Dette nyudviklede fluorescens-baseret teknologi gør det muligt for langsigtet overvågning af transkription af døgnrytmen ur gener i suprachiasmatic kernen (SCN) af frit flytte mus i realtid og med en høj tidsmæssige opløsning.
Denne teknik kombinerer optisk fiber medieret fluorescens optagelser med præcis levering af rekombinant adeno-associeret virus baseret gen journalister. Denne nye og nemme at bruge i vivo fluorescens overvågning system blev udviklet til at registrere ur gen, Cry1, transcriptional rytme i suprachiasmatic kernen (SCN) af frit flytte mus. At gøre det, en Cry1 transskription fluorescens reporter var designet og pakket ind i Adeno-associeret virus. Renset, koncentreret virus blev sprøjtet ind i musen SCN efterfulgt af indsættelsen af en optisk fiber, som blev derefter fast på overfladen af hjernen. Dyrene var vendt tilbage til deres hjem bure og tilladt en 1-måneds postoperativ nyttiggørelse periode for at sikre tilstrækkelig reporter udtryk. Fluorescens blev derefter optaget i frit flytte mus via en i vivo overvågningssystem, der blev bygget på vores institution. For den i vivo optagelse system, blev en 488 nm laser kombineret med en 1 × 4 beam-splitter, inddelt fire laser excitation udgange lige strøm lyset. Denne opsætning givet os mulighed at optage fra fire dyr samtidig. Hver af signalerne, der udsendes fluorescens blev indsamlet via et photomultiplier tube og et datakort erhvervelse. I modsætning til den tidligere bioluminescens i vivo døgnrytmen ur optagelse teknik tilladt denne fluorescens i vivo optagelse system registrering af døgnrytmen ur genekspression under lys cyklus.
I pattedyr styrer suprachiasmatic kernen (SCN) hele kroppens døgnrytme for at koordinere den enkeltes reaktion på eksogene miljømæssige ændringer (f.eks., lys, temperatur, stress, osv.)1. Core clock komponenter består af Per1-3, Cry1-2, urog Bmal1, og spiller en central rolle i reguleringen af døgnrytmen uret i hver celle. Hver celle i SCN indeholder transcriptional aktivator, ur/BMAL1, der fungerer som en heterodimer til inducerer udtryk af PER og græde. PER / CRY kompleks derefter hæmmer funktionen af ur/BMAL1 til at danne en transskription-oversættelse feedback loop, der tager omkring 24 h til fuldstændig2,3.
Tidligere undersøgelser på SCN har hovedsageligt ansat ex vivo SCN skive kultur metode4,5,6 , og mens denne tilgang har givet værdifulde oplysninger, sine begrænsninger har hæmmet vores evne til at få data vedrørende påvirkning af andre hjerne kerner på SCN, samt påvirkning af eksogene stimuli (fxlys) celler bosat i denne vigtige region. I 2001 var Hitoshi Okamura gruppe først til at bruge bioluminescens systemet i vivo genekspression skærm døgnrytmen uret i SCN i frit flytte mus7. Ken-ichi Honma gruppe har tilbragt de sidste par år yderligere at udvikle bioluminescens i vivo optagelse system i SCN8,9,10. Sammen, har disse undersøgelser givet forskerne mulighed for at overvåge døgnrytmen uret i konstant mørke eller efter en lys puls. Men fordi bioluminescens er for svagt til at give mulighed for kontinuerlig overvågning under lys/mørke cyklus, kombineret med det faktum, at lys er den fremherskende signal kræves for SCN-medieret medrivning af døgnrytmen ure11, der er stigende efterspørgsel efter udviklingen af eksperimentelle metoder, der overvinde de begrænsninger i forbindelse med bioluminescens optagelse. Den aktuelle rapport beskriver et fluorescens-baseret system, som blev bygget til at overvåge døgnrytmen uret i SCN- vivo i frit flytte mus. Denne let-at-bruge metode tillader kontinuerlig overvågning under lys/mørke cyklus og giver mulighed for langsigtet observation af transkription af døgnrytmen ur gener i SCN i realtid og med høj tidsmæssige opløsning.
I modsætning til ex vivo metoder, såsom skive kultur4,5, RT-PCR16, og i situ hybridisering17, der kræver, at dyrene aflives, den i vivo optagelse metode giver mulighed for efterforskere at studere døgnrytmen genekspression i et levende dyr. Som sådan, giver denne teknologi mulighed for at evaluere effekten af forskellige fysiske forstyrrelser (fx, søvn, stress, fødeindtagel…
The authors have nothing to disclose.
Vi takke medlemmerne i Zhang lab for at give stimulerende diskussioner og medlemmer i Zhan laboratoriet for teknisk bistand. Denne forskning blev støttet af tilskud 31500860 (til C.Z.) af NSFC, 2012CB837700 (til E.E.Z. og C.Z.) af programmet 973 fra M.O.S.T. i Kina, og af midler fra Beijing Municipal regering. E.E.Z. blev støttet af kinesiske “Rekruttering Program af Global Ungdom eksperter”.
KOD Plus Neo | TOYOBO | KOD-401 | Reagent |
pVENUS-N1 | addgene | #61854 | Plasmid |
pcDNA3.3_d2eGFP | addgene | #26821 | Plasmid |
pAAV-EF1a-double floxed-hChR2(H134R)-mCherry-WPRE-HGHpA | addgene | #20297 | Plasmid |
MluI | Thermo Scientific | FD0564 | Reagent |
EcoRI | Thermo Scientific | FD0274 | Reagent |
Gibson Assembly Mix | NEB | E2611s | Reagent |
Lipofectamine 2000 | Thermo Scientific | 12566014 | Reagent |
Syringe Filter | EMD Millipore | SLHV033RS | 0.45 µm |
HiTrap heparin columns | gelifesciences | 17-0406-01 | 1 mL |
Amicon ultra-4 centrifugal filter | EMD Millipore | UFC810024 | 100,000 MWCO |
Benzonase nuclease | Sigma-Aldrich | E1014 | Reagent |
Sodium deoxycholate | Sigma-Aldrich | D5670 | Make fresh solution for each batch |
mouse stereotaxic apparatus | B&E TEKSYSTEMS LTD | #SR-5M/6M | Equipment |
pentobarbital | SigmaAldrich | #1507002 | Reagent |
mouse stereotaxic apparatus | B&E TEKSYSTEMS LTD | #SR-5M/6M | Equipment |
Hydrogen peroxide solution | SigmaAldrich | #216763 | Reagent |
Optical Fiber | Thorlabs | FT200EMT | 0.39 NA, Ø200 µm |
microsyringe pump | Nanoliter 2000 Injector, WPI | Equipment | |
ceramic ferrule | Shanghai Fiblaser | 230 μm I.D., 2.5 mm O.D. | |
Gene Observer | BiolinkOptics | Equipment |