Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

De lymfkliertest Choline-deficiënte, Ethionine-aangevuld (COB) dieet Model van chronische lever schade

Published: October 21, 2017 doi: 10.3791/56138

Summary

Hier beschrijven we een gemeenschappelijke methode om chronische lever schade in muizen door het eten van een dieet van choline-deficiënte en ethionine-aangevuld (CDE). We tonen gezondheidsmonitoring, lever perfusie, isolatie en behoud. Een tijdsverloop van zes weken kan informeren over de lever schade, pathohistology, fibrose, inflammatoire, en lever progenitor cel reacties.

Abstract

Chronische leverziekten, zoals virale hepatitis, alcoholische leverontsteking of non-alcoholische vette leverziekte, worden gekenmerkt door voortdurende ontsteking, progressieve vernietiging en regeneratie van de hepatische parenchym, lever progenitor cel proliferatie, en fibrose. De einde-podium voor elke chronische leverziekte is levercirrose, een belangrijke risicofactor voor de ontwikkeling van hepatocellulaire carcinoom. Studeren processen regelen ziekte initiatie, vestiging en progressie, worden verschillende dierlijke modellen gebruikt in laboratoria. Hier beschrijven we een zes weken durende tijdsverloop van de choline-deficiënte en ethionine-aangevuld (COB) muismodel, waarbij zes - weken oude mannelijke C57BL/6J muizen vervoederen choline-deficiënte chow en 0,15% DL-ethionine-aangevuld drinkwater. Bewaking van de gezondheid van dieren en een typische lichaam gewicht verlies curve worden toegelicht. Het protocol wordt het bruto onderzoek van een COB-behandelde lever en bloed collectie cardiale punctie voor latere serum analyses. Vervolgens zijn de lever perfusie techniek en verzameling van verschillende hepatische lobben voor standaard evaluaties weergegeven, waaronder lever histologie evaluaties door haematoxyline en eosine of Sirius Red technieken, immunefluorescentie detectie van hepatische cel populaties evenals transcriptome profilering van de lever communicatie. Dit muismodel is geschikt voor studeren inflammatoire, fibrogenic en lever progenitor cel dynamiek geïnduceerd door chronische leverziekte en kan worden gebruikt om te testen potentiële therapeutische agenten die deze processen kunnen moduleren.

Introduction

De lever is het grootste klierweefsel metabole orgaan van het lichaam en heeft vele complexe functies. Spelen een belangrijke rol voor de lever zijn spijsvertering, stofwisseling, ontgifting, opslag van essentiële voedingsstoffen, productie van bloed plasma proteïne componenten en via ingezeten macrofagen of Kupffer cellen gemedieerde immuniteit. De lever heeft een groot vermogen om te regenereren zelfs als tot 70-90% van de totale massa verloren gaat. In geval van acute lever schade, zoals gezien na een gedeeltelijke hepatectomy of paracetamol vergiftiging, vermenigvuldigen de resterende gezonde hepatocyten om te herstellen van de schade in een sterk gecoördineerde proces1. Echter, wanneer de hepatocyten zijn chronisch gewond als gevolg van langdurige virale infectie, alcoholische of non-alcoholische vette leverziekte, de inflammatoire communicatie activeert de activering van fibrose-rijden Notti hepatische cellen en de proliferatie van lever voorlopercellen (omzettingsbibliotheek) met het potentieel om te differentiëren in cholangiocytes of hepatocyten2,3,4,5. De precieze oorsprong, differentiatie lot van omzettingsbibliotheek, hun bijdrage aan de lever regeneratie en hepatocarcinogenesis onderwerpen van intens debat geweest en waarschijnlijk afhankelijk van de ernst van het letsel en kader2. De volgorde van vroege regeneratie-geassocieerde gebeurtenissen wordt ook controversieel besproken, met sommige onderzoekers verklaren dat hepatische Notti cel activatie en matrix remodeling is essentieel voor de generatie van een ten gunste van de LPC niche6, terwijl anderen verslag dat LPC expansie en de zogenaamde Ductular reactie nodig voor de trigger fibrogenese7 zijn. Er zijn talrijke dierlijke modellen om te bestuderen van specifieke aspecten van de schade en de regeneratie, in een poging om te begrijpen van alle onderliggende factoren die het reguleren van de progressie van de ziekte en uiteindelijk nieuwe om behandelingsstrategieën te ontwikkelen voor patiënten8.

De choline-deficiënte en ethionine-aangevuld (COB) dieet model was oorspronkelijk ontwikkeld voor gebruik bij ratten en later gewijzigd voor chronische lever schade inductie in muizen9,10. Dietary tekort aan choline resulteert in verminderde vergadering en secretie van zeer low-density lipoproteins. In combinatie met de hepatocarcinogen DL-ethionine, dit regime leidt tot buitensporige hepatische vet laden, continue ontsteking, periportal fibrose, LPC reactie en op lange termijn naar hepatocellulaire carcinoom ontwikkeling11,12 . Echter bovenal verschillende muis spanningen vertonen karakteristieke patronen van inflammatoire, fibrogenic en LPC reactie dynamics13. Dit protocol beschrijft chronische lever schade inductie in C57BL/6J muizen, de meest gebruikte inteelt muis stam.

In chronische leverziekte onderzoek omvatten typische analyses histologische evaluaties door haematoxyline en eosine, evenals het Sirius rode vlekken om te visualiseren collageen depositie, immunohistochemische of immunefluorescentie detectie van hepatische cel populaties, en transcriptomic analyses van de lever communicatie die de geïnduceerde cellulaire veranderingen door middel van complexe groeifactor en cytokine netwerken14,15,16,17 regisseert , 18.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. dier experimenten

alle dierlijke studies beschreven in dit onderzoek werden goedgekeurd door de Curtin University dier ethische Commissie (erkenningsnummer: AEC_2014_28) vóór de aanvang van de experimenten en uitgevoerd volgens de Australische code voor de verzorging en het gebruik van dieren.

  1. Dieren
    1. zes - weken oude mannelijke C57BL/6J muizen te gebruiken voor de experimenten.
  2. Experimenteel ontwerp
    1. na aankomst bij het dier faciliteit, kunnen muizen om te acclimatiseren voor vier dagen voor aanvang van elke experimenten.
    2. Huis muizen op wheaten kaf beddengoed, die heeft uitgeput van zichtbare korrels en stengels en houden van muizen op 12 uur dag/nacht cycli in afzonderlijk geventileerd kooien. Verandering beddengoed op dagen drie en zeven, dan daarna wekelijks.
    3. Provide muizen met ad libitum toegang tot de choline-deficiënte voeding en drinkwater aangevuld met 0,15% van DL-ethionine. Houd de DL-ethionine-aangevuld water bij 4° C en vervang drinking water elke tweede dag om versheid te verzekeren en aan te moedigen drinken. Top van de choline-deficiënte chow elke tweede dag met een compleet andere chow wekelijks.
    4. Let op muizen in rust en tijdens de behandeling. De standaard tekenen van de monitor van de gezondheid van de dieren, met inbegrip van de totale uitstraling, houding, sociale interactie, grooming, vacht conditie en lichaamsgewicht.
    5. Weigh muizen dagelijks tijdens de eerste twee weken van het experiment om ervoor te zorgen dat alle dieren vertonen meer dan 20% lichaam gewichtsverlies zijn euthanized te beperken van onnodig lijden. Dit is meestal het geval is in minder dan 5% van de dieren. Na twee weken, kan de frequentie van de wegen worden gereduceerd tot drie keer per week (bijvoorbeeld maandag, woensdag, vrijdag).
  3. Lever perfusie en isolatie
    1. verdoving muizen op punten van de aangegeven tijd (in deze studie één, twee en zes weken op de CDE-dieet) met ketamine (100 mg/kg) en xylazine (10 mg/kg) door intraperitoneale injectie. Testen van de pedaal terugtrekking reflex om ervoor te zorgen voldoende verdoving.
    2. NAT van de vacht met 70% ethanol en maak een verticale middellijn incisie in de buikwand tot het diafragma met behulp van Mayo schaar. De ribbenkast kan worden verwijderd voor gemakkelijkere toegang tot het hart.
    3. Collect bloed door langzame cardiale punctie met behulp van een 25 G x 1/2 " regelmatige muur naald om te voorkomen dat het instorten van het hart. Laat het bloed stollen in de buis van een microcentrifuge bij kamertemperatuur te verkrijgen serummonsters na centrifugeren bij 2.000 x g gedurende 10 minuten. Later, het meten van serum alanine-aminotransferase niveaus door standaardprocedures 12.
    4. Verplaatsen van de maag en de dunne darm naar de kant en de portal vein blootstellen. Knip het hart met behulp van Mayo schaar om vloeistoffen te sluiten en perfuse van de lever met steriele fosfaatgebufferde zoutoplossing (pH = 7.4) door cannulating van de ader van de portal met behulp van een 27 G x 1/2 " regelmatige muur naald. Een gelijkmatig geblancheerde lever geeft aan succesvolle perfusie van alle lever lobben.
    5. Voorzichtig losmaken van de lever en plaatst u deze in een petrischaal met pincet en Mayo schaar. Verwijder overtollige, niet-lever weefsel en de galblaas.
  4. Lever behoud
    1. nadat het totaalgewicht van de lever is geconstateerd, een kleine kwab in verschillende kleine stukjes van een paar vierkante millimeter, gesneden hen overbrengen in steriele buizen, en snap-freeze in vloeibare stikstof voor latere RNA en eiwit extractie, volgens standaardprotocollen. Module-freeze deze weefsel stukken zo spoedig mogelijk na het orgel verzamelen om te voorkomen dat elke aantasting van het weefsel.
    2. Verzamelen een kwab in 10% neutraal gebufferde formaline voor latere verwerking en paraffine insluiten, zoals per standaardprotocollen.
    3. Plaats een lobe in een mal gevuld met optimale snijden temperatuur cryomatrix hars inbedding en module-freeze in vloeibare stikstof.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

In de tijdsverloop van de zes weken durende van COB-geïnduceerde chronische lever schade, werden parameters beoordeeld op dagen 7 (inductie fase), 14 en 21 (oprichtingsfase) en 42 (onderhoud fase). In vergelijking met controle muizen, muizen COB-behandeld tot 20% van hun aanvankelijke lichaamsgewicht verloren in een fase van de eerste aanpassing en neiging om gewicht herwinnen in de vestiging- en onderhoudsfasen (Figuur 1). Het lichaamsgewicht is omgekeerd gecorreleerd met serum alanine-aminotransferase niveaus, een indicator van hepatocellulaire letsel (Figuur 2). Vier micrometer-dunne, formaline-vaste en paraffine-ingebedde lever weefselsecties werden gekleurd met haematoxyline en eosine te beoordelen van de hepatische architectuur. Gezonde levers weergegeven een normale architectuur met ordelijke koorden van hepatocyten straalt vanuit de centrale ader, de lever parenchym vormen. COB-behandelde levers toonde daarentegen sterk verstoord lever architectuur en de parenchymal infiltratie van vele basofiele cellen in de fase van de inductie en inrichting en de normalisatie in de handhavingsfase (Figuur 3). Om te beoordelen van fibrogenese, werden 4-micrometer dunne formaline-vaste en paraffine-ingebedde secties van de lever gekleurd met de poly-azo-kleurstof Sirius rood, die visualiseert hepatische collageen afzetting. In de fase van de inductie van COB-geïnduceerde chronische lever letsel opgelopen collageen in het parenchym in de periportal regio's. Niveaus genormaliseerd echter bij de totstandbrenging en het onderhoud fase (Figuur 4). Matrix-ingesloten en module-bevroren leverweefsel werd gesneden in dunne secties 7-micrometer op een cryostaat. Immunefluorescentie kleuring voor cel markeringen werd vervolgens uitgevoerd voor het analyseren van de temporele en ruimtelijke rangschikking van specifieke hepatische cel populaties in een tijdsverloop. In gezonde levers, de gal en lever progenitor cel marker panCK alleen gekleurd gal duct structuren, terwijl de inflammatoire cel markering CD45 gedetecteerd lever resident macrofagen of Kupffer cellen. Echter doorgevoerd toegenomen panCK kleuring in chronisch gewonde levers, gal en lever progenitor celproliferatie, die een piek en bereikte een steady-state na ongeveer 14 dagen van CDE behandeling. Het aantal CD45-positieve ontstekingscellen, dat zowel lever-ingezeten en infiltreren cellen, ook een piek in de fase van de inductie van COB-veroorzaakte schade en langzaam genormaliseerd naar controle niveaus in de vestiging- en onderhoudsfasen ( weergeeft Figuur 5). Deze uitbreiding van inflammatoire cel populaties in chronisch gewonde levers ging gepaard met snelle veranderingen in de hepatische communicatie. Een snelle inductie of significante toename transcriptie van cytokines en groeifactoren werd waargenomen. Het gaat hierbij om tumor necrose factor (TNF), Tumornecrosefactor-achtige zwakke inductor van apoptosis (TWEAK), Tumornecrosefactor β-beta (LTβ), hepatocyte groeifactor (HGF), transformeren groeifactor-beta (TGFβ) en Interleukine-6 (IL-6), bijvoorbeeld. Kwalificatieniveaus transcript alle piek in de inductie fase en genormaliseerd tijdens de totstandbrenging en het beheer van de fase - vergelijkbaar met de eerder getoonde ziekte parameters (Figuur 6).

Figure 1
Figuur 1 . Body gewicht opnames van gezonde en COB-behandeld muizen. Chronisch gewonde muizen tot 20% van hun aanvankelijke lichaamsgewicht verloren in de fase van de inductie van CDE voederen en daarna hersteld. Een representatieve diagram wordt weergegeven. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 2
Figuur 2 . Serum alanine-aminotransferase niveaus in gezonde en COB-behandeld muizen. Serum alanine-aminotransferase (ALT) niveaus bleef onveranderd in gezonde muizen in de tijdsverloop van een zes weken maar bereikte een hoogtepunt in de inductie fase, met normalisatie in de fase van het opzetten en onderhouden van COB-behandelde dieren. Een representatieve diagram wordt weergegeven. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 3
Figuur 3 . Haematoxylin en eosine technieken van lever secties. Formaline-vaste en paraffine-ingebedde lever weefselsecties die werden gekleurd met H & E ordelijke regelingen hepatocyte koorden in controle muizen aangetoond. Daarentegen werd de lever architectuur enorm verstoord in muizen COB-behandeld in de inductie fase, met normalisatie tegen het einde van het tijdsverloop van zes weken. De schaal staaf vertegenwoordigt 100 µm. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 4
Figuur 4 . Sirius rode kleuring-vergemakkelijkt collageen visualisatie in gezond en COB-behandelde muizen. In vergelijking met controle muizen die alleen kleine perivenous collageen depositie weergegeven, chronisch gewonde dieren toonde collageen accumulatie in periportal parenchym regio's in de inductie fase, met langzame normalisatie naar de fase van het onderhoud van de CDE tijdsverloop van zes weken. De schaal staaf vertegenwoordigt 100 µm. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 5
Figuur 5 . Immunefluorescentie detectie van inflammatoire en gal/lever voorlopercellen. In gezonde levers, alleen biliaire structuren gekleurd met de gal en lever progenitor cel marker panCK (rood) en het antilichaam CD45 gevisualiseerd lever-ingezeten macrofagen of Kupffer cellen (groen). In de fase van de inductie van CDE voederen van dieren, het aantal CD45+ cellen drastisch toegenomen waaronder lever-ingezeten evenals infiltreren ontstekingscellen. Deze inflammatoire respons genormaliseerd tegen het einde van thij zes weken tijdsverloop. Gal en lever voorlopercellen cellen die vlek met de marker panCK gestegen in aantallen tot week twee en daarna een steady-state bereikt. DAPI werd gebruikt voor nucleaire kwantificatie. De schaal staaf vertegenwoordigt 100 µm. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 6
Figuur 6 . Transcriptomic analyses van cytokines en groeifactoren. RNA werd geïsoleerd uit module-bevroren stukjes lever weefsels COB-behandeld transcriptomic analyses van de lever communicatie uitvoeren. Representatieve diagrammen van tumor necrose factor (TNF), TNF-achtige zwakke inductor van apoptosis (TWEAK), Tumornecrosefactor β-beta (LTβ), de hepatocyte groeifactor (HGF), transformeren groeifactor-beta (TGFβ) en Interleukine-6 (IL-6) worden weergegeven. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Chronische leverziekte is vaak een stille ziekte met meeste asymptomatische patiënten en het is een van de belangrijke bijdragen aan de morbiditeit en mortaliteit wereldwijd. Chronisch alcoholisme en hepatitis C virusinfectie zijn de belangrijkste oorzaken. Chronische lever schade wordt gekenmerkt door een ontsteking van de lever, fibrose en in ernstige gevallen cirrose en carcinoom uiteindelijk lever mislukking. Er is momenteel geen remedie beschikbaar en hoewel belangrijke vooruitgang hebben geboekt om te begrijpen van de mechanismen van de leverziekte, nieuwe therapeutische mogelijkheden nog steeds dringend noodzakelijk zijn.

De COB-dieet is een eenvoudig, tijd-effectief en gemakkelijk beheren model voor inductie en studie van vette wijzigingen of hepatische steatosis, ontsteking, fibrose, LPC proliferatie en in langdurige experimenten, ontwikkeling van hepatocellulaire carcinoom6 ,11,12,13,16,17. In eerste instantie gebruikt in ratten19,20, werd het later aangepast om LPC studies in wildtype en genetisch gemodificeerde muizen9.

In ons laboratorium, hebben we het kritische wheaten kaf gebruiken in plaats van andere beddengoed alternatieven gevonden. Hoewel het is uitgeput van zichtbare korrels en stengels, een paar extra voedingsstoffen blijven in het beddengoed wheaten kaf en tegenwicht bieden aan enkele van de barre gevolgen van COB-geïnduceerde chronische lever schade inductie. Bovendien, deze bedden biedt milieu verrijking en moedigt normale voedsel zoekgedrag in muizen. De overgrote meerderheid van ongewenste voorvallen werden waargenomen in de eerste week van CDE behandeling en daarna zelden gezien. De kans op bijwerkingen kan worden verminderd met behulp van muizen hebben een basisgewicht van ten minste 16 g. Echter als het basisgewicht meer dan 18-20 g is, het aantal geïnduceerde lever voorlopercellen mogelijk lager. De COB-model kan worden gebruikt voor het bestuderen van hepatische steatosis, ontsteking, lever progenitor cel reacties, fibrose en hepatocellulaire carcinoom ontwikkeling zonder de aanwezigheid van levercirrose, zoals gezien in sommige non-alcoholische vette leverziekte (NAFLD) en hepatitis B virus-besmette patiënten21,22. Ter vergelijking: de thioacetamide (TAA) model van chronische lever schade vertegenwoordigt een meer agressieve regime. Het induceert milde vette wijzigingen, ontsteking, lever voorlopercellen en fibrose die al naar vroege cirrose rond de 6 weken tijd punt12 vordert. Vandaar, de COB voeding wordt voorgesteld als NAFLD-geassocieerde processen de studie focus, zijn terwijl een tijdsverloop van TAA kan nuttig zijn, wanneer verschillende stadia van de ernst van de fibrose van belang zijn.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Er is niets te worden verschaft door de auteurs.

Acknowledgments

Dit werk werd gesteund door subsidies van de nationale gezondheids- en medische onderzoek Raad (NHMRC) van Australië (APP1042370, APP1061332, APP1087125). De auteurs bedank het Curtin Health Innovation Research Institute personeel voor technische bijstand.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Six-week-old male C57BL/6J mice  Animal Resource Centre of Western Australia, Murdoch, WA,  Australia N/A
10 Kg Steam Cut Wheaten Chaff  Specialty Feeds, Glen Forrest, WA, Australia  N/A
Water for irrigation 1000ml bottle (Baxter)  Surgical House, Perth, WA, Australia  AHF7114A
Choline- deficient diet, modified (pellets)  MP Biomedicals Australasia Pty Limited, WA, Australia 02960210
DL-Ethionine  Sigma-Aldrich, Castle Hill, NSW,  Australia  E5139-25G
Ketamil injection  Troy Laboratories Pty Limited, Glendenning, NSW, Australia  N/A
Ilum Xylazil-20 injection  Troy Laboratories Pty Limited, Glendenning, NSW, Australia  N/A
27G x 1/2", Regular Wall Needle  Terumo Australia Pty Limited, NSW, Australia  NN-2713R
Syringes Terumo 1ml and 10ml  Terumo Australia Pty Limited, Macquarie Park, NSW, Australia  1018242, 1018037
Tissue-Tek OCT compound  VWR International Pty Limited, Tingalpa, QLD, Australia  25608-930
Neutral buffered formalin  Amber Scientific, Midvale, WA, Australia  NBF-2.5L
Ethanol absolute anaLaR normalpur  VWR International Pty Limited, Tingalpa, QLD, Australia  20821.33
Superfrost Plus slides  Grale Scientific Pty Limited, Ringwood, VIC, Australia  SF41296SP
Dako Protein Block, serum-free  Dako Australia Pty Limited, North Sydney, NSW, Australia   X090930-2
Dako antibody diluent  Dako Australia Pty Limited, North Sydney, NSW, Australia   s0809
rat anti-CD45  eBioscience, San Diego, California, USA  m0701  1/200 dilution
rabbit anti-panCK  Dako Australia Pty Limited, North Sydney, NSW, Australia   Z0622 1/300 dilution
Goat anti-rabbit (Alexa Fluor 488) Life Technologies Australia Pty Limited, Mulgrave, VIC, Australia A-11008 1/500 dilution
Goat anti-rat IgG (Alexa Fluor 594)  Life Technologies Australia Pty Limited, Mulgrave, VIC, Australia  A-11007 1/500 dilution
ProLong Gold Antifade Reagent with DAPI  Life Technologies Australia Pty Limited, Mulgrave, VIC, Australia  P36935  
Picrosirius Red Stain Kit Polysciences Inc., Warrington, PA, USA  ab150681 

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Taub, R. Liver regeneration: from myth to mechanism. Nat Rev Mol Cell Biol. 5, 836-847 (2004).
  2. Kohn-Gaone, J., Gogoi-Tiwari, J., Ramm, G. A., Olynyk, J. K., Tirnitz-Parker, J. E. The role of liver progenitor cells during liver regeneration, fibrogenesis, and carcinogenesis. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 310, G143-G154 (2016).
  3. Lu, W. Y., et al. Hepatic progenitor cells of biliary origin with liver repopulation capacity. Nat Cell Biol. 17, 971-983 (2015).
  4. Prakoso, E., et al. Analysis of the intrahepatic ductular reaction and progenitor cell responses in hepatitis C virus recurrence after liver transplantation. Liver Transpl. 20, 1508-1519 (2014).
  5. Tirnitz-Parker, J. E., Tonkin, J. N., Knight, B., Olynyk, J. K., Yeoh, G. C. Isolation, culture and immortalisation of hepatic oval cells from adult mice fed a choline-deficient, ethionine-supplemented diet. Int J Biochem Cell Biol. 39, 2226-2239 (2007).
  6. Van Hul, N. K., Abarca-Quinones, J., Sempoux, C., Horsmans, Y., Leclercq, I. A. Relation between liver progenitor cell expansion and extracellular matrix deposition in a CDE-induced murine model of chronic liver injury. Hepatology. 49, 1625-1635 (2009).
  7. Clouston, A. D., et al. Fibrosis correlates with a ductular reaction in hepatitis C: roles of impaired replication, progenitor cells and steatosis. Hepatology. 41, 809-818 (2005).
  8. Forbes, S. J., Newsome, P. N. Liver regeneration - mechanisms and models to clinical application. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 13, 473-485 (2016).
  9. Akhurst, B., et al. A modified choline-deficient, ethionine-supplemented diet protocol effectively induces oval cells in mouse liver. Hepatology. 34, 519-522 (2001).
  10. Shinozuka, H., Lombardi, B., Sell, S., Iammarino, R. M. Early histological and functional alterations of ethionine liver carcinogenesis in rats fed a choline-deficient diet. Cancer Res. 38, 1092-1098 (1978).
  11. Knight, B., Tirnitz-Parker, J. E., Olynyk, J. K. C-kit inhibition by imatinib mesylate attenuates progenitor cell expansion and inhibits liver tumor formation in mice. Gastroenterology. 135, 969-979 (2008).
  12. Kohn-Gaone, J., et al. Divergent Inflammatory, Fibrogenic, and Liver Progenitor Cell Dynamics in Two Common Mouse Models of Chronic Liver Injury. Am J Pathol. 186, 1762-1774 (2016).
  13. Knight, B., et al. Attenuated liver progenitor (oval) cell and fibrogenic responses to the choline deficient, ethionine supplemented diet in the BALB/c inbred strain of mice. J Hepatol. 46, 134-141 (2007).
  14. Dwyer, B. J., Olynyk, J. K., Ramm, G. A., Tirnitz-Parker, J. E. TWEAK and LTbeta Signaling during Chronic Liver Disease. Front Immunol. 5, 39 (2014).
  15. Karin, M., Clevers, H. Reparative inflammation takes charge of tissue regeneration. Nature. 529, 307-315 (2016).
  16. Ruddell, R. G., et al. Lymphotoxin-beta receptor signaling regulates hepatic stellate cell function and wound healing in a murine model of chronic liver injury. Hepatology. 49, 227-239 (2009).
  17. Tirnitz-Parker, J. E., et al. Tumor necrosis factor-like weak inducer of apoptosis is a mitogen for liver progenitor cells. Hepatology. 52, 291-302 (2010).
  18. Viebahn, C. S., Yeoh, G. C. What fires prometheus? The link between inflammation and regeneration following chronic liver injury. Int J Biochem Cell Biol. 40, 855-873 (2008).
  19. Hayner, N. T., Braun, L., Yaswen, P., Brooks, M., Fausto, N. Isozyme profiles of oval cells, parenchymal cells, and biliary cells isolated by centrifugal elutriation from normal and preneoplastic livers. Cancer Res. 44, 332-338 (1984).
  20. Tee, L. B., Smith, P. G., Yeoh, G. C. Expression of alpha, mu and pi class glutathione S-transferases in oval and ductal cells in liver of rats placed on a choline-deficient, ethionine-supplemented diet. Carcinogenesis. 13, 1879-1885 (1992).
  21. Chayanupatkul, M., et al. Hepatocellular carcinoma in the absence of cirrhosis in patients with chronic hepatitis B virus infection. J Hepatol. 66, 355-362 (2017).
  22. Mittal, S., et al. Hepatocellular Carcinoma in the Absence of Cirrhosis in United States Veterans is Associated With Nonalcoholic Fatty Liver Disease. Clin Gastroenterol Hepatol. 14, 124-131 (2016).

Tags

Celbiologie kwestie 128 lymfkliertest model choline-deficiënte ethionine-aangevuld dieet chronische leverziekte lever perfusie lever isolatie lever voorlopercellen inflammatoire respons histologie fibrose lever communicatie
De lymfkliertest Choline-deficiënte, Ethionine-aangevuld (COB) dieet Model van chronische lever schade
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Gogoi-Tiwari, J., Köhn-Gaone,More

Gogoi-Tiwari, J., Köhn-Gaone, J., Giles, C., Schmidt-Arras, D., Gratte, F. D., Elsegood, C. L., McCaughan, G. W., Ramm, G. A., Olynyk, J. K., Tirnitz-Parker, J. E. E. The Murine Choline-Deficient, Ethionine-Supplemented (CDE) Diet Model of Chronic Liver Injury. J. Vis. Exp. (128), e56138, doi:10.3791/56138 (2017).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter