Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Bioengineering

Vivo에서 부분 간 엔지니어링을에서 위한 쥐를 기초로 새로운 수술 기법

Published: October 6, 2018 doi: 10.3791/57991

Summary

우리 더 vivo에서 부분 간 미래에 엔지니어링을 공부에 대 한 전제 조건으로 쥐에서 vivo에서 단일 간 엽 관류 모델에 대 한 새로운 수술 기법을 설정 합니다.

Abstract

기관 공학 이식에 사용 될 수 있다 간 장기 대체를 생성 하는 새로운 전략 이다. 최근, vivo에서 간 엔지니어링, vivo에서 기관 decellularization repopulation 다음, 포함 떠오르고 있다 유망 접근 방식으로 비보 전 간 공학에. 그러나, 수술 후 생존 하지 달성 했다. 이 연구의 목적은 vivo에서 간 엔지니어링에 대 한 전제 조건으로 선택적 간 엽 관류 쥐에서 vivo에서 의 새로운 수술 기법을 개발 하는 것입니다. 우리는 왼쪽된 측면 엽 통해서만 회로 바이패스를 생성합니다. 다음, 왼쪽된 측면 엽은 heparinized 염 분을 끼얹는다. 실험 4 그룹으로 수행 됩니다 (n = 그룹 당 3 쥐) 20 분, 2 시간, 3 h, 그리고 4 헤 생존의 다른 관류 시간으로 색상의 거시적 보이는 변화와 혈액 세포의 조직학 결정된 부재에 따라는 포털 3 인조와 사인, 성공적인 모델 설립에 대 한 지표로 서 가져온 것입니다. 왼쪽된 측면 엽의 선택적 관류, 후 우리는 왼쪽된 측면 엽, 실제로, 아닙니다 빨강에서 희미 한 노란색을 관찰 합니다. 조직학 평가에서 아니 혈액 세포는 문맥, 중앙 정 맥, 그리고는 사인의 지점에 표시 됩니다. 왼쪽된 측면 엽 막힌된 혈관을 재개 후 빨간색으로 바뀝니다. 12/12 쥐 1 주일 이상에 대 한 절차를 살아 남았습니다. 우리는 1 주일 이상 긴 생존 기간 단일 간 엽 관류 비보에 대 한 수술 모델을 보고 처음. 이전 게시 된 보고서와 달리 여기에 제시 된 기법의 가장 중요 한 장점은 관류의 70%의 모든 절차를 통해 유지 됩니다. 이 기술은 설립 vivo에서 부분 간 엔지니어링을에서 위한 쥐, decellularization 및 recellularization를 포함 하 여 기초를 제공 합니다.

Introduction

장기 이식에 대 한 표시는 지속적으로 확장 하 고 있다. 반면, 장기 기부 속도 장기의 전반적인 품질은 감소, 이식에 대 한 수요 증가에 지도. 간 이식 대기자 명단에 추가 하는 후보자의 수 증가를 계속 (예를 들어, 미국에서 11,340 환자는 2016 년, 추가 된 10,636에에서 비해 2015)1. 상당한 노력에도 불구 하 고 사용 가능한 기관의 수는 임상 요구를 충족 하지 않습니다. 때문에 간 질환의 발병 률 증가, 많은 환자는 기증자 기관 전에 이식 대기자 명단에 말기 간 질환 다 사용할 수 있습니다. 간 기증자 이식에 대 한 거 대 한 수요를 충족 하기 위해 간 조직 엔지니어링 원칙을 적극적으로 되는 사용 하 여 대체 방법을 추구2. 요즘, 간 엔지니어링의 새로 개발된 된 생물 기술 잠재적으로이 부족을 극복할 수 있습니다.

간 엔지니어링 두 단계로 구성 됩니다: acellular 비 계, 발판의 repopulation 다음의 세대. 생물 학적 acellular 간 비 계를 얻으려면 explanted 간 끼얹는다 시스템을 통해 혈관에서 간 세포 물질을 제거할 수 있습니다 또는 비 이온 세제입니다. 대부분의 이전 연구에서 생물 acellular 간 비 계는 나트륨 라우릴 황산 염 및 TritonX100의 조합으로 간 관류에 의해 달성 되었다. 그 결과, 모든 셀 세포 외 매트릭스의 구조를 유지 하는 반면, 제거 되었다. 기관 건설 기계와 성숙한 세포, 간세포, 내 피 세포 선, 및 내 피 세포 또는 중간 엽 줄기 세포 (MSC)의 동시 응용 프로그램의 유무에 관계 없이 기본 hepatocytes 다시 시드해야 했다. 대부분의 연구원은 초점 비보 전 간 엔지니어링3,,45,6,7,8,9,10, 11,12,,1314. 그러나, 대부분의 이전 연구에서 작은 조각의 다시 채울 발판 큐브 다른 heterotopic 이식 사이트에 이식 했다. 몇 가지 연구에서 다시 채울 부분 건설 기계 보조 이식으로 이식 했다. 그러나, 최대한 보고 생존에 72 h8,14했다. 우리가 아는 repopulated 전체 간 이식의 orthotopic 이식은 아직 된 또는 수행에 대 한 게시. 장기 기능과 설계 기관의 이식 그들의 초기에서 여전히 있습니다. 따라서, 공학 비보 전 간 다른 접근은 필요 하다.

