Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Invasiva hemodynamiska övervakning av aorta och Pulmonell artär hemodynamiken i en stor djurmodell av ARDS

Published: November 26, 2018 doi: 10.3791/57405

Summary

Vi presenterar ett protokoll för att skapa rätt vänsterkammardysfunktion i en gris modell genom att inducera ARDS. Vi visar invasiv övervakning av vänster och höger ventrikulära hjärtminutvolym med hjälp av flöde sonder runt kroppspulsådern och lungartären, as well as blodtrycksmätningar i stora kroppspulsådern och lungartären.

Abstract

En av de ledande orsakerna till morbiditet och mortalitet hos patienter med hjärtsvikt är höger kammare (RV) dysfunktion, speciellt om det är på grund av pulmonell hypertension. För en bättre förståelse och behandling av denna sjukdom är det viktigt att exakt hemodynamiska övervaka parametrar för vänster och höger kammare. Av denna anledning är det viktigt att fastställa experimentella gris modeller av hjärt hemodynamiken och mätningar för forskning syfte.

Denna artikel visar induktion av ARDS med hjälp av oljesyra (OA) och åtföljande rätt vänsterkammardysfunktion, samt instrumenteringen av svin och förvärvsprocessen data som behövs för att bedöma hemodynamiska parametrar. För att uppnå rätt ventrikulär dysfunktion, vi använde oljesyra (OA) orsakar ARDS och åtföljs detta med lungartären hypertension (PAH). Med denna modell av PAH och i följd just vänsterkammardysfunktion, många hemodynamiska parametrar kan mätas, och höger kammare volym belastning kan upptäckas.

Alla viktiga parametrar, inklusive andningsfrekvens (RR), puls (HR) och kroppstemperatur registrerades hela hela experimentet. Hemodynamiska parametrar inklusive aorta Press (AP), höger kammare trycket (peak systoliskt, slutet systoliskt och diastoliskt på slutet för höger kammare), lårbensartären trycket (FAP), centrala venösa trycket (CVP), pulmonella arteriella trycket (PAP) och vänstra artärtryck (LAP) mättes samt perfusion parametrar inklusive stigande aorta flöde (AAF) och lungartären flöde (PAF). Hemodynamiska mätningar utfördes med transcardiopulmonary thermodilution för att ge hjärtminutvolym (CO). Dessutom användes det PiCCO2 systemet (puls Contour Cardiac Output System 2) ta emot parametrar såsom stroke volume variansen (SVV), pulserar trycket variansen (PPV), samt extravaskulär lung vatten (EVLW) och globala slutet-diastoliska volymen (GEDV). Våra övervakningsförfarande är lämplig för att upptäcka just vänsterkammardysfunktion och övervakning hemodynamiska resultat före och efter administrering av volym.

Introduction

Höger kammare (RV) dysfunktion är en viktig orsak till sjuklighet och dödlighet hos patienter med hjärtsvikt1, särskilt om den bakomliggande orsaken är pulmonell hypertension2. RV pumpar blod in i låg-motstånd pulmonell systemet, som normalt förknippas med hög överensstämmelse. Därför, RV kännetecknas av låg topp systoliska trycket. Det genererar också en sjättedel av stroke arbete jämfört med vänster kammare (LV)3. På grund av dess tunnare muskel är RV mycket sårbara för en förändring i pre- och afterload4,5. Isovolumic faser av kontraktion och avslappning under systole och diastole i RV är inte lika tydliga som i LV. Undersökningen av vänster och höger kammare hemodynamiska parametrar är mycket viktigt i terapi av kritiskt sjuka patienter med akut höger hjärta nöd4,7, eftersom RV misslyckande ökar kortsiktiga dödligheten markant 6.

Förspänning parametrar som centrala venösa trycket (CVP) och vänster ventrikulära förspänning parametrar som pulmonary capillary wedge trycket (PCWP) har använts under en lång tid för att bestämma volymstatus hos patienter. Det har på senare tid visat att dessa parametrar ensam inte är lämpliga att identifiera patientens behov av vätskor8,9,10. Igenkännande vätska lyhördhet är viktigt att upptäcka och behandla volym deprivation och volym överbelasta hos patienter med RV dysfunktion. Undvika volym överbelastning är nödvändigt att minska dödlighet och längden på intensivvårdsavdelningen (IVA) vistelse hos dessa patienter.

Med denna studie har vi etablerat en gris modell av just vänsterkammardysfunktion som är konsekvent och reproducerbart. På grund av sin likhet med människor är det nödvändigt att fastställa konsekvent och reproducerbara experimentella stora djurmodeller av hjärt hemodynamiken och mätningar för forskning syfte.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Denna prospektiva experimentella studie med 21 sövda manliga och kvinnliga tamsvin (tysk lantras) vid en ålder av 3 – 6 månader med en kroppsvikt mellan 45-55 kg godkändes av den statliga kommissionen om vård och användning av djur av staden Hamburg ( Reference-No. 18/17). Enligt riktlinjerna som anländer, alla experiment utfördes och alla djur fick vård i enlighet med 'Guide för skötsel och användning av försöksdjur' (NIH publikation nr 86-23, reviderad 1996)11.

1. flöde sonden två-punkt kalibrering

  1. Lägg flöde sonder i avjoniserat vatten och Anslut sonden till transsonisk flöde sonden systemet genom att sätta i kontakten i modulen perivaskulär flöde.
  2. Öppna programvaran data analys (t.ex., LabChart 8).
  3. För en två-punkt kalibrering, starta en mätning genom att systemets flöde sond till noll och efter några sekunder för att skala.
  4. I fönstret data analys programvara gå till Enheter konvertering och välja två-punkt kalibrering. Markera en baslinje till noll. Sedan markera ett område med 10 L/min och satt till 1 V som ett förinställt värde.
  5. Upprepa proceduren för den andra proben.

2. millar katetern kalibrering

  1. Före nollställning och kalibrering, Blötlägg före spetsen av katetern i sterila kropp temperatur varmt vatten i 30 min.
  2. Anslut Millar katetern till bron förstärkaren genom att sätta i kontakten i bridge förstärkare modulen.
  3. Starta programvaran data analys.
  4. Sätt spetsen på katetern in i pneumatiska œcleanâ verktyget, ange värdet till 0 mmHg och starta en mätning genom att klicka på Start i programmet.
  5. Hålla mätningen kör och ange pneumatisk œcleanâ verktyget till 100 mmHg. Avsluta mätningen genom att klicka på stoppa.
  6. Köra data analysprogrammet genom att trycka på Start och tryck sedan på stoppa. Klicka på Amplify i fönstret på bron och välja enheter. Ställer in baslinje 0 och 100 mmHg, därefter. Enligt det förinställda värdet för kalibrering som programvaran ger, är katetern nu kalibrerad för alla kropp pressar.
  7. Upprepa proceduren för andra Millar katetern.

3. beredning av gris

  1. Medicinera grisen genom att injicera 20 mg/kg av Ketanest, 4 mg/kg av Azaperon och 0,1 mg/kg Midazolam intramuskulärt och placera en 20 G IV-line i en ven i örat.
  2. Plats EKG klistermärken på bröstet och syre sonden på svansen.
  3. Administrera rent syre (15 – 18 L/min) via den gris näsa med en mask och kirurgiskt förbereda ner till luftstrupen.
  4. Placera en slinga runt luftstrupen, använda en skalpell (11 blad) att göra ett snitt in i luftstrupen och placera ett 8,5 Mallinckrodt rör till det för en säker luftväg. Fixa röret med den förinställda loopen och nära huden med suturer.
  5. Börja anestesi med sevofluran med hjälp av en MAC 0,9 (hos unga grisar motsvarar en endexpiratory koncentration av 2,0%) och infusion av 0,01 mg/(kg∙h) Fentanyl. Starta mekanisk ventilation med tidal volym på 10 mL/kg, en hastighet av 14/min, och ett positivt slut utandningstryck (PEEP) 7 mmHg. Ange inspiratorisk syre (fiO2) till 0,3. Efter 10 min är djup anestesi tillräckligt djup för att genomföra en operation på ett säkert sätt. Ingen förhöjning av HR och BP ska identifieras.
  6. Upprätthålla vätskebalansen med basala volym hastighet av 10 mL/(kg∙h) cristalloid med hjälp av en infusionspump.
  7. Försiktigt rengöra den grisens huden med tvål vatten. Använd en hud desinfektion lösning innehållande povidonjod för att minska hud kontaminering.

