Immunology and Infection

使用IL-1β启动子驱动的红色荧光蛋白记者小鼠中性粒细胞引发的活体成像

Published: June 22, 2016 doi: 10.3791/54070

Yi Yao^1,2, Yun Liu^1,3, Akira Takashima¹

¹Department of Medical Microbiology and Immunology, University of Toledo College of Medicine and Life Sciences, ²Department of Internal Medicine, Yale University School of Medicine, ³Department of Pathophysiology, Southern Medical University (China)

Abstract

中性粒细胞是人体血液循环中最丰富的白细胞，并迅速募集到炎症部位。底漆是增强中性粒细胞的吞噬功能的重要事件。虽然大量研究纷纷亮相感染和损伤过程中存在的和中性粒细胞引发的重要性，意味着可视化这一进程的体内已经不可用。所提供的协议使嗜中性粒细胞在活的动物引发的动态过程的监测通过组合三种方法：1）红色荧光蛋白报告信号-作为吸2） 在体内嗜中性粒细胞标记的量度-通过荧光标记的抗淋巴细胞抗原的注射来实现6G（Ly6G）单克隆抗体（mAb）和3）活体共焦成像。几个关键步骤都参与了这一协议：恶唑酮诱导小鼠耳部皮肤炎症，动物适当镇静，抗Ly6G单抗重复注射，和prev成像过程中的焦点漂移ention。虽然有一些限制已经观察到，如连续成像时间（〜8小时）在一只小鼠的限制和异硫氰酸荧光素 - 葡聚糖从血管中的炎症状态的泄漏，该协议提供用于活体成像的基本框架底漆嗜中性粒细胞的行为和功能，可以很容易地扩展到在小鼠炎症模型其他免疫细胞的检查。

Introduction

中性粒细胞在流通中最丰富的，短命的白细胞。他们迅速招募到感染或损伤部位，在那里他们通过与含有抗菌肽和蛋白酶¹粒沿着活性氧和氮中间体的发布作为专业的吞噬细胞。在他们的招聘，中性粒细胞“引”的各种试剂，包括微生物产物，趋化因子和炎症细胞因子，从而在抵达机场时明显增强吞噬细胞的功能在炎症²的网站。嗜中性粒细胞引发的机制已被广泛研究的体外 ^3,4;然而， 在体内的过程的动态监控一直不可能日期。

最近，活体成像已成为用于可视化和量化生物过程的细胞动力学在活生物体的重要技术。 IntraviTAL成像可通过常规的单光子激发显微术来进行（ 例如，共焦）或多光子显微镜接近^5。随着时间的推移，大量的改进已在该技术实现更高的图像分辨率，改善成像深度达到，组织光损伤和增强防抖^6,7下降。鉴于其独特的，以使随着时间的推移细胞迁移和互动的动态可视化能力，活体显微镜已广泛应用于免疫学⁸应用研究的不同领域。活体成像使免疫学家更好地理解和背景情况在活的动物模型在细胞和分子水平上既免疫应答。

在转基因的最新进展以及敲入报告小鼠已用于监测中性粒细胞的动力学行为活体动物提供了有用的工具。溶菌酶M助驱动的增强型绿色荧光蛋白敲入小鼠已被广泛使用在各种炎性过程，包括外渗，细菌感染，和无菌炎症^9-15来表征嗜中性粒细胞，单核细胞和巨噬细胞的运动性。此外，表达细胞质荧光共振能量转移的生物传感器的转基因小鼠已在发炎肠¹⁶内研究嗜中性粒细胞细胞外调节的有丝分裂原激酶和蛋白激酶A的活动使用。以高特异性的鼠模型用于荧光表达在嗜中性粒细胞是追赶敲入小鼠，其产生Cre重组以及荧光蛋白质tdTomato，其本身被耦合到淋巴细胞抗原^{6G（Ly6G）17}的表达。从这个模型Ly6G缺陷嗜中性粒细胞的可视化已经证明，这些细胞中的各种无菌或感染体内炎症上下文发挥正常功能。表达红色荧光蛋白荧光p的转基因小鼠认为包括嗜中性粒细胞，炎性单核细胞，和活化的巨噬细胞 - - interleuikin-1β（IL-1β）启动子（pIL1-DsRed的）已被用于可视化的IL-1β产生细胞的能动行为鼠标的控制下rotein基因新兴在发炎的皮肤^18。

