在这里,具有分析特征的多光谱成像流式细胞术可以比较3个自噬标记的明亮细节图像,并量化其共定位以及LC3斑点计数,用于以客观,定量和统计学鲁棒的方式测量自噬。
自噬是分解代谢途径,其中在生长和分化期间积累的正常或功能失调的细胞组分通过溶酶体降解并被再循环。在自噬过程中,细胞质LC3蛋白被脂质化并引入自噬体膜。然后自噬体与溶酶体融合以形成自体溶质,其中发生自噬体囊泡及其内含物的分解。与LC3结合的泛素相关蛋白p62也用于监测自噬通量。进行自噬的细胞应该证明p62,LC3和溶酶体标记物的共定位。已经使用免疫荧光显微镜来以每细胞为基础目视鉴定LC3斑点,p62和/或溶酶体。然而,客观和统计上严格的评估可能难以获得。为了克服这些问题,使用多光谱成像流式细胞术以及比较光亮度的分析特征来自三个自噬标记(LC3,p62和溶酶体LAMP1)的尾部图像,并量化它们的共定位,结合LC3点计数,以客观,定量和统计学鲁棒的方式测量自噬。
Macroautophagy(以下简称自噬)是一种分解代谢途径,其中损伤或功能失调的成分,长寿命蛋白质和细胞器通过溶酶体降解并被回收1 。自噬是一种动态的,多步骤的过程,涉及形成自噬体;自噬体与溶酶体的融合,形成自溶胶体;以及自溶胶体2含量的降解。用于鉴定哺乳动物系统自噬的关键生物学标记是构成自噬体膜的微管相关蛋白1A / 1B-轻链3(LC3)。在自噬过程中,胞质LC3-1与磷脂酰乙醇胺缀合形成LC3-II;然后将LC3-II并入自噬体膜3中 。自噬通量的另一个广泛使用的标记是自噬受体结合体1(SQSTM1,p62)NKS自噬货物到自噬膜4,5。
传统上用于测量自噬的方法是Western印迹和荧光显微术7 。然而,这些方法都没有被认为是“金标准”,2,6为有以两者的这些技术相关联的挑战。因为使用匀浆样品,蛋白质印迹只能给出平均值,所以观察者看不到单个细胞发生了什么。另一方面,荧光显微镜在单细胞水平上给出观察者信息,但缺乏通量能力,难以获得客观和统计学上严格的评估。近年来,通过多光谱成像流式细胞术测定LC3和p62(MIFC,见材料表 )已经获得了广泛的应用由于其定量功率,高吞吐能力,复用电位以及对每个单元进行成像的能力,因此无法实现。其中最广泛使用的方法使用MIFC,以其伴侣分析软件一起(参见材料的表 )来测量自噬,是通过LC3斑点或自噬体8,9,10,11,12,13,14的光点计数,15,16,17。然而,自噬体的增加并不一定意味着自噬增加,因为它也可能代表了过程2的封锁。 LC3-II周转量是通过分析细胞存在而测量自噬通量的有用参数没有溶酶体降解抑制剂,如氯喹。氯喹抑制自噬体的融合到溶酶体,由此通过阻止自噬通量溶酶体降解之前,可能会发生18允许自噬体形成,因为自噬的程度的度量的定量。另外,P62主要由自噬降解,并且如果所述自噬体和其内容的溶酶体降解被阻断,P62的累积预期17,19。
自噬是一个多步骤过程,单独测量LC3或p62不能全面了解细胞中发生的情况。最近的出版物强调,有必要检查自溶酶体2,17,20,21的同时形成。 MIFC是唯一能够通过自噬体的共定位成像到溶酶体15以测量自溶酶体的形成– 17,20,21,22,23,24,25,26。此外,还研究了使用MIFC的p62和LC3的共定位以测量自噬通量5 。在参考分析软件中,测量共定位的“特征”被称为“明细相似性R3”(BDS),并且被特别设计为比较两个图像的小而明亮的图像细节。 BDS是半径为3像素或更小的局部亮点的对数转换Pearson相关系数;换句话说,BDS计算o的程度来自两个不同荧光通道的抖动像素。亮点是相关的( 即相同的空间位置)或不相关的( 即,不同的空间位置)。因此,相关系数在0(不相关)和1(完全相关)之间变化。的系数是对数转化为增加的范围内的零和无穷大26,27之间。单独的BDS可能不足够; Rajan 等人发现仅使用BDS可能导致假阳性或假阴性结果21 。 BDS评估两种自噬标记的共定位,但不考虑自噬体的数量。为了说明自噬体的数量,Rajan 等包括LC3斑点21的点数计数。 Rajan 等人提出使用LC3点数与BDS的双变量散点图。使用这个双变量的情节,两个人都在e首先确定:一个细胞具有高水平的LC3斑点,一个细胞具有低水平的LC3斑点。高-LC3斑点人口进一步分为两个群体:细胞低共定位( 即,自噬体的累积)和细胞具有高的共定位( 即,自体溶酶体的积累)。这种双变量图可以区分具有非常少的自噬体的细胞和具有自噬体和/或自溶质体21的积累的细胞。
