Summary
Wir präsentieren Ihnen ein Protokoll rechtsventrikuläre Dysfunktion durch Induktion ARDS in ein Schwein-Modell zu schaffen. Wir demonstrieren, invasives monitoring von links und rechts, ventrikuläre Herzzeitvolumen mit Flow in der Aorta und der Lungenarterie sowie Blutdruckmessungen in der Aorta und Lungenarterie Sonden.
Abstract
Eine der Hauptursachen für Morbidität und Mortalität bei Patienten mit Herzinsuffizienz ist rechtsventrikuläre Dysfunktion (RV), vor allem, wenn es aufgrund von pulmonaler Hypertonie. Für ein besseres Verständnis und Behandlung dieser Krankheit ist die präzise hämodynamische Überwachung von links- und rechtsventrikuläre Parameter wichtig. Aus diesem Grund ist es unentbehrlich, experimentellen Schwein Modelle kardiale Hämodynamik und Messungen für Forschung Zweck.
Dieser Artikel beschreibt die Induktion von ARDS mit Ölsäure (OA) und daraus resultierenden rechtsventrikuläre Dysfunktion sowie die Besetzung der Schweine-die Datenerfassung, die benötigt wird, um die hämodynamischen Parameter zu bewerten. Um rechtsventrikuläre Dysfunktion zu erreichen, wir benutzten Ölsäure (OA), um ARDS zu verursachen und begleitet dies mit Lungenarterie Hypertonie (PAH). Mit diesem Modell der PAH und in Folge rechtsventrikuläre Dysfunktion vielen hämodynamischen Parameter gemessen werden und rechtsventrikuläre Volumen Last detektiert werden.
Alle wichtigen Parameter, einschließlich der Atemfrequenz (RR), Herzfrequenz (HF) und Körpertemperatur wurden während des gesamten Experiments aufgezeichnet. Hämodynamischen Parameter einschließlich Femoral Arterie Druck (FAP), Aortendruck (AP), rechtsventrikulärer Druck (Peak systolischen, Ende systolischen und diastolischen rechtsventrikulärer Druck Ende), zentraler venöser Druck (CVP), Lungenarterie Druck (PAP) und linken arteriellen Druck (LAP) sowie Perfusion Parameter einschließlich aufsteigende Aorta (AAF) und Pulmonalarterie (PAF) gemessen wurden. Hämodynamische Messungen wurden durchgeführt mit Transcardiopulmonary Thermodilution um Herzzeitvolumen (CO) zu bieten. Darüber hinaus wurde das PiCCO2-System (Pulse Contour Cardiac Output System 2) zur Empfangsparameter wie Schlaganfall Beschäftigungsabweichung (SVV), Puls Druckschwankung (PPV), sowie extravascular Lunge Wasser (EVLW) und End-diastolischen Gesamtvolumen (GEDV). Unsere monitoring-Verfahren eignet sich für die rechtsventrikuläre Dysfunktion Erkennung und Überwachung hämodynamische Ergebnisse vor und nach Volumengabe.
Introduction
Rechtsventrikulärer Dysfunktion (RV) ist eine der Hauptursachen für Morbidität und Mortalität bei Patienten mit Herzinsuffizienz1, vor allem, wenn die zugrunde liegende Ursache Lungenhochdruck2. Die RV pumpt Blut in niederohmige Lungensystems, die normalerweise mit hohen Compliance einhergeht. Daher zeichnet sich die RV durch niedrige Spitzendruck systolischer. Es erzeugt auch ein Sechstel die Schlaganfall-Arbeit im Vergleich mit dem linken Ventrikel (LV)3. Aufgrund seiner dünner Muskel ist die RV sehr anfällig für eine Veränderung in der vor- und Nachlast4,5. Die Phasen der Isovolumic Kontraktion und Entspannung während der Systole und Diastole in der RV sind nicht so ausgeprägt wie in der LV Die Prüfung der linken und rechten Ventrikels hämodynamischen Parameter ist sehr wichtig in der Therapie von kritisch kranken Patienten mit akuten Herzen not4,7, weil RV Scheitern kurzfristige Mortalität deutlich erhöht 6.
Vorspannung Parameter wie die zentralen Venendrucks (CVP) und linken ventricular Vorspannung Parameter wie pulmonaler Kapillaren Keil Druck (PCWP) wurden für eine lange Zeit verwendet, um die Volumestatus des Patienten zu bestimmen. In letzter Zeit hat sich gezeigt, dass diese Parameter allein nicht geeignet, um einen Patienten von Flüssigkeiten8,9,10erkennen sind. Erkennen Flüssigkeit Reaktionsfähigkeit ist wichtig, zu erkennen und behandeln Volumen Deprivation und Volumen Überlastung bei Patienten mit RV-Dysfunktion. Vermeidung von Volumen-Überladung ist wichtig, die Sterblichkeit und Aufenthaltsdauer Intensivstation (ICU) bei diesen Patienten zu verringern.
Mit dieser Studie haben wir ein Schwein-Modell der rechtsventrikuläre Dysfunktion, der konsistent und replizierbar ist. Aufgrund seiner Ähnlichkeit mit Menschen ist es notwendig, konsequente und reproduzierbare experimentelle große Tiermodellen kardiale Hämodynamik und Messungen für Zwecke der Forschung zu etablieren.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Diese prospektive experimentelle Studie mit 21 narkotisierten männlicher und weiblicher Hausschweine (deutsche Landrasse) im Alter von 3 – 6 Monate mit einem Körpergewicht zwischen 45-55 kg wurde von der staatlichen Kommission für die Pflege und Nutzung von Tieren der Stadt Hamburg (genehmigt. Reference-No. 18/17). Nach der Ankunft Richtlinien alle Experimente wurden durchgeführt und alle Tiere erhalten Pflege in Übereinstimmung mit den "Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren" (NIH Publikation Nr. 86-23, überarbeitete 1996)11.
1. Flow Sonde zwei-Punkt-Kalibrierung
- Flow Sonden in entionisiertem Wasser und verbinden Sie die Sonde mit dem transonic Flow Sondensystem, indem man den Stecker in das perivaskuläre-Flow-Modul.
- Öffnen Sie die Daten-Analyse-Software (zB., LabChart 8).
- Für eine zwei-Punkt-Kalibrierung starten einer Messung durch Festlegen der Flow-Sonde-System auf null und nach ein paar Sekunden zu skalieren.
- Im Datenfenster-Analyse-Software zur Einheitenkonvertierung und zwei-Punkt-Kalibrierung zu wählen. Markieren Sie eine Basislinie auf Null gesetzt. Dann markieren Sie einen Bereich mit 10 L/min und auf 1 V als einen voreingestellten Wert gesetzt.
- Wiederholen Sie den Vorgang für die anderen Sonde.
(2) millar Katheter Kalibrierung
- Vor dem Einschießen und Kalibrierung Pre-Einweichen Sie die Spitze des Katheters in sterilen Körper Temperatur warmem Wasser für 30 Minuten.
- Der Brückenverstärker schließen Sie Millar Katheter indem man den Stecker in die Brücke Verstärker-Modul an.
- Starten Sie die Software zur Datenanalyse.
- Setzen Sie die Spitze des Katheters in genullt Druckluftwerkzeug, legen Sie den Wert auf 0 MmHg und Starten einer Messung mit einem Klick starten im Programm.
- Halten Sie die Messung läuft und genullt Druckluftwerkzeug auf 100 MmHg festgelegt. Beenden Sie die Messung durch Klicken auf beenden.
- Führen Sie die Datenanalyse-Software durch Drücken der Taste starten und drücken Sie Stop. Klicken Sie auf Verstärkung im Bridge-Fenster und wählen Sie Einheiten. Die Grundlinie von 0 bis 100 MmHg, entsprechend einstellen. Jetzt ist der Katheter nach der voreingestellte Wert für die Kalibrierung, die die Software bietet für alle Körper Drücke kalibriert.
- Wiederholen Sie den Vorgang für die anderen Millar Katheter.
3. Vorbereitung des Schweins
- Behandeln Sie das Schwein zu, durch die Injektion von 20 mg/kg Ketanest, 4 mg/kg Azaperon und 0,1 mg/kg Midazolam intramuskulär und legen Sie eine 20 G IV-Linie in eine Vene des Ohres.
- Ort EKG-Aufkleber auf der Brust und Sauerstoff Sonde am Heck.
- Verwalten von reinem Sauerstoff (15-18 L/min) über das Schwein Nase mit Hilfe einer Maske und chirurgisch bereiten auf die Luftröhre.
- Legen Sie eine Schleife um die Luftröhre, verwenden ein Skalpell (11 Blatt), um einen Schnitt in die Luftröhre und eine 8,5 Mallinckrodt Rohr setzen, für eine sichere Atemweg. Fixieren Sie das Rohr mit der voreingestellten Schleife und schließen Sie die Haut mit Nähten.
- Beginnen Sie Anästhesie mit Sevofluran mit einem MAC von 0,9 (bei Heranwachsenden Schweinen entspricht eine Endexpiratory Konzentration von 2,0 %) und Infusion von 0,01 mg/(kg∙h) Fentanyl. Beatmung mit Tidalvolumen von 10 mL/kg, eine Rate von 14/min beginnen und ein positives Ende exspiratorischen Druck (PEEP) von 7 MmHg. Legen Sie die inspiratorische Sauerstoff-Rate (FiO2) auf 0,3. Nach 10 min ist die Tiefe der Narkose tief genug, um sicher operieren. Keine Höhendifferenz zwischen HR und BP sollte erkannt werden.
- Pflegen Sie Flüssigkeitshaushalt im basalen Volumenrate 10 mL/(kg∙h) Cristalloid mit Hilfe einer Infusionspumpe.
- Reinigen Sie sanft das Schwein Haut mit Seifenwasser. Verwenden Sie eine Haut-Desinfektion-Lösung mit Povidon-Jod, um Kontamination der Haut zu verringern.
4. wichtiger Parameter Messungen
- Verwenden Sie eine Ultraschalluntersuchung für einfügen ein 5 F Thermistor arterielle Katheter in die richtigen Femoral Arterie, ein 8 F Einführhilfe Mantel in die linke Femoral Arterie, einen zentralen Venenkatheter und eine 8 F Einführhilfe Mantel in die Halsschlagader (Abbildung 1) gekippt.
- Legen Sie die Katheter-Platzierung mit Seldingertechniks Technik12.
- Legen Sie eine Nadel in das Ziel-Schiff unter Ultraschall-Sicht.
- Setzen Sie einen Draht durch die Nadel in das Gefäß, überprüfen Sie die korrekte Platzierung des Drahtes mittels Ultraschall und halten Sie den Draht in das Schiff während des gesamten Verfahrens. Entfernen Sie die Nadel und einen Dilator auf den Draht.
- Setzen Sie mit sanftem Druck den Dilatator durch die Haut in das Gefäß mit dem Draht als Orientierungshilfe. Der Dilatator zu entfernen, setzen den Katheter auf den Draht, achten Sie darauf, das Ende des Drahtes ist gesehen am Ende des Katheters und des Ortes der Katheter in das Gefäß.
- Entfernen Sie das Kabel durch den Katheter vorsichtig herausziehen.
- 8F Einführhilfe Scheide einfügen Sie 7F Lungenarterie Katheter (PAC) und platzieren Sie es in das Wohnmobil. Bei Bedarf für die Aufnahme gemischt venöses Blut Gasproben der PA stecken Sie die PAC weiter, bis eine Lungenarterie Kurve angezeigt wird, auf den Monitor und ziehen Sie es wieder nach Erhalt der Proben.
- Legen Sie den ersten Millar-Tip-Katheter in 8F Einführhilfe Mantel in die linke Femoral Arterie und stellen Sie es in der Aorta.
- Führen Sie eine Mini-Laparotomie (ca. 5 – 10 cm ist ausreichend) über den After mit dem Elektrokauter zur Vorbereitung auf die Linea Alba.
- Öffnen Sie die Linea Alba mit Schere und die Blase sehr vorsichtig herausziehen.
- Setzen Sie eine Geldbörse Zeichenfolge Naht in der Blase mit einer 3/0-Naht und einen Einschnitt in die Blase mit einem Skalpell (11 Blatt).
- Ein Blasenkatheter in die Blase, Pumpen Sie den Katheter Ballon mit Wasser und befestigen mit Hilfe der Tabaksbeutelnaht. Schließen Sie den Bauch mit einer 3/0-Naht.
5. chirurgische Vorbereitung des Herzens
- Vor dem Öffnen der Truhe Erhöhung der FiO2 bis 1,0 und 0,1 mg kg(-1) Pancuronium anfängliche Bolus intravenös verabreichen13.
- Führen Sie eine mediane Sternotomie.
- Verwenden Sie die Elektrokauterisation zur Vorbereitung auf das Brustbein. Sanft sezieren des Brustbeins aus dem umgebenden Gewebe vor der Teilung des Knochens mit einer oszillierenden Säge.
- Verwenden Sie die Elektrokauterisation zu reduzieren, Blutungen und das Brustbein mit Knochen Wachs zu versiegeln. Legen Sie sternale Rippen Streuer zwischen den beiden Hälften des Brustbeins, geöffnete und weit öffne die Truhe, so viel wie für eine Operation nötig, durch Drehen am Griff auf dem Gerät.
- Öffnen Sie das Perikard vorsichtig mit Schere und Pinzette und befestigen Sie ihn an der Haut mit einer Naht 2/0.
- Sezieren Sie die Lungen-und die Arterie, die aufsteigende Aorta sehr sanft um Blutungen zu vermeiden. Legen Sie vorsichtig Fluss Ultraschallsonden um beide Arterien bzw. (Abbildung 2).
- Platz 2 Handtasche Zeichenfolge Nähte in der Lungenarterie mit einer 5/0-Naht. Verwenden Sie ein Skalpell (11 Blatt), um einen kleinen Einschnitt (ca. 1 mm) in der Mitte den Geldhahn zu nähen und die Lungenarterie Millar Katheter setzen Sie vor der Befestigung (Abbildung 3).
- Sorgfältig spannen Sie der LAA ein und 2 Handtasche Zeichenfolge Nähte in es mit einer 4/0-Naht. Einen kleinen Schnitt und einen zentralen Venenkatheter in den linken Vorhof vor der Befestigung mit der Geldbörse Zeichenfolge Nähte (Abbildung 3).
- Schließen Sie das Perikard durch Vernähen einen sterilen Handschuh drauf, weiterhin eine zuverlässige Hämodynamik (Abbildung 4). Durchführen der sternalen Schließung mit Drähten und schließen Sie die Haut mit einer Naht 3/0.
6. Bewertung und Datenerfassung
- Jede Messung mit 2 min von AO und PA Durchflussmessungen sowie AO und PA Druckmessungen mit der Datenanalyse-Software durch Klicken auf Start und Stopp -Taste in das Programm zu starten.
- Führen Sie Transcardiopulmonary Thermodilution Herzzeitvolumen (CO) bieten sowie Puls Druckschwankung (PPV) und Schlaganfall Beschäftigungsabweichung (SVV aus) mithilfe des PiCCO2-Systems. Um die Messung zu starten, klicken Sie auf die TD | Starten Sie.
- Konsekutiv 15 mL von 10 ° C kalten Kochsalzlösung in ein Thermistor in der zentralen Venenkatheter in die Halsschlagader dreimal für Thermodilution bei jeder Messung Schritt injizieren.
- Nehmen Sie eine arterielle, zentrale venöse und gemischt venöses Blut Gasprobe nach jedem Transcardiopulmonary Thermodilution Messung Schritt.
7. Umfang optimieren
- Verwalten Sie nach eine Basismessung M0 (Schritt 6.1-6.4) aller Parameter ein Volumen laden Schritt mit 5 mL/kg des kolloidalen Infusion (Voluven) über eine Infusionspumpe, die mit der zentralen Venenkatheter verbunden ist.
- Starten Sie nach 5 min von Gleichgewichtherstellung ein weiteres Messschritt M1 (Schritt 6.1-6.4). Wenn die neu generierte Herzleistung gemessen an Thermodilution mit dem PICCO2 System (siehe Punkt 6.2-6.3) nicht erhöht im Vergleich zu den früher gemessene CO um mindestens 10 %, starten Sie ein anderes Volume laden Schritt (Schritt 7.1).
- Fortfahren Sie mit Volumen be- und Gleichgewichtherstellung Schritten, bis keine weiteren Anstieg der CO von mehr als 10 %. Nun ist eine ausgewogene Flüssigkeitsstatus erreicht.
(8) Induktion von ARDS mit rechtsventrikulärer Dysfunktion
- FiO2 um mindestens 0,5 bis 0,8 je nach Bedarf weiterhin einer SpO2 von mindestens 90 % zu erhöhen.
- Induzieren ein ARDS mit aufeinander folgenden rechtsventrikuläre Dysfunktion durch Infusion von Ölsäure (OA) (0,03 – 0,06 mL/kg für ca. 2 h).
- Verwenden Sie die kontinuierliche Verabreichung von Adrenalin über einen Perfusor (3 mg Adrenalin in 50 mL Kochsalzlösung), Hämodynamik stabil zu halten. Erhöhen Sie die Infusionsrate Bedarf weiterhin eine arterielle Mitteldruck von 50 MmHg.
- Kalzium, Magnesium und Antiarrhythmics hinzufügen (1 % Lidocain) je nach Bedarf während der Infusion von OA zu einem stabilen Sinusrhythmus zu erhalten.
9. Lautstärke optimieren
- Führen Sie nach Induktion von leicht bis mittelschwer ARDS eine weitere Messung aller Parameter (M2) Schritte 6.1-6.4.
Hinweis: Jetzt ist das Baseline-Modell für hämodynamische Messungen im ARDS in einem Schwein-Modell festgelegt. Laden Sie für weitere Untersuchungen auf Volumen Reaktionsfähigkeit bei ARDS und rechtsventrikuläre Dysfunktion Start in Volumen Belastung reduzieren, indem so viel Blutentnahme Bedarf pro Protokoll oder Erhöhung der Lautstärke durch Zugabe einer definierten Menge der Infusion.
10. Abschluss
- Nach Abschluss der Messungen einschläfern Sie die Schweine unter Narkose durch die Injektion von Kaliumchlorid 1mmol/kg intravenös.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Unsere Tiere-Modell zeigt eine Vielzahl von hämodynamischen Parameter bei Schweinen. Aufgrund seiner Ähnlichkeit in der Größe und Hämodynamik können eine leicht die genaue gleiche Ausstattung wie beim Menschen ähnliche Ergebnisse zu erzielen. Jedoch Anästhesie Werte beruhen auf Erfahrungswerten und können sich ändern je nach Gewicht / Alter / Belastung des Schweins. Ein Tierarzt konsultiert werden sollte, um Betäubungsmittel Plan zu bewerten.
Ergebnisse der vorherigen OA induziert akute Lunge Verletzungen (ALI) Modelle inkonsistent13,14,15,16wurden. Frühere Protokolle festgestellt, dass OA verabreicht wurde, mischen Sie es mit Blut, normale Kochsalzlösung oder Verabreichung es rein in das Herz, eine zentrale Vene oder eine periphere Vene in Dosen von 0,6 – 2 mL/kg Körpergewicht17,18. Wir alle oben genannten Methoden ausprobiert und fand heraus, dass rein Verwaltung niedrige Dosen von OA (0,03 – 0,06 mL/kg für ca. 2 h) erreicht die konstantesten Ergebnisse des ARDS ohne irgendwelche Tiere aufgrund respiratorischer Insuffizienz oder schwere akute Rechtsherzinsuffizienz.
Zunächst konnten wir zeigen, dass die intravenöse Infusion von OA eine einfache und gute Modell ist, ARDS zu induzieren, wie zuvor gezeigt. Abhängig von der Menge der OA verabreicht bekommt man einen leichten bis schweren Lungenversagen bis Tod13. Es hat sich gezeigt, dass ein Betrag von etwa 0,1 mL/kg OA meist verwendet wird, um eine moderate ALI16,18haben.
Um eine leichte bis moderate ARDS zu erhalten, die zur weiteren Untersuchung verwendet werden können, ist es ausreichend, injizieren von 0,03-0,06 mL/kg OA. Nach der Verabreichung von diesen kleinen Betrag von OA, die Sauerstoffversorgung der Index sank von 516.83 ± 50,25 MmHg auf 181.19 ± 32.25 MmHg (p = 0,0006) (Abbildung 6). Die Abnahme von sauerstoffreichem Blut wird begleitet mit ein statistisch signifikanter Anstieg der Carboxylated Blut aus 36.71 ± 4.51 MmHg, 46,50 ± 6,87 MmHg (p = 0,008) (Abbildung 7).
Pulmonaler Hypertonie ist definiert als ein PAP von mehr als 25 MmHg, eine PCWP (entspricht den linken arteriellen Druck) ≤ 15 MmHg und einer pulmonalen Gefäßwiderstand (PVR) > 240 dyn × s × cm-5 19,20,21. Gibt es eine Prävalenz von etwa 1 %17 mit dieser gemeinsamen Krankheit weltweit. Der PCWP spiegelt genau normalen und erhöhten SCHOß und Vice Versa18. Unsere Operationen am offenen Herzen Tiermodell verwendeten wir einen Katheter platziert im linken Vorhofflimmern um diesen Wert zu messen, da eine PAC platziert in der Lungenarterie durch die Lunge fließen Sonde falsche Durchflussmessungen (Abbildung 5) führen kann.
Für eine korrekte und vor allem einheitliche Messung des PAP verwendeten wir einen Millar Katheter, der ist direkt in die PA und gelegt in die wichtigsten Lungenarterie (MPA) ca. 2 cm nach der Pulmonalklappe.
Abbildung 1: für sichere und einfache Atemwegsmanagement während der gesamten Operation, führen Sie eine Tracheotomie und Platzierung von einem 8,5 Rohr direkt in die Luftröhre. Je größer der Innendurchmesser des Rohres, desto besser für die Beatmung bei ARDS. Der Katheter in der rechten Halsschlagader und beide Femoral Arterien werden durch Ultraschall mit Seldingertechnik Technik gesetzt. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Abbildung 2: nach dem Öffnen der Herzbeutel, drücken Sie den RV und RAA entfernt sanft zur besseren Visualisierung der Aorta und Lungenarterie. Hämodynamik muss engmaschig überwacht werden, während diese Schritte durch eine verminderte Herzleistung. Sezieren Sie das Bindegewebe des kardialen Skeletts zwischen der palästinensischen Autonomiebehörde und der Aorta sanft, zumal die PA in Richtung Blutungen aufgrund seiner dünner Wand sehr veranlagt ist. Wählen Sie das Recht große chronische gefütterte niedrigen Sonden (meist 18-20 mm), um der Aorta und der Lungenarterie setzen. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Abbildung 3: verwenden eine vaskuläre Klammer um die LAA zu beheben und Blutungen zu vermeiden. Für sichere Chirurgie Platz zwei Geldbörse Zeichenfolge Nähte um eine Kante des LAA, einen kleinen Einschnitt und setzen den Katheter in das Herz. Schnell öffnen Sie die Halterung um positionieren Sie den Katheter ca. 5 cm tief in den linken Vorhof während der Überwachung der Druckkurve. Positionieren Sie den Katheter nach Bedarf. Befestigen Sie den Katheter mithilfe der Geldbörse Zeichenfolge Nähte. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Abbildung 4: sehr sanft setzen zwei Geldbeutel Zeichenfolge Nähte in der PA Um unnötige Blutungen zu vermeiden, verwenden Sie eine Blutsperre auf den Geldbeutel. Machen Sie einen kleinen Schnitt zu und Millar Katheter in die Lungenarterie und sofort herunterziehen Sie der Blutsperre. Befestigen Sie es mit beiden Fäden. Sonde als Shell für beide aortal und pulmonale Flow-Sonden zu verhängen. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Abbildung 5: verwenden Sie einen Patch um das Perikard schließen. Weil Zunahme der Öffnung das Perikard während der Herzchirurgie dazugehört CO und Schlaganfall arbeiten Index, wählten wir das Perikard mit einem Patch zu hämodynamische Bedingungen ähnlich denen, die vor der Operation19halten in der Nähe. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Abbildung 6: Da wir den Sauerstoff-Anteil durch das ARDS pulmonale Beeinträchtigungen erhöht, wurde der Oxygenierung Index für jeden Messschritt berechnet. Wir waren in der Lage zu sehen, einen Rückgang von 516.83 ± 50,25 MmHg in der Baseline-Messung (1) auf 181.19 ± 32.25 MmHg (p = 0,0006) nach der Verabreichung von OA (5). Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Abbildung 7: Zusammen mit dem Rückgang von sauerstoffreichem arteriellem Blut geht einen statistisch signifikanten Anstieg der Carboxylated Blut nach Induktion von ARDS. Die Basismessung war bei 36.71 ± 4.51 MmHg und stieg auf 46,50 ± 6,87 MmHg (p = 0,008) nach der Verabreichung von OA. Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
ARDS, kompliziert durch pulmonale Hypertonie ist eine sehr tödliche Krankheit. Für Patienten, die leiden unter dieser Bedingung ist weitere Informationen zur Behandlung notwendig. Beim Arbeiten und forschen mit Lebewesen, ist es sehr wichtig, so vernünftig wie möglich sein. In diesem Fall ist es notwendig, so viele Informationen wie möglich in einem Experiment zu sammeln.
Es gibt einige wichtige chirurgische Schritte in einem offenen schlagenden Herzmodell wie folgt. Wenn Schweine nicht unnötig verwenden möchten, muss ein erfahrener Chirurg, das Herz Skelett zwischen der Aorta ascendens und der Lungenarterie zu zergliedern, während Hämodynamik sind instabil wegen des Drucks auf die RV und RA. Ein weiterer entscheidender Schritt setzt den Millar Tip-Katheter in die Lungenarterie. Um eine bessere Belichtung des Operationsfeldes zu erhalten, muss die rechtsventrikuläre Ausflusstrakt (RVOT) sehr sanft weg geschoben werden. Mit der richtigen Menge an Druck, ist es möglich haben gute Visualibility und Stabilität der PA. Dies macht es einfacher, kleine Häppchen mit 5.0 Naht zu nehmen und verringert das Risiko von Verletzungen oder Blutungen PA.
Bei der Messung der Hämodynamik können eine große Menge an Blut zu verlieren und somit der Hämatokrit erheblich verändert die Messungen und Ergebnisse20beeinflussen. Wenn den Katheter in die Arterie platzieren, könnte eine Blutsperre zuerst zu verwenden und einen sehr kleinen Einschnitt, den Katheter schnell zu beheben jeder Blutverlust verhindern. Sicherstellen Sie, dass vor dem Einführen des Katheters Millar, alle kleinen Blutungen gestoppt werden, weil Elektrokauter den Katheter beschädigt werden kann (wie in den Katheter-Handbuch beschrieben). Nach Schließung Perikardium und dem Brustbein können kleine Blutungen im Laufe der Zeit ansammeln und verursachen Veränderungen in Hämatokrit oder verursachen ein Herzbeutel-Tamponade mit erheblichen Veränderungen in der Hämodynamik. Dadurch kann eine Beendigung des Experiments.
Beim Schneiden in der LA muss man vorsichtig sein. Die LA ist der Schrittmacher des Herzens, und es kann mit Herzrhythmusstörungen reagieren, wenn es mit kalten Instrumente aus Metall berühren. Bevor man die Klammer vorsichtig um die LAA, konnte die Verabreichung von Magnesium Vorhofflimmern (AF) verhindern. Herzrhythmusstörungen wie AF haben großen Einfluss auf linken sowie rechtsventrikuläre Hämodynamik21.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Daniel A. Reuter ist ein Mitglied von Pulsion Medical Advisory Board. Constantin j.c. Trepte erhielt Ehrenpreis für Vorträge von Maquet. Alle anderen Autoren erklären keine Interessenkonflikte.
Acknowledgments
Die Autoren haben keine Bestätigungen.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Animal Bio Amp | ADInstruments | FE136 | |
| Quad BridgeAmp | ADInstruments | FE224 | |
| Power Lab 16/35 | ADInstruments | 5761-E | |
| LabChart 8.1.8 Windows | ADInstruments | ||
| Pulmonary artery catheter 7 F | Edwards Lifesciences Corporation | 131F7 | |
| Prelude Sheath Introducer 8 F | Merit Medical Systems, Inc. | SI-8F-11-035 | |
| COnfidence Cardiac Output Flowprobes | Transonic | AU-IFU-PAUProbes-EN Rev. A 4/13 | |
| Adrenalin | Sanofi | 6053210 | |
| Oleic acid | Sigma Aldrich | 112-80-1 | |
| Magnesium Verla | Verla | 7244946 | |
| Ketamin | Richter Pharma AG | BE-V433246 | |
| Azaperon | Sanochemia Pharmazeutika AG | QN05AD90 | |
| Midazolam | Roche Pharma AG | 3085793 |
References
- Kapur, N. K., et al. Mechanical Circulatory Support Devices for Acute Right Ventricular Failure. Circulation. 136, 314-326 (2017).
- Zochios, V., Jones, N. Acute right heart syndrome in the critically ill patient. Heart Lung Vessel. 6 (3), 157-170 (2014).
- Ranucci, M., et al. Fluid responsiveness and right ventricular function in cardiac surgical patients. A multicenter study. HSR Proceedings in Intensive Care and Cardiovascular Anesthesia. 1 (1), 21-29 (2009).
- Mehta, S. R., et al. Impact of right ventricular involvement on mortality and morbidity in patients with inferior myocardial infarction. Journal of the American College of Cardiology. 37, 37-43 (2001).
- Vieillard-Baron, A., Charron, C. Preload responsiveness or right ventricular dysfunction. Critical Care Medicine. 37 (9), 2662-2663 (2009).
- Marik, P. E., Baram, M., Vahid, B. Does central venous pressure predict fluid responsiveness? A systematic review of the literature and the tale of seven mares. Chest. 134 (1), 172-178 (2008).
- Marik, P. E., Cavallazzi, R. Does the central venous pressure predict fluid responsiveness? An updated meta-analysis and a plea for some common sense. Critical CareMedicine. 41 (7), 1774-1781 (2013).
- Eskesen, T. G., Wetterslev, M., Perner, A. Systematic review including re-analyses of 1148 individual data sets of central venous pressure as a predictor of fluid responsiveness. Intensive Care Medicine. 42 (3), 324-332 (2016).
- Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: the ARRIVE guidelines for reporting animal research. Osteoarthritis and cartilage, Osteoarthritis Research Society. 20 (2), 56-60 (2012).
- Akella, A., Sharma, P., Pandey, R., Deshpande, S. B. Characterization of oleic acid-induced acute respiratory distress syndrome model in rat. Indian Journal of Experimental Biology. 52 (7), 712-719 (2014).
- Meinhardt, J. P., Friess, U., Bender, H. J., Hirschl, R. B., Quintel, M. Relationship among cardiac index, inspiration/expiration ratio, and perfluorocarbon dose during partial liquid ventilation in an oleic acid model of acute lung injury in sheep. Journal of Pediatric Surgery. 40 (9), 1395-1403 (2005).
- Zhu, Y. B., et al. Atrial natriuretic peptide attenuates inflammatory responses on oleic acid-induced acute lung injury model in rats. Chinese Medical Journal (English. 126 (4), 747-750 (2013).
- Gould, D. A., Baun, M. M. The Role of the Pulmonary Afferent Receptors in Producing Hemodynamic Changes during Hyperinflation and Endotracheal Suctioning in an Oleic Acid-Injured Animal Model of Acute Respiratory Failure. Biology Research for Nursing. 1 (3), 179-189 (2000).
- Galie, N., et al. 2015 ESC/ERS Guidelines for the diagnosis and treatment of pulmonary hypertension. European Heart Journal. 37, 67-119 (2015).
- Galie, N., et al. 2015 ESC/ERS Guidelines for the diagnosis and treatment of pulmonary hypertension: The Joint Task Force for the Diagnosis and Treatment of Pulmonary Hypertension of the European Society of Cardiology (ESC) and the European Respiratory Society (ERS), Endorsed by: Association for European Paediatric and Congenital Cardiology (AEPC), International Society for Heart and Lung Transplantation (ISHLT). European Respiratory Journal. 46, 903-975 (2015).
- Oliveira, R. K., et al. Usefulness of pulmonary capillary wedge pressure as a correlate of left ventricular filling pressures in pulmonary arterial hypertension. Journal of Heart and Lung Transplantation. 33 (4), 459 (2014).
- Hoeper, M. M., et al. A global view of pulmonary hypertension. Lancet Respiratory Medicine. 4, 306-322 (2016).
- Nagy, A. I., et al. The pulmonary capillary wedge pressure accurately reflects both normal and elevated left atrial pressure. American Heart Journal. 167 (6), 876-883 (2014).
- Daughters, G. T., et al. Effects of the pericardium on left ventricular diastolic filling and systolic performance early after cardiac operations. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 104 (4), 1084-1091 (1992).
- Zimmerman, R., et al. Posttransfusion Increase of Hematocrit per se Does Not Improve Circulatory Oxygen Delivery due to Increased Blood Viscosity. Anesthesia & Analgesia. 124 (5), 1547-1554 (2017).
- Giglioli, C., et al. Hemodynamic effects in patients with atrial fibrillation submitted to electrical cardioversion. International Journal of Cardiology. 168 (4), 4447-4450 (2013).