体内标记可作为跟踪的中性粒细胞的细胞和分子的行为在炎症组织的另一种方法。低剂量荧光的静脉注射标记的抗Gr-1单克隆抗体（mAb），GR-1 ⁺嗜中性粒细胞的募集级联后已被显现在小鼠皮肤损伤感染金黄色葡萄球菌 ^19。体内含有链霉抗偶联物的施用缀705纳米的量子点和生物素化抗Ly6G单抗特异性标记循环嗜中性粒细胞^20。此外，这样的共轭物成neutroph的内吞IL囊泡允许在嗜中性粒细胞迁移进入间质高速囊泡运输的跟踪。体内用抗P-选择荧光标记的抗体的糖蛋白配体-1（PSGL-1），L-选择素（CD62L），整联αM标记（CD11b的）和趋化因子（CXC母题）受体2（CXCR2）在TNFα诱发炎症模式在早期的炎症已经²¹阐明在发挥作用的调节机制。偏振中性粒凸出PSGL-1富含腹足上活化的血小板与CD62L本交互，导致CD11b和CXCR2，驱动中性粒细胞迁移和引发炎症受体的再分配。

IL-1β是在致敏嗜中性粒细胞²²升高签名基因之一。在pIL1-DsRed的报告小鼠，红色荧光蛋白的荧光信号（即，IL-1β启动子活化）与IL-1β的mRNA表达和IL-1β蛋白质的生产正相关。<SUP> 18为了监测中性粒涂刷的过程中，一个活体显微镜方法的开发涉及在pIL1-DsRed的小鼠模型皮肤炎症的诱导恶唑酮（OX）以下的中性粒细胞的荧光缀合的抗Ly6G单抗体内标记。通过这种模式，能够研究在各种疾病和病症的动物模型中引发的中性粒细胞的行为和功能。

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Protocol

所有的动物实验都按照健康指导全国学院进行，由托莱多大学的机构动物护理和使用委员会批准。

1. pIL1-红色荧光蛋白的小鼠的表型

注：后代是通过育种杂pIL1-DsRed的小鼠与野生型（WT）C57BL6小鼠产生。三，四周龄的幼崽被认为是准备表型。小鼠颌下腺出血如下稍作修改²³既定的协议。

从乳鼠的全血白细胞分离
1. 加入20μl肝素的每个1.5 ml离心管。
2. 获得从笼子1小狗。记录小狗的识别标签。它不需要从颌下静脉麻醉采血前幼仔。
3. 颈部颈背举行的小狗和皮尔斯在次颌下静脉使用5mm柳叶刀ê颊囊。适当用力创建一个小的穿刺，让血滴从切入点散发。使用新的针头为每小狗。
4. 收集3 - 每个小狗血5滴在含有肝素的离心管中。清洁穿刺部位和施加压力，以促进止血。
5. 放小狗在新笼子和笼返回到动物设施之前观察30分钟。
6. 从已知的表型作为阳性和阴性对照的成年小鼠收集血液。
7. 加入500微升的红血细胞裂解缓冲液中向每个管中，涡流管，并孵育5 - 在冰上10分钟。
8. 慢慢加入400 - 500微升的胎牛血清（FBS），在每个管中的细胞悬浮液的下方。一个明显的界面可以在上层的细胞悬浮液和FBS的下层之间被观察到。
9. 帽管和离心样品在1500×g下5分钟。
10. 重复步骤1.1.7 - 1.1.9皮草疗法去除红细胞。如果裂解足以在第一时间不要重复。粒料应该很难离心后辨别。
脂多糖（LPS）刺激与文化
1. 悬浮细胞在200微升完全罗斯威尔公园纪念研究所（RPMI）1640培养基。
2. 细胞悬液转移至血细胞计数管的流动。
3. 使脂多糖通过用990微升的完全RPMI 1640培养基中的混合10微升的LPS原液（1毫克/毫升）的工作溶液。
4. 加入20μl的工作溶液到200μl的细胞悬浮液的10微克/毫升的LPS。
5. 帽管松散孵育样品在37℃，5％的CO ₂ 4小时。
流式细胞分析
1. 打开流式细胞仪数据采集程序。设置为样本采集前采集模板。
2. 单击工具调色板上的点图工具。绘制FOrward散射（FSC）与侧散射（SSC）的情节。设置FSC和SSC电压参数的线性度。
3. 选择的FSC和SSC的通过流式细胞仪所允许的最低阈值。分别适用阈值200和50 FSC和SSC。
4. 内的FSC VS SSC情节，画出一个门G1，其包括单核细胞，粒细胞，和树突细胞，以及不包括碎屑，红血细胞和淋巴细胞。
5. 单击工具选项板直方图工具。绘制FL2（红色荧光通道）的直方图。使用阴性对照样品设置FL2信号的基线和阳性对照样品来绘制门包括所有的红色荧光蛋白阳性事件。
6. 在流式细胞仪的射流控制面板，设置在流体模式到“运行”和流速为“HI”（约60微升/分钟）。获得每个样品10000个事件。
7. 通过从G1栅极测量DsRed的阳性细胞的百分比确定小狗表型。

