冲液（右）。琼脂糖凝胶电泳（1.0％）中的运行在150V进行45分钟。泳道1和8：DNA梯;泳道2,4和6：未消化的DNA;泳道3,5，和7：消化的DNA;泳道9，11，和13：未消化的DNA（磷酸盐缓冲液）;泳道10，12和14：消化的DNA（磷酸盐缓冲液）（B）的鲑鱼睾丸DNA（80微克）本文消化通过用DNA酶I，PDE I，和AP孵育每每个步骤0.5-2.5小时，在50 mM磷酸盐缓冲液含氯化镁和DFO。将50微升各样品，含7.3消化的DNA微克，通过HPLC（ 即 ，0.9伏和1毫升/分钟弗洛分析w）到检测dGuo。图中显示了三个独立的实验（N = 3）±平均值的标准误差。方法请点击此处查看该图的放大版本。
图6的色谱-8-氧代dGuo检测在培养的细胞（A）或动物组织（B）（A）中消化的DNA从A549细胞，处理过的或未经处理的同溴酸钾3。（B）从DBC的脾消化的DNA治疗小鼠。峰向左移由于去除了保护柱（由于压力积聚在装置;与标准它们的位置被确认）。标准和样品使用相同的运行条件的同一天运行S和10毫升注射体积，以1毫升/分钟流速和0.5和0.9伏为dGuo和8-氧dGuo分别。请点击此处进行A组的大; 在这里为B组。
图7.量化-8-氧代dGuo生物样品中。峰进行整合并与标准曲线（见补充图2为更详细说明），得到8-氧dGuo水平的DNA从A549细胞，用溴酸钾3（处理A），或8-氧dGuo水平从DBC处理的小鼠（B）的脾淋巴细胞DNA。星（*）表示统计学意义（P <00.05，单向方差分析（ANOVA）（A）中 ，学生t检验（B））。示三（A）或五（B）的独立实验±平均值的标准误差的平均值。收集样品4或3天的处理后24小时。
| 流动相 | 50.0毫磷酸钠缓冲液，pH 6.2，含6％甲醇和2.0毫米氯化钾 |
| 流动相流速 | 1.0ml /分钟 |
| 列类型 | YMC-基本具备保税球状二氧化硅 |
| 柱长 | 15厘米 |
| 柱内径 | 3.5毫米 |
| 柱温 | 35℃ |
| 检测器温度 | 29°C |
| 电压设定为-8-氧代dGuo | + 0.5V |
| 电压设置为dGuo | +0.9 V |
| 注射量 | 10.0毫升 |
表1.仪器参数用于检测和8-氧dGuo定量通过HPLC-ED。
| 纳摩尔 | 100纳米的标准，微升 | HPLC流动相，微升 | 稀释，折 |
| 五 | 300 | 0 | 1 |
| 2.5 | 150 | 150 | 2 |
| 1 | 60 | 240 | 五 |
| 0.5 | 三十 | 270 | 10 |
| 0.25 | 15 | 285 | 20 |
| 0.1 | 6 | 294 | 50 |
表2. </ STRONG> 制备标准曲线dGuo的。
| fmoles | 250纳米的标准，微升 | HPLC流动相，微升 | 稀释，折 |
| 2500 | 300 | 0 | 1 |
| 1000 | 120 | 180 | 2.5 |
| 500 | 150 | 150 | 五 |
| 250 | 150 | 150 | 10 |
| 100 | 120 | 180 | 25 |
| 50 | 150 | 150 | 50 |
表3标准曲线的制备对于-8-氧代dGuo。
SUP图互补电化学（EC）和UV基检测dGuo的比较1，标准曲线dGuo检测通过电化学检测（EC）或UV检测（260 nm）的创建。峰面积在由这两种方法大约4.7分钟为一体高峰dGuo。 N = 3，平均值±标准偏差表示。
dGuo的补充图2的定量从它的标准曲线。使用标准曲线来确定dGuo的浓度示出的一个例子。（A）的峰面积可以通过积分使用标准软件来确定。（B）的该信息用于以建立标准曲线，为了使用该线的方程来计算样品中的未知分析物的浓度。52697 / 52697fig9large.jpg“目标=”_空白“>点击此处查看该图的放大版本。
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Discussion
虽然-8-氧代dGuo已被报告为脱氧核糖核酸氧化的有用的生物标志物，其可靠的量化可以构成挑战。虽然有几种公开的方法存在，有必要对协议的全面的，描述概述，以允许研究人员部署在他们的实验室的方法。这里，我们提出的HPLC为基础的协议，将允许新用户建立一种有效的方法-8-氧代dGuo检测和定量的详细概述。
已经描述了8个氧代dGuo量化三种主要的方法。这些包括酶联免疫吸附测定（ELISA）为基础的商用试剂盒19，液相色谱/质谱（MS）的方法（ 例如，如在别处所述9和HPLC-ED方法，如本文中所描述。ELISA法存在干扰与生物样品19中的某些化合物，在一般情况下，使用所获得的结果chromatogr在基于ELISA的方法20比较aphic技术被认为更可靠-8-氧代dGuo定量。在比较的HPLC-ED方法与基于MS的方法中，前者的优点是相对便宜的设备（数量级比设备为基于MS的方法成本更低的即大约一个数量级）。此外，HPLC-MS优于的HPLC-ED方法，因为前者不容易与电化合物潜在的干扰，并提供利用同位素21明确，定量测量。
忧虑已提出了关于使用传统的苯酚提取方法为基因组DNA，以用于-8-氧代dGuo量化22的提取。几个研究者已经指出，与标准苯酚提取相关联的条件可引入不希望dGuo氧化从而增加基线水平1,9。为了解决这个问题，细胞和灵魂升的基因组DNA可以被提取和使用修改DNAzol协议22纯化。 DNAzol含有高浓度的硫氰酸胍，以及以前的研究9已经注意到当DNAzol用于相对于传统的苯酚和NaI基于提取方法低基础水平-8-氧代dGuo形成。铁螯合物DFO被用来减少样品制备过程中活性氧的产生和DNA氧化。如上所述，8-氧代- dGuo水平在非重读A549细胞（ 图7A）是高度相似于什么是由一个基于MS的方法13测定。这表明，对于基于MS的方法13中所述的预防措施的掺入允许最小化不期望的DNA氧化的样品制备和分析过程中达到精确-8-氧代dGuo定量通过HPLC-ED。后促氧化剂处理定时尸检或收获培养细胞可以是另一种重要的因素，因为在这里看到由下降-8-氧代dGuo水平在最后一次处理（ 图7B）后的脾脏，在24小时与4小时。这可能是由于的碱基切除修复的激活，以消除DNA损伤。
所描述的方法的两个明显的局限性是：（1）对于相当大的量的DNA的条件（大约80％的样品微克实现三个技术复制），（2）从共洗脱化合物的潜在干扰。人们发现，只有一个非常小的（ 即 ，约15毫克）片脾（约15％的总组织重量的）的是足以获得80的DNA微克，而使组织为将足够量的其它（ 如 ，基因表达）分析。提取的DNA的量是影响人为的DNA的氧化23,24,25另一个关键参数。因此，有相当大的（〜80毫克/样品）的工作，我们在这里建议是使用> 30毫克，以减少人为的DNA氧化25先前的建议一致。对于较小的组织（ 例如 ，海马），人们可以按比例缩小的协议开始与20-30微克的DNA，因为这应该2-3运行是足够的。大批量的DNA大概有利于上述背景噪声峰值的分辨率，不过这还有待实验验证的潜在干扰物质的存在可以对案件逐案基础上加以解决，有必要始终包括DNA样本同时在体外或与已知能够诱导氧化性DNA损伤的阳性对照体内处理（ 见图7）。
虽然磷酸盐的磷酸盐缓冲液已报道降低碱性磷酸酶的活性，方法的优化实验（ 图5）证实，可以很容易地使用磷酸缓冲液。由于磷酸盐缓冲液中含有流动相，其在样品制备使用降低检测器噪声由于溶胶发泄混合。因此电压，缓冲液组成，DNA的提取和消化进行了优化和阳性对照都包括在内。此外，总结概括了这些变量可以由各个实验室进行进一步的优化提供。我们的目标是产生一个可作为专门的实验室旨在开发一种分析-8-氧代dGuo检测和定量的有用的方法。
然而，我们注意到，该方法的有效性正式要求，根据建议对技术要求国际协调会议的药品注册人用（ICH）的验证步骤概述的分析方法验证（ 即 ICH Q2（ R1）26）。简言之，将定量的验证中的元素应检查测定的：1）的精度（其可以通过包括样品用不同量的8-氧dGuo完成掺入-中; 2）范围和线性度（横跨分机线性响应端的分析物浓度; 3）精密（重复性和再现性）;检测4）极限（通常，在该点的信噪比大于或等于2-3;这可能是矩阵依赖性）; 5）定量限（浓度在该响应满足一些预定的水平，例如2×控制的标准偏差可以是基质依赖性）; 6）选择性/特异性（能够检测复杂样品与整洁的解决方案）中的分析; 7）的重现性（以获得相同的结果在不同的实验室与不同的运营商）的能力;和8）的鲁棒性和系统适应性。所推荐的ICH验证的目的是证明，它是“适合于预期目的”和许多实验室将可能有不同的目的，该测定的潜在用户将不得不用于验证此到必要的程度。的8-氧dGuo准确定量是可取的毒理学和分子医学罪CE可以增强如何氧化应激的理解，并且更具体的DNA氧化，被机械地和凭经验挂健康的不利影响。
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Acknowledgments
该研究是由加拿大卫生部基因组学研究和发展倡议（GRDI）和加拿大监管策略生物技术（华润雪花）。作者有没有利益冲突。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 8-oxo-dGuo standard | Cayman Chemical Company | 89320 | Inappropriately referred to as "8-hydroxy-2'-deoxy Guanosine"; see Fig. 1 and text for details. |
| Alkaline phosphatase | Sigma-Aldrich | P5931 | From E. coli |
| Chelex 100 | Sigma-Aldrich | C7901 | Chelates heavy metals |
| Desferoxamine mesylate | Sigma-Aldrich | D9533 | |
| dGuo standard | Sigma-Aldrich | D7145 | |
| Dibasic sodium phosphate | Sigma-Aldrich | S9390 | |
| DNA from salmon sperm | Sigma-Aldrich | D1626 | Sodium salt |
| DNase I | Sigma-Aldrich | D4527 | TypeII, from bovine pancreas |
| DNAzol | Invitrogen | 10503-27 | |
| Ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt dihydrate (EDTA) | Sigma-Aldrich | E4884 | The compound would not completely dissolve until solution pH is adjusted to 8.0 (e.g. with NaOH) |
| F12-K media | ATCC | 30-2004 | |
| Foetal bovine serum | ATCC | 30-2020 | |
| Guard column | Chromatographic Specialties | YBA 99S03 0204GC | Protects colum from contamination; may also lead to pressure build-up |
| Magnesium chloride | Sigma-Aldrich | M8266 | |
| Monobasic sodium phosphate | Sigma-Aldrich | S9638 | |
| Penicillin-Streptomycin | Invitrogen | 15140-122 | |
| Phosphate buffered saline | Invitrogen | 15190-250 | |
| Phosphodiesterase I enzyme | Sigma-Aldrich | P3243 | Type II from Crotalus adamaneus venom |
| Teflon homogenizer | Thomas Scientific | 7724T-1 or 7724T-5 for 1 or 5 mL, respectively | Volume (holding capacity) depends on the amount of sample to be processed. |
| Trypsin | Invitrogen | 15050-065 | |
| YMC-BASIC column with bonded spherical silica | Chromatographic Specialties | YBA 99S03 1546WT |
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