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Artículo de método

Imágenes 3D de alta resolución de la infección por el virus de la rabia en el tejido cerebral con disolventes

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DOI:

10.3791/59402

30 de abril de 2019

En este artículo

Resumen

Las nuevas técnicas de limpieza de tejidos compatibles con la inmunomancha, como la imagen 3D definitiva de órganos con disolventes, permiten la visualización 3D de la infección cerebral del virus de la rabia y su complejo entorno celular. Las rebanadas gruesas de tejido cerebral con etiqueta de anticuerpos se hacen ópticamente transparentes para aumentar la profundidad de la imagen y permitir el análisis 3D mediante microscopía de escaneo láser confocal.

Resumen

La visualización de los procesos de infección en tejidos y órganos mediante inmunoetiquetado es un método clave en la biología moderna de la infección. La capacidad de observar y estudiar la distribución, el tropismo y la abundancia de patógenos dentro de los tejidos de órganos proporciona datos fundamentales sobre el desarrollo y la progresión de la enfermedad. Mediante métodos de microscopía convencionales, el inmunoetiquetado se limita principalmente a secciones delgadas obtenidas de muestras congeladas o incrustadas en parafina. Sin embargo, el plano de imagen 2D limitado de estas secciones delgadas puede conducir a la pérdida de información crucial sobre la estructura compleja de un órgano infectado y el contexto celular de la infección. Las modernas técnicas multicolores y compatibles con la inmunomancha ahora proporcionan una manera relativamente rápida y económica de estudiar pilas de imágenes 3D de gran volumen de tejido orgánico infectado por virus. Al exponer el tejido a disolventes orgánicos, se vuelve ópticamente transparente. Esto coincide con los índices de refracción de la muestra y, finalmente, conduce a una reducción significativa de la dispersión de la luz. Por lo tanto, en combinación con objetivos de larga distancia de trabajo libre, grandes secciones de tejido de hasta 1 mm de tamaño se pueden tomar imágenes mediante microscopía de escaneo láser confocal convencional (CLSM) a alta resolución. Aquí, describimos un protocolo para aplicar imágenes de tejido profundo después de la limpieza del tejido para visualizar la distribución del virus de la rabia en cerebros infectados con el fin de estudiar temas como la patogénesis del virus, la propagación, el tropismo y la neuroinvasión.

Introducción

Las técnicas de histología convencionales se basan principalmente en secciones delgadas de tejidos de órganos, que pueden proporcionar intrínsecamente sólo información 2D en un entorno 3D complejo. Aunque es factible en principio, la reconstrucción 3D a partir de secciones delgadas en serie requiere tuberías técnicas exigentes tanto para el corte como para posteriores en la alineación de silico de las imágenes adquiridas1. Además, la reconstrucción sin fisuras de los volúmenes z después del corte del microtomo es fundamental, ya que los artefactos mecánicos y computacionales pueden permanecer debido al registro de imágenes subóptimo causado por....

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Protocolo

Se utilizó material cerebral archivado fijado por la PFA infectado por RABV. Los respectivos estudios experimentales en animales fueron evaluados por el comité responsable de cuidado, uso y ética de los animales de la Oficina Estatal de Agricultura, Seguridad Alimentaria y Pesca en Mecklemburgo-Pomerania Occidental (LALFF M-V) y obtuvieron la aprobación con permisos 7221.3-2.1-002/11 (ratones) y 7221.3-1-068/16 (ferrets). Los cuidados generales y los métodos utilizados en los experimentos con animales se llevaron a cabo de acuerdo con las directrices aprobadas.

ADVERTENCIA: Este protocolo utiliza diversas sustancias tóxicas y/o nocivas, inc....

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Resultados

La combinación de iDISCO14 y uDISCO13 junto con CLSM de alta resolución proporciona una visión profunda de la resolución espaciotemporal y la plasticidad de la infección RABV del tejido cerebral y el contexto celular circundante.

Mediante la inmunoutilización de la fosfoproteína RABV (P), se pueden visualizar capas complejas de células neuronales infectadas en secciones gruesas del cerebro del ratón (Figura3). Poster.......

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Discusión

El resurgimiento y desarrollo de técnicas de limpieza de tejidos en los últimos años2,3,4,5,6,7,8, 9 , 10 , 11 , 12 , 13

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Divulgaciones

Los autores no tienen nada que revelar.

Agradecimientos

Los autores agradecen a Thomas C. Mettenleiter y Verena te Kamp por leer críticamente el manuscrito. Este trabajo fue apoyado por la Iniciativa Federal de Excelencia de Mecklemburgo Pomerania Occidental y el Fondo Social Europeo (FSE) Grant KoInfekt (ESF/14-BM-A55-0002/16) y una beca de investigación colaborativa intramuros sobre Lyssavirus Friedrich-Loeffler-Institute (Ri-0372).

....

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
bencílicofuerte Alfa Aesar41218Reactivo
aclarado Benzoato de benciloSigma-AldrichBB6630-500MLReactivo de aclarante
Dimetilsulfóxido CarlRoth4720.2Varios tampones Éter de
difeniloSigma-Aldrich240834-100GReactivo de aclarado
DL-α-TocoferolAlfa AesarA17039Suero antioxidante
burroBio-RadC06SBZReactivo bloqueador
GlicinaCarl Roth3908.2Reducción de fondo
Suero de cabraMerckS26-100MLReactivo bloqueador
Heparina sal de sodioCarl Roth7692.1Antecedentes reducción
Solución de peróxido de hidrógeno (30 %)Carl Roth8070.2Blanqueo de muestras
MetanolCarl Roth4627.4Pretratamiento
de muestras ParaformaldehídoCarl Roth0335.3Polvo cristalino para hacer solución fijadora
Azida de sodioCarl RothK305.1Prevención del crecimiento microbiano en soluciones madre
tert-ButanolAlfa Aesar33278Deshidratación de muestras para la limpieza de tejidos
TO-PRO-3Thermo FisherT3605Tinción de ácido nucleico
Triton X-100Carl Roth3051.2Detergente
Tween 20AppliChemA4974,0500Detergente
Miscelánea
5 mL de reacción tubosEppendorf0030119401Tubos de muestra
Cubreobjetos, circular (diámetro: 22 mm)Marienfeld0111620Parte de la cámara de imagen
Cobertor, circular (diámetro: 30 mm)Marienfeld0111700Parte de la cámara de imagen
Aguja hipodérmica (27 G x & frac34; ” [0,40 mm x 20 mm])B. Braun4657705Llenado de la cámara de imagen con solución de limpieza
RTV-1 caucho de silicona WackerElastosil E43Adhesivo para el montaje de la cámara de imagen
Ultimaker CPE 2,85 mm transparenteUltimaker8718836374869filamento de copoliéster para impresora 3D para imprimir partes de la cámara de imagen
equipo técnico y software
Impresora 3DUltimakerUltimaker 2+Impresión de la cámara de imagen Sistema automatizado
de inmersión en aguaLeica15640019Bomba de agua controlada por software
Agitador orbital de sobremesaElmiDOS-20MIncubación de muestras a temperatura ambiente (~ 150 rpm)Agitador
orbital de sobremesa, calefactadoNew Brunswick ScientificG24 Agitador ambientalIncubación de muestras a 37 ° C (~ 150 rpm)
Microscopio de barrido láser confocalLeicaDMI 6000 TCS SP5Microscopio confocal invertido para la adquisición de imágenes
de muestras FijiNIH (ImageJ)software de código abierto (v1.52h)Paquete de procesamiento de imágenes basado en ImageJ
Objetivo de inmersión en agua de larga distancia de trabajoLeica 15506360HC PL APO 40x/1.10 W motCORR CS2
VibratomeLeica VT1200SEstación de
trabajoDellPrecision 7920CPU: Intel Xeon Gold 5118
GPU: Nvidia Quadro P5000
RAM: 128 GB 2666 MHz DDR4
SSD: 2 TB
strong>Primary antibodies
Goat anti-RABV NFriedrich-Loeffler-InstitutSuero policlonal monoespecífico anti-RABV N de cabra, generado por inmunización de cabra con nucleoproteína N
de RABV expresada por baculovirus y purificada con His-tag Dilución: 1:400
anti-GFAPDakoZ0334(RRID:AB_10013382)
Dilución: 1:100
anti-MAP2 de conejoAbcamab32454(RRID:AB_776174)
Dilución: 1:250
Anti-RABV de conejo P 160-5Friedrich-Loeffler-InstitutSuero policlonal monoespecífico de conejo anti-RABV P, generado por inmunización de conejos con fosfoproteína P RABV expresada por baculovirus y purificada con His-tag (ver referencia 23: Orbanz et al., 2010)
Dilución: 1:1.000
anticuerpos secundarios
conjugados fluoróforoAltamente absorbido cruzado
Dilución: 1:500
Burro anti-ratón IgGThermo Fisher Scientificen función del fluoróforo conjugadoAlta absorción cruzada
Dilución: 1:500
Burro anti-conejo IgGThermo Fisher Scientificen función del fluoróforo conjugadoAltamente absorbido cruzado
Dilución: 1:500
Cabra anti-ratón IgGThermo Fisher Científicoen función del fluoróforo conjugadoAlta absorción cruzada
Dilución: 1:500
IgG anti-conejo de cabraThermo Fisher Scientificen función del fluoróforo conjugadoAlta absorción cruzada
Dilución: 1:500
de de : <Anticuerpo policlonal de conejo Anticuerpo policlonalburro anti-cabra IgG Thermo Fisher Scientific en función de

Referencias

  1. Pichat, J., Iglesias, J. E., Yousry, T., Ourselin, S., Modat, M. A Survey of Methods for 3D Histology Reconstruction. Medical Image Analysis. 46, 73-105 (2018).
  2. Chung, K., et al. Structural and molecular interrogation of intact biological systems. Nature. 497

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Reimpresiones y permisos

Etiquetas

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