Summary

Galleria mellonella Waxworm инфекции модель для распространения кандидоз

Published: November 17, 2018
doi:

Summary

Galleria mellonella служит беспозвоночных модель для распространенных кандидоз. Здесь, мы подробно инфекции протокол и предоставлять вспомогательные данные для модели эффективности.

Abstract

Видов Candida являются общие грибковых Комменсалами людей колонизации кожи, слизистых поверхностей и желудочно-кишечного тракта. При определенных условиях Candida могут перерасти их природных ниш, что приводит к изнурительной слизистой инфекции как хорошо как опасные для жизни системных инфекций, которые являются одним из основных направлений расследования из-за их связанные высокой смертности. Животные модели распространения инфекции существуют для изучения прогрессирования заболевания и рассекает характеристики Candida патогенности. Из них Galleria mellonella waxworm инфекции модель обеспечивает экономически экспериментальный инструмент для исследования высок объём системных вирулентности. Многие другие бактерий и эукариот инфекционные агенты эффективно изучались в G. mellonella понять патогенности, что делает его широко принятой модели системы. Тем не менее изменения в метод, используемый для заразить G. mellonella можно изменить результаты фенотипических и затруднить интерпретацию результатов. Здесь мы приводим, преимущества и недостатки waxworm модели для изучения патогенеза системный кандидоз и подробно такой подход к улучшению воспроизводимость. Наши результаты выделить диапазон кинетики смертности в G. mellonella и описывают переменные, которые можно модулировать эти кинетики. В конечном итоге этот метод стоит как этического, быстрое и эффективное подход для изучения вирулентности в модели распространения кандидоза.

Introduction

Видов Candida являются общие человеческие Комменсалами, которые способны как оппортунистических патогенов в сильно ослабленным и дисбиотических пациентов. Хотя многие виды Candida могут вызывать заболевания, C. albicans является самой распространенной причиной распространения кандидоз1,2. Системных заболеваний результаты от C. albicans доступ кровоток через либо прямого проникновения ранее ограничительных хост барьеров или введение в хирургических сайтов и другие нарушения тела3. Candida видов использования ряда патогенных процессов могут вызвать системные заболевания в пределах узла, включая филаментацию, биопленки, уклонение иммунных клеток и бежать и железа, очистку4. В vitro подходы существуют для расследования индивидуальных патогенетических механизмов, но Животные модели продолжать предоставлять лучший вариант, чтобы исследовать весь исход болезни5,6. Предыдущие исследования подробно многие случаи перспективным в vitro исследования вирулентности, неспособность воспроизводить в vivo7,8. Таким образом, Животные модели по-прежнему необходимы для оценки вирулентности в vivo. Большинство моделей болезни полагаются на мышах в качестве суррогата для человека инфекции, несмотря на неспособность C. albicans естественно колонизировать мышиных систем как синантропных9. Беспозвоночных модели распространенных кандидоз включают нематоды Caenorhabditis elegans, фрукты fly Drosophila melanogasterи waxworm Galleria mellonella, хотя опасения по поводу основных различий в основных физиологии температуры тела пребывания и пути воздействия препятствовали их широкое признание10,11.

Совсем недавно была принята модель инфекции waxworm G. mellonella для модели патогенности широкого спектра бактериальных и грибковых патогенов12,,1314. Преимущества этой модели включают его относительно низкая стоимость, увеличение пропускной способности, простота использования и снижение этические соображения относительно животных благодеяние, по сравнению с мышиных моделях. Для исследователей это приводит к увеличению возможность протестировать несколько переменных, сильнее доверительные интервалы, более быстрое экспериментов и обход животных протоколов. G. mellonella служил в качестве платформы для быстро оценить C. albicans вирулентности после возмущения генов, необходимых для регулирования формирования, филаментацию и Джин биопленки через клинических изолятов11,15 ,16. Недавние исследования включили расследования противогрибковая эффективность с использованием G. mellonella для оценки фармакокинетики препарата активности и сопротивления параметры в естественных условиях , которые в противном случае вызов и много времени 17,18. Тем не менее исследования C. albicans вирулентности в G. mellonella было осложнено сообщается, что высокие уровни вариации в рамках экспериментов и несовместимые протоколы между исследовательскими группами, которые производят различные вирулентности фенотипов между мышами и waxworms11,13,19,,2021. Здесь мы приводим G. mellonella протокол стандартизировать C. albicans воспроизводимость увеличение инфекции, в экспериментах вирулентности, и продемонстрировать соответствие ранее описанных исследований вирулентности в мышиных модели.

Предыдущие исследования показали, что C. albicans спаривания локус (MTL) тип как на хромосоме 5 регулирует ячеек самобытности и спаривания компетенции аналогичные Saccharomyces cerevisiae и других грибов аскомицетов22. Большинство C. albicans изолятов гетерозиготных в локусе мТл , кодирование один из каждого из мТл и MTLα аллелей (MTL/α) и следовательно стерильные15, 23 , 24. потери одной из аллелей MTL через потери гетерозиготности (LOH) или мутация приводит к гомозиготных MTL или MTLα штаммов, которые могут пройти фенотипические переключатель от стерильного «белый» государства спаривания компетентные государственные «непрозрачного»25. Предыдущая работа подчеркнул, что потеря гетерозиготности MTL также уменьшает вирулентности в мышиных моделях системной инфекции через различные деформации стола26. Здесь мы подробно G. mellonella модель для распространения с помощью генетически аналогичны экспериментальный набор изображать вклад гетерозиготности мТл к вирулентности в G. mellonellaкандидоза. Мы покажем, что МРЛ конфигурации влияние C. albicans патогенности, где MTLα штаммы были менее вирулентные MTL/α и MTL клетки, подобные выводы в мышиных инфекции модель26.

Protocol

Все методы, описанные полагаются на использование беспозвоночных хостов и не требуют одобрения институциональный уход животных и использовать Комитет (IACUC). 1. galleria mellonella Waxworm личинок Заказать личинок от оптовиков и поставщиков, не вводить, гормоны, антибиотики …

Representative Results

Здесь мы демонстрируем воспроизводимый метод для использования waxworms G. mellonella расследовать модель распространенных кандидоз инфекции с использованием C. albicans. Хранения, обслуживания и отбора личинок для инфекции являются критическим компонентом обеспечивая…

Discussion

Модель waxworm G. mellonella стоит как эффективный инструмент для быстрого и воспроизводимость анализа C. albicans вирулентности. Этот подробный протокол опирается на последовательной доставки определенных инфекционных дозы на тот же сайт через партию личинок. Инфекционные доза имеет гл?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы отметить помощь, Памела Вашингтон и Лия Андерсон в получении Galleria mellonella для использования в данном исследовании.

Materials

Galleria mellonella Snackworms.com Buy twice as many worms as expected to use
10 uL, Model 1701 N SYR Cemented needle, 26G, type 2 syringe Hamilton 80000
Petri dish, 100X15 mm, 500 pack Fisher FB0875712
Microcentrifuge tube, 1.7 mL, 500 pack VWR 87003-294
Phosphate Buffered Saline (Biotechnology grade), 500 mL VWR 97062-818
Ethanol absolute, ≥99.5% pure, 500 mL Millipore Sigma EM-EX0276-1S
autoclaved ddH2O

References

  1. Kauffman, C. A., et al. Prospective multicenter surveillance study of funguria in hospitalized patients. The National Institute for Allergy and Infectious Diseases (NIAID) Mycoses Study Group. Clinical Infectious Diseases. 30 (1), 14-18 (2000).
  2. Horn, D. L., et al. Epidemiology and outcomes of candidemia in 2019 patients: data from the prospective antifungal therapy alliance registry. Clinical Infectious Diseases. 48 (12), 1695-1703 (2009).
  3. Pfaller, M. A., Diekema, D. J. Epidemiology of invasive candidiasis: a persistent public health problem. Clinical Microbiology Reviews. 20 (1), 133-163 (2007).
  4. Sardi, J. C., Scorzoni, L., Bernardi, T., Fusco-Almeida, A. M., Mendes Giannini, M. J. Candida species: current epidemiology, pathogenicity, biofilm formation, natural antifungal products and new therapeutic options. Journal of Medical Microbiology. 62, 10-24 (2013).
  5. Segal, E., Frenkel, M. Experimental in Vivo Models of Candidiasis. J Fungi (Basel). 4 (1), (2018).
  6. Conti, H. R., Huppler, A. R., Whibley, N., Gaffen, S. L. Animal models for candidiasis. Current Protocols in Immunology. 105, 11-17 (2014).
  7. Heymann, P., et al. The siderophore iron transporter of Candida albicans (Sit1p/Arn1p) mediates uptake of ferrichrome-type siderophores and is required for epithelial invasion. Infection and Immunity. 70 (9), 5246-5255 (2002).
  8. Priest, S. J., Lorenz, M. C. Characterization of Virulence-Related Phenotypes in Candida Species of the CUG Clade. Eukaryotic Cell. 14 (9), 931-940 (2015).
  9. Savage, D. C., Dubos, R. J. Localization of indigenous yeast in the murine stomach. J Bacteriol. 94 (6), 1811-1816 (1967).
  10. Ewbank, J. J., Zugasti, O. C. elegans: model host and tool for antimicrobial drug discovery. Disease Models & Mechanisms. 4 (3), 300-304 (2011).
  11. Amorim-Vaz, S., Delarze, E., Ischer, F., Sanglard, D., Coste, A. T. Examining the virulence of Candida albicans transcription factor mutants using Galleria mellonella and mouse infection models. Frontiers in Microbiology. 6, 367 (2015).
  12. Harding, C. R., Schroeder, G. N., Collins, J. W., Frankel, G. Use of Galleria mellonella as a model organism to study Legionella pneumophila infection. Journal of Visualized Experiments. (81), e50964 (2013).
  13. Jacobsen, I. D. Galleria mellonella as a model host to study virulence of Candida. Virulence. 5 (2), 237-239 (2014).
  14. Tsai, C. J., Loh, J. M., Proft, T. Galleria mellonella infection models for the study of bacterial diseases and for antimicrobial drug testing. Virulence. 7 (3), 214-229 (2016).
  15. Hirakawa, M. P., et al. Genetic and phenotypic intra-species variation in Candida albicans. Genome Research. 25 (3), 413-425 (2015).
  16. Dunn, M. J., Kinney, G. M., Washington, P. M., Berman, J., Anderson, M. Z. Functional diversification accompanies gene family expansion of MED2 homologs in Candida albicans. PLoS Genetics. 14 (4), (2018).
  17. Astvad, K. M. T., Meletiadis, J., Whalley, S., Arendrup, M. C. Fluconazole Pharmacokinetics in Galleria mellonella Larvae and Performance Evaluation of a Bioassay Compared to Liquid Chromatography-Tandem Mass Spectrometry for Hemolymph Specimens. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 61 (10), (2017).
  18. Mesa-Arango, A. C., et al. The non-mammalian host Galleria mellonella can be used to study the virulence of the fungal pathogen Candida tropicalis and the efficacy of antifungal drugs during infection by this pathogenic yeast. Med Mycol. 51 (5), 461-472 (2013).
  19. Brennan, M., Thomas, D. Y., Whiteway, M., Kavanagh, K. Correlation between virulence of Candida albicans mutants in mice and Galleria mellonella larvae. FEMS Immunology and Medical Microbiology. 34 (2), 153-157 (2002).
  20. Fuchs, B. B., O’Brien, E., Khoury, J. B., Mylonakis, E. Methods for using Galleria mellonella as a model host to study fungal pathogenesis. Virulence. 1 (6), 475-482 (2010).
  21. Kavanagh, K., Fallon, J. P. Galleria mellonella larvae as models for studying fungal virulence. Fungal Biology Reviews. 24 (1-2), 79-83 (2010).
  22. Hull, C. M., Johnson, A. D. Identification of a mating type-like locus in the asexual pathogenic yeast Candida albicans. Science. 285 (5431), 1271-1275 (1999).
  23. Legrand, M., et al. Homozygosity at the MTL locus in clinical strains of Candida albicans: karyotypic rearrangements and tetraploid formation. Molecular Microbiology. 52 (5), 1451-1462 (2004).
  24. Lockhart, S. R., et al. In Candida albicans, white-opaque switchers are homozygous for mating type. Genetics. 162 (2), 737-745 (2002).
  25. Miller, M. G., Johnson, A. D. White-opaque switching in Candida albicans is controlled by mating-type locus homeodomain proteins and allows efficient mating. Cell. 110 (3), 293-302 (2002).
  26. Wu, W., Lockhart, S. R., Pujol, C., Srikantha, T., Soll, D. R. Heterozygosity of genes on the sex chromosome regulates Candida albicans virulence. Molecular Microbiology. 64 (6), 1587-1604 (2007).
  27. Herrero, A. B., et al. KRE5 gene null mutant strains of Candida albicans are avirulent and have altered cell wall composition and hypha formation properties. Eukaryotic Cell. 3 (6), 1423-1432 (2004).
  28. Hall, R. A., et al. The Mnn2 mannosyltransferase family modulates mannoprotein fibril length, immune recognition and virulence of Candida albicans. PLoS Pathogens. 9 (4), 1003276 (2013).
  29. Wojda, I. Immunity of the greater wax moth Galleria mellonella. Journal of Insect Science. 24 (3), 342-357 (2017).
  30. Bergin, D., Reeves, E. P., Renwick, J., Wientjes, F. B., Kavanagh, K. Superoxide production in Galleria mellonella hemocytes: identification of proteins homologous to the NADPH oxidase complex of human neutrophils. Infection and Immunity. 73 (7), 4161-4170 (2005).
  31. Lange, A., et al. Genome Sequence of Galleria mellonella (Greater Wax Moth). Genome Announcements. 6 (2), (2018).
  32. Krappmann, S. Lightning up the worm: How to probe fungal virulence in an alternative mini-host by bioluminescence. Virulence. 6 (8), 727-729 (2015).
  33. Chowdhary, A., Voss, A., Meis, J. F. Multidrug-resistant Candida auris: ‘new kid on the block’ in hospital-associated infections. Journal of Hospital Infection. 94 (3), 209-212 (2016).
  34. Delarze, E., Ischer, F., Sanglard, D., Coste, A. T. Adaptation of a Gaussia princeps Luciferase reporter system in Candida albicans for in vivo detection in the Galleria mellonella infection model. Virulence. 6 (7), 684-693 (2015).

Play Video

Cite This Article
Dunn, M. J., Woodruff, A. L., Anderson, M. Z. The Galleria mellonella Waxworm Infection Model for Disseminated Candidiasis. J. Vis. Exp. (141), e58914, doi:10.3791/58914 (2018).

View Video