到目前为止,使用MIFC伴随分析软件中的单个“特征类型”(参见材料表 ),LC3,p62和LAMP1(溶酶体标记)的同时共定位是不可能的。然而,6.1版中最近推出的一个新功能叫做Bright Detail Colocalization 3(BDC3)。 BDC3比较三个图像中每个图像的明亮细节图像(在本例中为LC)3,p62和LAMP1)并量化三个探针( 即 LC3,p62和LAMP1)的共定位。 BDC3功能计算修改后的Pearson相关系数以扩展到三个图像。由于三个图像中的亮点是相关或不相关的,相关系数在0(不相关)和1(完全相关)之间变化。系数进行对数转换,以增加0和无穷大之间的动态范围。通过使用BDC3功能切换BDS功能,Rajan 等人提出的分析方法现在可以使用三种最常用的标记来同时测量一个系统中的自噬。在单次测定中将这三种自噬标记共同定位的能力可以导致对自噬的诱导和调节的新见解。以下方案概述了诱导Jurkat细胞自噬的步骤。用LC3,p62和LAMP1抗体标记细胞;获取有关多数据的数据口腔成像流式细胞仪;并分析数据以评估自噬通量。
执行此分析时,需要考虑几件事情。重要的是要有适当的对照样品。对于该实验,使用两种不同的对照:对照和对照+氯喹。对照样品用于设定区域的阈值。它代表自噬的基础水平,而不会阻止溶酶体降解,并且是饥饿样品的对照。然而,对照样品不是适用于与Starved + Chloroquine样品相比较的对照,因为氯喹本身会影响对照样品。因此,有必要使用Control + Chloroquine样品。
在对自噬进行任何分析之前,重要的是仅对焦点上的单个单元格( 即,梯度RMS大于60)进行分析/门控,因为如果存在多个单元格或图像是可能会影响结果失焦了自噬体至关重要es和溶酶体正在关注适当的斑点计数和BDC3分析。在自噬分析之前必须去除凋亡细胞,因为它们可能会使结果偏斜,不应包括在内。对于所有三种标记物( 即 LC3,p62和LAMP1)都应有适当的染色。例如,所有三个标记都是细胞内的,应该有点状信号;如果信号没有点状,或者如果它在细胞表面,则染色不合适,并且重新实验/染色。另外,对于BDC3来说,对于所有三种感兴趣的荧光标记来说,对于对于明亮的细胞是必要的。需要对积极事件进行选择,以防止BDC3对非特异性结合,成像伪像和/或噪声的测量。这是至关重要的,因为BDC3可以潜在地放大不是真实信号的伪像。由于BDC3只能在亮阳性事件上执行,因此许多单元可能不包括在最终分析中;这是espec对于没有LC3,p62和/或LAMP1的任何积累的对照细胞是真实的。因此,该测定的局限性是BDC3仅检测对于所有三种标记物呈阳性的细胞,这可能不适用于所有自噬实验。
像BDS,先前已经报告了15,16,17,20,21,22,23,24,25,26,BDC3本身并没有考虑到自噬细胞器共定位的数量,从而导致很大程度的自噬数量的变异性。因此,Rajan 等人提出的双变量方法被雇用看一下双变量图,可以问一下对于LC3,p62和LAMP1,细胞必须是阳性的;为什么有这么多的细胞有0个点?这是因为LC3信号可能足够亮以进行共定位,但它可能不符合由峰值掩模(Peak(M11,Ch11-LC3-AF647,Bright,4))设置的阈值,它被认为是点。
本文提出的方案使用MIFC来计数LC3点位点和三个自噬标记物的共定位以测量自噬通量。在基础条件(对照样本)下,自噬体数量少,“高点”发现少数细胞。随着加入抑制自噬体/溶酶体融合的氯喹,LC3斑点数量增加。由于溶酶体不能分解自噬体和位于自噬体中的p62,因此导致LC3,p62和LAMP1自体聚集体积累的共定位增加。这种作用在营养物starvat下扩增离子,诱导自噬。然而,没有添加氯喹,自噬体数量没有显着增加,这很可能是由于自噬周转率的增加。当细胞在氯喹存在下饥饿时,自噬体的共定位和数量有所增加,这支持了饥饿增加自噬通量的结论。已知EBSS是自噬的强大诱导剂。因此,预计增幅会很大。如果使用另一种方法,例如药物诱导来诱导自噬,则对照和处理的样品之间的差异可能更为微妙。
该特定方案被设计用于测量人类细胞系中的自噬,但该测定可以通过切换到该特定物种的抗体来适应其他物种。此外,分析方法可用于需要共定位的任何细胞内应用的三个探针/标记。
The authors have nothing to disclose.
感谢MilliporeSigma的同事Philip J. Morrissey和Sherree L. Friend对他们多年来的支持和指导。我还要感谢Vidya Venkatachalam和Bryan R. Davidson在IDEAS软件中的BDC3功能的帮助, Ryan P. Jessup帮助编辑这本手稿,Raymond Kong在拍摄当天的帮助,特别感谢化妆师辛西娅Xamonthiene。
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50 mL centrifuge tube | Falcon | 352070 | |
AF647 labeled Donkey anti-Mouse – IgG | Invitrogen | A-31571 | Donkey anti-Mouse IgG (H+L) Secondary Antibody, Alexa Fluor 647. Concntration 2mg/mL. https://www.thermofisher.com/antibody/product/Donkey-anti-Mouse-IgG-H-L-Secondary-Antibody-Polyclonal/A-31571 |
anti-human CD107a-PE (LAMP1) | BioLegend | 328607 | Clone H4A3. Concentration 400 µg/mL. http://www.biolegend.com/pe-anti-human-cd107a-lamp-1-antibody-4967.html |
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Anti-LC3 (Human) mAb clone 4E12 | MBL International Corporation | M152-3 | Clone 4E+12. Concentration 2 mg/mL. https://www.mblintl.com/products/m152-3 |
Anti-SQSTM1 / p62 antibody [EPR4844] – Autophagosome Marker (Alexa Fluor 488) | abcam | ab185015 | Clone EPR4844. Concentration 0.5 mg/mL. http://www.abcam.com/sqstm1-p62-antibody-epr4844-autophagosome-marker-alexa-fluor-488-ab185015.html |
Chloroquine diphosphate Salt | Sigma-Aldrich | C6628-25G | |
Cleanser – Coulter Clenz | Beckman Coulter | 8546931 | Fill container with 200 mL of Cleanser. https://www.beckmancoulter.com/wsrportal/page/itemDetails?itemNumber=8546931#2/10//0/25/1/0/asc/2/8546931///0/1//0/ |
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Dulbecco's Phosphate Buffered Saline 1X | MilliporeSigma | BSS-1006-B | PBS Ca++Mg++ Free |
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Hanks' Balanced Salt Solution 1X | Gibco | 14175 | |
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MIFC – ImageStreamX Mark II | MilliporeSigma | 100220 | A 2 camera ImageStreamX Mark II eqiped with the 405nm, 488nm, and 642nm lasers was used. http://www.emdmillipore.com/US/en/life-science-research/cell-analysis/amnis-imaging-flow-cytometers/imagestreamx-Mark-ii-imaging-flow-cytometer/VaSb.qB.QokAAAFLzRop.zHe,nav?cid=BI-XX-BDS-P-GOOG-FLOW-B325-0006 |
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PE anti-human CD107a (LAMP-1) Antibody clone H4A3 | BioLegend | 328608 | http://www.biolegend.com/pe-anti-human-cd107a-lamp-1-antibody-4967.html |
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