麻醉由含有100毫克/千克氯胺酮，10mg / kg的甲苯噻嗪，和1毫克/千克乙酰丙嗪麻醉鸡尾酒的腹膜内（IP）注射小鼠。充分麻醉小鼠没有表现出后肢撤回到脚趾捏。
申请脱毛霜鼠标两耳的背侧面。等待30秒到1分钟。擦拭耳表面用水润湿的棉花和允许空气干燥。
使用千分尺测量耳的厚度，并在一个单独的笼子代替鼠标。观察到从麻醉恢复（〜15 - 30分钟）。要解决的脱毛产品引起的皮肤炎症，让前进一步的实验进行鼠标休息3天。
由16.7毫克OX溶解于1ml丙酮中，混合750微升的OX /丙酮溶液与250微升的橄榄油制备1.25％（重量/体积）OX。通过混合750微升丙酮与250制备载体溶液＃181;橄榄油中的L.
由麻醉鸡尾酒（2.1）的腹腔注射重新麻醉鼠标。测量耳朵厚度之前。
应用12.5微升1.25％OX的到右耳的两侧。申请12.5微升的丙酮/橄榄油载体溶液到左耳的每一侧。
保持鼠标从笼子里的队友分开直到完全恢复通过其他老鼠，防止侮辱它的耳朵，然后在其原来的笼子代替鼠标，返回畜舍设施。
注：脱毛可能会导致轻微的皮肤炎症的耳朵厚度的变化之后。这轻微的炎症会3天后决心在正常耳厚度证实。 24小时局部应用后，OX-治疗耳显示显著（P <0.01）相比消肿载体溶液单独处理的耳朵。

在pIL1-红色荧光蛋白的小鼠中性粒细胞3.标签

注：在低剂量˚F嗜中性粒细胞的体内标记luorescence，结合具体的中性粒细胞单克隆抗体遵循最近开发协议^19。眼眶后注射根据具有一些修改²⁴已建立的方案进行。

通过在90微升磷酸盐缓冲盐水（PBS）的稀释10微升的0.5毫克/毫升的Alexa Fluor 647缀合的抗Ly6G单抗（克隆1A8）制备抗Ly6G单抗工作溶液。
转移100μl的抗Ly6G单抗工作液（50微克/毫升）的与28号针头的U-100胰岛素注射器。
麻醉由先前描述的麻醉剂鸡尾酒（2.1）腹腔注射成年pIL1-红色荧光蛋白鼠标。放置鼠标麻醉腹部倒在一个干净的工作板。
适用于温和的下行压力对皮肤的背部和腹部的一个鼠标眼睛凸出部分从插座眼球。
小心地将针，斜面向下，以大约30°的角度在内侧眼角到眼窝窦。
注：操作员可以感到有压力，渗透和减轻阻力，一旦针头插入到窦。
慢慢地，顺利地注入100微升抗Ly6G单抗工作液（5微克单抗/鼠标/注射）到鼠标。迅速取出针。出血有少量表明成功注入。
立即申请1.25％OX和车辆解决方案到左，右鼠标的耳朵。
8小时后，管理100微升通过眶后注入新鲜烹制的抗Ly6G单抗工作液（5微克单抗/鼠标/注射）到同一个鼠标。
为了形象化血管，立即成像前，辖100微升30毫克/毫升异硫氰酸荧光素（FITC）标记通过眼眶注射右旋糖酐（150 kDa的）。

4.中性粒细胞引发的活体成像在弼1 - 红色荧光蛋白的小鼠

麻醉鼠标麻醉鸡尾酒（2.1）的腹腔注射。0;适用兽医药膏鼠标的眼睛，以防止同时在麻醉状态下进行成像干燥。
1. 通过稀释500μl的原始麻醉鸡尾酒与等体积的PBS制备1毫升半剂量麻醉剂鸡尾酒。
2. 半剂量的麻醉剂鸡尾酒转移至1毫升注射器与蝴蝶27号针头。
3. 将蝴蝶的针入小鼠腹腔腹部，并用胶带固定蝴蝶翅膀腹部。
放置一个玻璃盖玻片在成像阶段的中心。胶带将盖玻片的边缘以保持它在适当位置。
放置的PBS一滴的小鼠耳的腹面以及上盖玻片。
位置麻醉鼠标的耳朵在盖玻片。安装耳的末端，背侧向下，由夹在盖玻片与载玻片，通过胶带代替也保持之间的耳朵。
打开多激光荧光共聚焦显微镜和所有相关的电子商务quipment。关掉房间的灯，以减少环境光曝光。
打开图像采集软件。为检测选择了染料列表菜单荧光染料的激光通道。
通过从血管和红色信号从通过目镜DsRed的⁺细胞绿色信号的观测调整焦距发炎耳朵皮肤上。
与2微秒/像素的扫描速度和512×512像素的分辨率执行快速扫描。选择在实时视图菜单中每个通道伪。调整对焦旋钮设置结束，开始扫描的位置。
8微秒/像素和800×800或1024×1,024像素的分辨率 - 与4的扫描速度慢进行扫描。调整高电压，增益，并且在每个单独的信道偏移，最大化的信号的强度，同时避免饱和（红色像素）。应只在每个信道的几个红色像素。
通过扫描次创建三维图像集Ë耳部皮肤角质层表面开始，以X，Y，317微米×317微米×30微米（40倍物镜）z的卷向下推进，635微米×635微米×30微米（20X物镜），或1270微米× 1270微米×50在2微米的Z-步骤微米（10X的目标）。
注：角质层是表皮的最外层，并且可以容易地本地化是根据它的强的自体荧光信号。
在时间推移成像实验中，记录的三维图像，每2或4分钟长达8小时。
通过蝴蝶针10微升半剂量麻醉鸡尾酒 - 间断，小鼠开始从麻醉中恢复，悉基于抽搐晶须观测，施用5。
注：请谨慎麻醉剂量 - 过量可能会导致鼠标死亡。可替代地，在一个罐子吸入麻醉可以应用于鼠标短期麻醉和鼻锥可用于长期成像。
从舞台中删除麻醉鼠标时成像完成。取下胶带和鼠标的腹部取出蝴蝶针。返回鼠标在动物壳体设施单独笼子。
注： - 3小时对于短期成像（<1小时），小鼠完全从麻醉迅速1中恢复。对于长期成像（〜8小时），将小鼠恢复缓慢，12的一个典型的恢复期间 - 16小时。因此，口服水行政至少几次复苏期间，以防止严重脱水建议。
过程成像数据集，跟踪单个细胞，生成洄游路径，并使用图像分析软件²⁵计算细胞迁移的方向性和速度。

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Representative Results

pIL1-DsRed的小鼠的筛选是根据通过使用流式细胞仪的外周血白细胞产生的表型DsRed的荧光信号进行。 LPS刺激已知诱导IL-1β生产的骨髓细胞包括中性粒细胞，单核细胞和树突状细胞^26-28。因此，分离的白细胞培养用LPS用于向流式细胞仪分析前4小时。接着，门被设置在这个门控群体测量循环基于小区大小（FSC）和内部的复杂性（SSC）（ 图^1A）29，和DsRed的信号骨髓细胞。来自WT小鼠的循环髓样细胞微创表达红色荧光蛋白，而从pIL1-DsRed的小鼠相同的细胞表达区分DsRed的信号（ 图1B）。通过此表型方法鉴定的pIL1-DsRed的小鼠用于以后的实验。应当指出的是，完整的表型过程只需要几小时 - 比传统的基因分型方法包括组织收获，酶消化，DNA提取，PCR和电泳短得多。

IL-1β的启动子活化最近被确定为嗜中性粒细胞的标志物吸^22。因此，嗜中性粒细胞引发的动态过程可以可视化，并在使用pIL1-DsRed的小鼠活体动物评估。以诱导皮肤炎症，皮肤增感剂OX局部施于pIL1-DsRed的小鼠和媒介物单独是在相同的动物的左耳施加的右耳。标记的中性粒细胞在活的动物，最近开发的协议通过施用少量荧光标记的抗Ly6G mAb的立即前后OX应用8小时进行。要找到血管，FITC葡聚糖注射前立即成像。

在后OX应用程序，24小时大量DsRed的为⁺ / Ly6G ⁺细胞在血管外空间（ 图2A）被发现并代表致敏嗜中性粒细胞。少数红色荧光蛋白/ Ly6G ⁺细胞也发现，其中最有可能代表休息中性粒细胞。此外，红色荧光蛋白⁺ / Ly6G的一个小口^-观察细胞，其可以包括炎性单核细胞和活化的巨噬细胞。在40分钟的时间推移视频，Ly6G ⁺中性粒细胞的出现皮肤炎症病灶内表现出典型的变形虫般的爬行运动（ 补充电影1）。细胞迁移性的路径跟踪比较DsRed的⁺ / Ly6G ⁺和DsRed的运动型的行为^- / Ly6G ⁺嗜中性粒细胞群体（ 图2B）。轨道曲线图分析表明，这两种嗜中性粒细胞群体显示“随机”迁移一次外空间已经输入（ 图2C）。有趣的是，DsRed的⁺ / Ly6G ⁺嗜中性粒细胞显示出显著较高的速度与DsRed的比较^- / Ly6G ⁺对应（ 图2D）。这表明嗜中性粒细胞引发和加速运动在炎症病变之间的关联。

为了监测中性粒细胞吸，一系列的时间推移录像的时间被记录在以下OX治疗（ 补充电影2 - 4）不同的时间开始。红色荧光蛋白^-后OX应用12小时，它们的数量仍然相对较低之后（ 图2E，补充影3,4） - / Ly6G ⁺细胞，静息嗜中性粒细胞，在血管外空间变得可检测的早8。与此相反，红色荧光蛋白⁺ / Ly6G ⁺细胞的数量，所述底漆的嗜中性粒细胞，逐渐在稍后的时间点增加，在14开始-后OX应用16小时。一些红色荧光蛋白图2F，补充电影5）/ Ly6G ⁺细胞逐渐获得募集到血管外空间后，红色荧光蛋白信号。在16 - 20小时，大多数血管外Ly6G ⁺嗜中性粒细胞被认为是基于其DsRed的表达“底漆”。这些观察结果表明中性粒细胞引发的幅度，速度和位置的炎性病变在活的动物出现。

图1：pIL1-红色荧光蛋白的小鼠的表型 （A）流式细胞仪分析了循环论证的基础上FSC和SSC参数骨髓细胞（G1）的人口。 （B）的直方图在FL2通道显示DsRed的⁺细胞从PIL-DsRed的小鼠（红色）的细胞的G1栅极内的百分比或从WT小鼠（蓝色）。数据代表在勒AST三个独立的实验。请点击此处查看该图的放大版本。

图 2： 在炎症性皮损 红色荧光蛋白 ⁺ / Ly6G ⁺ 中性粒细胞 的能动活动的可视化 （A）静态共聚焦显微镜图像在血管外空间，即记录24小时后OX处理呈现三大白细胞群，红色荧光蛋白⁺ / Ly6G ⁺细胞。（星号），红色荧光蛋白^- / Ly6G ⁺细胞（三角形），和DsRed的⁺ / Ly6G ^-细胞（箭头）。棒= 20微米。 DsRed的⁺ / Ly6G ⁺细胞（红）和红色荧光蛋白^- / Ly6G ⁺细胞（蓝色），migrato比较通过共聚焦显微镜录制了40分钟定时影片开始后OX应用程序（ 补充电影1）24小时RY路径（B），轨迹图（C）和速度（D）。 （D）酒吧表明平均流速值。 *** P <0.001。 （E） - DsRed的⁺ / Ly6G ⁺细胞和的数目DsRed的^- / Ly6G ⁺细胞是从一系列后OX应用（ 参考影2至4）在不同时间点记录的时间推移电影计数。所示的数据是从三个连续的图像计算的细胞数/毫米^2（平均值±SD）。 （F）的静态图像，从11记录到14.5小时OX画（ 电影补充5）经过时间推移电影创建。的箭头表示在观察期间获取在血管外空间DsRed的表达一个Ly6G ⁺细胞。栏= 50微米。图像是从许可（2015年版权所有免疫学的美国协会，公司）22参考转载。请点击此处查看该图的放大版本。

。 补充电影1： 在炎症性皮损 红色荧光蛋白 ⁺ 中性粒细胞 的能动行为 （在OX喷漆后24小时）共聚焦显微镜图像显示红色荧光蛋白⁺ / Ly6G ⁺细胞（粉红色）和红色荧光蛋白的活力^- / Ly6G ⁺细胞（蓝色）血管外空间。血管见于绿色。棒= 20微米。该视频是由参考22复制经许可后（2015年版权所有免疫学的美国协会，公司）。请CLICK这里观看这部影片。

。 补充电影2： 在炎症性皮损 红色荧光蛋白 ⁺ 中性粒细胞 的能动行为 （在OX喷漆后4小时）共聚焦显微镜图像显示红色荧光蛋白⁺ / Ly6G ⁺细胞（粉红色）和红色荧光蛋白^-在血管外空间/ Ly6G ⁺细胞（蓝色）。血管见于绿色。自体荧光存在并且与毛囊相连。栏= 100微米。该视频是由经许可（2015年版权所有免疫学的美国协会，公司）22参考转载。请点击此处观看该视频。

补充电影3： 天道酬勤 红色荧光蛋白 ⁺ 中性粒细胞 的能动行为。lammatory皮损（OX在喷漆后8小时）共聚焦显微镜图像显示红色荧光蛋白⁺ / Ly6G ⁺细胞（粉红色）和红色荧光蛋白^-在血管外空间/ Ly6G ⁺细胞（蓝色）。血管见于绿色。自体荧光存在并且与毛囊相连。栏= 100微米。该视频是由经许可（2015年版权所有免疫学的美国协会，公司）22参考转载。请点击此处观看该视频。

补充电影4： 炎性皮损 红色荧光蛋白 ⁺ 中性粒细胞 的能动行为 （11 - OX喷漆后19小时）共聚焦显微镜图像显示红色荧光蛋白⁺ / Ly6G ⁺细胞（粉红色）和红色荧光蛋白^- / Ly6G ⁺细胞（蓝色）中。 extravascular空间。血管见于绿色。自体荧光存在并且与毛囊相连。栏= 100微米。该视频是由经许可（2015年版权所有免疫学的美国协会，公司）22参考转载。请点击此处观看该视频。

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Discussion

本研究的目的是开发一种技术用于监测中性粒涂刷的过程在活的动物，这尚未得到满足由目前可用的技术。为了实现这一目标，三既定方法被执行：1）皮肤炎症的诱导IL-1β的启动子驱动的DsRed的报告小鼠作为涂刷的量度，用低剂量的荧光缀合的抗Ly6G的嗜中性粒细胞的2）体内标记单克隆抗体，以及3）活体共聚焦显微镜成像。这三种方法的组合使炎性皮损致敏中性粒细胞（红色荧光蛋白⁺ / Ly6G ^+）的能动活动的可视化。上了底漆的嗜中性粒细胞的迁移方向和速度是通过迁徙路径跟踪进一步量化。通过记录的一系列时间推移的视频，催芽嗜中性粒细胞的出现的实时动力学用i在炎症部位和采集DsRed的表达的监测ndividual嗜中性粒细胞也在血管外空间中观察到的。因此，中性粒细胞引发的动态过程已成功地显现在活的动物使用这里介绍的技术第一次。

该技术采用的几个关键步骤。首先，皮肤组织是最方便的身体部分用于活体成像。在小鼠耳OX局部应用允许下共聚焦显微镜发炎的皮肤免疫细胞的行为直接可视化。其次，鼠标必须不断这需要麻醉剂注射重复成像过程中镇静。然而，过度镇静可成像过程中导致小鼠死亡。为了避免药物过量，低剂量的麻醉剂（一半或全部剂量的三分之一）的被推荐用于长期成像。第三，荧光缀合的特定的中性粒细胞的mAb必须间歇地注入因鼠中性粒细胞（8-10小时³⁰的半衰期）的寿命短。最后，医生焦点IFT是时间推移成像期间的一个主要问题，这可能是由多种因素，包括温度变化，小鼠的身体运动，耳肿胀随时间，以及从仪器³¹的操作而产生的振动引起的。几种方法已经被开发，以防止漂移，如成像期间镇静的恒定剂量的施用，通过在舞台上在它绑带载玻片，安装环境室，以提供氧气和温暖的镇静固定到位小鼠耳生物体以及通过手动重新聚焦的范围时，必要^32,33。

这是说明这个协议的局限性同样重要。首先，一个缓慢的小鼠恢复 - 长度成像期间8小时后（12 16小时）观察到由于连续镇静，表明该协议可能不适合于这种冗长的实验。另一种方法是按顺序在成像期间使用几种小鼠而非ù只唱之一。第二，循环FITC-葡聚糖的逐渐泄漏成像以上的时间，这可能是由皮肤血管渗透性增加在炎症状态³⁴引起期间观察。因此，血管的可视化显着受损的影像的后期阶段给予流通减少荧光。可替代地，人们可以使用荧光共轭外源凝集素如凝集素B4，因为这些粘附血管内皮细胞³⁵来标记的血管。

除了在皮肤炎症病灶中性粒涂刷过程的可视化，这里所描述的技术也可以在许多其它的实验设置中。在最近开发的成像窗组合，活体显微镜划定致敏嗜中性粒细胞的行为可以在深的组织和器官，包括脑，乳腺，肺和腹部器官^36-39进行评估。此外，规规矩矩可视化其他类型的细胞如单核细胞和巨噬细胞的ING /活化可以用pIL1-DsRed的小鼠体内标记沿通过实现荧光缀合的单克隆抗体具体的感兴趣的细胞类型。两者合计，不仅该技术提供了在活的动物的中性粒细胞的灌注过程的活体成像的基本框架，但它也推出用于研究其它免疫细胞中的各种炎症状态在不同的组织展开的行为和功能的新方法。

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Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Heparin sodium	APP Pharmaceuticals	NDC 63323-540-31
ACK lysing buffer	Lonza	10-548E
Fetal bovine serum	Sigma-Aldrich	F0926
Lipopolysaccharides	Sigma-Aldrich	L4391
Ketamine hydrochloride	Hospira	NDC 0409-2051-05
Xylazine	LLOYD Laboratory	NADA #139-236
Acepromazine	Boehringer Ingelheim	ANADA 200-361
Hair-removal cream	Church & Dwight
Acetone	Fisher Scientific	A16P4
Oxazolone	Sigma-Aldrich	E0753
Alexa Fluor 647 anti-mouse Ly6G antibody	BioLegend	127610
U-100 insulin syringe with 28 G needle	BD	329461
FITC-CM-Dextran, 150 kDa	Sigma-Aldrich	74817
Butterfly infusion set (27 G needle)	BD	387312
FACSCalibur cytometer	BD
CellQuest Pro software	BD
Confocal microscope	Olympus	FV1000
Metamorph Software	Universal Imaging