Vivo에서 간 공학 간 repopulation 생리 적 조건 하에서 공부 하는 대안을 나타낼 수 있습니다. Vivo에서 간 엔지니어링 비보 전 간 공학에 비해 장점은 매니폴드입니다. Vivo에서 다시 채울 부분 간 발판은 적절 한 온도, 충분 한 산소, 영양소, 및 관류 비보 전 인공 문화 매체와 달리 성장 요인 생리 혈액 관류를 받게 됩니다. 또한, 나머지 부분 정상 간 간장 기능, 주로 장기 생존을 수 있도록 유지 합니다. 이식 비보 전 설계 간 이식 실험 동물의 장기 생존을 유지 하는 그것의 간 기능8의 수 이므로, 우리는 vivo에서 부분 간 engineeringwould 궁극적으로 될 계획을 유망 모델 추가 비보 전보다 더 긴 생존 관찰과 조작된 간의 진화를 연구 하.

최근, 하나의 연구 그룹 (팬 및 동료) 제시, 처음으로, vivo에서15엔지니어링의 기술. 그들은 해부학 및 기술 문제에도 불구 하 고 살아있는 쥐에서 바로 열 등 한 간 엽의 절연된 관류 달성. 그들은의 repopulation vivo에서 쥐 주 hepatocyte 셀 라인을 사용 하 여 첫 번째 자가 결과 보고. 그러나, vivo에서 외과 관류 모델의 팬 외. 단점이 있습니다. 그들은 완전히 문맥 및 동물에 심각한 피해를 일으킬 수 있습니다 열 등 한 베 나 정 맥 차단 희생 쥐에서 단일 간 엽 관류 달성. 실험 쥐의 자가 관측 시간 6 시간만에 후 희생 했다. 따라서, vivo에서 간 엽 관류 기술을 더 개선 수술 후 생존을 달성 하기 위해 필요 합니다.

우리 쥐16, hemodynamic 쥐17, 및 간 바이오 모니터링을 위한 포털 정 맥 cannulation 기술 간 해부학의 이전의 연구에 따라 간 엽 관류, 비보에 대 한 새로운 생존 모델 개발 18 , 19. 절차에 대 한 주요 단계 그림 1A - 1E에 나와 있습니다.

이 기술은 기관 질환에 대 한 화학 절제로 약물 주입, vivo에서 decellularization에 의해 기본 연구 부분 장기 치료에 대 한이 실험 vivo에서 관류 모델을 사용 하 고 싶은 사람들을 위해 적당 하다 (예: , 간 암), 세포 배양의 비보 전 2 차원 및 3 차원 비교 decellularized 매트릭스 vivo에서 세포 문화 시스템20,21,,2223 , 24 , 25 , 26, 그리고 vivo에서 decellularization와 repopulation 엔지니어링 간.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

주택 및 실시 하는 모든 절차는 독일 동물 복지 입법에 따라 했다. 모든 거 즈, 덮 음 옷, 그리고 수술 악기 압력가 마로 소독 하 고 수술을 하기 전에 준비 있습니다. 모든 절차는 무 균 조건 하에서 수행 됩니다.

1. 수술에 대 한 쥐의 준비

  1. 유도 챔버에 쥐를 놓고 쥐 완전히 마 취 때까지 약 3 분, 0.5 L/분 100% 산소와 4% 증발 isoflurane 쥐를 anesthetize.
  2. 유도 실에서 쥐를가지고 고 그것의 몸 무게를 측정.
  3. 복 부에 수술의 모피를 면도.
  4. 마 취를 추가 2 분 동안 isoflurane 챔버에 동물 다시를 넣으십시오.
  5. 부정사 위치에 작업 테이블에 쥐를 놓습니다.
  6. 쥐의 입 지역에 마 취 마스크를 수정 하 고 2% 증발 isoflurane와 0.5 L/min의 유량에서 100% 산소의 지속적인 가스 교류와 취 동물 유지.
  7. 테이프의 조각을 가진 사지를 수정 합니다.
  8. 건조를 방지 하기 위해 두 눈에 수 의사 연 고를 적용 합니다.
  9. 관리 buprenorphine 0.05 mg/kg 피하, 작업 기간 동안 통증을 완화 하.
  10. 70% 알코올의 2 라운드 뒤 요오드 팅 크의 3 라운드와 복 부의 수술 분야를 소독.
  11. 장소에 있는 절 개 만든 것입니다만 노출 하는 복 부의 작업 필드를 두고 주변 거 즈 멸 균.
  12. 쥐의 발가락-핀치 철수 반사 이다 결 석 하는 경우 작업을 수행 하는를 진행 합니다.

