Summary
在该方案中, 我们演示了如何繁殖成虫, 饲养幼虫, 并在幼虫后的鱼类上进行全身免疫组织化学检查, 以比较表面和洞穴形态的表型。
Abstract
马尾树的河流和包体适应种群在形态、生理和行为上存在差异。以比较成人形态为重点的研究揭示了其中一些差异的遗传基础。对幼体后阶段 (喂养开始时) 种群的差异了解较少。这类研究可以提供洞察, 了解在自然环境中, 洞穴鱼是如何在成年后存活下来的。在实验室中比较幼体后发育的方法需要标准化的水产养殖和喂养制度。在这里, 我们描述如何在非循环水中饲养营养丰富的轮虫的饮食中的鱼, 最长可达两周。我们演示如何从这个苗圃系统收集幼虫后的鱼, 并进行全身免疫染色。免疫染色是一种很有吸引力的转基因表达分析替代品, 可用于研究mexicanus的发育和基因功能。苗圃方法也可用作标准协议, 用于建立密度匹配的种群, 使其成长为成人。
Introduction
墨西哥的 tetra是一种单一的鱼类, 它作为河流居住的种群 (水面鱼类) 和一些以其居住的洞穴命名的洞穴种群 (洞穴鱼类) (即tinaja、molino、pachón) 而存在。越来越多的研究人员正在使用来研究行为1、2、3、4、代谢5、6的遗传和发育基础 7,8,和形态演变9,10,11。用于研究mexicanus 的可用资源包括测序和注释基因组 12;转录组13;发展分期表14;和方法繁殖15,16, 17, 创造转基因 18, 和编辑基因19.传播更多的工具和更新的标准协议将加速洞穴研究界的发展 (见此方法集合20)。
我们的目标是通过提供一个强有力的方法, 以实验室之间可比的方式, 就地评估幼虫后的基因活性, 从而增加现有的工具。实现这一目标有两个挑战。首先, 需要有标准化的实验室之间孵化和饲养鱼类的制度, 因为喂养和密度等参数的差异会影响生长和成熟, 从而影响基因活性。其次, 需要一种标准化但适应性强的方法来检查幼虫后鱼类的基因活动模式。我们在这里解决这些问题, 建立标准的做法, 将鱼提高到幼虫后阶段, 并引入一个强大的全安装免疫组织化学 (ihc) 协议来评估在 a. mexicanus中的基因表达。
我们首先演示如何通过天然产卵繁殖鱼类并识别受精卵。下面描述的是如何孵化受精卵 (幼虫) 并将其转移到苗圃容器中, 在那里, 受精卵的密度为每个容器 20条, 为期两周, 无需循环或更换水。在受精后 5天, 鱼已经发展到幼虫后阶段 (不再有蛋黄供应), 并作为营养丰富的食物来源提供藻类喂养的brachionus plicatilis (rotifers), 不需要每天补充。该方法为幼虫和幼虫后的发育提供了一致的生长参数。
为了评估基因功能, 我们演示了如何从苗圃容器中去除鱼, 并执行全安装 ihc。所介绍的 ihc 方法是根据开发用于 daio rerio 21的协议进行的, 对于检查所有接受测试的a. mexicanus组织中的抗原 (包括大脑、肠道和胰腺) 是有效的。ihc 是一种更快的替代生成转基因动物的基因表达和蛋白质定位的检查。该方案将有助于研究生长的, 并比较幼虫后阶段的水面鱼类和紫外鱼的表型。
Protocol
本协议中描述的程序已得到哈佛医学院动物护理和使用机构委员会 (iacuc) 的批准。
1. 育种
注 : 有几种已发布的育种方法 15,16,17, 20也可以在此步骤中使用。在繁殖之前, 成年鱼保持在 10:14 光: 黑暗周期在 23°c, 并喂养颗粒饮食 (见材料表)每天一次。鱼可以在循环系统中进行机械过滤和紫外线灭菌。育种也可以在静态 (非循环) 储罐中完成, 但鱼不应该留在静态水箱超过 3天, 因为水质迅速退化。
- 用鱼准备好的水填充5加仑的水箱 (调整为: ph = 7.1 +/-2, 电导率 = 900 +/15μs, 温度 = 23°c)。
- 将塑料网 (见材料) 放置在罐的底部。如果在静态储罐中繁殖, 则将热水器贴在水箱的一侧。如果在循环系统中繁殖, 则在系统水池中放置热水器。
注: 塑料网可防止成人食用鸡蛋。 - 将一条1岁以上的雌性和两种雄性a. mexicanus鱼放入鱼缸。让鱼适应30分钟。
- 将加热器的温度设置为 24°c (或比起始温度高 1°c)。
- 24小时后, 将温度提高1°c。
- 24小时后, 将温度提高1°c。每天用手电筒照射油箱底部, 检查储罐中是否有鸡蛋。在这3天期间, 不要吃鱼。
- 如果3天后仍未诱导产卵, 请关闭加热器, 让水恢复到室温 (rt), 然后将鱼转移到原来的鱼缸。
2. 孵化加肥鸡蛋
- 一旦在繁育罐中发现鸡蛋, 就取出成虫和塑料网, 用烧杯或杯子将水减少到 1 0 厘米深。
注: 要估计产卵时间, 请使用转移式移液器将几个鸡蛋放入培养皿中, 并使用立体显微镜查看它们, 以确定第14阶段并估计受精时间。 - 将储罐移动到方便的工作表面, 取出任何不透明的鸡蛋或粪便, 只在储罐中留下半透明、肥沃的鸡蛋。
注: 此时可以记录可育卵的数量。 - 在水箱中灌满鱼准备水 (见步骤 1.1), 并在水箱中加入6-7 滴亚甲蓝, 当水充满时。
注: 亚甲蓝的最终浓度约为 1.5 ppm。 - 在水箱中添加加热器和水族馆泡泡 (连接到空气泵上, 带有调节器)。
- 将加热器设置为 24°c, 并调整气流调节器, 以产生温和的气泡流。
- 在水箱上放置一个盖子, 以帮助保持水温。
注: 鸡蛋应在产卵时间的24小时内开始孵化。
3. 将孵化幼虫转移到苗圃容器
- 在8升鱼类水 (见步骤1.1) 中加入20克盐 (见材料), 搅拌至溶解。将每个 1.5 l 苗圃容器 (见材料) 填充1升的准备水。
- 使用转移式移液器将孵化的幼虫移动到准备好的苗圃容器中, 每个容器的密度为20条鱼。
注: 前大灯可用于定位和转移孵化的幼虫。 - 在所有可见的孵化幼虫被清除后, 搅拌水箱中的水搅拌, 并/或用移液器将喷水吹入水箱的边缘和角落。
注: 这将有助于揭示在第一关错过的幼虫。 - 在这个阶段, 使用实验室福利办公室的指引处理未使用的幼虫。在罐中加入次氯酸钠, 最终浓度达到6.15。等待至少 5分钟, 然后再倒下水槽。
- 在每个苗圃容器上标注受精的日期和时间。每天查看苗圃容器, 并继续清除任何死幼虫。
4. 轮铁鱼食的制备
- 有关获取轮虫的信息, 请参阅材料表。按照参考协议设置、维护和收获轮虫22。
- 在1升收获的轮虫中加入3毫升藻类混合物 (见材料表), 准备鱼类食品。这种混合物将作为食物供应直接添加到苗圃容器中。
5. 幼体后鱼的喂养
- 当鱼在受精后 5天 (dpf) 时, 在每个苗圃容器中加入3毫升的鱼食 (步骤4.2 中准备)。在最佳密度下, 轮虫应该在苗圃容器的角落密集的组中可见, 在容器的中心则不那么明显。加入额外的轮状混合物, 直到达到适当的密度。
- 每天检查容器是否有轮虫, 如果浓度耗尽, 则添加更多。继续清除任何死幼虫。
- 当鱼到达 14 dpf 时, 将它们移动到一个装有循环系统的水箱中, 密度为5鱼/水。
注: 在这个时候可以记录幼虫后存活的鱼的数量。
6. 幼虫后鱼类的全装免疫组织化学
- 将含有鱼的苗圃容器通过尼龙网过滤器将所需阶段的幼虫后鱼从食物中取出 24小时, 然后将过滤器放入有干净的鱼准备水的容器中 (见步骤 1.1)。
注: 必须删除所有的食物。即使是肠道中的少量食物也是自动荧光的, 会影响成像。 - 收集和安乐死的鱼。
注: 安乐死协议应遵循 olaw 指南, 并得到您的机构动物护理和使用委员会的批准。我们注意到, 只有毛滴虫并不对幼虫后的鱼实施安乐死, 如果鱼也不在冰上, 鱼从毛滴虫转移到固定鱼身上就会开始移动。- 在烧杯中加入 0.4 g 的三尖碱-s 和 0.8 g 的碳酸氢钠, 加入1升的去离子水, 并将其放置在冰上, 从而制备滴虫溶液。
- 将含有鱼的水通过尼龙网过滤器中倒出来收集鱼。轻轻将过滤器浸入冰凉的特里卡因溶液中, 放在冰上 1 0分钟。
- 修复安乐死的鱼。
- 使用带有切割尖端的转移移液器将鱼转移到锥形管。
- 用转移移液器取出 tricaine 溶液, 并更换固定液。用摇晃孵化。
注: 固定和固定时间必须根据所使用的抗体确定。10% 福尔拉林溶液 (4% 甲醛, 见材料) 在4°c 过夜, 足以满足材料表中列出的抗体。
注意: 福尔马林有毒且易燃。佩戴个人防护设备 (手套、实验室外套和飞溅护目镜), 并戴上化学罩。含有福尔拉林的溶液应作为危险废物处置。 - 使用转移移液器小心地取出固定装置, 而不会干扰鱼。加入3毫升磷酸盐缓冲盐-三元溶液 [pbs 与 0.1% triton (pbst), 见材料] 和孵育15分钟在 rt 与摇摆。
- 取出 pbst, 更换新鲜 pbst, 孵育 15分钟. 再重复一次 "清洗"。
注: 鱼类可在4°c 下在含有0.02% 氮化钠的 pbs 中储存数周。
- 进行全身性免疫染色。
- 制备50毫升的阻滞剂 [pb-0.5% triton x, 0.2% 牛血清白蛋白 (bsa), 1% 亚甲基亚硫酸 (dmso), 0.02% 氮化钠, 5% 驴血清]。
注意: 氮化钠和 dmso 是有毒的。搬运时应使用个人防护设备 (手套、实验室外套和飞溅护目镜)。任何解决办法都应作为危险废物加以处置。 - 使用转移移液器将鱼转移到带有螺丝钉顶盖的4毫升玻璃小瓶中。使用传输移液器删除 pbst 并添加 3 ml 阻塞解决方案。在 rt 孵化 1小时, 摇号。
- 使用转移移液器去除阻塞溶液, 并添加在阻塞溶液中稀释的初级抗体。在室温下搅拌过夜。
注: 例如, 添加1:250 稀释抗 huc/hhd 神经蛋白小鼠单克隆抗体 (关于已成功用于a. mexicanus的抗体清单, 请参见材料表)。在此步骤中, 应包括一组不添加初级抗体的鱼类。抗体的体积应该足以覆盖鱼, 并允许搅拌。 - 如步骤6.3.4 中所述, 用 pbst 清洗鱼3次。用阻断溶液中稀释的二级抗体取代 pbst, 并在 rt 用搅拌孵育一夜。
注: 应确定每个抗体的最佳一级和二级抗体浓度、培养时间和培养温度。在 rt 过夜对材料表中列出的抗体有效。 - 用 pbst 清洗鱼 3次, 每次清洗持续 15分钟, 如步骤6.3.4 中所述。
- 将鱼转移到 pbs 进行短期储存, 然后再对鱼进行解剖、安装或切片。
- 制备50毫升的阻滞剂 [pb-0.5% triton x, 0.2% 牛血清白蛋白 (bsa), 1% 亚甲基亚硫酸 (dmso), 0.02% 氮化钠, 5% 驴血清]。
Representative Results
表 1显示了在静态养殖槽中繁殖表鱼和 tinaja、molino 和 pachón 河豚一年期间取得的成功。表面和巴孔产卵与受精卵总是产生孵化的幼虫, 而 molino 和 tinaja 在某些时候没有成功 (分别为 2/6 和 2-18个产卵事件没有产生孵化的幼虫)。离合器尺寸的变化似乎并不归因于母鱼的年龄。表 2显示了一些产卵事件产生的孵化幼虫总数, 以及母鱼的年龄。一般来说, 我们发现水面鱼类每产卵产生的幼虫数量最多 (平均 1, 550±894, n = 5), 其次是 pachón (平均 879±680, n = 6)、tinaja (平均 57000±373, n = 11) 和 molino (平均 386±276, n = 3)。所产生的幼虫数量通常超过每个实验或成人生长所需的数量。我们通常建立6-18 个苗圃容器 (120-360 幼虫), 并对剩余的鱼实施安乐死。
为了衡量苗圃协议的成功, 我们记录了成功产卵事件中孵化的幼虫数量和存活的幼虫后鱼类的数量。表 3显示了在循环储罐繁殖1个月的数据, 并包括转移到苗圃容器中存活到 14 dpf 的幼虫数量。在这个月, 存活率从41-81 不等, 结果每个种群有65-293 鱼可用于实验或成长为成年人。
为了确定全贴体免疫染色是否成功, 我们将初级抗体培养的样品与仅用二级抗体培养的样本的荧光进行了比较。荧光信号只在使用原代抗体孵育的鱼类中可见。我们已经使用这个协议成功地标记神经元10 (图 1) 和胰腺细胞6在阶段到 12.5 dpf 在表面和洞穴。
图 1: 神经元标签.仙人掌的全贴免疫染色.12.5 dpf 水面鱼类 (a) 和帕孔鱼 (b) 的图像。体中区域的图像 [孵化黄色轮廓 (a) 和 (b)) 表面鱼类 (c) 和帕雄空鱼 (d) 染色泛神经元抗体 (胡)。(e) 显示肠内神经元 (hu) 及其突起 (乙酰化管蛋白) 的表面鱼肠区域的共聚焦图像。对于这张图片, 肠道被解剖, 并安装在含有 dapi 的介质中, 以染色细胞核。请点击这里查看此图的较大版本.
| 人口 | 尝试 | 生成事件 | 离合 器 |
| 表面 | 94 | 23 | 23 |
| 莫利诺 | 1110 | 6 | 4个 |
| 帕洪 | 167 | 13 | 13 |
| 蒂纳亚 | 242 | 18 | 16 |
表 1: 一年育种数据总表静态储罐中的 mexicanus 。繁殖尝试的数量、由此产生的产卵事件以及产生孵化幼虫的产卵事件的数量。
| 人口 | 父母年龄 | 孵化幼虫 |
| 表面 | 1年 | 989 |
| 表面 | 1年 | 1050 |
| 表面 | 3年 | 2214 |
| 表面 | 3年 | 432 |
| 表面 | 3年 | 1768年 |
| 表面 | 4年 | 2852 |
| 帕洪 | 1年 | 1194 |
| 帕洪 | 1年 | 1933年 |
| 帕洪 | 1.5年 | 371 |
| 帕洪 | 3年 | 480 |
| 帕洪 | 4年 | 1190 |
| 帕洪 | 4年 | 1110 |
| 蒂纳亚 | 9个月 | 259 |
| 蒂纳亚 | 9个月 | 253 |
| 蒂纳亚 | 10个月 | 1120 |
| 蒂纳亚 | 11个月 | 857 |
| 蒂纳亚 | 1年 | 713 |
| 蒂纳亚 | 1年 | 853 |
| 蒂纳亚 | 1年 | 542 |
| 蒂纳亚 | 1.5年 | 360 |
| 蒂纳亚 | 1.5年 | 58 |
| 蒂纳亚 | 1.5年 | 1120 |
| 蒂纳亚 | 4年 | 185 |
| 莫利诺 | 2.5年 | 460 |
| 莫利诺 | 2.5年 | 619 |
| 莫利诺 | 3年 | 81 |
表 2: 指来自所示种群的个别产卵事件中的女性年龄和孵化幼虫数量.一个.
| 人口 | 尝试 | 生成事件 | 离合 器 | 离合器尺寸 | 转移到苗圃杯的幼虫 | 后幼虫鱼在14dpf | 存活率 (%) |
| 表面 | 4个 | 3个 | 2 | 576 & 1728 | 360 | 174 | 48 |
| 莫利诺 | 4个 | 2 | 1 | 228 | 159 | 65 | 41 |
| 蒂纳亚 | 4个 | 1 | 1 | 1952年 | 175 | 93 | 53 |
| 帕洪 | 4个 | 1 | 1 | 1696年 | 360 | 293 | 81 |
表 3: 在循环系统和饲养幼虫中繁殖的一个月数据摘要.繁殖尝试的次数, 由此产生的产卵事件、产生孵化幼虫的离合器、每个离合器幼虫的平均数量、转移到苗圃容器中的幼虫以及14天后在苗圃容器中的幼虫后鱼。
Discussion
比较表面和洞穴之间的基因活性, 需要仔细控制的环境参数和方法, 可以在实验室之间复制。我们的提高的方案在幼虫后的发育过程中提供了一致的营养成分。在这种喂养模式下, 使用我们所提出的强大的免疫组织化学协议, 可以自信地比较人群之间的基因功能。在这里, 我们讨论了这种方法的意义, 以及它的局限性和未来的应用.
为了实现密度匹配的生长, 我们发现, 在 1.5 l 容器中, 在轮虫的饮食中, 可以在不循环水的情况下饲养幼鱼两周。该协议也可用于在循环系统上养鱼;然而, 必须每天添加轮虫, 以补偿那些因坦克流出而损失的人。新孵化的青蒿素通常被用作水产养殖的食物来源, 但我们发现, 使用轮虫具有相当大的优势, 包括: 降低价格、改善生物安全、稳定营养和改善水质 (见下文)。
首先, 轮虫每周消耗品的费用为4美元, 而阿特米亚的每周消耗品费用为14美元。在生物安全方面, 在受控条件下在实验室饲养轮虫, 而青蒿素则从野外采集, 并受到微生物或病原体含量的自然变化23。此外,青蒿素的营养成分是由环境决定的, 因此不一致。诺普利孵化后在自己的能量储存上茁壮成长;随着它们的发育, 它们很快就会失去营养价值, 并应在几个小时内最好地喂给鱼。青蒿素在孵化后的12所房子开始进食, 这是第一次可以营养丰富;然而, 在这个阶段, 它们已经变得太大, 5 dpf 鱼无法食用。相比之下, 轮虫无论何时收获轮虫, 都会不断以海洋微藻为食, 从而产生较高的营养成分。轮虫比艺术鸟要小得多 (160微米400微米), 使它们更容易捕捉和吞咽的鱼。幼虫后的河豚和河豚食用类似数量的轮虫, 表明在选择或捕获轮虫10的能力上没有差别。
最后,青蒿素在引进数小时后开始在淡水中死亡。如果不人工去除, 不均匀的, 就会腐烂, 从而迅速降低水质。清除死的青蒿素对于幼体后的鱼来说是耗时和危险的, 它们的体型并不大, 可能会被意外切除或受伤。轮虫可以无限期地生活在苗圃容器中, 随时为鱼类提供食物, 而不会对水质产生重大影响。
虽然使用轮虫作为食物来源有相当大的好处, 但要维持轮虫种群, 每天都必须在养殖系统中添加藻类。这可以通过自动给料机来实现, 该给料机将液体藻类分配到轮状养殖容器中 (见材料表)。轮客还必须每24-48 从这个设置中收获一次, 以保持文化的健康。繁殖鱼类的人很少繁殖 (例如, 每年繁殖一次), 也不关心在幼虫后阶段对种群进行比较, 他们可能更喜欢青蒿素作为食物来源, 因为包裹的胚胎可以在任何时候孵化。
我们建议跟踪孵化和存活的幼虫数量, 以监测孵化和生长的成功。如果大多数胚胎或幼虫死亡, 则可能是由于细菌或真菌污染。建议对鱼类准备好的水的水质进行监测, 并用70% 的乙醇对任何设备进行消毒。苗圃容器在清洗和消毒后可以重复使用。为了最大限度地降低患病风险, 在鱼群开始进食时, 从苗圃容器中取出任何死鱼, 不要在 5 dpf 前添加轮虫, 这一点也至关重要。
在大约一岁的时候, mexicanus就已经性成熟了。与能够在 10-12 24周繁殖的达尼奥·雷里奥(斑马鱼) 相比, 这是产生转基因a. mexicanus的一个限制。免疫组织化学 (ihc) 是研究基因表达和蛋白质定位的替代方法。这里描述的协议可以在每一步进行调整, 并用于检测任何感兴趣的组织中的抗原。但是, 需要注意的是, 由于色素沉着 (未着色的鱼中不存在的屏障), 一些组织可能更难以想象, 这可能会影响比较研究的解释。为了解决这个潜在的问题, 表面鱼类色素可以在使用3% 的过氧化氢固定后漂白。
ihc 需要成功的组织固定、阻断和抗体渗透。每个方法的不同程度取决于感兴趣的组织和蛋白质。固定时间和固定时间必须保持细胞结构, 同时保持抗原表位。对于这个协议, 我们使用交联固定剂 (甲醛), 省略变性固定剂 (如甲醇或丙酮)。我们发现丙酮中的培养减少了神经元和胰腺标记的抗体信号。阻塞步骤对于防止抗体与组织中的非目标蛋白结合至关重要。该方法在阻断溶液中使用正常血清 (5%) 和 bsa (0.2%) 的组合。阻断溶液中含有抗体和蛋白质, 结合到组织中蛋白质的反应位点, 减少原生和二级抗体的非特异性结合。
为了达到抗体渗透, 组织必须渗透。这可以通过洗涤剂或变性溶剂来实现, 但必须进行优化以保存抗原表位。我们的协议结合使用了 triton 和二甲基亚硫酸 (dmso)。在阻断和抗体培养步骤中, triton 和 dmso 分别包含在浓度为0.5% 和1% 的过程中。利用这种浓度, 我们观察到染色在大脑, 胰腺, 肠道和肌肉, 这表明它可能是有效的渗透所有组织。鱼的大小也可能影响渗透。该协议尚未在超过 14天 (长约7毫米) 的鱼类上进行测试。为了解决染色问题, 建议改变固定、阻塞和抗体渗透步骤。使用可用的基因组25, 研究有关的a. mexicanus蛋白的免疫原序列保护也很重要。
mexicanus是一个很好的模型, 可以研究进化过程, 因为在截然不同的环境中进化的同一物种的种群可以在实验室中直接进行比较。实验室内部和实验室之间的标准畜牧业规程对于了解表亲鱼和河豚之间的生物差异至关重要。本文提供了一种方法来检查在一致生长参数下接触的幼虫后鱼类的发育和基因活性。
Disclosures
作者没有什么可透露的。
Acknowledgments
这项工作得到了国家卫生研究院 [hd089934、dk108495] 赠款的支持。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| methylene blue | Kordon | B016CBHZUS | antifungal |
| heater | Finnex | 4711457836017 | 100W Digital Control Heater |
| airstone | Lee's Aquarium & Pet Products | 10838125202 | disposable air stone |
| salt | Instant Ocean | 51378014021 | Sea Salt |
| nursery container | IPC | 21545-002 | 40 oz or 1.5 L clear containers |
| transfer pipette | VWR | 414004-002 | plastic bulb pipettes |
| compact culture system(CCS) starter kit with Brachionus plicatilis (L-type) rotifers | Reed Mariculture | na | fish food |
| RGcomplete | APBreed | 817656016572 | 32 oz bottle of rotifer food |
| Programmable Auto Dosing Pump DP-4 | Jebao | DP-4 | automatic feeder for rotifers |
| Tricane-S | Western Chemical | MS 222 | fish anesthetic |
| sodium bicarbonate | Sigma-Aldrich | S5761-500G | for tricane solution |
| nylon mesh strainer | HIC (Harold Import Co.) | 735343476235 | 3-inch diameter |
| Formalin solution, neutral buffered, 10% | Sigma-Aldrich | HT501128-4L | fixative |
| 10X PBS | Invitrogen | AM9625 | buffer, dilute to 1X using distilled water |
| Triton-x 100 | Sigma-Aldrich | T8787-250ML | detergent |
| sodium azide | Sigma-Aldrich | S2002-25G | anti-bacterial |
| bovine serum albumin | Sigma-Aldrich | A9647-100G | blocking reagent |
| glass vial with screw-top cap 4mL | Wheaton | 224742 | staining vial |
| plastic mesh screen for breeding tank | Pentair | N1670 | Cut into a rectangle 6mm larger on all edges than the dimensions of the bottom of the breeding tank. Cut a 6mm square from each corner of the rectangle. Bend the edges of the screen down along all four edges.Place a pair of 6mm vinyl-coated disk magnets on either side (top and bottom) of the mesh on each corner. The screen should be as snug as possible to the sides of the tank. The screen can be removed from the tank with a metal fish net. |
| vinyl-coated disk magnets | Kjmagnets | D84PC-AST | |
| New Life Spectrum Thera-A pellet fish food | New Life International | na | Adult fish food. A list of retailers for this product is available on the company website |
| Antibodies | |||
| insulin antibody from guinea pig | Dako | A0564 | 1:200 |
| glucagon antibody from sheep | Abcam | ab36215 | 1:200 |
| acetylated tubulin antibody from mouse | Sigma | T6793 | 1:500 |
| HuD/HuC antibody from mouse | Life Technologies | A-21271 | 1:500 |
| nitric oxide synthase (nNOS) antibody from rabbit | Abcam | ab106417 | 5μg/mL |
| choline acetyltransferase (ChAT) from rabbit | Abcam | ab178850 | 1:2000 |
| seratonin (5HT) from rabbit | Immunostar | 20080 | 1:500 |
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