Summary
Протоколы для количественной оценки лимфоцитов хемотаксис и миграции являются важными инструментами для исследования иммунологии. Здесь в пробирке Протокол описан, позволяет в реальном времени, мультиплексируются оценки миграции клеток, а также дополнительных в vivo техника благоприятных отслеживания собственных клеток селезенки.
Abstract
Хемотаксис — миграции вдоль определенных химических градиента1. Chemokines — эозинофилов цитокины, которые способствуют сотовой оборота с анатомическими и временных специфика2. Хемотаксис является критической функции лимфоцитов и другие иммунные клетки, которые могут быть количественно оценены в пробирке. Эта рукопись описывает методы, которые позволяют оценки хемотаксис, как in vitro , так и в естественных условиях, для типов различных клеток, включая клеточные линии и родной клетки. В пробирке, плита-формат допускает сравнение нескольких условий одновременно в режиме реального времени и может быть завершена в течение 1-4 ч. В vitro пробирного условий можно манипулировать, чтобы ввести агонистов и антагонистов, как хорошо, как дифференцировать хемотаксис от chemokinesis, который является случайное движение. В естественных условиях торговли людьми оценок иммунные клетки может помечены с несколькими флуоресцентными красителями и используется для передачи в приемную. Дифференциальный маркировки клеток позволяет смешанных клеточных популяций в то же самое животное, тем самым снижения дисперсии и сократить количество животных, необходимых для эксперимента надлежащим питанием. Миграция в лимфоидной ткани происходит всего за 1 h, и можно отведать несколько отсеков ткани. Проточной цитометрии после урожая тканей позволяет для быстрого и количественный анализ миграционных моделей из нескольких типов клеток.
Introduction
Надежный иммунитет требует сложных временных и пространственных координации множества типов клеток для того чтобы надлежащим образом реагировать на травмы, инфекции и генерировать self-tolerance. Было обнаружено несколько десятков хемокиновых рецепторов и их соответствующие лигандов и характеризуется предоставление молекулярных механизмов, какие конкретные ячейки могут быть направлены в конкретной ткани в определенное время. Таким образом изучая хемотаксис и миграции является неотъемлемым компонентом исследования иммунологии. Действительно описанных в vitro assay недавно использовался как инструмент скрининга для выявления эозинофилов кофакторы, что ускоряет хемотаксис Т-клеток к chemokines 19 и 21 C-C3. Методы, описанные здесь, разрешить количественные оценки иммунных клеток хемотаксис в пробирке и в естественных условиях.
Пробирная палата Бойден (миграции клеток и вторжения) это недорогой, воспроизводимые и быстрый метод для оценки миграции клеток4,5. В стандартной assay верхняя палата заполняется с клетками и отделяется пористые вставки из нижней палаты, в которой клетки мигрируют. В нужное время клетки, которые мигрировали на нижней пластины можно фиксированной и запятнана световой микроскопии для quantitation. Однако такие измерения ограничить сбор данных для одной конечной точки, которая исключает возможность сбора динамических данных и может требовать обширные оптимизации для определения оптимального времени точки для анализа. Здесь описаны несколько приспособлений, которые позволяют в реальном времени, количественные и мультиплексных измерения хемотаксис в пробирке.
В vivo исследований, используется функциональный конечной точки, а именно конкретные накопления клеток в отсеке данной ткани. Предварительно обозначенных донором клетки вводятся в получателей животных через приемные передачи. Впоследствии эти клетки донора может быть идентифицирован проточной цитометрии, после сбора урожая получателей ткани. Также представлен совместной маркировки стратегия, которая позволяет для определения торговли людьми из различных типов клеток в пределах одного получателя животных. Этот метод устраняет между животных отклонения от инъекции клеток и приходится физиологического между животных изменчивости.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
все процедуры были одобрены Рокфеллеровского университета ' s, институциональный уход животных и использования Комитетом. Все животные были размещены при определенных условиях свободной от возбудителя.
1. хемотаксис In Vitro
- культуры THP-1 клетки 6 в Розуэлле парк Мемориальный институт 1640 (RPMI 1640) с 10% плода бычьим сывороточным (ФБС) и 4-(2-гидроксиэтилкрахмала) -1- piperazineethanesulfonic кислота (HEPES, 25 мм) (полное СМИ), поддержание плотности между 0,5-1,0 x 10 6 клеток/мл.
- В 35 мм клеточной культуры блюдо, лейбл 3.5 x 10 5 THP-1 клеток на состояние с Флуорексон acetoxymethyl (Флуорексон ам; 2,5 мкм) или другие подходящие Люминесцентную краску в полной СМИ при 37 ° C на 30 мин
Примечание: Красители должны быть проницаемой мембраны клетки и совместимы с живой клетки маркировки. - Предварительно теплой пластины читателя до 37 ° C.
Примечание: в дополнение к контроля температуры, снизу чтение функциональность требуется также. Шаг 1.10.2 альтернативу читатель пластины для количественной оценки миграции клеток. - В то время как клетки маркировки, подготовить пробирного пластины и нижняя палата.
- Использование культуры ткани 24-ну пластины, с одним условием в колодец. Выполните каждое условие в трех экземплярах.
- Добавить 750 мкл Хэнк ' s Buffered солевой раствор (HBSS) буфер с 25 мм HEPES и 0,1% бычьим сывороточным альбумином (БСА) к пластине 24-хорошо. Это служит базальной управления состоянием.
- Использование других скважин для компаратора условий, всегда поддерживать общий объем в нижней камере на 750 мкл.
Примечание: В этом примере человека Моноцит хемотаксического белка-1 (МКП-1) служит в качестве позитивного управления для хемотаксис 7.- Собрать смеси реагентов, объединив HBSS с 25-мм HEPES, BSA (0,1%) и МКП-1 (75 нг/мл). Используйте взрослых бычьим сывороточным (2.7% v / v) с МКП-1 как дополнительный положительный элемент управления.
Примечание: Концентрация хемокиновых и хемокиновых будет зависеть от оси эозинофилов изучается. Лиофилизированные MCP-1 высокомобильна в дистиллированной воде с BSA (0,1%), чтобы сделать Стоковый раствор с конечной концентрации 50 мкг/мл. Это могут быть ослаблены в воде для рабочего раствора 10 мкг/мл. Добавить 5.6 мкл этого решения в нижнюю палату.
- Собрать смеси реагентов, объединив HBSS с 25-мм HEPES, BSA (0,1%) и МКП-1 (75 нг/мл). Используйте взрослых бычьим сывороточным (2.7% v / v) с МКП-1 как дополнительный положительный элемент управления.
- Использование других скважин для компаратора условий, всегда поддерживать общий объем в нижней камере на 750 мкл.
- После завершения состав камер снизу уложите каждой скважины, обеспечивая, что вкладки Вставка выровнять с насечками пластины пористые вставки.
Примечание: Выберите соответствующие поры для вставки. Для моноцитов и лимфоцитов размер пор 3 мкм выполняет хорошо. Некоторые типы клеток и/или хемокиновых систем может потребовать матрицы покрытием поверхности для оптимального миграции. Например для измерения хемотаксис Моноцит THP-1 к MCP-1, фибронектин или коллагена покрытием вставки рекомендуется. Для читателя пластины для количественный, вставки должны иметь свет impermeant покрытие, например, полиэтилентерефталат, для предотвращения обнаружения миграции клеток в верхней камеры 8.
- После инкубации клеток для 30 минут с Флуорексон ам, суспензию клеток передавать 15 мл Конические трубки. Центрифуга клетки на 1000 x g на 2 мин осмотрите клетки для подтверждения поглощение Флуорексон-ам ( рис. 1).
- Тщательно удалить супернатант с помощью вакуум отсос. Вымойте помечены клеток в сыворотке крови бесплатно RPMI 1640 дополнена HEPES 25 мм. Центрифуга клетки на 1000 x g на 2 мин и удалить супернатант.
- Ресуспензируйте клеток в сыворотке крови бесплатно RPMI 1640 дополнена HEPES 25 мм. Подсчитать ячейки и регулировки громкости, так что клетки находятся в конечной концентрации 1,0-1,5 х 10 6 клеток/мл.
- Отказаться от 250 мкл суспензии клеток в Вставка (верхняя палата).
- После того, как все верхние палаты были заполнены, осторожно поднимите пластину и проверить нижней на наличие пузырьков воздуха, которые могут препятствовать миграции и обнаружения. Чтобы удалить пузырь, сначала удалите повторного позиционирования вставки. Если сбойных, используйте 27 G иглой проколоть пузырь и затем пересмотреть позицию вставки.
- Место пластину в считывающее устройство плита подогретым 37 ° C.
- Приобретать флуоресценции чтений от дна интервалом 1-3 мин. При использовании Флуорексон ам, установите флюоресценция волны возбуждения и выбросов на 485 Нм и 520 Нм, соответственно. В зависимости от типа и хемокиновых системы клетки, хемотаксис обычно происходит более чем 1-4 ч ( рис. 2A).
- В качестве альтернативы для непрерывных измерений с помощью пластины читатель, изображение скважин с помощью Перевернутый флуоресцентный микроскоп ( рис. 2B) способны возбуждения и обнаружения света в 485 Нм и 520 Нм, соответственно. Используйте малое увеличение захватить часть нижней пластины. Подсчитать ячейки путем обработки изображения с ImageJ или аналогичного программного обеспечения 9.
2. Приемных передачи мышиных лимфоцитов
- Подготовка донорских клеток
- Anesthetize 8-12 неделя-старых мышей C57BL/6J мужской доноров с изофлюрановая анестезии (1-3%) с помощью испарителем. Подтвердить соответствующие глубины анестезии, мыс пинча.
- Поместите курсор мыши в лежачем положении. Сделать срединной линии разреза с помощью скальпеля и найдите селезенки в верхнем левом перитонеального пространства. Акцизный весь селезенки и поместите в полной СМИ (RPMI, дополненная 10% FBS и 25 мм HEPES; 1 мл/селезенки) на льду. Усыпить животных наркотизированных доноров путем обезглавливания.
- Молоть ткань селезенки мягко через 40 мкм нейлоновая сетка в полной СМИ (1 мл /spleen) используя конце поршень шприца, чтобы подвеска одноклеточных и передачи 15 мл Конические трубки.
- Добавить 4 тома аммония хлорид калия (ACK) лизис буфер и проинкубируйте 5 мин при комнатной температуре, чтобы лизировать эритроцитов.
- Центрифуга клетки на 1000 x g на 2 мин при комнатной температуре и удалить супернатант. Если эритроцитов остаются в гранулах, ресуспензируйте ACK литического буфера, инкубировать в течение 5 мин при комнатной температуре, центрифуга клетки на 1000 x g на 2 мин и удалить супернатант.
- Ресуспензируйте клетки в полной СМИ в концентрации 2-5 x 10-7 кл/мл, а затем деформации суспензию клеток через 40 мкм нейлоновая сетка для удаления мусора ячейки.
- Этикетки 1 x 10 7 клеток/получатель мышь с Люминесцентную краску, совместимый с живой клетки и что будут сохранены при последующих фиксация, например 5-chloromethylfluorescein диацетата (конечная концентрация 2 мкм) 10 . Инкубировать при 37 ° C на 30 мин
Примечание: Чтобы отслеживать более чем одной популяции клеток, используйте другие флуоресцентных красителей с дополнительных клеточных популяций. Например, часть донорских клеток могут быть помечены 5-(and-6)-(((4-chloromethyl) бензоил) аминокислот) тетраметилродамина (конечная концентрация 2 мкм) 11. - Добавить 4 тома HBSS дополнена 25 мм HEPES, а затем центрифуги на 1000 x g 2 мин и удалить супернатант. Ресуспензируйте Пелле в HBSS дополнена HEPES 25 мм до конечной концентрации 1 x 10 8 кл/мл.
- При использовании более чем одного Люминесцентную краску, держать популяции клеток, разделенных непосредственно до инъекции.
- Передачи небольшой Алиготе (10 мкл) клеток каждого цвета фиксирующие решение (1 мл) для последующего потока цитометрии компенсации.
- Передачи лимфоцитов
- анестезировать 8-12 неделя-старый мужской получателей мышей C57BL/6J с изофлюрановая (1-3%), используя испаритель; подтвердить глубины анестезии, мыс пинча. Применять мазь ветеринарный животных ' глаза для предотвращения высыхания.
- Кратко клеток донора вихря (1 s) и передача инъекции 1 мл шприц с 27 G, 0,5 в иглу, сочетая дифференциально помечены клеточных популяций, если применимо.
- Передачи небольшой Алиготе (10 мкл) смешанных клеток фиксирующие решение (1 мл) для анализа последующих потоков цитометрии.
- Место доноров животных в лежачем положении. Мягкий хвостового давление на кожу спины в глаза, вызывая глазного яблока, слегка выступать.
- Прямые иглы медиально и вставляют 100 мкл суспензии клеток доноров ретро орбитально каждого получателя мыши. Клетки могут также вводиться через Вену хвост.
- Постепенно снять иглу и место мыши только в клетке восстановления. Мониторинг животных до тех пор, пока он сознание; один раз полностью восстановленные возвращение животного к социальному жилью.
- Сбора и анализа
- после 1 h, анестезировать получателей мышей с изофлюрановая анестезии (1-3%), используя испаритель; подтвердить глубины анестезии, мыс пинча. Урожай селезенки (или другие ткани интерес) (шаг 2.1.2.) от каждого получателя мыши и место в полной СМИ (1 мл/получателя). Усыпить наркотизированных животных путем обезглавливания.
Примечание: Более длительные интервалы до ткань урожай увеличит накопления ткани через по крайней мере 24 h. - Молоть ткань селезенки мягко через 40 мкм нейлоновая сетка в полной СМИ, используя конце поршень шприца, чтобы подвеска одноклеточных и передачи 15 мл Конические трубки.
- Добавить 4 тома ACK лизис буфер и инкубировать 5 мин при комнатной температуре. Центрифуга суспензию клеток на 1000 x g на 2 мин при комнатной температуре и удалить супернатант.
- Ресуспензируйте клетки в пятнать буфера (фосфат амортизированное saline дополнен с 1% FBS). Подсчитать ячейки и приспособиться к конечной концентрации 3 x 10 7 кл/мл. Передачи 100 мкл суспензии клеток к 96-луночных раунд днище.
- Пятно клетки для желаемого маркеров (см. таблицу материалы) для анализа проточной цитометрии. Добавить Флюорофор конъюгированных антител (см. таблицу материалы) против желаемого маркеры и Инкубируйте на 4 ° C на 20 мин в темноте. 100 мкл окрашивание буфера, центрифуга клетки на 1000 g x 3 мин и удалить супернатант.
- Ресуспензируйте гранулы в 200 мкл окрашивание буфера, центрифуга клетки на 1000 g x 3 мин и удалить супернатант.
- Ресуспензируйте Пелле в 125 пятнать мкл буфера и приобрести образцы с использованием проточный цитометр, с использованием стандартных процедур.
Примечание: Зеленый краситель возбужденные 488 нм лазер и обнаружения выбросов с 505 и 530/30 дихроичные фильтры. Оранжевый краситель спешит 561 Нм и выбросов определяется 582/15 Дихроичный фильтр.- Использовать сохраненные клетки от 2.1.8.2 для компенсации каждой флуоресцентных красителей.
Примечание: Использование компенсации на основе шарик с флуорофоров, возбуждения и выбросов спектры маркировки красителей приведет к неоптимальной компенсации. - Использовать сохраненные ячеек ввода от шага 2.2.2.1 точно определить соотношение дифференциально меткой ячейки ввода при использовании более чем одного помечены населения ( рис. 3). Рассчитать ткани конкретной миграции, основанный на соотношении помечены для неподписанных клеток ( рис. 4).
- Использовать сохраненные клетки от 2.1.8.2 для компенсации каждой флуоресцентных красителей.
- после 1 h, анестезировать получателей мышей с изофлюрановая анестезии (1-3%), используя испаритель; подтвердить глубины анестезии, мыс пинча. Урожай селезенки (или другие ткани интерес) (шаг 2.1.2.) от каждого получателя мыши и место в полной СМИ (1 мл/получателя). Усыпить наркотизированных животных путем обезглавливания.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
При использовании красителя Флуорексон ам, визуальный осмотр клеток подтвердит лейбл поглощения (рис. 1). Автоматизированный флуоресцентные чтений будет отслеживать миграции как клетки транзита на нижнюю пластины с течением времени. Эти данные ясно показывают индукции миграции клеток к MCP-1, а также увеличение этого ответа в сыворотке (рис. 2A). В зависимости от прочности мигрирующих стимул, есть отставание по крайней мере 15 минут до увеличение сигнала. Флуоресцентный сигнал может пика и затем постепенно снижаться. Это означает чистое сокращение числа клеток, придерживаясь нижней пластины, как клетки проходят в раствор в нижней палате со скоростью быстрее, чем ячеек, мигрирующих из верхней палаты. Сильнее миграционных стимулов обычно приводят в) ранее начала подъема в значениях флуоресценции; b) более быстрыми темпами роста в флуоресценции; и c) более высокие значения пика флуоресценции. Также представитель изображения, полученные путем микроскопии флуоресцирования Перевернутый отображаются (рис. 2B), с количественный клеток (рис. 2 c).
Для в vivo исследований с использованием более чем одного флуоресцентные метки важно, чтобы quantitate относительная доля клеточных популяций в входного материала. Этим объясняется разница в смешивании клеточных популяций для инъекций (рис. 3). В этом случае зеленый и оранжевый люминесцентные клеток составляло 0.97:1. Таким образом чтобы учесть этот небольшой дисбаланс, зеленый люминесцентные клеток были разделены 0,97 индексировать их числа пропорционально входного материала. После количественного определения помеченных клеток подачей cytometry, торговля может быть определена количественно как количество помечены ячеек восстановлены делится на общее количество ячеек восстановлены.
Эти результаты демонстрируют преимущество использования двойной цвет стратегию, которая устраняет эффект различной эффективности инъекции; Хотя существует значительное расхождение восстановленные клеток между животными, для любого данного животного, что зеленый дневного до оранжево люминесцентные клеток составляет приблизительно равны (рис. 4). Эти результаты, как ожидается, как две ячейки населения относились одинаково, но различные возмущения могут быть проверены на их влияние на лимфоцит самонаведения. Отклонения от линии личность будет указывать различные миграционные возможности конкретных клеточных популяций. Кроме того несколько подмножества ячеек может определяться путем пятнать восстановленные клетки для желаемого белков. Здесь Т-клетки, обозначается CD3 окрашивание и B-клетки, обозначается CD19 окрашивания также восстанавливаются с равной пропорции зеленый оранжевый люминесцентные клеток.
Рисунок 1: маркировка клеток. Визуальный осмотр Пелле клеток после маркировки подтверждает надлежащее усвоение флуоресцентного красителя (слева), в отличие от до маркировки (справа). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 2: Количественная оценка в vitro миграции. Репрезентативных данных (A) (среднее ± стандартная ошибка), приобретенных в режиме реального времени от читателя плита сравнения 3 условия: СМИ (управления), хемокиновых (МКП-1, 75 нг/мл) или хемокиновых сывороткой (МКП-1, 75 нг/мл и bovine сыворотки, 2,7% v/v в буфере). Чтений были приобретены от нижней пластины каждые 3 мин с волны возбуждения 485 Нм и обнаружение волны 520 Нм. (B) представитель микроскопии в 4 X увеличение нижней пластины в 1 ч, что позволяет прямой визуализации мигрирующих клеток. Масштаб баров = 500 мкм (желтый). (C) количественного определения количества клеток в маломощных поле (ФНЧ; 4 X) с помощью ImageJ программного обеспечения. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 3: Витражи ячейки ввода. Потока цитометрии участок показаны отношение двух дифференциально витражи клеточных популяций в вводят ячейки ввода от шага 2.2.2.1. Коэффициент определяется из этого участка служит для исправления для дисперсии, представил в ходе первоначального смешивания двух популяций и используется для настройки клеток во время анализа данных. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Рисунок 4: соотношение помеченных клеток оправился от селезенки получателей животных. Пропорции флуоресцентный зеленый или оранжевый люминесцентные клеток представлены в процентах от общего восстановленного splenocytes, с каждой точки данных, представляющих одного получателя животных. Всего, помечены клетки являются показано (треугольник), а также подмножества, которые также витражи позитивные для поверхностных маркеров ячейки CD19 (квадрат) или CD3 (круг). Пунктирная линия является линией идентичности где соотношение между цветами равен 1. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Количественная оценка миграции иммунных клеток может быть достигнуто с помощью простой и быстрый assays в пробирке и в естественных условиях. Мы демонстрируем хемотаксис в vitro человека моноцитов в ответ на МКП-1 градиента и увеличение в сыворотке крови. В естественных условиях, доноров мышиных splenocytes дифференциально были помечены и после приемных передачи, были извлечены из получателей животных.
С помощью reader плита имеет преимущество выборки несколько моментов времени (так часто, как каждые 30 s) и автоматизация количественный перенос клетки. Это устраняет необходимость выбрать один момент для оценки и во избежание более трудоемкие методы ручной подсчет отдельных скважин. Кроме того этот метод обеспечивает более динамичной информации, чем может быть собрана по микроскопии. В ходе анализа следует иметь в виду, что клетки будут падать insert в нижней камере и не будет способствовать интенсивности флуоресценции. Таким образом количество клеток на нижней вставки, как указано относительное флуоресцирование, будет функцией скорость миграции и курс, по которому клетки падают insert.
Больше клеток может потребоваться вставка с более крупные поры, и 8 мкм пористые вставки доступны. Небольшие клетки (включая родной лимфоцитов) не может быть достаточно ярким, чтобы быть достоверно обнаружен fluorimeter и могут потребовать оценки по микроскопии, особенно для небольших изменений в хемотаксис. Некоторые типы клеток может быстро пройти в нижней палате решение и не имеют достаточно долго время пребывания на Вставка, чтобы обнаружить, что приводит к кривой уплощенная. В этом случае клетки может быть определена количественно, цитометрии непосредственно из нижней палатой решения, или вставить матрица покрытием может использоваться для удлинения транзитное время наряду с помощью инструкции insert с меньше поры (например 1 мкм).
Решающее значение для этих анализов является выявление надежных мигрирующих условий. В vitro исследования изучал тип ячейки должна быть способна реагировать хемотаксического, и необходимые сопутствующие факторы необходимо учитывать. Оптимизация может потребоваться для плотность ячеек введена в верхней палате. В целом более высокая плотность приведет к более сильный сигнал, но это необходимо соотносить с выше миграции неспецифичный сигнал. Диапазон концентраций хемотаксического может также помочь выявить подходящего временного окна для захвата миграции.
Этот метод также может быть адаптирована для использования нескольких цветов. Предположительно, это уменьшит изменчивости, а также увеличивает количество условий, которые могут быть включены в единый assay. Главным фактором здесь является яркость флуоресцентных красителей. Флуорексон-ам очень яркий и поэтому легко обнаруженных микроскопа и пластины чтения приложениями. Тогда как красители используются для исследования в естественных условиях легко не были обнаружены при микроскопии и производится высокая предпосылка; предположительно это также исключает Точная пластины читателя обнаружения.
В vivo исследований здоровье клеток донора имеет важное значение для сохранения их миграционных функции. Урожай клеток донора должно быть сделано в рамках хирургии-выживание, а не жертву животное доноров и затем уборки клеток, который увеличивает вероятность смерти ишемии и клеток. Время между инъекций и урожай является важным фактором для экспериментов, в которых используются различные клеточных популяций; уровень различия или сходства между клеточных популяций может меняться со временем. Время обработки после сбора урожая от донора до инъекции в получателя должны быть минимизированы. Кроме того важно также совместимость доноров/получателей помощи. Клетки человека будет быстро отклонено мышей, хотя внутри видов аллогенных клеток хорошо переносится на короткий срок. Например, мы не найти разницу в миграции клеток с C57BL/6J или BALB/cJ доноров используются с получателями C57BL/6J в течение 1 ч.
Этот метод в естественных условиях является полезным для оценки различий в миграционных возможности. Оба ввода клетки и получателей животных может подлежать фармакологических или других возмущений. Аналогичным образом получателей животных могут подвергаться воздействию инфекционных или воспалительных стимулы или другие процедуры, которые влияют на лимфоцит людьми12. Этот протокол можно также легко наносить трансгенные мыши линии. В частности те, выражая флуоресцентные белки устранит необходимость для маркировки и могут потенцировать мультиплексирования стратегии.
Важно отметить, что время, в котором различных клеточных популяций смешиваются до инъекции следует сократить как можно больше. Дифференциально помечены клеточных популяций должна быть смешанной, только после того, как получателя животных полностью под наркозом и готовы для инъекций. Можно смешивать красители, присутствующих в различных популяциях, что приводит к неясным разделение между двумя при анализе подачей cytometry. Кроме того различные лечения условия могут влиять на необработанных клетки в это время. Например агенты, которые связывают к клеточной поверхности могут быть переданы необработанных клеток, тем самым смешанные результаты.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторы не имеют ничего сообщать
Acknowledgments
Эта работа была поддержана программа Шварц Бернард л для врача ученые Университета Рокфеллера, Робертсон терапевтического фонда развития в университете Рокфеллера и Саклера центр биомедицины и питания исследований Рокфеллеровский университет.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| RPMI-1640 | Thermo Fisher Scientific | 11875-093 | |
| HEPES | Thermo Fisher Scientific | 15630-080 | |
| Fetal Bovine Serum | ATCC | 30-2020 | |
| Cell culture flask | Corning | 353136 | |
| Calcein AM | Thermo Fisher Scientific | C1430 | Excitation: 485nm, Emission: 520nm |
| Cell culture dish | Corning | 1007 | |
| 24 well plate | Corning | 353504 | |
| Fluoroblok Fibronectin Insert | Corning | CB354597 | |
| 15 mL conical tube | Corning | 352097 | |
| Bovine Serum Albumin | Cell Signaling Technology | 9998S | |
| Human Recombinant MCP-1 | Peprotech | 300-04 | |
| Adult bovine Serum | Sigma | B9433 | |
| HBSS with calcium and magnesium; no phenol red | Thermo Fisher Scientific | 14025-092 | |
| SpectraMax M2e plate reader | Molecular Devices | ||
| Olympus IX71 inverted fluorescence microscope | Olympus | ||
| Isothesia | Henry Schein animal health | 11695-6776-2 | Isofluorane anesthesia |
| Cell strainer 40um nylon | Falcon Corning | 352340 | |
| ACK lysing buffer | Quality Biological | 118-156-101 | |
| CellTracker Orange CMTMR Dye | Thermo Fisher Scientific | C2927 | Excitation: 541nm, Emission: 565nm |
| CellTracker Green CMFDA Dye | Thermo Fisher Scientific | C2925 | Excitation: 485nm, Emission: 520nm |
| 5ml syringe | BD Syringe | 309646 | |
| 1ml TB syringe | BD Syringe | 309625 | |
| THP-1 cell line | ATCC | TIB-202 | |
| Brilliant Violet 421 anti-mouse CD3 Antibody | Biolegend | 100228 | Excitation: 405nm, Emission: 421nm |
| Brilliant Violet 605 anti-mouse CD19 Antibody | Biolegend | 115540 | Excitation: 405nm, Emission: 603nm |
| 96-well round bottom plate | Corning | 353077 | |
| LSRII | BD Biosciences | Flow cytometer |
References
- Griffith, J. W., Sokol, C. L., Luster, A. D. Chemokines and chemokine receptors: positioning cells for host defense and immunity. Annu Rev Immunol. 32, 659-702 (2014).
- Springer, T. A. Traffic signals for lymphocyte recirculation and leukocyte emigration: the multistep paradigm. Cell. 76 (2), 301-314 (1994).
- Ponda, M. P., Breslow, J. L. Serum stimulation of CCR7 chemotaxis due to coagulation factor XIIa-dependent production of high-molecular-weight kininogen domain 5. Proc Natl Acad Sci U S A. 113 (45), E7059-E7068 (2016).
- Boyden, S. The chemotactic effect of mixtures of antibody and antigen on polymorphonuclear leucocytes. J Exp Med. 115, 453-466 (1962).
- Chen, H. C. Boyden chamber assay. Methods Mol Biol. 294, 15-22 (2005).
- Tsuchiya, S., Yamabe, M., Yamaguchi, Y., Kobayashi, Y., Konno, T., Tada, K. Establishment and characterization of a human acute monocytic leukemia cell line (THP-1). Int J Cancer. 26 (2), 171-176 (1980).
- Leonard, E. J., Yoshimura, T. Human monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1). Immunol Today. 11 (3), 97-101 (1990).
- Crouch, M. F. An automated fluorescence based assay of neurite formation. J Neurosci Methods. 104 (1), 87-91 (2000).
- Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nat Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
- Poot, M., Kavanagh, T. J., Kang, H. C., Haugland, R. P., Rabinovitch, P. S. Flow cytometric analysis of cell cycle-dependent changes in cell thiol level by combining a new laser dye with Hoechst 33342. Cytometry. 12 (2), 184-187 (1991).
- West, C. A., He, C., Su, M., Swanson, S. J., Mentzer, S. J. Aldehyde fixation of thiol-reactive fluorescent cytoplasmic probes for tracking cell migration. J Histochem Cytochem. 49 (4), 511-518 (2001).
- Kim, C. H. The greater chemotactic network for lymphocyte trafficking: chemokines and beyond. Curr Opin Hematol. 12 (4), 298-304 (2005).