2입니다. 개복 술이 쥐의

  1. 가로 복 부 피부와 근육 절 개를가 위 및 전기 coagulator 사용 하 여 확인 합니다.
  2. 수정 하 고 4-0 폴 리 프로필 렌 봉합 사를 사용 하 여 머리 쪽으로 칼 프로세스를 당겨.
    참고: 주의 간 칼 프로세스 더 나은 폭로를 수직으로 들어올려 하지만 심한 호흡 제한 및 질 식 방지 하기 위해 신중 하 게 진행.
  3. 간 노출 하 두 subcostal 후크 머리 쪽으로 복 부 벽의 양쪽을 당겨 복 막 구멍을 엽니다.
  4. 십이지 장 및 소장을 건조를 피하기 위해 moistened 거 즈와 복 부 구멍에 커버.
  5. Moistened 거 즈를 사용 하 여 왼쪽 및 오른쪽 중간로 브를 들어올려 고 간 hilum 더 폭로를 가슴에 대 한 그들을 잡아.
  6. Stereomicroscope (8 배 확대)에서 쥐를 놓습니다.
  7. 드롭 일부 따뜻한 식 염 수에 복 부 및 간 및 내장의 표면에 몇 분 마다 전체 절차 동안 건조를 방지 하기 위해.

3. 왼쪽된 측면 엽 내 바이패스 통로의 설립

  1. 왼쪽된 문맥을 해 부하 고 기지 (그림 2A)에서 6-0 비단 봉합 사로 선.
  2. 왼쪽된 중간 엽 (그림 2B)에 perfusate의 흐름을 방지 하기 위해 마이크로 클램프 왼쪽된 간 동맥, 왼쪽된 중간 문맥, 왼쪽된 중간 간 동맥, 및 왼쪽된 중간 담 즙 덕트 왼쪽된 담 즙 덕트를 차단 합니다.
  3. 마이크로 위 왼쪽된 측면 엽 엽의 주변 인 대를 잘라 구분 합니다.
  4. 마이크로 클램프 (그림 2C)와 왼쪽된 측면 엽의 기지에서 클램핑 함으로써 왼쪽된 측면 간 정 맥을 차단 합니다.
    참고: 실수로 왼쪽된 포털 정 맥 뿐만 아니라 클램프를 하지 있는지 확인 합니다.
  5. 사용 하 여 모기 클램프 왼쪽된 문맥 합자를 개최 하 여 정 맥 cannulation 나중에 대 한 적절 한 긴장을 유지.
  6. 조심 스럽게 24 G 바늘-아리 스토 카 테 터 ( 그림 3A)와 그것을 puncturing 의해 왼쪽된 문맥의 앞 벽에 절 개를 확인 합니다.
    참고: 우회를 만들려면 왼쪽된 문맥에 왼쪽된 간 정 맥 혈관 액세스 포인트 필요 합니다. 이 단계에 대 한가 위를 사용 하 여 더 큰 절 개를 만드는 것 보다는 바늘으로 혈관을 puncturing 의해 혈관 액세스를 만드는 데 좋습니다. 이 출혈 하 고 나중에 협 착 증의 위험을 줄여줍니다.
  7. 카 테 터를 철회 하 고 바늘 무료 24-G 카 테 터를 카 테 터의 바늘.
  8. 관류 튜브 카 테 터 연결, 다른 끝점 40의 15 mL와 20 mL 주사기에 연결 하는 어떤의 U/mL heparinized 염 분 살포 펌프에.
  9. 튜브와 바늘-무료 안과 밖으로 공기를 추방 하기 위해 튜브를 perfusing에 대 한 펌프를 켭니다.
  10. 관류 펌프를 해제 합니다.
  11. 다시는 왼쪽된 포털 정 맥을 통해 정 맥 (그림 3B)에 구멍이 절 개에 바늘 없는 카 테 터를 삽입 합니다.
    참고: 사실 때문에 카 테 터를 해결 하기 위한 매우 제한 된 공간, 그것은 시점에서 고정 되지 않습니다. 따라서, 외과 치료를 사용 해야 합니다을 cannulated 테의 변위를 피하기 위해.
  12. 22 또는 24 G 바늘-아리 스토 카 테 터 (그림 3C)와 그것을 puncturing 의해 왼쪽된 측면 간 정 맥의 노출 영역의 여백에 다른 절 개를 신중 하 게 확인 합니다.
    참고: 카 테 터 혈관 보다 약간 작은 것이 좋습니다.
  13. 카 테 터를 철회 하 고 바늘 없는 22-G 카 테 터를 카 테 터의 바늘.
  14. 24 G cannulated 바늘 무료 테 0.5 mL/min의 유량에서 왼쪽된 문맥의 관류 펌프 heparinized 염 분 통해 왼쪽된 측면 엽에 perfuse를 설정.
  15. 마른 거 즈를 사용 하 여 왼쪽된 측면 간 정 맥의 절 개 주변 밖으로 흐르는 폐기물 액체를 흡수.
  16. Cannulate는 왼쪽된 측면 간 정 맥을 통해 22 G 바늘 없는 카 테 터, 복 부 내부 오염 (그림 3D)을 최소화 하기 위해 유체 출구 생성 하와 정 맥의 구멍이 절 개.
    참고: 그것은 기술적으로 간 엽을 cannulated 카 테 터를 해결 하기 어렵다입니다. 따라서, 의사는 카 테 터의 변위를 피하기 위해 주의 기울여야 한다. 또는 카 테 터와 함께 왼쪽된 측면 간 정 맥 cannulation, 없이 폐기물 액체 또한 마른 거 즈로만 정 맥의 절 개 지역에 흡수 될 수 있다.
  17. 계속 heparinized 염 분 약 20 분 (1 그룹)와 왼쪽된 측면 엽 perfusing 그리고 식 염 수 만으로 2h, 3h, 또는 4 h (그룹 2, 그룹 및 그룹 3, 4, 각각).
  18. 펌프는 관류 중지를 해제 합니다.

4. 생리 Reperfusion 왼쪽된 측면 엽의

  1. 두 카 왼쪽된 문맥 및 왼쪽된 측면 간 정 맥에서 떨어져가지고 가십시오.
  2. 11-0 폴 리아 미드 봉합으로 왼쪽된 포털 정 맥의 절 개를 닫습니다.
  3. 11-0 폴 리아 미드 봉합과 왼쪽된 측면 간 정 맥의 절 개를 닫습니다.
  4. 왼쪽된 측면 간 정 맥 unclamp
  5. Unclamp 왼쪽된 중간 문맥, 왼쪽된 담 즙 덕트, 그리고 왼쪽된 간 동맥.
  6. 정 맥을 왼쪽된 문맥에 합자를 잘라.

5입니다. 복 부 벽의 폐쇄

  1. 중단 4-0 흡수 polyglactin 910 봉합으로 봉합 하 여 복 부 벽의 근육 층을 닫습니다.
  2. 중단 4-0 polydioxanone 흡수 성 봉합 사로 봉합 하 여 복 벽의 피부 층을 닫습니다.
  3. 복 부를 닫은 후 70% 알코올로 피부 절 개를 치료.

6. 수술 후 치료는 쥐의

  1. 약 10 분 동안 호흡에 대 한 지구 온난화 패드에 동물을 놓고 새로운 케이지에 넣어.
  2. Buprenorphine 관리 하루에 연속 3 d postoperatively 고통을 릴리스를 위한 x 0.05 mg/kg 피하 2.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

12 남자 (세 12-13 주) 루이스 쥐 선택적 간 엽 관류의 효과 평가 하는 데 사용 했다. 실험 4 개의 그룹에서 수행 되었다 (n = 3 쥐 그룹 당). 20 분의 다른 관류 기간을 사용 하 여, 2 시간, 3 시간, 4 시간, 위에서 설명한 단계를 따라 우리가 성공적으로 달성 단일 엽 관류 vivo에서 .

Vivo에서 왼쪽된 측면 엽의 관류:

정확한 해 부 식별 왼쪽된 문맥 왼쪽된 측면 간 정 맥 및 성공적인 왼쪽된 문맥 및 왼쪽 측면 간 정 맥 cannulation heparinized 염 분으로 재 관류 후 확인할 수 있습니다. 성공적인 신분증과 cannulation의 첫 번째 지표는 perfusate 혼합 혈액 흐르는 통해 왼쪽된 측면 엽에서 유체 출구 (그림 4A) 관찰 했다. 성공적인 수술 관류 모델 추가 heparinized 염 분으로 재 관류 후 왼쪽된 측면 엽의 색의 변화를 관찰 하 여 확인 되었다. 왼쪽된 측면 엽의 색 왼쪽된 측면 엽에서 혈액의 제거를 나타내는 희미 한 노란색, 밝은 빨강에서 변경. 나머지 돌출부의 생리 적 재 관류의 유지 보수를 확인 하려면 남은 간 엽의 색 왼쪽된 측면 엽의 재 관류 동안 지속적으로 관찰 되었다. 왼쪽된 측면 엽의 정확한 관류 나머지 간 엽 (그림 4B) 전체 과정을 통해 그들의 밝은 붉은 색을 유지 하는 동안 희미 한 노란색 터 닝 엽 귀착되는.

왼쪽된 측면 엽의 생리 Reperfusion:

혈관의 절 개를 폐쇄 하 고 혈관 재개 후 cannulated 혈관의 patency 평가, 왼쪽된 측면 엽의 색 변화 관찰 되었다. 몇 가지 붉은 반점 왼쪽된 측면 간 정 맥, 왼쪽된 측면 엽 (그림 5A)에서 초기 퇴행 성 관류를 나타내는 재개 후 perfused 희미 한 노란색 왼쪽된 측면 엽의 표면에 나타났다. 타겟된 엽 나중 왼쪽된 간 동맥의 마이크로 클램프를 해제 한 후 더 많은 붉은 반점이 보였다, 담 즙 덕트, 왼쪽과 왼쪽 통해 왼쪽된 측면 엽의 생리 적 재 관류를 더 함축 중간 문맥으로는 재개의 표면 선박 (그림 5B)입니다. 타겟된 간 엽의 표면 왼쪽된 문맥, 확인 대상된 간 엽의 전체 생리 관류를 통해 왼쪽된 문맥 (그림 5C) 회복 재개 후 진한 빨간색이 아닙니다.

Perfused 왼쪽된 측면 엽의 조직학:

마무리 heparinized 염 분 또는 염 분 살포 후 (실험)으로 선택적으로 perfused 왼쪽된 측면 엽과 (컨트롤로) 정상 열 등 한 꼬리가 엽 절제 및 포름알데히드와 고정 되었고 조직학 검사 (H에 복종 & Estaining). 왼쪽된 측면 엽에서는 아무 명백한 혈 문맥, 사인, 및 중앙 정 맥의 분 지에서 볼 수 있습니다. 예상 대로 적혈구 (그림 6A6 C) 간 동맥의 분 지에서 볼 수 있었다. 정상적인 열 등 한 꼬리가 엽 (컨트롤로), 혈액 세포는 문맥, 사인, 및 (그림 6B6 D) 중앙 정 맥의 분기에서 크게 관찰 되었다.

생존 율:

12의 12 실험 쥐 1 주 생존 율 100%의 결과. 그러나, 3 실험 쥐 관류의 4 시간을 겪었다는 일시적으로 설사에서 고통 및 피 묻은 방전 눈에서 두 번째 또는 세 번째 날에 postoperatively.

Figure 1
그림 1 : 체계는 수술의 vivo에서 단일 간 엽 관류 모델. (A) 회로도 쥐 간 해부학의 그림입니다. (B)이이 패널 왼쪽된 문맥, 왼쪽된 간 동맥, 왼쪽된 담 즙 덕트, 왼쪽된 중간 문맥, 그리고 왼쪽된 측면 간 정 맥의 막힘을 보여줍니다. (C)이이 패널의 왼쪽된 문맥 및 유체 입구와 출구에 대 한 카 테 터와 함께 왼쪽된 측면 간 정 맥 cannulation을 보여줍니다. (D)이이 패널 관류 펌프에 의해 heparinized 염 분으로 왼쪽된 측면 엽의 관류를 보여줍니다. (E)이이 패널에는 엽에 막힌된 혈관을 재개 후 왼쪽된 측면 엽의 생리 reperfusion 보여 줍니다. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 2
그림 2 : 자가 이미지를 공급 하 고 배수 왼쪽된 측면 엽 혈관의 막힘을 보여주는. (A)이이 패널의 왼쪽된 포털 정 맥 결 찰을 보여줍니다. (B)이이 패널 마이크로 클램프 왼쪽된 간 동맥, 왼쪽된 담 즙 덕트, 왼쪽된 중간 문맥/키 모 동맥/담 관의 막힘을 보여줍니다. (C)이이 패널 마이크로 클램프 (흰색 화살표)와 왼쪽된 측면 간 정 맥의 막힘을 보여줍니다. 눈금 막대는 1 m m. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 3
그림 3 : 왼쪽된 측면 엽 통해 우회 순환 표시 자가 이미지. (A)이이 패널 24 G 바늘-아리 스토 카 테 터와 함께 그것을 puncturing 의해 왼쪽된 문맥 (흰색 화살표)에 절 개를 보여 줍니다. (B)이이 패널 24 G 바늘-무료 안과 (흰색 화살표)와 액체 입구 왼쪽된 포털 정 맥 cannulation을 보여줍니다. (C)이이 패널 22 G 바늘-아리 스토 카 테 터와 함께 그것을 puncturing 의해 왼쪽된 측면 간 정 맥 (흰색 화살표)에 절 개를 보여 줍니다. (D)이이 패널 22 G 바늘-무료 안과 (흰색 화살표)와 유체 출구에 대 한 왼쪽된 측면 간 정 맥 cannulation을 보여줍니다. 눈금 막대는 1 m m. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오. 

Figure 4
그림 4 : 왼쪽된 측면 엽의 관류를 보여주는 자가 이미지. (A)이이 패널 쇼 perfusate는 왼쪽된 측면 엽 통해 입구 (노란색 카 테 터)으로 흐르는는 왼쪽된 측면 엽 통해 콘센트 (블루 카 테 터)에서 흐르는 왼쪽된 측면 엽, 실제로, 선택적으로 끼얹는다, 엽 (흰색 화살표)의 색상 변경 하 여 표시 된 대로. (B) 참고 왼쪽된 측면 엽 나머지 동안 heparinized 염 분으로 관류 후 희미 한 노란색 간 엽의 색상 변경 유지 밝은 빨강 (흰색 화살표). 눈금 막대는 1 m m. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 5
그림 5 : 왼쪽된 측면 엽의 생리 reperfusion. (A)이이 패널 왼쪽된 측면 간 정 맥 (흰색 화살표) 재개 후 왼쪽된 측면 엽의 퇴행 성 관류를 보여줍니다. (B)이이 패널의 왼쪽 측면 엽 (흰색 화살표) 마이크로 놓은 후 왼쪽된 중간 문맥에 왼쪽된 간 동맥 클램프 생리 reperfusion을 보여줍니다. (C)이이 패널 왼쪽된 문맥 및 왼쪽된 중간 엽 (파란색 화살표)의 허 혈을 재개 후 왼쪽된 측면 엽 (빨간색 화살표)의 완전 한 reperfusion을 보여줍니다. 눈금 막대는 1 m m. 이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.

Figure 6
그림 6 : 조직학 평가 (H & E 염색). (AC)이이 패널 표시는 덤플링을 염 끼얹는다 왼쪽된 측면 엽 (실험적인 엽)의 (A에서 혈액 세포의 부재를 보여주는 조직학 평가) 문맥 및 사인, 및 (C) 중앙 정 맥입니다. 그러나 (A) 예상 대로, 붉은 세포는 간 동맥 (검은색 화살표)에서 볼 수 있습니다. (B D)이이 패널 표시는 정상 열 등 한 꼬리가 엽의 (제어) 모든 혈관 구조에 혈액 세포의 존재를 드러내는 조직학 평가: (B) 문맥, 간 동맥, 및 사인 (검은 화살표), 그리고 (D) 중앙 정 맥 (검은색 화살표). 눈금 막대는 250 µ m.

매개 변수 결과
연구 그룹 팬 외 2016 [15] 자신의 그룹
Vivo에서
대상 간 엽 바로 열 등 한 엽
Image 1
왼쪽된 측면 엽
Image 2
베 나 정 맥 및 주요 포털 정 맥의 막힘
Image 3
아니요
Image 4
나머지 돌출부의 허 혈 왼쪽된 중간 엽
베 나 정 맥 cannulation 아니요
주요 포털 정 맥 cannulation 아니요
문맥 고혈압 아니요
1 주 생존 율 Intraoperatively 희생 100%

표 1. 서로 다른 모델 비교 vivo에서 간 공학. 이 표 팬 사이 두 모델 설립에 중요 한 차이 보여 줍니다. 15 그리고 우리 연구 그룹입니다.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

차단 하 고 cannulating 유체 유입으로 카 테 터와 함께 왼쪽된 문맥 및 유체 출구로 다른 카 테 테 르와 왼쪽된 측면 간 정 맥, 우리 성공적으로 생성 한 vivo에서 유체 바이패스 왼쪽된 측면 엽 내 나타내는 기술은 cannulation에 대 한 혈관의 작은 크기와 출혈 발생의 위험이 높은 매우 도전 이다, 비록 그것이 가능 합니다. 4 시간 긴 관류 기간을 겪고도 쥐 쥐가 수술을 견딜 수 보여주는 적어도 1 주 살아 났다.

다음 섹션에서 우리는 3 기술적으로 가장 어렵고 중요 한 단계 및 성공적으로 그들을 마스터 하는 방법을 설명 합니다. 첫째, 분리 하 고 대상된 포털 정 맥 주변 간 실질과의 긴밀 한 공간 관계 때문 왼쪽된 포털 정 맥 결 찰 하는 과정에서 혈관의 절연 출혈 발생의 높은 위험이 있다. 마이크로 포 셉이 위 보다는 사용 하 여 신중 하 게 찢 어 떨어져 연결된 avascular 조직을 둘러싼 왼쪽된 문맥에 의해 왼쪽된 문맥을 분리 하는 것이 좋습니다. 둘째, 왼쪽된 문맥의 앞 벽에 절 개, 측면에서 왼쪽된 문맥의 앞 벽에 특대 절 개 절 개 수리의 어려움 및 혈관 문 합 후 협 착 증 발생의 기회가 증가할 수 있습니다. 제대로 크기의 절 개를 만들기 위한가 위 대신 바늘-아리 스토 카 테 터를 사용 하는 것이 좋습니다. 셋째, 왼쪽된 측면 간 정 맥의 노출된 영역을 잘못 차단, 거기 되지 것입니다 경우 왼쪽된 측면 간 혈관의 막힘에 대해서 충분히 나중 cannulation에 대 한 왼쪽된 측면 간 정 맥에 공간을 노출. 왼쪽된 중간 엽 가까이 아닌 왼쪽된 측면 간 정 맥의 노출된 영역 가운데 죄 수행 되어야 합니다 것이 좋습니다.

우리 팬 사이 선택적 vivo에서 간 관류의 두 모델 비교 15 그리고 우리 (표 1). 첫째, 대상된 간 엽의 선택 모델 설립에 대 한 가장 중요 한 단계로 간주 됩니다. 우리 외과 관류 모델 설립 비보에 대 한 타겟된 엽으로 오히려 고립 된 엽, 왼쪽된 측면 엽 선택. 대조적으로, 팬의 연구 그룹 선정 모델14바로 열 등 엽. 다음으로는 바로 열 등 엽 선택의 단점: 첫째로, 그들은 완전히 차단 하 고 cannulating는 동물의 혈액 순환에 부정적인 영향을 줄 수 있습니다 유체 출구에 대 한 베 나 정 맥으로 타협 했다. 둘째, 그들은 차단 하 고 입구, 나머지 간 엽 및 문맥 고혈압의 허 혈 발생에 대 한 주요 포털 정 맥 cannulate 했다. 여기, 타겟 엽에 비해 왼쪽된 측면 엽, 우리가 차단 하 고 베 나 정 맥 유체 출구에 대 한 대신 왼쪽된 측면 간 정 맥을 cannulated. 해 부, 막힘, 그리고 cannulation 촉진은 오히려 큰 직경, 왼쪽된 문맥을 선택 하 여 액체 입구를 생성 되었습니다. 따라서, 여기, 모델은 쥐의 생존에 중요 한에 피해는 직접 베 나 정 맥을 주요 포털 정 맥 혈액의 흐름을 차단.

Vivo에서 간 엽 관류에 대 한 중대 한 잠재력에도 불구 하 고이 기술에는 몇 가지 제한이 있습니다. 첫째, 왼쪽된 중간 엽의 허 혈 과정에서 왼쪽된 중간 포털 정 맥의 막힘으로 인해 불가피 하다. 둘째, 마이크로 클램프를 사용 하 여 왼쪽된 측면 엽의 기지에서 임시 막힘에 따라,이 lobar 기지를 둘러싼 간 실질의 손상 및 heparinized 염 분으로 관류 하는 동안 약간의 누설을 필연적으로 발생할 발생할 수 있습니다. 3 실험 쥐를 4 시간 동안 관류를 일시적으로 설사와 4 시간 더 많은 합병증을 고통 없이 쥐에 대 한 최대 관류 기간 것을 제안 하는 피 묻은 눈 방전에서 고통. 우리의 지식을 하려면, 적어도 3 시간이 전체 쥐 간 비보 전18의 decellularization에 대 한 필요 합니다. 따라서, 우리가 달성 하려고 하는 관류 시간 4 시간 것입니다 더 간 엽 decellularization에 대 한 충분 한 간 비 계의 셀 repopulation 여 간 엔지니어링에 대 한 전제 조건입니다.

미래에이 새로운 기술은 vivo에서 관류 모델에 대 한 잠재적으로 사용할 수 있습니다 실험적인 연구에 부분 장기 치료에 대 한 부분 기관 decellularization는 " 로 화학 절제로 vivo에서 에서 약물 주입 vivo에서 셀 문화 시스템 ", 그리고, 아마도 가장 중요 한 것은, 비보에 대 한 부분 기관 공학.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

저자는 공개 없다.

Acknowledgments

저자 해부학 연구소에서에서 옌스 Geiling에 게 감사 하 고 싶습니다 내가 쥐 간 해부학의 회로도 도면 생산 예 나 대학 병원.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Perfusion Pump
Perfusor VI B. Braun, Melsungen
Catheter
Versatus-W  Catheter Terumo SR+DU2419PX 24G, 0.74×19mm
Versatus-W  Catheter Terumo SR+DU2225PX 22G, 0.9×25mm
micro surgical instrument
micro scissors F·S·L No. 14058-09
micro serrefine F·S·L No.18055-05
Micro clamps applicator F·S·L No. 18057-14
Straight micro forceps F·S·L No. 00632-11
Curved micro forceps F·S·L No. 00649-11
micro needle-holder F·S·L No. 12061-01
general surgical instruments
standard sissors F·S·L
mosquito clamp F·S·L
serrated forcep F·S·L
teethed forcep F·S·L
needle-holder F·S·L
suture
4-0 prolene ethicon
4-0 ETHICON*II ethicon
6-0 silk ethicon
11-0 polyamide ethicon

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Kim, W. R., et al. OPTN / SRTR 2016 Annula Data Report: Liver. American Journal of Transplantation. Suppl. 1, 172-253 (2018).
  2. Palakkan, A. A., Hay, D. C., Anil Kumar, P. R., Kumary, T. V., Ross, J. A. Liver tissue engineering and cell sources: issues and challenges. Liver International. 33, 666-676 (2013).
  3. Hynes, R. O. The extracellular matrix: not just pretty fibrils. Science. 326, 1216-1219 (2009).
  4. Flaim, C. J., Chien, S., Bhatia, S. N. An extracellular matrix microarray for probing cellular differentiation. Nature Methods. 2, 119-125 (2005).
  5. Wells, R. G. The role of matrix stiffness in regulating cell behavior. Hepatology. 47, 1394-1400 (2008).
  6. Ren, H., et al. Evaluation of two decellularization methods in the development of a whole-organ decellularized rat liver scaffold. Liver International. 33, 448-458 (2013).
  7. Yagi, H., et al. Human-scale whole-organ bioengineering for liver transplantation: a regenerative medicine approach. Cell Transplantation. 22, 231-242 (2013).
  8. Jiang, W. C., et al. Cryo-chemical decellularization of the whole liver for mesenchymal stem cells-based functional hepatic tissue engineering. Biomaterials. 35, 3607-3617 (2014).
  9. Uygun, B. E., et al. Organ reengineering through development of a transplantable recellularized liver graft using decellularized liver matrix. Nature Medicine. 16, 814-820 (2010).
  10. Baptista, P. M., et al. The use of whole organ decellularization for the generation of a vascularized liver organoid. Hepatology. 53, 604-617 (2011).
  11. Bruinsma, B. G., Kim, Y., Berendsen, T. A., Yarmush, M. L., Uygun, B. E. Layer-by-layer heparinization of decellularized liver matrices to reduce thrombogenicity of tissue engineered grafts. Journal of Clinical and Translational Research. 1 (1), (2015).
  12. Park, K. M., et al. Decellularized Liver Extracellular Matrix as Promising Tools for Transplantable Bioengineered Liver Promotes Hepatic Lineage Commitments of Induced Pluripotent Stem Cells. Tissue Engineering Part A. 22, 449-460 (2014).
  13. Ko, I. K., et al. Bioengineered transplantable porcine livers with re-endothelialized vasculature. Biomaterials. 40, 72-79 (2015).
  14. Bao, J., et al. Construction of a portal implantable functional tissue-engineered liver using perfusion-decellularized matrix and hepatocytes in rats. Cell Transplantation. 20, 753-766 (2011).
  15. Pan, J., et al. In-vivo organ engineering: Perfusion of hepatocytes in a single liver lobe scaffold of living rats. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. 80, 124-131 (2016).
  16. Madrahimov, N., et al. Marginal hepatectomy in the rat: from anatomy to surgery. Annals of Surgery. 244, 89-98 (2006).
  17. Mussbach, F., Settmacher, U., Dirsch, O., Dahmen, U. Bioengineered Livers: A New Tool for Drug Testing and a Promising Solution to Meet the Growing Demand for Donor Organs. European Surgical Research. 57, 224-239 (2016).
  18. Mussbach, F., Settmacher, U., Dirsch, O., Dahmen, U. Liver engineering as a new source of donor organs: A systematic review. Der Chirurg. 87, 504-513 (2016).
  19. Xie, C., et al. Monitoring of systemic and hepatic hemodynamic parameters in mice. Journal of Visualized Experiments. (92), e51955 (2014).
  20. Zhou, P., et al. Decellularization and Recellularization of Rat Livers With Hepatocytes and Endothelial Progenitor Cells. Artificial Organs. 40, E25-E38 (2016).
  21. Yagi, H., et al. Human-scale whole-organ bioengineering for liver transplantation: a regenerative medicine approach. Cell Transplantation. 22, 231-242 (2013).
  22. Otsuka, H., Sasaki, K., Okimura, S., Nagamura, M., Nakasone, Y. Micropatterned co-culture of hepatocyte spheroids layered on non-parenchymal cells to understand heterotypic cellular interactions. Science and Technology of Advanced Materials. 14, 065003 (2013).
  23. Bale, S. S., et al. Long-term coculture strategies for primary hepatocytes and liver sinusoidal endothelial cells. Tissue Engineering Part C: Methods. 21, 413-422 (2015).
  24. Wu, Q., et al. Optimizing perfusion-decellularization methods of porcine livers for clinical-scale whole-organ bioengineering. BioMed Research International. , 785474 (2015).
  25. Barakat, O., et al. Use of decellularized porcine liver for engineering humanized liver organ. Journal of Surgical Research. 173 (1), e11-e25 (2012).
  26. Navarro-Tableros, V., et al. Recellularization of rat liver scaffolds by human liver stem cells. Tissue Engineering Part A. 21 (11-12), 1929-1939 (2015).

Tags

생명 공학 문제 140 vivo에서 왼쪽 측면 엽 셀 문화 시스템 decellularization recellularization 간 관류 간 엔지니어링
<em>Vivo에서</em> 부분 간 엔지니어링을에서 위한 쥐를 기초로 새로운 수술 기법
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Wang, A., Jank, I., Wei, W.,More

Wang, A., Jank, I., Wei, W., Schindler, C., Dahmen, U. A Novel Surgical Technique As a Foundation for In Vivo Partial Liver Engineering in Rat. J. Vis. Exp. (140), e57991, doi:10.3791/57991 (2018).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter