Die Auflösung dynamische Kernpolarisation Besetzung für Echtzeit-enzymatische Reaktionsgeschwindigkeit Messungen von NMR

Abstract

Die wichtigste Einschränkung der NMR-basierten Untersuchungen ist niedriger Empfindlichkeit. Dies fordert für lange Aufnahmezeiten, also in Echtzeit NMR-Messungen von Stoffwechselumwandlungen zu verhindern. Hyperpolarisation über Auflösung DNP umgeht Teil der Empfindlichkeit gibt dank der großen Out-of-Gleichgewicht Kernmagnetisierungs aus dem Assoziierungsabkommen Elektron-zu-Kern-Spin Polarisationstransfer. Die hohe NMR-Signal erhalten werden, können chemische Reaktionen in Echtzeit zu überwachen. Die Kehrseite der hyperpolarisierten NMR liegt in der begrenzten Zeitfenster für die Signalerfassung, die in der Regel in Längsrichtung in der Größenordnung des Kernspins ist Relaxationszeit, _{T 1,} oder, in günstigen Fällen in der Größenordnung des konstanten Relaxationszeit im Zusammenhang mit der Singulett-Zustand gekoppelt Kerne, T _LLS. Die zelluläre Aufnahme von körpereigenen Molekülen und Stoffwechselraten können wichtige Informationen auf die Tumorentwicklung und Drogen Antwort liefern. Numerous vorherigen hyperpolarisierten NMR-Untersuchungen haben zur Überwachung der enzymatischen Aktivität in vivo die Relevanz von Pyruvat als metabolisches Substrat demonstriert. Diese Arbeit enthält eine detaillierte Beschreibung des experimentellen Aufbaus und Verfahren zur Untersuchung von enzymatischen Reaktionen erforderlich, um insbesondere die Pyruvat zu Lactat Umwandlungsrate in Gegenwart von Lactatdehydrogenase (LDH), die von hyperpolarisierten NMR.

Introduction

Dynamische Kernpolarisation ^{(DNP), 1,2} eine Technik entwickelt, um die Kernspinpolarisation zu erhöhen, das heißt, das Ungleichgewicht zwischen "oben" und "unten" Spinpopulationen (P = [N _↑ - N _↓] / [N _↑ + N _↓]), wurde zum ersten Mal in den 1950er Jahren eingeführt. Kernspins ^{wie 13} C bis zu P = ^{10 -1} unter günstigen Bedingungen polarisiert werden, typischerweise bei einer Temperatur in der Größenordnung von 1 K und in einem Magnetfeld von 3,357 T. ^3,4 ein Durchbruch für biologische Anwendungen kamen in der frühen 2000er Jahren mit der Entwicklung von Lösungs DNP, die bei der Auflösung von gefrorenen polarisierten Proben in überhitztem Wasser besteht, während die hohe Kernpolarisation Ebene bei niedriger Temperatur erhalten Halte. ⁵ die Flüssigkeit-NMR-Signal um einen Faktor 10 ³ -10 ⁴ verstärkt wird im Vergleich zu verbreitetRT NMR Bedingungen thermisch polarisiert. Dissolution DNP ist daher ein Weg, um nicht-invasiv messen biochemischen Reaktionsgeschwindigkeiten in situ in Echtzeit, so dass die Überwachung Dynamik durch NMR mit einer zeitlichen Auflösung von 1 s oder ^{weniger. 6 - 10} wurde es möglich, auch sehr geringe Konzentrationen von Analyten in erkennen ^11.

Unter den nicht-invasive Bildgebungsverfahren Molekül ist hyperpolarisierten NMR die einzige Technik, die ein Substrat und seine Stoffwechselprodukte in Echtzeit gleichzeitige Messung ermöglicht. Dissolution DNP mit Enthusiasmus in verschiedenen wissenschaftlichen Bereichen empfangen wurde im Bereich von in vitro NMR zu klinischen MRI ^{12 und} den vielversprechendsten Anwendungen der in situ verbunden sind Überwachung des Stoffwechsels. ^13,14 Die Hauptbegrenzung der Auflösung DNP ist, dass nach einer Zeit auf die Reihenfolge der fünffachen Längs Relaxationszeitkonstante _{T 1,} das polare verbesserterung verloren. Kernspins Lager ausstellenden relativ lange T _{1 ist es} daher notwendig, Moleküle zu verwenden. Um die Zeitspanne des Polarisationsverstärkung erstrecken, langsam entspannende Kernspinzuständen, bekannt als langlebige Zustände (LLS), verwendet ^{werden. 15 - 17} LLS sind unempfindlich gegenüber der intra-Paar Dipol-Dipol-Wechselwirkung, so dass ihre charakteristische Relaxationszeit, T _LLS kann als T ₁ viel länger sein. ¹⁸ eine Magnetisierungs Lebensdauer von zehn Minuten bis zu 1 Stunde daher erhalten werden konnte, ^19,20 und LLS wurden sowohl für magnetische Resonanzspektroskopie (MRS) vorgeschlagenen und MRT. ²¹

Die wichtigsten Punkte, die für das Studium enzymatische Reaktionsgeschwindigkeiten von hyperpolarisierten NMR sind sorgfältig optimiert werden müssen: (i) maximieren die Solid-State-Polarisation und (ii) die Polarisationsverlust während der Übertragung des hyperpolarisierten Lösung aus der minimierenPolarisator zur NMR-Spektrometer. Dieser Artikel beschreibt die Anpassung eines maßgeschneiderten Auflösung DNP Gerät und Einspritzsystem enzymatischen Reaktionen zu untersuchen. Die Eigenschaften und die Leistung der Einrichtung wird mit der bekannten und weit verbreiteten hyperpolarisiertem Substrat [1- ¹³ C] Pyruvat nachgewiesen werden. Die Hauptgründe für diese Entscheidung sind erstens seine natürlich lange ¹³ C longitudinale Relaxationszeit _{(T 1>} 50 sec bei hohen Magnetfeldern und Temperaturen über 293 K), die Überwachung Reaktionen während mehrerer Minuten erlaubt, und zweitens, ihre zentrale Rolle in Krebsstoffwechsel. ^13,14 mit Auflösung DNP-NMR und eine kundenspezifisch entwickelte Einspritzsystem, um die Oxidation von Pyruvat durch Laktat-Dehydrogenase (LDH) katalysiert wird, kann in Gegenwart eines anfänglichen Pool von unmarkierten Laktat ^9,22 oder ohne unmarkierte Laktat überwacht werden hinzugefügt , wie hier gezeigt. Es hat sich gezeigt, dass die ^{[1- 13 C]} Laktat Signal in vi gemessenvo (einschließlich in Zellen) nach der Injektion von hyperpolarisiertem [1- ¹³ C] Pyruvat ist vor allem auf eine schnelle Etikettenaustausch zwischen Pyruvat und Lactat anstatt Laktatproduktion. ⁶

Wir präsentieren hier die Echtzeit-Produktion von ^{[1- 13 C]} Laktat von hyperpolarisierten ^{[1- 13 C]} Pyruvat in einem NMR-Röhrchen eingespritzt LDH, jedoch zunächst ohne Laktat.

Systembeschreibung
Es gibt zwei Hauptteile in einem Löse DNP setup (Abbildung 1): Die DNP Polarisator und dem NMR-Spektrometer. Das Hauptelement des DNP Polarisator ist ein Kryostat die Probe um 1 K in einem Pump Heliumbad zu kühlen. Der Kryostat ist in einem 3,35 T supraleitenden Magneten eingesetzt und hat eine Geometrie, die die Polarisations Probe im Isozentrum des Magneten (1) zu haben, sicherstellt. Im Innern des Kryostaten wird die Probe (a) durch eine NMR-Spule (b), umgeben die Polarisation b zu messenuildup, enthalten in einer übermodierten Mikrowellenkavität (c). Die gesamte Probe wird bei niedriger Temperatur in einem Pump Heliumbad (d) und Bestrahlung mit Mikrowellen durch den Wellenleiter gehalten wird. Das gesamte System wird durch maßgeschneiderte Software (2D) verwaltet.

Die Hardware und die Tieftemperatur-Ausrüstung benötigt DNP und die anschließende Auflösung durchzuführen, sind nach wie vor eine technologische Herausforderung. Eine neue DNP Kryostaten ^23,24 wurde entwickelt und getestet, um seine Tieftemperatur Leistungen zu bestimmen und dann für eine schnelle Abkühlung, Helium Haltezeit und insgesamt noch geringen Heliumverbrauch im Betrieb optimiert.

Der Kryostat besteht aus zwei Teilen. Der erste Teil des Kryostaten ist die Isolierung Dewar (2A), die in etwa in Oberteil getrennt werden kann (a) der Schwanz oder Probenraum (b), und die äußere Vakuumkammer (OVC) im Hochvakuum und Gehäuse gehalten dem Strahlungsschirme (c). Der zweite Teil des Kryostaten ist der Haupt insert (2B), in die Isolierung Dewar platziert, wo alle Wasserregelung gesteuert werden. Das flüssige Helium aus der externen Speicher Dewar durch die Leitung übertragen sind (a), in der ersten Stufe in den Separator (B) kondensiert ist, verwendet eine Zwischenkammer sowohl den oberen Teil des Kryostaten kalt zu halten und die Helium verdampft zu entfernen bei der Übergabe. Der Separator Druck wird um den oberen Teil des Kryostaten gewickelt abgesenkt durch Pumpen durch eine Kapillare (c); der Fluss des kalten Helium in dieser Kapillare werden die Leitbleche (d) und der Strahlungsschirme in der Isolations Dewar (OVC) abkühlen. Die Probe wird angeordnet und polarisiert in den Probenraum. Der Probenraum ist mit dem Separator durch eine andere Kapillare (e) verbunden ist, um den Schwanz des Haupt Kryostaten Einsatz gewickelt. Diese Kapillare kann durch ein Nadelventil manuell von außen betätigt geöffnet oder geschlossen werden.

die niedrige Temperatur während der DNP pr verwendet zu erreichenocess muss flüssiges Helium in den Kryostaten Probenraum gesammelt werden und der Druck auf den mbar Bereich abgesenkt. Die Operationen für Kryostaten Betrieb notwendig sind über einen ziemlich komplexen Pumpensystems mit drei Sätzen von Pumpen durchgeführt, überwacht und in verschiedenen Punkten mit elektronischen und elektromechanischen Instrumente (2C) betrieben. Der Kryostat OVC muss durch den ersten Pumpsystem zu Hochvakuum gepumpt werden. Dieses System besteht aus einer Turbomolekularpumpe bestehend aus einer Kreiselpumpe (a) gesichert. Das flüssige Helium wird von der Speicher Dewar (b) durch die Transferleitung Kryostaten Einlass zu dem Kryostaten Separator überführt. Der Separator hat einen Zugang zum zweiten Pumpenaggregat angeschlossen. Dieses Set besteht aus einer Pumpe 35 m ^{3 / h} Membran besteht (c). Diese Linie ermöglicht das Entfernen der Heliumgas während der Übertragung aus dem Dewar und bei Trennkühlung gekocht. Das flüssige Helium im Abscheider kann dann an den Probenraum durch die Kappe übertragen werdenIllary Rohre oben beschrieben. Zur Übertragung von flüssigem Helium aus dem Abscheider in den Raum Probe und anschließend auf niedrigere Probenraum Druck auf mbar Bereich, ein System dritte Pump bestehend aus einem 250 m ^{3 / h} Rootspumpe durch eine 65 m ^{3 / h} Kreiselpumpe (d) gesichert ist mit dem Kryostaten durch eine manuelle Drosselventil (e).

Alle Vakuumsystemoperationen gesteuert und geregelt durch eine elektropneumatische Sonderanfertigung (f). Dieses Gerät steuert Vakuumleitungsverbindungen zwischen dem Kryostaten Separator (g) und Probenraum (h) Verkaufsstellen, die zweite / dritte Pumpsysteme (c, d), eine komprimierte Heliumflasche (i) und der Außenseite. Die Kommunikation zwischen (f) und der Außenseite durchläuft ein Einwegventil (j). Der elektro-pneumatische Einrichtung (f) sowie alle Systemparameter und die Auflösung Hardware sind durch eine maßgeschneiderte elektronische Gerät angeschlossen USB mit einem handelsüblichen PC gesteuert und betrieben. Schließlich alle das System, durch das elektronischeGerät wird durch maßgeschneiderte Standalone-Software (2D) verwaltet gegebenenfalls Operationen über eine Schnittstelle ins Leben gerufen werden Software-Tasten.

Um die Probe zu verwalten und zu messen NMR-Signal Aufbau im Festkörper eine Reihe von Einsätzen verwendet werden (3A). Um den Kryostaten für Polarisation vorzubereiten, legen Sie die Hauptprobeneinsatz (a), in den Kryostaten. Der Hauptprobeneinsatz im Inneren eines übermodierten vergoldet Mikrowellenhohlraum gegeben, der mit einem NMR-Spule (b) zur Verfügung gestellt. Vor dem Einfrieren der Substratlösung, die in einem geeigneten Probenbehälter bei Temperatur von flüssigem Stickstoff polarisiert (Polarisations Lösung) zu werden, und es am Ende Unterseite des Glasfaserprobenhalter (c) platzieren. Schieben Sie den Probenhalter in die Hauptprobeneinsatz zu den Magneten Isozentrum erreichen. Legen Sie die vergoldet Wellenleiter (d) in den Probenhalter. Der Wellenleiter kann der Mikrowelle von einer externen Mikrowellenquelle erzeugt mit minimalen Verlusten t zu reiseno die Probe.

Maßgeschneiderte Software für Kryostaten Management kümmert sich automatisch um, nach dem Klicken auf die entsprechende Schnittstelle Taste, verschiedene Operationen wie Abklingzeit (der Kryostat Temperatur Temperatur von flüssigem Helium nahe gesenkt wird), Füllung (der Kryostat mit flüssigem Helium auf einen vorbestimmten Pegel gefüllt ist ) ein zusätzlicher Schritt zu T 1 ≈ K (das flüssige Heliumbad gepumpt der Kühlung zu erreichen ist die niedrigste Temperatur möglich), Unterdrucksetzen (der Kryostat etwas über Raumdruck bei unter Druck P = 10-30 mbar Kryostaten Öffnung ohne Risiken zu ermöglichen, der Verschmutzung des Kryostaten durch die Luft) und Auflösung (automatisches Verfahren die DNP Probe und gibt das resultierende hyperpolarisierten Lösung Meßort, das heißt die NMR-Spektrometer) aufzulösen.

Die Polarisation wird durchgeführt, bei 94 GHz, die Probe mit Mikrowellen bestrahlt wird (in einem Polarisationsfeld B ₀ T _DNP, wobei T _DNP ist die Polarisation Aufbauzeit. T _DNP der gleichen Größenordnung ist als die longitudinale Relaxationszeit der Zielkerne im festen Zustand bei dem betreffenden Bereich und Temperatur. In allen Experimenten wurde die Probe für mehr als 5 T _DNP polarisiert.

Am Ende der Polarisationszeit muss die Probe in einer RT-Lösung, um aufgelöst zu werden, um für die Messung der Enzymaktivität verwendet werden. Während des Auflösungsprozesses, 5 ml von überhitztem D _{2 O} aus dem Kessel der Auflösung Einsatz (3B) durch komprimierte Heliumgas geschoben (P = 6-8 bar), um die DNP-verstärkten Probe zu erreichen und es aufzulösen. Das resultierende hyperpolarisierten Lösung wird die Auflösung Einsatz durch die komprimierte Heliumgas ausgestoßen, durch die Auflösung Einsatz Steckdose (3C-b 23 die Zeit für den Probentransfer von der benötigten DNP Polarisator zum Aufstellungsort NMR Spektrometer beträgt etwa 3 sec.

Der Lösevorgang wird durchgeführt, eine Auflösungs Einsatz (3B) verwenden. Die Auflösung Einsatz besteht aus einem elektronischen pneumatischen Baugruppe (a) eine Kohlenstofffaser-Stick (b) Verbindungsrohre zwischen dem Kessel in die pneumatische Anordnung und dem Probenbehälter Schließfach (c) enthält, die mit der Probe dichte Kopplung ermöglicht out zum Auslass Behälter und zurück. Die elektropneumatischen Baugruppe (3C) verwendet überhitzten D _{2 O} durch die Kohlefaserstab zu dem Probenbehälter zu erzeugen und fahren und dann die hyperpolarisierte Lösung aus dem Kryostaten zu extrahieren. Der elektropneumatische Baugruppe wird von Pneumatikventilen (a) zusammengesetzt, die die Verbindungen zwischen der CO-Regelungmpressed Helium (P = 6-8 bar) Linie (b), der Kessel (c), wo die D _{2 O} durch das Ventil (d) eingespritzt wird, und der Ausgang (e) durch die Kohlenstofffaser-Stick (f). Das System wird durch einen Druck G, einem Thermometer und einem Wärmewiderstandsdraht in dem Kessel (c), einem Abzug (h) und einem Anschlusskasten (i) verwendet, um eine Schnittstelle, das System mit dem elektronischen Verwaltungsvorrichtung abgeschlossen.

Die DNP Kryostaten und das NMR-Spektrometer sind durch eine Transferleitung, dh eine PTFE-Röhre von 2 mm Innendurchmesser innerhalb dessen das hyperpolarisierte Lösung durch unter Druck stehende Helium (P = 6-8 bar) gedrückt wird verbunden, wenn die Auflösung ausgelöst wird.

Die Auflösung Sequenz besteht aus den folgenden Operationen besteht: in den ersten 300 ms, überhitztem D _{2 O} wird zu dem Probenbehälter geschoben, um das hyperpolarisierte gefrorenen Lösung zu schmelzen und aufzulösen. Danach wird das hyperpolarisierte Lösung aus dem Kryostaten durch Mittel der pres extrahiertensurized (P = 6-8 bar) Heliumgas und schob durch die 2 mm Innendurchmesser PTFE-Schlauch (3C-E) an die Messstelle an der Injektionsstelle mit einem der Verfahren beschrieben in Schritt durchgeführt wird, 6.2.1 oder 6.2 Schritt 0,2.

Die zweite Komponente des Lösungs DNP-NMR-Einrichtung ist das NMR-Spektrometer. Im Setup hier beschrieben ist, arbeitet der NMR-Spektrometer bei einer Feld B _{0 =} 11,7 Tesla. Ein 5 mm NMR-Sonde wird verwendet, um das hyperpolarisierte Signal nach der Auflösung zu messen. Die NMR-Spektrometers wird durch die NMR-Konsole bedient, für verwendet, um sowohl Festkörper- und Flüssig-NMR-Messungen und die Firma bereitgestellte Software xwinnmr. Eine typische Messung eines niedrigen Kippwinkel harten Puls besteht (entweder kalibriert, für liquidstate oder unkalibrierten, für Solid-State-Messungen) durch Signalübernahmen verfolgt.

Messungen des Festkörperwärmepolarisationssignal und DNP-derived signal Aufbau werden unter Verwendung des maßgeschneiderten durchgeführt ^{13 C-Spule} an der Stelle des DNP Polarisator (Abbildung 3Ab), die mit der NMR-Spektrometer. In dieser besonderen Situation führen die NMR-Spektrometer Signal Verriegelungs nicht. Wenn Festkörper-Messungen durchgeführt werden, um zu verhindern signifikante Störungen der Polarisation, sollte die Zeitverzögerung zwischen Akquisitionen lang genug sein, etwa mehr als 0,5 T _DNP.

Die Solid-State-Erweiterung ist definiert als woher wird das hyperpolarisierte Signal (in Schritt 3.3 erhalten) und ist die Festkörpersignal (4A) (im thermischen Gleichgewicht bei gepumpt Temperatur von flüssigem Helium in Schritt 3.2 erhalten). Dieser Parameter ddefiniert den maximalen Polarisation für NMR-Experimente zur Verfügung, vor unvermeidlichen Verluste während der Übertragung des hyperpolarisierten Lösung. Die Messung wird mit einem einfachen Puls-acquire Reihenfolge ausgeführt, um eine nicht-abgeglichenen geringen Kippwinkel Puls verwenden. Pulse Kalibrierung wird für Festkörpermessungen häufig übersprungen.

Eine analoge Vorgehensweise kann das hyperpolarisierte Signalverstärkung in den flüssigen Zustand zu bestimmen. In diesem Fall wird die in dem Spektrometerrohr platziert Probe vor der Injektion (Schritt 6.2) besteht aus 500 & mgr; l von D ₂ O. Nach dem Auflösen und Injektion, gibt es zwei wichtige Parameter zu überwachen. Das erste ist das hyperpolarisierte Enhancement im NMR-Spektrometer Ort, (4B), wobei ist das Signal direkt nach dem Einspritzen des hyper polarisiert Lösung (erhalten in Schritt 7.1) und ist die thermische Polarisationssignal (im Schritt 7.2 erhalten). Die zweite ist die longitudinale Relaxationszeit, T ₁ (4B, Einschub), verbunden mit dem Substrat und jede Stoffwechselprodukt (erhalten durch exponentielle Anpassung Signale, erhalten in Schritt 7.1). Diese beiden Parameter definieren die minimale Substratkonzentration erforderlich, um eine ausreichende Signal-Rausch-Verhältnis (SNR) und der verfügbaren Zeitfenster zur Messung der metabolischen Umwandlungen zu erhalten. Das Verhältnis zwischen Festkörper Polarisation und liquidstate Polarisation gibt bei der hyperpolarisierten Lösung Übertragung einer Schätzung der Polarisationsverluste aufgrund Entspannung. Ein Wertation12 "src =" / files / ftp_upload / 53548 / 53548equation12.jpg "width =" 80 "/> sollten in Abwesenheit der Entspannung Verluste beobachtet werden.

Protocol

HINWEIS: Alle Analysedaten wurde kommerzielle Software durchgeführt werden.

1. Bereiten Sie die polarisierende Lösung

1. Bereiten 2 ml einer 1,12 M ¹³ C-markierten Natriumpyruvat (Na ⁺ [CH ₃ -CO- ¹³ COO] ^-, Substrat) Lösung, dotiert mit 33 mM TEMPOL Radikal (4-Hydroxy-2,2,6,6- tetramethylpiperidin-1-oxyl, Polarisationsmittel) ^{4 in} 2: 1 D _{2 O /} d ₆ ethanol für ^{13 C-Beobachtungen.} ACHTUNG: Vorsichtsmaßnahmen bei der Handhabung muss aufgrund der Entflammbarkeit von d ₆ ethanol genommen werden.
2. Stellen Sie sicher, dass die Radikalkonzentration im Hinblick auf die erzielten Polarisation optimal ist.
   1. Ändern Sie leicht die radikale Konzentration der Lösung im Punkt 1.1 (beispielsweise bis 30 mm oder 35 mm).
   2. Bestimmen iterativ die Solid-State-Erweiterung (siehe Schritt 3) und finden die radikale Konzentration, die zur maximalen Verbesserung führt.

2. PolarizatIon

1. Senken Sie die DNP Kryostat-Temperatur durch das Abkühlungsverfahren. Klicken Sie auf die "Abklingzeit" -Taste auf dem Kryostaten Softwareschnittstelle (2D).
2. Sammeln von flüssigem Helium in der DNP Kryostaten durch den Füllvorgang. Klicken Sie auf die "Füllung", um auf den Kryostaten Softwareschnittstelle (2D).
3. Platzieren 300 ul des optimierten Polarisations Lösung aus Schritt 1.1 in den Probenbehälter mit dem DNP Polarisator vorgesehen. Frieren Sie den Probenbehälter mit der Probe im Inneren indem Sie es vorsichtig in einem Bad aus flüssigem Stickstoff getaucht.
4. Beseitigen des flüssigen Stickstoffs, die durch Extraktion der Probenbehälter aus dem Bad aus flüssigem Stickstoff und Drehen der Oberseite nach unten nach dem Gefrieren Prozedur (Schritt 2.3) in dem Probenbehälter vorhanden sein können.
   Hinweis: Dieser Schritt ist von entscheidender Bedeutung, eine gründliche Lösung der Probe zu erhalten (siehe Schritt 5).
5. Legen Sie die Probe in den Kryostaten.
   Hinweis: Dieses Step, bestehend aus den folgenden Unterschritt muß schnell durchgeführt werden (dh in weniger als 10-20 sec), um die Probe vor dem Schmelzen zu verhindern.
   1. Setzen Sie den Probenbehälter in den Probenhalter. Setzen Sie den Probenhalter in der Haupt Kryostaten Einsatz. Legen Sie die Mikrowellen-Wellenleiter in den Probenhalter.
6. Senken Sie die Kryostat-Temperatur durch Starten des 1 K Kühlverfahren. Klicken Sie auf "1K Kühl" -Taste auf dem Kryostaten Softwareschnittstelle (2D).
7. Schalten Sie die Mikrowellenquelle auf und die Probe bestrahlen. Klicken Sie auf 'MW-ON "-Taste auf dem Kryostaten Softwareschnittstelle (2D).

3. Festkörper-NMR-Messungen

1. Ziehen Sie das Koaxialkabel des NMR-Konsole Detektionskanal des Spektrometers Spule durch den Stecker gegen den Uhrzeigersinn rotierenden um 90 ° und ziehen es. Stecken das Koaxialkabel des Detektionskanal zu dem Koaxialverbinder des KryostatenNMR-Spule. Setzen Sie den Stecker des NMR-Konsolenkabel in die Buchse des Kryostaten NMR-Spule, die Aufmerksamkeit auf die Ausrichtung Stift zahlen; Drücken Sie, und um 90 ° drehen den Stecker im Uhrzeigersinn.
2. Messen Sie die NMR thermische Signal in der Festkörper am Standort Kryostaten eine einfache Puls-acquire Sequenz mit unkalibrierten niedrig Flip-Winkelimpulse wiederholt in einem Intervall von T = 5 min verwenden. Nach der Messung der Einrichtung, in der Befehlszeile der Software 'zg' schreiben, und drücken Sie die Tastaturtaste "Enter". Wenden Sie sich an NMR-Spektrometer Bedienungsanleitung für weitere Einzelheiten über Spektrometer Betrieb und Messaufbau.
3. Messen Sie die DNP-verstärkten NMR-Signal. Wiederholen Sie die Schritte von Schritt 3.2 nach dem DNP-Prozess initiiert, wie in Abschnitt 2 beschrieben.
4. Trennen Sie das NMR-Konsole Detektionskanal Koaxialkabel aus dem Kryostaten NMR-Spule durch den Stecker gegen den Uhrzeigersinn rotierenden um 90 ° und ziehen es. Stecken Sie das Koaxialkabel des detection Kanal zu dem Koaxialverbinder des Spektrometers Spule. Setzen Sie den Stecker des NMR-Konsolenkabel in die Buchse des Spektrometers Spule, die Aufmerksamkeit auf die Ausrichtung Stift zahlen; Drücken Sie, und um 90 ° drehen den Stecker im Uhrzeigersinn.

4. Optimieren Sie die Homogenität des Hauptmagneten Field ( "Unterlegbleche ')

1. Platzieren in dem Spektrometer ein Röhrchen mit 500 ul Mischung in früheren Experimenten erzeugt (das heißt, nach Schritt 6.2).
2. Führen NMR-Spektrometer Shim durch die aktuelle Variation in den Trimm-Gradientenspulen für die maximale suchen 'sperren' Signal von Deuterium. Wählen Sie den entsprechenden Trimmspule durch die entsprechende Taste auf der NMR-Konsole schieben.
   1. Drehen Sie den Knopf auf der NMR-Konsole, um die Drehrichtung zu bestimmen, die das Sperrsignal erhöht. Weiter drehen, bis das Signal ein Maximum erreicht. Wählen Sie ein anderes Trimmspule und wiederholen Sie die Maximierung unbis ein lokales Maximum für alle Trimmspulen gefunden wird. Wenden Sie sich an NMR-Spektrometer Bedienungsanleitung für weitere Details. Am Ende, entfernen Sie die Probe zur Verriegelung verwendet.

5. Die Auflösung

1. Legen 5 ml _{D 2 O} in der Auflösung Einsatz Kessel. Unter Druck setzen und den D _{2 O} mittels der Widerstandsdraht erwärmt, bis T ≈ 180-200 ° C erreicht wird. Klicken Sie auf das "Vorbereiten Heater" -Taste auf dem Kryostaten Softwareschnittstelle (2D).
2. Nach Beendigung der Probenpolarisationsverfahren (beispielsweise nach 3 T _DNP), unter Druck der Kryostat etwas über Raumdruck. Klicken Sie auf die "SS-Operations-Taste auf der Kryostat Softwareschnittstelle (2D). Entfernen Sie den Mikrowellenleiter aus der Auflösung Einsatz.
3. Gleiten die Auflösung Einsatz (3B) nach unten in den Probenhalter (3A-c). Die Auflösung Einsatz hat den Boden des Probenhalters zu erreichen und fest eine dichte Verbindung mit dem Probenbehälter zu machen, um gedrückt werden müssen D _{2 O} undicht im Kryostaten zu vermeiden.
4. Drücken Sie die Hardware-Trigger (3C-h) die Auflösung Sequenz zu beginnen, eine vorbestimmte Zeitabfolge von pneumatischen Ventilen Operationen.

6. Injection

1. Vor Auflösung Ort ein 5 mm NMR-Röhrchen, das 500 & mgr; l Probe (zB D _{2 O} für Messung in Schritt 7 oder LDH-Lösung aus Schritt 8 zur enzymatischen Aktivitätsmessungen in Schritt 9), in dem Isozentrum des T 11,74 NMR-Spektrometer (siehe Schritt 4).
2. Kurz nach der Auflösung (Schritt 5), Mischung 500 ul hyperpolarisierten Lösung mit der in dem NMR-Spektrometer in Schritt 6.1 gesetzt Probe.
   1. Manuelle Injektion: sammeln, um die hyperpolarisiertenLösung am Ende einer 2,5 m langen Rohrweiche in einem Becherglas nahe dem NMR-Spektrometer Magnet platziert. Manuell 500 ul hyperpolarisierte Lösung in das Probenröhrchen durch eine maßgeschneiderte Kapillarsystem NMR injizieren.
   2. Automatische Injektion: vor dem Auflösungsprozess, schließen Sie das Übertragungsrohr auf eine automatisierte maßgeschneiderte Einspritzvorrichtung, die die hyperpolarisierte Lösung aus dem Heliumgas für die Übertragung verwendet trennt. Das Gerät liefert automatisch 500 & mgr; l von hyperpolarisiertem Lösung in das Probenröhrchen.

7. Flüssige-NMR-Messung

1. Nach der Auflösung, messen die NMR hyperpolarisierten Signal aus der Probe in das Spektrometer durch eine Reihe von 10 ° Kippwinkel Puls-acquire Sequenzen von 1,5 sec im Abstand des Fortschreitens der Magnetisierung des Substrats (A) und das Produkt (B) zu folgen. Nach der Messung der Einrichtung, in der Befehlszeile der Software 'zg' schreiben und drücken Sie die & #39; Enter 'Tastaturtaste. Wenden Sie sich an NMR-Spektrometer Bedienungsanleitung für weitere Einzelheiten über Spektrometer Betrieb und Messaufbau.
2. Sobald die Magnetisierung vollständig entspannt (dh nach T = 10 _{T 1),} thermisches Signal durch eine Reihe von 90 ° Kippwinkel Pulssequenzen erwerben die NMR messen Abstand von t = 3 T _{1 ≈} 3 min. Nach der Messung der Einrichtung, in der Befehlszeile der Software 'zg' schreiben, und drücken Sie die Tastaturtaste "Enter". Wenden Sie sich an NMR-Spektrometer Bedienungsanleitung für weitere Einzelheiten über Spektrometer Betrieb und Messaufbau.

8. Herstellung von Enzym-haltigen Proben (spezifisch für die Pyruvat-to-Lactat-Transformation)

1. Bereiten Sie die Reaktionspuffer mit folgender Rezeptur: 50 mM reduziertes Nicotinamidadenindinucleotid (NADH), 1 mM Ethylendiamintetraessigsäure (EDTA), 0,1 mM Dithiothreitol (DTT) in 0,1 M Phosphatpuffer, pH =7.0.
2. Bereiten Sie eine Kaninchenmuskel LDH-Lösung 1 U / ml frisch zubereitet in Reaktionspuffer mit 20 ug / ml Rinderserumalbumin, BSA.
3. Mischen Sie 478 ul Reaktionspuffer (Schritt 8.1), 20 & mgr; l _{D 2 O} zu ermöglichen Spektrometer Feldstabilisierung ( "Sperr ') und 2 ul LDH-Lösung (Schritt 7.2).
4. Legen Sie die 500 ul Lösungsvolumen hergestellt in Schritt 8.3 in ein 5 mm NMR-Röhrchen und setzen Sie den Schlauch in die 500-MHz-NMR-Spektrometer.

9. Vollständige enzymatische Reaktionsgeschwindigkeit Messverfahren

1. Bereiten Sie die polarisierende Probe (Schritt 1) ​​und polarisieren sie (Schritt 2).
2. Führen Sie auf dem Spektrometer Shim (Schritt 4) und bereiten die enzymatische Probe (Schritt 8).
3. Führen die Auflösung (Schritt 5) und der Injektion (Schritt 6).
4. Messen einer Reihe von Signalen von der hyperpolarisierten Probe mit 10 ° Kippwinkel Impulse Nahmen Abstand von 1,5 s (Schritt 7). Dieser Schritt ermöglicht das hyperpolarisierte MessSignalabfall und das Signal Anhäufung von Stoffwechselprodukten.

10. Fitting

1. Für jedes Spektrum in Schritt erworben 9.4, identifizieren die Spitzen entsprechend Substrat (A) und Produkt (B) bzw. und integrieren sie (Bestimmung der Fläche der Peaks). Die Spitzen Integrale geben die Kurssignale Magnetisierungszeit (M _{(A, B) (t),} siehe Gleichung 2).
2. Unter Verwendung der Lösung der Gleichung (2) bestimmen den Wert F = (R + _A k _eff ) Aus einem einfachen exponentiellen Anpassung der in Schritt 10.1 integriert Substrat Signals.
3. Mit dem Wert F = _{(R A} + k _eff ) Bestimmt in Schritt 10.2, k _eff und R _B aus einer Anpassung des Produktsignals M _B (t) mit der Funktion bestimmen, durch die Integration der Gleichung (2) erhalten. Wenden Sie sich an repräsentativen Ergebnisse Abschnitt (Enzymatic Aktivität und Stoffwechselmessungen) für Details auf die Reaktion Modellierung, Anpassung und HF-Korrektur.

Representative Results

NMR-Signal gewinnt Auflösung DNP mit
Die DNP-Effekt besteht in der Übertragung des hohen Polarisation der ungepaarten Elektronenspins, typischerweise von stabilen Radikale Moleküle, NMR-aktiven Kernen, unter Mikrowellenbestrahlung der Probe. Die am häufigsten verwendeten freien Radikale sind TAM (OXO63) und TEMPOL. ⁴ Polarisationsverfahren TEMPOL Verwendung kann durch "Kreuzpolarisation" optimiert werden. ²⁵

Die Optimierung der Konzentration des stabilen Rest, um den maximalen Kernpolarisation im festen Zustand zu erhalten, ist entscheidend für den Erfolg des Verfahrens. Die optimale Konzentration wurde gefunden TEMPOL 33 mM in den experimentellen Bedingungen dieser Studie zu sein. Diese Polarisation des gewählten Substrats reicht aus, um dessen enzymatische Umwandlung in Echtzeit folgen.

Das Magnetfeld der Polarizer in Paris Descartes installiert ist B _{& sub0; =} 3,35 T und die Komponenten dieses Systems wurden oben (Figuren 1 - 3) beschrieben. Der Kryostat Design gewährleistet, dass die endgültige Probenposition mit dem Magneten Isozentrum zusammenfällt. Das Magnetfeld der Polarisator war Rampen und unterlegt die supraleitende Shim-Spulen mit nur mit dem Kryostaten an Ort und Stelle. Der letzte Protonenlinienbreite von einem 1 x 0,5 x 0,5 cm Wasserprobe betrug 23 KHz. wir untersuchten und für [1 ¹³ C] Pyruvat. Um dies zu tun, ist es notwendig, zunächst zu prüfen, die ^{13 C-DNP-verstärkte} Signal im festen Zustand in den Polarisator Ort vor der Auflösung (4A). Nach der Auflösung haben wir den [1-13 C] Pyruvat hyperpolarisierten Signal und seine Zerfalls am Spektrometer Ort. Unter Verwendung von 500 & mgr; l von D _{2 O} als Probe in dem NMR-Spektrometer der flüssige Zustand Signal wurde auf einem Test Auflösung gemessen. Dies ermöglichte es uns, die Solid-State-DNP-Verstärkung (4B, Einschub), die Flüssigkeit-NMR-Polarisationsebene (4B) und die Polarisationsverluste während der Übertragung zu bestimmen. Das Verhältnis zwischen den Signalen in Schritt 3.3 gemessen und Schritt 3.2 die Solid-State-Erweiterung definieren, . Das Verhältnis zwischen dem ersten in Schritt gemessenen Signal 7.1 und dem Signal von Schritt 7.2 definiert den flüssigen Zustand hyperpolarisierten Verbesserung, .

Daten aus Schritt 3, Summarized in 4A und 4A (kleines Bild) zeigen, dass die Technik in ¹³ C zu polarisieren erlaubt ^{[1- 13 C]} Pyruvat bis zu = 22 ± 5, entsprechend einer ¹³ C Polarisations = 1,5 ± 0,3%.

Das Polarisationsniveau ist mehr als das Tausendfache der Kohlenstoffwärme Polarisation gemeinsam MRS Bedingungen (zB 11,74 T und 300 K). Daten aus Schritt 7, zusammengefasst in 4B und 4B (kleines Bild), erlauben die Bestimmung der im flüssigen Zustand ^{13 C-Hyperpolarisation} von ^{[1- 13 C]} Pyruvat, = 1 ± 0,2%. Die Verbesserung im festen Zustand für die Pyruvat erhaltene7,1 ist ein Maß für die Relaxationszeitkonstante ausreichend für die Zwecke des Experiments, obwohl höhere Verbesserungen verschiedene Reste mit demonstriert. ⁵ Die Zeitverlaufsdaten aus Schritt passen. Die Pyruvat longitudinale Relaxationszeit in dem Gemisch aus 500 & mgr; l DNP verbesserte Lösung und 500 & mgr; l D _{2 O,} war T _{1 =} 75 ± 5 s nach rf Korrektur (siehe Gleichung (3)).

Die enzymatische Aktivität und Stoffwechselmessungen
Dissolution DNP NMR Nachweis von ¹³ C-markiertes Substrat (A) kann in Echtzeit enzymatische Umwandlung Dynamik und beobachten die Bildung von Produkt (B) zu folgen, verwendet werden:

Unmittelbar nach der Injektion von hyperpolarisierten Substrat (A),das Signal des Produkts (B) ist null. Dann beginnt der enzymatischen Umsetzung (1) (B) zu erzeugen. Die Magnetisierung ^{der 13} C-Kerne wird durch die unterschiedliche chemische Verschiebungen und die chemische Veränderung der Moleküle beeinflußt. Dennoch kann die neue Umgebung zu verschiedenen Längsrelaxation Raten führen für die ¹³ C in B. Der Kurs Signal Zeit-Produkt kann qualitativ in drei Schritte unterteilt werden: am Anfang, die enzymatische Umwandlung A in B Umwandlung eine Erhöhung der B-Signal erzeugt; nach einer gewissen Zeit, abhängig von den Versuchsbedingungen, wobei der Rest die Magnetisierungsverluste durch Entspannung, diesen Anstieg und das Signal B ein Maximum erreicht; schließlich, bei längeren Zeiten, zerfällt das Signal B aufgrund Längsrelaxation. In der Hypothese der Enzymsättigung, zu vernachlässigen Rückumwandlung unter Berücksichtigung magnetische Relaxation der Magnetisierung der beiden Molekülarten (A und B) während der enzymatischen Umwandlung kann durch ein pa beschriebenPLED Differentialgleichungssystem: ²²

wobei M _{(A, B) (t)} Magnetisierungen molekularer Spezies A und B sind jeweils k _{eff die effektive} Umwandlungsgeschwindigkeitskonstante für die Signalübertragung durch die enzymatische Reaktion und R _{(A, B)} sind die scheinbaren Längsrelaxationszeit Geschwindigkeitskonstanten der beobachteten Kerne in der molekularen Spezies A und B jeweils R _{(A, B) entfallen} sowohl die reinen Längsmagnetisierung Entspannung und die Wirkung von HF-Pulsen.:

wobei T _{1, (A, B)} ist die LongitudinalrelaxationszeitZeitkonstante des Kerns in der lokalen molekularen Umgebung von molekularen Spezies A bzw. B. θ und τ sind die rf Kippwinkel und die Verzögerung zwischen zwei Signalnahmen, respectively.

In dieser Studie Substrat A und Produkt B waren [1- ¹³ C] Pyruvat und [1- ¹³ C] Lactat, bzw., und war das Ziel [1- ¹³ C] Laktatproduktion von LDH unter Bedingungen zu messen, wo kein (isotopisch Lactat unmarkiert) war in der Lösung zu Beginn des Experiments. Die Messung besteht in einer Reihe von ¹³ C-Spektren mit einer einfachen pulseacquire Sequenz aufgezeichnet bei T = 21 ° C. Ein kalibrierter 10 ° Kippwinkel Impuls wurde für die sequentielle Anregung (Schritt 9) verwendet. Die Verzögerung zwischen zwei aufeinanderfolgenden Impulsen war τ = 1,5 sek. Die NMR-Erfassungssequenz wurde einige zehn Sekunden vor dem hyperpolarisierten Solut begonnenIonen-Injektion. Die Pyruvat Substratkonzentration in dem Probenröhrchen nach der Injektion war 25-35 mM. In Schritt 10 der Lactat zu Pyruvat Umwandlungsgeschwindigkeit in einem LDH-Konzentration von 10 ^-3 U / ml gemessen. Das aufgezeichnete Signal von Laktat und Pyruvat passen gut in das Modell in Gleichung (2) (gestrichelte Linie in Abbildung 5) und ergeben k _eff = 0,9 ± 0,1 x ^{10 -3 s -1} (Abbildung 5). Dieser Wert stimmt mit der Anfangsreaktionsgeschwindigkeit durch das Verhältnis [Lac] / [Pyr] zum Zeitpunkt 0 sec (Abbildung 5, Einschub).

Abbildung 1. Schematische Darstellung der Versuchsanordnung. Der Polarisator (links) besteht aus einem Mikrowellenhohlraum (c) innerhalb eines Kryostaten (d) entfernt angeordnet in einem Breit Bohrung 3,35 T supraleitenden Magneten. Eine maßgeschneiderte NMR-Spule (b) umgebende ter Probe (a) zur Überwachung der Kernspinpolarisation in situ verwendet. Das Helium Badtemperatur wird auf 1,12 ± 0,03 K gehalten, während die Probe bei _{der Mw} = 94 GHz Mikrowellenfrequenz ν bestrahlt wird. Das System ermöglicht die NMR-Messung auf der Festkörperprobe während der Polarisation durchgeführt werden. Das polarisierte Probe in überhitztem Wasser gelöst und mit Druckheliumgas durch die Transferleitung in das Probenröhrchen zuvor innerhalb eines benachbarten NMR-Spektrometer platziert (rechts) gedrückt. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 2. Kryostat und Vakuumanlagenschemata. (A) Isolierung Kryostaten Dewar; (B) Schrei ostat Haupteinsatz; (C) Vakuumsystem-Verbindungen; (D) Screenshot von Management-Software-Schnittstelle mit Tasten verwendet, um bestimmte Vorgänge in Schritt 2 und Schritt 5 des Protokolls Abschnitt beschrieben durchzuführen. Bitte hier klicken, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 3. Probenhandhabung und Auflösung. (A) Probenhandhabung Einsätze; (B) Auflösung Einsatz; (C) in der elektro-pneumatischen Anschlüsse der Auflösung Einsatz. Bitte hier klicken, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

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Abbildung 4. Festkörper- Polarisation Aufbau und hyperpolarisierte Signalabfall. Dissolution DNP-Signale. (A) Festkörper-NMR Aufbau der Polarisation Signal einer 1,12 M Natrium ^{[1- 13 C]} Pyruvat-Lösung während einer DNP Polarisation (Kreuze, ausgestattet mit einer Exponentialfunktion S (t) = A · exp (-t / T _b) + B der Zeitkonstante T _b = 270 sec) und Entspannung (Kreise, S (t) = A · exp (t / T _b) + B, T ^ss _{1 =} 840 sec); (A, Einschub) Vergleich zwischen DNPenhanced und thermisch polarisiert (skaliert bis 10 mal) Magnetisierung Signale im festen Zustand (ε _{ss =} 22 ± 5, entsprechend einer Solid-State-Polarisation P _SS = 1,5 ± 0,3%); (B) Vergleich zwischen dem ersten Spektrum aufgenommen nach der Auflösung und der Averaged Spektrum (skaliert bis 100 Mal) aus dem thermisch polarisiert ¹³ C erhalten Spins bei RT 1024 Transienten mit (ε = 1.000 ± 200). Der Lösevorgang dauerte 3,3 sec und die automatische Injektion etwa 2 sec mit einer geschätzten Signalverlust von 40%. Für die Versuche durch manuelle Injektion Übertragen der Probe durchgeführt, zusätzliche Verluste aufgrund der längeren Einspritzverzögerungs wurden auf 30% geschätzt; (B, Einschub) hyperpolarisierte Signalabfall von Pyruvat nach Auflösung in Abwesenheit von LDH _{(T 1} = 75 ± 5 sec). Bitte hier klicken, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 5. LDH-Aktivität und Krebszellstoffwechsel Ergebnisse. Aufbau von ^{[1- 13 C]} Laktat Signal aufgrund enzymatic Umsetzung bei einer LDH-Konzentration von 10 ^-3 U / ml von Signalabfall aufgrund Längsrelaxation ^{von 13} C-Magnetisierung gefolgt. Die rote Linie zeigt die Passform mit dem Modell in Gleichung (2), die die Auswirkungen der Entspannung und enzymatische Umwandlung. (Einschub) Verhältnis zwischen ^{[1- 13 C]} Laktat und [1 ^-13 C] Pyruvat-Konzentration bei einer Extrapolation der Reaktionsgeschwindigkeit zum Zeitpunkt t = 0 (rote Linie). Bitte hier klicken, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Discussion

Die kritischen Punkte der Auflösung DNP-NMR-Experiment sind: (i) das Niveau der Polarisation für das Substrat erreicht, das die niedrigste Produktkonzentration, die für Experimente sowie die Anzahl der Signalnahmen bestimmt, die durchgeführt werden können, und (ii) die Lebensdauern der Magnetisierung auf die Dauer der Übertragung zwischen der Polarisation und der Detektionsorte und auf die Geschwindigkeit der Substrat Transformation verglichen. Das Einspritzsystem der DNP-Setup Auflösung hierin ermöglicht in weniger als 4.3 sec für Probentransfer beschrieben. Obwohl die Übertragung nicht so schnell wie in der Methode von S. Bowen und C. ^{Hilty, 26} Polarisationsverluste für die Pyruvat vorgeschlagen wurde, waren in dem niedrigen Bereich aufgrund der moderaten Längsrelaxationszeit beschränkt. ^{[1- 13 C]} Pyruvat, mit seiner langen Carbonkern _{T 1,} ermöglicht bei Konzentrationen von nur ^{10 -3} U / ml des Flusses durch LDH messen.

Das hohes Signal-zu-Rausch-Verhältnis erhalten Auflösung unter Verwendung von DNP legt nahe, dass eine auf noch niedrigere empfindlich sein könnte [1- ¹³ C] Pyruvat-Konzentrationen und unteren enzymatische Konversionsraten. Die erzielte Polarisationsgrad ergibt mehr als 200 Versuche mit einem signifikanten Signal-Rausch-Verhältnis in der Flüssigkeit-NMR-Spektrometer erworben sein, um einen geringen Kippwinkel α = 10 ° verwendet wird. Dies lässt Raum für Optimierung sowohl hinsichtlich der Wiederholungen und Kippwinkel. Für den Aufbau der Polarisation in der Festkörper einige Moleküle polarisieren auch mit einigen Polarisationsmittel (TEMPO, OXO63) ^{4 und} andere nicht, aus Gründen, die noch nicht vollständig verstanden sind. Experimentelle Versuche sind der einzige Weg, um zu bestimmen, ob der Polarisationsschritt erfolgreich ist. Um die Polarisationsebene zu verbessern, kann man den Einsatz verschiedener Radikalspezies ^{4 und} die Anwendung verschiedener Techniken unter Berufung auf "Kreuzpolarisation" erkunden. ²⁵

ontent "> Eine weitere Optimierung des radikalen und Substratkonzentrationen sowie der Lösungsmittelzusammensetzung in dem DNP Probe versucht werden Polarisation zu verbessern. Die Technik ist beschränkt auf Moleküle, in denen ein Kern oder eine Gruppe von Kernen der Lage Polarisation zu erhalten nach der Auflösung sein kann identifiziert. Polarisation aufrechterhalten entweder als ein Ungleichgewicht zwischen Mono-Atom-Eigenzustände in hohen Magnetfeldern oder in der Form von LLS delokalisiert auf zwei oder mehrere gekoppelte Kerne werden kann. Für die erste Option, hat die Sonde Kern von anderen Kernen mit hoher fern zu sein gyromagnetischen Verhältnisse, wie Protonen. Wenn eine solche Position nicht gefunden wird natürlich, Anreicherung in NMR-aktiven Kernen an isolierten Stellen im Molekül oder den Austausch von Protonen in der Nähe der aktiven Kerne durch Deuteronen, die magnetische Dipol Stärke zu senken, sind notwendig, . um LLS, eine theoretische Analyse der magnetischen Kopplungen innerhalb von Gruppen von Kernen erhalten aus ^27,28 um getragen werden optimale Mittel zu finden, um support Polarisation. Diese Strategie hat sich bewährt in kleine Moleküle wie ²⁹ Aminosäuren und können in Stoffwechselzyklen von Interesse beteiligt an andere Moleküle verwendet werden. Um besser zu bewahren Magnetisierung während des Experiments, verspricht die Kombination von Auflösung DNP mit Anregung von LLS die Messung Zeitspanne für andere enzymatische Reaktionen zu verlängern. ²⁰

Die DNP-NMR-Experiment hier beschrieben wird für die Messung der Pyruvat-Metabolismus in Krebszellen angepasst. ⁶ die Echtzeit-Messung der enzymatischen Aktivität von DNP erhöhte NMR Auflösung kann in der durch DNP-MRT, bereits verwendet gegenwärtigen Bemühungen in der Krebsdiagnose helfen Klinik. ¹² Die molekulare Spezifität von DNP-NMR verbesserte macht eine Methode der Wahl, um es für zwischen molekularen Zielen und den Produkten ihrer Transformationen unterscheiden. Zukünftige Verbesserungen werden auf die Beurteilung der anderen molekularen Tracern konzentrieren für Stoffwechsel ^{30-Transformationen}

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
DNP polarizer	Vanderklink s.a.r.l (Switzerland)	///	Cryostat and electronic equipment for sample polarization
Vacuum system components	Edwards vacuum (France)	Various	- turbomolecular pumping setup - membrane pumping setup - high capacity roots pumping system - vacuum fittings and components
DNP 3.35T Magnet	Bruker (France)
500 MHz NMR Spectrometer	Bruker (France)
Origin 8.0	OriginLab (US)		Data analysis software
Chemicals
SODIUM PYRUVATE-1-13C, 99 ATOM % 13C	Sigma Aldrich (France)	490709
ETHANOL-D6, ANHYDROUS, 99.5 ATOM % D	Sigma Aldrich (France)	186414
4-Hydroxy-TEMPO 97%	Sigma Aldrich (France)	176141
Deuterium oxide	Sigma Aldrich (France)	151882
reduced nicotinamide adenine dinucleotide (NADH)	Sigma Aldrich (France)
ethylene-diaminetetraacetic acid (EDTA)	Sigma Aldrich (France)
dithiothreitol (DTT)	Sigma Aldrich (France)
phosphate buffer, pH = 7.0	Sigma Aldrich (France)
LDH enzyme in	Sigma Aldrich (France)	L-2500
bovine serum albumin, BSA	Sigma Aldrich (France)