4. viktiga parametern mätningar

  1. Använda ett ultraljud för att infoga en 5 F termistor tippas arteriell kateter in rätt femoralartären, en 8 F införingshylsa till vänster femoralartären, en central venkateter och en 8 F införingshylsa i halsvenen (figur 1).
  2. Placera katetern placeringen använder Seldingers teknik12.
    1. Placera en nål i målet fartyg enligt ultraljud vision.
    2. Sätta en tråd genom nålen in i kärlet, kontrollera den korrekta placeringen av tråd med hjälp av ultraljud och hålla tråden i fartyget under hela förfarandet. Ta bort nålen och placera en dilatator på kabeln.
    3. Med lätt tryck, sätta dilatator genom huden in i kärlet med tråd som vägledning. Ta bort dilatator, sätta katetern på tråd, se till att änden är sett i slutet av en kateter och placera katetern det in i kärlet.
    4. Ta bort tråden genom att försiktigt dra ut katetern.
  3. Infoga en 7F lungartären kateter (PAC) i det 8F införingshylsa och placera den i RV. Om det behövs för att ta blandade venöst blod gasprover in PAC ytterligare PA tills en lungartären kurva visas på bildskärmen och dra den tillbaka efter att ha mottagit proverna.
  4. Infoga den första Millar-tip katetern i det 8F införingshylsa i den vänstra femoralisartären och placera den i aorta.
  5. Utföra en mini laparotomi (ca 5 – 10 cm är nog) framför bäckenbensfogen med hjälp av diatermi för prepping ner till linea alba.
    1. Öppna linea alba med sax och dra ut blåsan mycket försiktigt.
    2. Sätta en handväska sträng sutur i urinblåsan med hjälp av en 3/0 sutur och gör ett snitt in i urinblåsan med en skalpell (11 blad).
    3. Infoga en urin kateter i urinblåsan, blåsa upp kateterns ballong med vatten och fixa det använder handväska-sträng suturen. Nära buken med en 3/0 sutur.

5. kirurgisk beredning av hjärtat

  1. Innan du öppnar bröstet ökar den fiO2 1.0 och administrera 0,1 mg kg(-1) pancuronium initial bolus intravenöst13.
  2. Utföra en median sternotomi.
    1. Använd diatermi för prepping ner till bröstbenet. Dissekera försiktigt bröstbenet från den omgivande vävnaden innan dividera benet med en oscillerande såg.
    2. Använda diatermi för att minska blödning och försegla bröstbenet med ben vax. Placera en sternala rib spridare mellan de två halvorna av öppnade bröstbenet och allmänt öppna bröstet så mycket som behövs för kirurgi genom att vrida handtaget på enheten.
  3. Öppna hjärtsäck försiktigt med sax och pincett och fixa det till huden med en 2/0 sutur.
  4. Dissekera ner den pulmonell och artär stigande aorta mycket försiktigt för att undvika blödning. Placera försiktigt ultraljud flöde sonderna runt båda artärer, respektive (figur 2).
  5. Plats 2 handväska sträng suturer i lungartären använder en 5/0 sutur. Använd en skalpell (11 blad) för att göra en liten sy snitt (1 mm) i mitten på plånboken och placera Millar katetern i lungartären innan fastställande det (figur 3).
  6. Försiktigt klämma LAA och placera 2 handväska sträng suturer i den med en 4/0 sutur. Gör ett litet snitt och placera en central venkateter in i vänster förmak innan fastställande det använder handväska sträng suturerna (figur 3).
  7. Nära hjärtsäck suturering en steril handske på den och att behålla hemodynamiken tillförlitlig (figur 4). Utföra sternala stängningen med sladdar och nära huden med en 3/0 sutur.

6. bedömning och datainsamling

  1. Börja varje mätning med 2 min för AO och PA Flödesmätningarna, samt AO och PA tryckmätningarna med programvaran data analys genom att klicka Start och stopp i programmet.
  2. Utföra transcardiopulmonary thermodilution för att ge hjärtminutvolym (CO) samt puls trycket variansen (PPV) och stroke volume varians (SVV) med hjälp av PiCCO2 systemet. Starta mätningen, klicka på TD | Starta.
  3. Konsekutivtolkning injicera 15 mL 10 ° C kall saltlösning i en termistor på linjen central venös i halsvenen tre gånger för thermodilution vid varje mätning steg.
  4. Ta en arteriell, central venös och blandade venöst blod gasprov efter varje transcardiopulmonary thermodilution mätning steg.

7. volym optimera

  1. Efter en baslinjemätning M0 (steg 6.1 – 6,4) av alla parametrar, administrera en volym som laddar steg med 5 mL/kg av kolloidal infusion (Voluven) med hjälp av en infusionspump som är ansluten till den central venkateter.
  2. Efter 5 min av Jämviktstiden, börja en annan mätning steg M1 (steg 6.1 – 6,4). Om den nyligen genererade hjärtminutvolymen mätt thermodilution med det PICCO2 systemet (se steg 6,2 – 6.3) inte ökar jämfört med de tidigare uppmätta CO med minst 10%, starta en annan volym lastning steg (steg 7.1).
  3. Fortsätt med volym lastning och Jämviktstiden steg tills det finns inga fler ökning CO av mer än 10%. Nu, en balanserad vätska status uppnås.

8. induktion av ARDS med rätt vänsterkammardysfunktion

  1. Öka den fiO2 till minst 0,5 till 0,8 som krävs för att underhålla en spO2 av minst 90%.
  2. Inducera en ARDS med på varandra följande rätt vänsterkammardysfunktion genom infusion av oljesyra (OA) (0,03 – 0,06 mL/kg för ca 2 h).
  3. Använd kontinuerlig tillförsel av adrenalin med en perfusor (3 mg adrenalin i 50 mL koksaltlösning) för att stabilisera hemodynamiken. Öka infusionshastigheten som krävs för att bibehålla ett genomsnittligt arteriellt tryck på 50 mmHg.
  4. Lägg till kalcium, magnesium och antiarytmika (1% Lidocain) som krävs under infusionen av OA att upprätthålla en stabil sinusrytm.

9. volym optimera

  1. Efter induktion av mild till måttlig ARDS, utför en annan mätning av alla parametrar (M2) genom att slutföra steg 6.1-6.4.
    Obs: Nu basmodellen för hemodynamiska mätningar i ARDS i en gris modell är inställd. För ytterligare utredning på volym lyhördhet i ARDS och rätt vänsterkammardysfunktion börja minska volymen belastningen genom att ta så mycket blod som behövs per protokoll eller öka volymen Ladda genom att lägga till en definierad mängd infusion.

10. slutförandet

  1. Efter att ha avslutat mätningarna avliva grisar under anestesi genom att injicera 1 mmol/kg kaliumklorid intravenöst.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Våra djurmodell visar ett brett utbud av hemodynamiska parametrar hos svin. På grund av dess likhet i storlek och hemodynamik, kan man enkelt använda exakt samma utrustning som används hos människor för att få liknande resultat. Dock anestesi värden bygger på erfarenhet och kan ändras beroende på vikt / ålder / stam av gris.  En veterinär bör konsulteras för att utvärdera bedövningsmedel plan.

Resultaten av tidigare OA inducerad akut lung skada (ALI) modeller var inkonsekvent13,14,15,16. Tidigare protokoll anges att OA har administrerats blanda det med blod, fysiologisk koksaltlösning, eller rent administrerar det i hjärtat, en central ven eller en perifer ven i doser om 0,6 – 2 mL/kg kroppsvikt17,18. Vi provat alla ovanstående metoder och upptäckte att rent administrerande låga doser av OA (0,03 – 0,06 mL/kg för ca 2 h) nått de mest konsekventa resultat av ARDS utan att förlora några djur på grund av andningssvikt eller svår akut högersidig hjärtsvikt.

Vi var först, kunna visa att den intravenösa infusionen av OA är en lätt och bra modell att inducera ARDS som visas innan. Beroende på mängden OA administreras, får man en mild till allvarlig lungskada upp till döden13. Det har visats att ett belopp av cirka 0,1 mL/kg OA används mestadels att ha en måttlig ALI16,18.

För att få en mild till måttlig ARDS som kan användas för vidare utredning, är det tillräckligt att injicera 0,03-0,06 mL/kg OA. Efter administrering av denna lilla mängd OA, syresättning index minskade från 516.83 ± 50,25 mmHg till 181.19 ± 32,25 mmHg (p = 0,0006) (figur 6). Minskningen av syresatt blod är tillsammans med en statistiskt signifikant ökning av carboxylated blod från 36.71 ± 4,51 mmHg till 46,50 ± 6,87 mmHg (p = 0,008) (figur 7).

Pulmonell hypertoni definieras som en PAP på mer än 25 mmHg, en PCWP (som motsvarar den vänstra artärtryck) ≤ 15 mmHg och en pulmonell vaskulär resistens (PVR) > 240 dyn × s × cm−5 19,20,21. Det finns en prevalens på ca 1%17 med detta vanlig sjukdom i världen. PCWP återspeglar både normala och förhöjda LAP och vice versa18. I vår öppen hjärt djurmodell använde vi en kateter som placeras i vänster förmak att mäta detta värde, eftersom PAC placeras i lungartären genom sonden pulmonell flöde kan orsaka felaktiga Flödesmätningarna (figur 5).

För en korrekt och särskilt konsekvent mätning av PAP använde vi en Millar kateter, som sätts direkt i PA och placeras i de viktigaste lungartären (MPA) ca 2 cm efter den pulmonell ventilen.

Figure 1
Figur 1: för säker och enkel airway management under hela operationen, göra en trakeotomi och placering av en 8,5 tube direkt i luftstrupen. Ju större den inre diametern av röret, desto bättre för mekanisk ventilation under ARDS. Katetrar i rätt halsvenen och båda femoral artärer placeras av ultraljud med Seldingers teknik. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figure 2
Figur 2: efter öppnandet hjärtsäck, tryck RV och RAA bort försiktigt för bättre visualisering av stora kroppspulsådern och lungartären. Hemodynamiken måste övervakas noga under dessa steg på grund av en minskad hjärtminutvolym. Dissekera bindväven i den hjärt-skeleton mellan PA och aorta försiktigt, särskilt som PA är mycket predisponerade mot blödning på grund av dess tunnare vägg. Välja rätt storlek kronisk fodrad låg sonder (mestadels 18 – 20 mm) att lägga runt kroppspulsådern och lungartären. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figure 3
Figur 3: Använd en vaskulär klämma fixar LAA och för att undvika blödning. För trygg och säker kirurgi, placera två handväska sträng suturer runt kanten på LAA, att göra ett litet snitt och sätta katetern i hjärtat. Snabbt öppna klämman för att placeras katetern ca 5 cm djupt in i vänster förmak samtidigt övervaka trycket kurvan. Placera katetern vid behov. Fixa katetern genom att använda handväska sträng suturerna. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figure 4
Figur 4: mycket försiktigt sätta två handväska sträng suturer i PA. Undvik onödig blödning, använda ett tryckförband på en av handväska strängar. Göra ett litet snitt och sätta Millar katetern i lungartären och omedelbart dra ner tourniquet. Fixa det med båda suturer. Införa sonden skalet på båda aortaklaff och pulmonell flöde sonder. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figure 5
Figur 5: Använd en lapp för att stänga hjärtsäck. Eftersom öppning av hjärtsäck under hjärtkirurgi går tillsammans med en ökning av CO och stroke fungerar index, valde vi att stänga hjärtsäck med en lapp för att behålla hemodynamiska förhållanden liknande dem som före kirurgi19. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figure 6
Figur 6: Eftersom vi ökat andelen syre på grund av pulmonell nedskrivning av ARDS, beräknades syresättning indexet för varje mätning steg. Vi har kunnat se en minskning från 516.83 ± 50,25 mmHg vid den baseline-mätningen (1) till 181.19 ± 32,25 mmHg (p = 0,0006) efter administrering av OA (5). Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Figure 7
Figur 7: Tillsammans med minskningen av syresatt arteriellt blod går en statistiskt signifikant ökning av carboxylated blod efter induktion av ARDS. Baslinjemätning var på 36.71 ± 4,51 mmHg och ökade till 46,50 ± 6,87 mmHg (p = 0,008) efter administrering av OA. Klicka här för att se en större version av denna siffra.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

ARDS, kompliceras av pulmonell hypertension, är en mycket dödlig sjukdom. För patienter som lider av detta villkor, ytterligare är information om behandling nödvändig. När arbeta och forska med levande varelser, är det mycket viktigt att vara så förnuftigt som möjligt. I detta fall är det nödvändigt att samla så mycket information som möjligt i ett experiment.

Det finns vissa kritiska kirurgiska åtgärder i en öppen-slog hjärtat modell som denna. Att inte använda svin onödigt, måste det finnas en erfaren kirurg att dissekera hjärtat skelettet mellan aorta ascendens och lungartären medan hemodynamik är instabil på grund av trycket på RV och RA. Ett annat viktigt steg är att sätta Millar tip katetern in i lungartären. För att få en bättre exponering av operationsområdet, behöver i höger kammare utflöde tarmkanalen (RVOT) skjutas bort mycket försiktigt. Med rätt mängd tryck, det är möjligt har bra visualibility och stabilitet av PA. Detta gör det lättare att ta små tuggor med 5.0 suturen och minskar risken för PA blödning eller skada.

Vid mätning av hemodynamik, kan förlorar en stor mängd blod och således ändra hematokrit avsevärt påverka mätningarna och resultaten20. När du placerar katetern i artären, kunde först med ett tryckförband och göra ett mycket litet snitt fixar katetern snabbt förhindra blodförlust. Se till att alla små blödningar stoppas innan insättning av Millar katetern, eftersom diatermi kan skada katetern (enligt beskrivningen i handboken för katetrar). Efter stängning av hjärtsäck och bröstbenet kan små blödningar ackumuleras över tiden och orsaka förändringar i hematokrit eller orsaka en perikardiell tamponad med betydande förändringar i hemodynamik. Detta kan orsaka en uppsägning av experimentet.

När skära i LA, måste man vara försiktig. LA är pacemakern hjärtat och den kan reagera med störningar i hjärtrytmen när vidröra det med kall metall instrument. Innan du sätta klämman försiktigt runt LAA, kunde administration av magnesium förhindra förmaksflimmer (AF). Rytmstörningar som AF har stor inverkan på såväl vänster som höger kammare hemodynamiken21.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Daniel A. Reuter är en medlem av Pulsion Medical Advisory Board. Constantin J.C. Trepte har fått hederspris för föreläsningar av Maquet. Alla andra författare förklarar inga intressekonflikter.

Acknowledgments

Författarna har inga bekräftelser.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Animal Bio Amp ADInstruments FE136
Quad BridgeAmp ADInstruments FE224
Power Lab 16/35 ADInstruments 5761-E
LabChart 8.1.8 Windows ADInstruments
Pulmonary artery catheter 7 F Edwards Lifesciences Corporation   131F7 
Prelude Sheath Introducer 8 F Merit Medical Systems, Inc. SI-8F-11-035
COnfidence Cardiac Output Flowprobes Transonic AU-IFU-PAUProbes-EN Rev. A 4/13
Adrenalin Sanofi 6053210
Oleic acid Sigma Aldrich 112-80-1
Magnesium Verla Verla 7244946
Ketamin Richter Pharma AG BE-V433246
Azaperon Sanochemia Pharmazeutika AG QN05AD90
Midazolam Roche Pharma AG 3085793

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Kapur, N. K., et al. Mechanical Circulatory Support Devices for Acute Right Ventricular Failure. Circulation. 136, 314-326 (2017).
  2. Zochios, V., Jones, N. Acute right heart syndrome in the critically ill patient. Heart Lung Vessel. 6 (3), 157-170 (2014).
  3. Ranucci, M., et al. Fluid responsiveness and right ventricular function in cardiac surgical patients. A multicenter study. HSR Proceedings in Intensive Care and Cardiovascular Anesthesia. 1 (1), 21-29 (2009).
  4. Mehta, S. R., et al. Impact of right ventricular involvement on mortality and morbidity in patients with inferior myocardial infarction. Journal of the American College of Cardiology. 37, 37-43 (2001).
  5. Vieillard-Baron, A., Charron, C. Preload responsiveness or right ventricular dysfunction. Critical Care Medicine. 37 (9), 2662-2663 (2009).
  6. Marik, P. E., Baram, M., Vahid, B. Does central venous pressure predict fluid responsiveness? A systematic review of the literature and the tale of seven mares. Chest. 134 (1), 172-178 (2008).
  7. Marik, P. E., Cavallazzi, R. Does the central venous pressure predict fluid responsiveness? An updated meta-analysis and a plea for some common sense. Critical CareMedicine. 41 (7), 1774-1781 (2013).
  8. Eskesen, T. G., Wetterslev, M., Perner, A. Systematic review including re-analyses of 1148 individual data sets of central venous pressure as a predictor of fluid responsiveness. Intensive Care Medicine. 42 (3), 324-332 (2016).
  9. Kilkenny, C., Browne, W. J., Cuthill, I. C., Emerson, M., Altman, D. G. Improving bioscience research reporting: the ARRIVE guidelines for reporting animal research. Osteoarthritis and cartilage, Osteoarthritis Research Society. 20 (2), 56-60 (2012).
  10. Akella, A., Sharma, P., Pandey, R., Deshpande, S. B. Characterization of oleic acid-induced acute respiratory distress syndrome model in rat. Indian Journal of Experimental Biology. 52 (7), 712-719 (2014).
  11. Meinhardt, J. P., Friess, U., Bender, H. J., Hirschl, R. B., Quintel, M. Relationship among cardiac index, inspiration/expiration ratio, and perfluorocarbon dose during partial liquid ventilation in an oleic acid model of acute lung injury in sheep. Journal of Pediatric Surgery. 40 (9), 1395-1403 (2005).
  12. Zhu, Y. B., et al. Atrial natriuretic peptide attenuates inflammatory responses on oleic acid-induced acute lung injury model in rats. Chinese Medical Journal (English. 126 (4), 747-750 (2013).
  13. Gould, D. A., Baun, M. M. The Role of the Pulmonary Afferent Receptors in Producing Hemodynamic Changes during Hyperinflation and Endotracheal Suctioning in an Oleic Acid-Injured Animal Model of Acute Respiratory Failure. Biology Research for Nursing. 1 (3), 179-189 (2000).
  14. Galie, N., et al. 2015 ESC/ERS Guidelines for the diagnosis and treatment of pulmonary hypertension. European Heart Journal. 37, 67-119 (2015).
  15. Galie, N., et al. 2015 ESC/ERS Guidelines for the diagnosis and treatment of pulmonary hypertension: The Joint Task Force for the Diagnosis and Treatment of Pulmonary Hypertension of the European Society of Cardiology (ESC) and the European Respiratory Society (ERS), Endorsed by: Association for European Paediatric and Congenital Cardiology (AEPC), International Society for Heart and Lung Transplantation (ISHLT). European Respiratory Journal. 46, 903-975 (2015).
  16. Oliveira, R. K., et al. Usefulness of pulmonary capillary wedge pressure as a correlate of left ventricular filling pressures in pulmonary arterial hypertension. Journal of Heart and Lung Transplantation. 33 (4), 459 (2014).
  17. Hoeper, M. M., et al. A global view of pulmonary hypertension. Lancet Respiratory Medicine. 4, 306-322 (2016).
  18. Nagy, A. I., et al. The pulmonary capillary wedge pressure accurately reflects both normal and elevated left atrial pressure. American Heart Journal. 167 (6), 876-883 (2014).
  19. Daughters, G. T., et al. Effects of the pericardium on left ventricular diastolic filling and systolic performance early after cardiac operations. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 104 (4), 1084-1091 (1992).
  20. Zimmerman, R., et al. Posttransfusion Increase of Hematocrit per se Does Not Improve Circulatory Oxygen Delivery due to Increased Blood Viscosity. Anesthesia & Analgesia. 124 (5), 1547-1554 (2017).
  21. Giglioli, C., et al. Hemodynamic effects in patients with atrial fibrillation submitted to electrical cardioversion. International Journal of Cardiology. 168 (4), 4447-4450 (2013).

Tags

Medicin fråga 141 Hemodynamic övervakning rätt vänsterkammardysfunktion ARDS flow höger kammare parametrar lungartären hypertoni Millar katetrar sond
Invasiva hemodynamiska övervakning av aorta och Pulmonell artär hemodynamiken i en stor djurmodell av ARDS
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Kluttig, R., Friedheim, T., Behem,More

Kluttig, R., Friedheim, T., Behem, C., Zach, N., Brown, R., Graessler, M., Reuter, D., Zöllner, C., Trepte, C. Invasive Hemodynamic Monitoring of Aortic and Pulmonary Artery Hemodynamics in a Large Animal Model of ARDS. J. Vis. Exp. (141), e57405, doi:10.3791/57405 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter