Summary

टेट्रोडोटॉक्सिन माइक्रोइंजेक्शन द्वारा रिवर्सिबल निष्क्रियता के माध्यम से ओव्यूलेशन के नियमन में चूहे मस्तिष्क के असतत क्षेत्रों की भूमिका को सुलझाना

Published: September 03, 2020
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Summary

यह प्रोटोकॉल कम लागत वाली माइक्रोइंजेक्शन प्रणाली के निर्माण, गहरे मस्तिष्क संरचनाओं में इसके स्टीरियोटैक्सिक प्रत्यारोपण और जाग और अनर्गल चूहों में टेट्रोडोटॉक्सिन के समय पर माइक्रोइंजेक्शन की प्रक्रिया का वर्णन करता है। लक्ष्य उनकी तंत्रिका गतिविधि को बाधित करके ओव्यूलेशन के नियमन में हाइपोथैलेमिक संरचनाओं की भागीदारी को प्रकट करना है।

Abstract

ओव्यूलेशन के नियमन में मस्तिष्क की भूमिका का अध्ययन करने के लिए कई प्रयोगात्मक दृष्टिकोणों का उपयोग किया गया है। उदाहरणों में न्यूरोनल समूहों का घाव और बहरापन शामिल है, जो दोनों आक्रामक तरीके हैं जो स्थायी रूप से लक्ष्य क्षेत्र की अखंडता को ख़राब करते हैं। इन तरीकों के साथ संपाश्र्वक प्रभाव होते हैं जो तीव्र और लौकिक नियामक तंत्र के विश्लेषण को प्रभावित कर सकते हैं। विशिष्ट मस्तिष्क क्षेत्रों के उद्देश्य से गाइड कैनुलास का स्टीरियोटैक्सिक प्रत्यारोपण, एक वसूली अवधि के बाद, शोधकर्ताओं को सर्जरी के अवांछित प्रभावों के गायब होने के बाद विभिन्न दवाओं को माइक्रोजेक्ट करने की अनुमति देता है। टेट्रोडोटॉक्सिन का उपयोग विविध शारीरिक प्रक्रियाओं में कई मस्तिष्क क्षेत्रों की भूमिकाओं को निर्धारित करने के लिए किया गया है क्योंकि यह क्षणिक रूप से सोडियम-निर्भर कार्रवाई क्षमता को रोकता है, इस प्रकार लक्षित क्षेत्र में सभी तंत्रिका गतिविधि को अवरुद्ध करता है। यह प्रोटोकॉल इस विधि को एस्ट्रोस चक्र और ओव्यूलेशन के आकलन के लिए रणनीतियों के साथ जोड़ता है ताकि एस्ट्रोस चक्र के किसी भी चरण के विशेष समय में ओव्यूलेशन के नियमन में असतत मस्तिष्क क्षेत्रों की भूमिका को प्रकट किया जा सके। जाग और अनर्गल चूहों(Rattus norvegicus)अवरुद्ध प्रभाव है कि एनेस्थेटिक्स और तनाव हार्मोन अंडाशय पर लागू से बचने के लिए इस्तेमाल किया गया । इस प्रोटोकॉल को विभिन्न शारीरिक प्रक्रियाओं का अध्ययन करने के लिए अन्य प्रजातियों, मस्तिष्क लक्ष्यों और औषधीय एजेंटों के लिए आसानी से अनुकूलित किया जा सकता है। इस विधि में भविष्य में सुधार में गाइड कैनुलास के बजाय छोटे व्यास के ग्लास केशिकाओं का उपयोग करके माइक्रोइंजेक्शन सिस्टम का डिजाइन शामिल है। इससे प्रत्यारोपण के दौरान क्षतिग्रस्त ऊतकों की मात्रा कम हो जाएगी और लक्ष्य क्षेत्र के बाहर संचार दवाओं का प्रसार कम हो जाएगा।

Introduction

ओव्यूलेशन वह प्रक्रिया है जिसके द्वारा हर एस्ट्रोल/मासिक धर्म चक्र में एक बार अंडाशय से एक या अधिक परिपक्व ओसाइट्स जारी किए जाते हैं । चूंकि सभी स्तनधारी प्रजातियां नस्ल के लिए गेम्टे के उत्पादन पर निर्भर करती हैं, इसलिए ओव्यूलेशन को विनियमित करने वाले तंत्रों की समझ जैव चिकित्सा, पशुधन उद्योग और लुप्तप्राय प्रजातियों के रखरखाव से लेकर क्षेत्रों में बहुत बड़ा प्रभाव डालती है। ओव्यूलेशन को हाइपोथैलेमिक-पिट्यूटरी-ओवेरियन एक्सिस द्वारा विनियमित किया जाता है, जिसमें कई हाइपोथैलेमिक और अतिरिक्त हाइपोथैलेमिक क्षेत्र शामिल हैं, पूर्वकाल पीयूष और थेका और ग्रैनुलोसा कोशिकाओं में गोंडोट्रोप्स जो ओसाइट्स के साथ, अंडाशय के अंदर अंडाशय के रोम बनाते हैं1।

ओवेरियन रोम बढ़ने, विकसित और अंततः कूप उत्तेजक हार्मोन और ल्यूटिनाइजिंग हार्मोन के टॉनिक और चरणबद्ध स्राव के जवाब में अंडाशय, दो गोंडोडोपिंस गोंडोट्रॉप द्वारा स्रावित। गोंडोट्रोपिन स्राव का पैटर्न उचित कूप विकास और ओव्यूलेशन के लिए निर्णायक है और इसे गोंडोट्रोपिन-रिलीजिंग हार्मोन (जीएनआरएच)1, 2द्वारा विनियमित कियाजाताहै। इस न्यूरोपेप्टाइड को बेसल डाइएनसेफेलॉन में बिखरे हुए न्यूरॉन्स द्वारा संश्लेषित किया जाता है और फिर पोर्टल वेक्यूलेचर में स्रावित किया जाता है जो हाइपोथैलेमस और पूर्वकाल पिट्यूटरी को जोड़ता है। जीएनआरएच-न्यूरॉन्स की गुप्त गतिविधि बदले में विविध मस्तिष्क संरचनाओं से उत्पन्न होने वाले सिनैप्टिक इनपुट द्वारा संग्राहक होती है। ये संरचनाएं भोजन की उपलब्धता, फोटोपीरियोड की लंबाई और रक्त में हार्मोन की एकाग्रता सहित जीव के बाहरी और आंतरिक वातावरण की स्थिति के बारे में जानकारी व्यक्त करती हैं। इस अर्थ में, वे प्रत्येक प्रजाति के प्रजनन पैटर्न को आकार देते हैं और ओव्यूलेशन को नियंत्रित करने वाले तंत्रों को ठीक से समझने के लिए ऐसी संरचनाओं की विशिष्ट भूमिकाओं का निर्धारण किया जाना चाहिए। एक उदाहरण के रूप में, यह दिखाया गया है कि एस्ट्रोस चक्र के दौरान एस्ट्रोडियोल के स्तर में उतार-चढ़ाव जीएनआरएच के स्राव को नियंत्रित करता है; हालांकि, जीएनआरएच-न्यूरॉन्स ऐसे बदलावों का पता लगाने के लिए आवश्यक एस्ट्रडिओल रिसेप्टर आइसोफॉर्म को व्यक्त नहीं करता है। इन रिसेप्टर्स को व्यक्त करने वाले न्यूरॉन्स की दो आबादी तीसरे वेंट्रिकल के रोस्ट्रल पेरिवेनेट्रिकर क्षेत्र में और क्रमशः आर्क्यूएट न्यूक्लियस में स्थित हैं, और जीएनआरएच-न्यूरॉन्स के साथ स्टैबलिश सिनेप्स हैं। यह सुझाव देने के लिए सबूत हैं कि ये न्यूरॉन्स एस्ट्राडिओल की एकाग्रता की व्याख्या करते हैं और फिर जीएनआरएच स्राव3के एक शक्तिशाली प्रेरक किस्पेप्टिन को रिहा करके जीएनआरएच-न्यूरॉन्स की गतिविधि को उत्तेजित करते हैं।

तार्मिक या रासायनिक घावों के साथ-साथ यांत्रिक बहराधवहार से जुड़े प्रयोगों ने शोधकर्ताओं को ओव्यूलेशन4, 5,6,7,8,9,10, 11,12 के नियमन में कई मस्तिष्क संरचनाओं की भागीदारी निर्धारित करने की अनुमतिदी। . हालांकि, इन प्रयोगों में आक्रामक और दर्दनाक होने का नुकसान होता है, उपचार के प्रभावों का मूल्यांकन करने से पहले कई दिनों की वसूली की आवश्यकता होती है, उपचार के तीव्र प्रभावों के विश्लेषण में बाधा डालते हैं। इसके अलावा, वे स्थायी रूप से लक्षित क्षेत्रों को प्रभावित करते हैं और लंबी अवधि में अन्य शारीरिक प्रक्रियाओं को बाधित करते हैं। इन समस्याओं के कारण, इन प्रयोगों के परिणाम आमतौर पर जानवर के शरीर में होमोस्टेटिक प्रतिपूरक तंत्र से अस्पष्ट होते हैं और लौकिक नियामक गतिशीलता के बारे में सटीक जानकारी निकालते हैं जिसमें क्षेत्र शामिल है बल्कि मुश्किल है।

गाइड कैनुलास के माध्यम से न्यूरॉन्स की गतिविधि को बाधित करने वाली दवाओं का माइक्रोइंजेक्शन एक उपयुक्त विकल्प है जो ऊपर उल्लिखित नुकसान से बढ़कर है। कैनुलास को स्टीरियोटैक्सिक सर्जरी द्वारा किसी भी मस्तिष्क क्षेत्र में रखा जा सकता है, जिससे शोधकर्ता को सर्जरी के जटिल प्रभाव गायब होने के बाद दवा उपचार शुरू करने की अनुमति मिल सकती है। दवाओं का समय पर माइक्रोइंजेक्शन शोधकर्ताओं को प्रक्रिया के एक विशेष कदम के लिए क्षेत्र के योगदान के बारे में परिकल्पनाओं का परीक्षण करने की अनुमति देता है और जाग संयमित या मुक्त चलती जानवरों में किया जा सकता है । स्थानीय एनेस्थेटिक्स, एगोनिस्ट, विरोधी, विलोम एगोनिस्ट और टेट्रोडोटॉक्सिन (टीटीएक्स) जैसे जैविक विषाक्त पदार्थों सहित विभिन्न प्रकार की दवाओं को विशिष्ट समय पर ब्याज के क्षेत्र में माइक्रोइंजेक्टेड किया जा सकता है।

टीटीएक्स एक जैविक विष है जो पफरफिश के शरीर में रहने वाले बैक्टीरिया के साथ-साथ अन्य कशेरुकी और अकशेरुकी से संश्लेषित होता है। टीटीएक्स सोडियम चैनलों की चयनात्मक और क्षणिक नाकाबंदी के माध्यम से तंत्रिका गतिविधि को मौन करता है, जिसके परिणामस्वरूप सोडियम-निर्भर कार्रवाई क्षमता का अवरोध होता है। टीटीएक्स की उपस्थिति में, कोशिकाएं डीपोलराइजेशन चरण में परिवर्तन का अनुभव करती हैं और इस प्रकार उत्तेजनीय नहीं होती हैं लेकिन जीवित रहती हैं। टीटीएक्स के अवरुद्ध प्रभाव को इसकी आणविक संरचना द्वारा समझाया गया है: एक ग्वानिडिनियम समूह सोडियम चैनल के बाह्रात्म पहलू से गुजरने में सक्षम है, लेकिन बाकी अणु इसके आकार के कारण पारित नहीं हो सकते हैं, इसलिए यह अटक गया है और चैनल13,14,15,16, 17 को ब्लॉक करता है . टीटीएक्स की कार्रवाई के तंत्र ने विट्रो और वीवो दोनों में तंत्रिका तंत्र का अध्ययन करने के लिए एक उपकरण के रूप में इसके उपयोग की अनुमति दी। इस विष के इंट्रासेरेब्रल इंजेक्शन का उपयोग स्मृति प्रतिधारण 18, नींद और उत्तेजना 19, स्थान मान्यता 20, स्थानिकनेविगेशन21,नशीली दवाओं के दुरुपयोग22,थर्मोरेगुलेशन23,सिजोफ्रेनिया के विकास24,यौन व्यवहार25 और ओव्यूलेशन26 के विनियमन जैसी कई प्रक्रियाओं में असतत मस्तिष्क क्षेत्रों की भूमिका का अध्ययन करने के लिए किया गया है। दूसरों के बीच। इस प्रोटोकॉल में हम जाग और अनर्गल चूहों में टीटीएक्स माइक्रोइंजेक्शन द्वारा हाइपोथैलेमिक नाभिक के क्षणिक निष्क्रियता के अंडाशय पर प्रभाव का वर्णन करते हैं।

Protocol

जानवरों से जुड़ी प्रक्रियाओं को मुखाल्टाड डी एस्टुडियोस सुपीरियर्स जरगोज़ा, यूएनएएम की आचार समिति द्वारा अनुमोदित किया गया था । इस संस्था पशु हैंडलिंग के लिए मैक्सिकन नियमों के साथ सख्त अनुसार संचा?…

Representative Results

ऊपर वर्णित प्रोटोकॉल का परीक्षण एकल टीटीएक्स या वाहन (कृत्रिम सेरेब्रोस्पाइनल तरल पदार्थ) के प्रभावों का मूल्यांकन करके किया गया था; ACSF) चूहे में ओव्यूलेशन के नियमन में शामिल होने के लिए जाने जाने वाले …

Discussion

यह लेख किसी भी समय, जाग और अनर्गल चूहों के मस्तिष्क में एक असतत क्षेत्र, क्षणिक रूप से निष्क्रिय करने की विधि का वर्णन करता है। उनके एस्ट्रोस चक्र को ट्रैक करने और ओव्यूलेशन का आकलन करने के लिए एक सरल विध…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम पांडुलिपि संपादन में उनकी बहुमूल्य मदद के लिए वाशिंगटन विश्वविद्यालय में रेमंड सांचेज के आभारी हैं और इस तकनीक के मानकीकरण में उनकी तकनीकी सहायता के लिए जॉर्जीना कोर्टेस और M.Sc सिंटिया जेवियर को M.Sc हैं । हम संकाय डी एस्टुडियोस सुपीरियर जरगोज़ा: एमवीजेड में पशु चिकित्सक सेवाओं के सदस्यों के आभारी भी हैं। एड्रियाना अल्तामिरानो, एमवीजेड। रोमन हर्नांडेज़ और एमवीजेड। प्रयोगात्मक जानवरों के उत्कृष्ट रखरखाव और देखभाल के लिए डोलोरेस-एलिजाबेथ गुज़मान। इस प्रोटोकॉल में वर्णित प्रयोगों को डीजीएपीए-PAPIIT अनुदान संख्या: IN216015 और CONACyT अनुदान संख्या द्वारा समर्थित किया गया था: रॉबर्टो डोमिनगुएज के 236908। कार्लोस-कैमिलो सिल्वा प्रोग्रामा डी डॉक्टराडो एन सिएंसियास बायोमेडिस, यूनीवर्सिड नैसिनल ऑटोनोमा डी मेक्सिको (यूएनएएम) से डॉक्टरेट छात्र हैं और इसे कॉन्सेजो नैसिनल डी सिनेसिया वाई टेक्नोलोगिया (ग्रांट नंबर: 294555) द्वारा समर्थित किया जाता है।

Materials

10 μL Hamilton syringes Hamilton 80314
21 G x 1" stainless steel hypdermic needle BD 305165
23 G x 1" stainless steel hypdermic needle BD 305145
30 G x 1/2" stainless steel hypdermic needle BD 305106
Artificial cerebrospinal fluid BASi MD-2400
Bone trimer Fine Science Tools 16152-12
Burr for micro drill Fine Science Tools 19007-05
Clipper Wahl
Cut-off disc Dremel SM5010
Cutting tweezers Truper 17367
Cyanocrylate glue Kola loka K-1
Dental cement Nic Tone
Enrofloxasin Senosiain
Eosin Sigma E4009
Estereoscope Zeiss
Extra fine Bonn scissors Fine Science Tools 14084-08
Face mask Lanceta HG 60036
Graefe Forceps Fine Science Tools 11050-10
Hematoxilin Sigma H3136
Hemostats Fine Science Tools 13008-12
Hot bead sterilizer Fine Science Tools 18000-45
Hydrochloric acid Sigma 320331
Hypromelose artificial tears Sophia Labs 8950015
Isoflurane Pisa Agropecuaria
Meloxicam Aranda 1183
Microinjection pump KD Scientific 788380
Monomer Nic Tone
Mototool Dremel 3000
Nitrile gloves Lanceta HG 69028
Non-Rupture Ear Bars David Kopf Instruments 855
Poly-L lysine Sigma P4707
Povidone-iodine Dermo Dine
Povidone-iodine with soap Germisin espuma
Pressure tweezers Truper 17371
Rat anesthesia mask David Kopf Instruments Model 906
Saline solution PISA
Scalpel Fine Science Tools 10004-13
Scalpel blade Fine Science Tools 10015-00
Sodium pentobarbital Pisa Agropecuaria
Standard electrode holder David Kopf Instruments 1770
Stainless steel wire American Orthodontic 856-612
Stereotaxic apparatus David Kopf Instruments Model 900LS
Surgical Sissors Fine Science Tools 14001-12
Teflon connectors Basi MD-1510
Teflon tubing Basi MF-5164
Tetrodotoxin Alomone labs T-500
Vaporizer Kent scientific VetFlo

References

  1. Herbison, A. E. Control of puberty onset and fertility by gonadotropin-releasing hormone neurons. Nature Reviews Endocrinology. 12 (8), 452-466 (2016).
  2. Fink, G., Conn, M., Freeman, E. Neuroendocrine Regulation of Pituitary Function. Neuroendocrinology in Physiology and Medicine. , 107-133 (2000).
  3. Herbison, A. E. The Gonadotropin-Releasing Hormone Pulse Generator. Endocrinology. 159 (11), 3723-3736 (2018).
  4. Morello, H., Taleisnik, S. Changes of the release of luteinizing hormone (LH) on the day of proestrus after lesions or stimulation of the raphe nuclei in rats. Brain Research. 360 (1-2), 311-317 (1985).
  5. Slusher, M. A., Critchlow, V. Effect of Midbrain Lesions on Ovulation and Adrenal Response to Stress in Female Rats. Experimental Biology and Medicine. 101 (3), 497-499 (1959).
  6. Sawyer, C. H., Haun, C. K., Hilliard, J., Radford, H. M., Kanematsu, S. Further Evidence for the Identity of Hypothalamic Areas Controlling Ovulation and Lactation in the Rabbit. Endocrinology. 73 (3), 338-344 (1963).
  7. Schiavi, R., Jutisz, M., Sakiz, E., Guillemin, R. Stimulation of Ovulation by Purified LH-Releasing Factor (LRF) in Animals Rendered Anovulatory by Hypothalamic Lesion. Experimental Biology and Medicine. 114 (2), 426-429 (1963).
  8. Bagga, N., Chhina, G. S., Mohan Kumar, V., Singh, B. Cholinergic activation of medial preoptic area by amygdala for ovulation in rat. Physiology & Behavior. 32 (1), 45-48 (1984).
  9. Barraclough, C. A., Yrarrazaval, S., Hatton, R. A Possible Hypothalamic Site of Action of Progesterone in the Facilitation of Ovulation in the Rat. Endocrinology. 75 (6), 838-845 (1964).
  10. Critchlow, V. Blockade of ovulation in the rat by mesencephalic lesions 1, 2. Endocrinology. 63 (5), 596-610 (1958).
  11. Terasawa, E., Wiegand, S. J. Effects of Hypothalamic Deafferentation on Ovulation and Estrous Cyclicity in the Female Guinea Pig. Neuroendocrinology. 26 (4), 229-248 (1978).
  12. Halász, B., Köves, K., Molnár, J. Neural control of ovulation. Human Reproduction. 3 (1), 33-37 (1988).
  13. Narahashi, T. Pharmacology of tetrodotoxin. Journal of Toxicology: Toxin Reviews. 20 (1), 67-84 (2001).
  14. Narahashi, T., Moore, J. W., Scott, W. Tetrodotoxin blockage of sodium conductance increase in lobster giant axons. The Journal of General Physiology. 47 (5), 965-974 (1964).
  15. Narahashi, T., Deguchi, T., Urakawa, N., Ohkubo, Y. Stabilization and rectification of muscle fiber membrane by tetrodotoxin. American Journal of Physiology-Legacy Content. 198 (5), 934-938 (1960).
  16. Narahashi, T. Chemicals as tools in the study of excitable membranes. Physiological Reviews. 54 (4), 813-889 (1974).
  17. Ritchie, J. M., Rogart, R. B. The binding of saxitoxin and tetrodotoxin to excitable tissue. Reviews of Physiology, Biochemistry and Pharmacology. 79 (1), 1-50 (1977).
  18. Bermudez-Rattoni, F., Introini-Collison, I. B., McGaugh, J. L. Reversible inactivation of the insular cortex by tetrodotoxin produces retrograde and anterograde amnesia for inhibitory avoidance and spatial learning. Proceedings of the National Academy of Sciences. 88 (12), 5379-5382 (1991).
  19. Tang, X., Yang, L., Liu, X., Sanford, L. D. Influence of Tetrodotoxin Inactivation of the Central Nucleus of the Amygdala on Sleep and Arousal. Sleep. 28 (8), 923-930 (2005).
  20. Klement, D., Pašt’alková, E., Fenton, A. A. Tetrodotoxin infusions into the dorsal hippocampus block non-locomotor place recognition. Hippocampus. 15 (4), 460-471 (2005).
  21. Conejo, N. M., Cimadevilla, J. M., González-Pardo, H., Méndez-Couz, M., Arias, J. L. Hippocampal Inactivation with TTX Impairs Long-Term Spatial Memory Retrieval and Modifies Brain Metabolic Activity. PLoS ONE. 8 (5), 64749 (2013).
  22. Grimm, J., Ronald, E. Dissociation of Primary and Secondary Reward-Relevant Limbic Nuclei in an Animal Model of Relapse. Neuropsychopharmacology. 22 (5), 473-479 (2000).
  23. Hasegawa, H., et al. Inhibition of the preoptic area and anterior hypothalamus by tetrodotoxin alters thermoregulatory functions in exercising rats. Journal of Applied Physiology. 98 (4), 1458-1462 (2005).
  24. Meyer, F., Louilot, A. Early Prefrontal Functional Blockade in Rats Results in Schizophrenia-Related Anomalies in Behavior and Dopamine. Neuropsychopharmacology. 37 (10), 2233-2243 (2012).
  25. Rothfeld, J. M., Harlan, R. E., Shivers, B. D. Reversible disruption of lordosis via midbrain infusions of procaine and tetrodotoxin. Pharmacology Biochemistry and Behavior. 25 (4), 857-863 (1986).
  26. Silva, C., Cortés, G. D., Javier, C. Y., Flores, A., Domínguez, R. A neural circadian signal essential for ovulation is generated in the suprachiasmatic nucleus during each stage of the estrous cycle. Experimental Physiology. , (2019).
  27. Paxinos, G., Watson, C. . The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates (7th Ed). , (2014).
  28. Cora, M. C., Kooistra, L., Travlos, G. Vaginal Cytology of the Laboratory Rat and Mouse. Toxicologic Pathology. 43 (6), 776-793 (2015).
  29. Byers, S. L., Wiles, M. V., Dunn, S. L., Taft, R. A. Mouse Estrous Cycle Identification Tool and Images. PLoS ONE. 7 (4), 35538 (2012).
  30. Wirtshafter, D., Asin, K., Kent, E. W. Simple technique for midline stereotaxic surgery in the rat. Physiology & Behavior. 23 (1), 409-410 (1979).
  31. Kozai, T. D., Jaquins-Gerstl, A. S., Vazquez, A. L., Michael, A. C., Cui, X. T. Brain tissue responses to neural implants impact signal sensitivity and intervention strategies. ACS Chemical Neuroscience. 6 (1), 48-67 (2015).
  32. Kazim, S. F., Enam, S. A., Shamim, M. S. Possible detrimental effects of neurosurgical irrigation fluids on neural tissue: An evidence based analysis of various irrigants used in contemporary neurosurgical practice. International Journal of Surgery. 8 (8), 586-590 (2010).
  33. Miyajima, M., et al. Role of cerebrospinal fluid as perfusate in neuroendoscopic surgery: A basic investigation. Acta Neurochirurgica. 113, 103-107 (2012).
  34. Mori, K., et al. Potential risk of artificial cerebrospinal fluid solution without magnesium ion for cerebral irrigation and perfusion in neurosurgical practice. Neurologia Medico-Chirurgica. 53 (9), 596-600 (2013).
  35. Oka, K., Yamamoto, M., Nonaka, T., Tomonaga, M. The significance of artificial cerebrospinal fluid as perfusate and endoneurosurgery. Neurosurgery. 38 (4), (1996).
  36. James, T. A., Starr, M. S. Effects of the rate and volume of injection on the pharmacological response elicited by intraingral microapplication of drugs in the rat. Journal of Pharmacological Methods. 1 (3), 197-202 (1978).
  37. Freund, N., Manns, M., Rose, J. A method for the evaluation of intracranial tetrodotoxin injections. Journal of Neuroscience Methods. 186 (1), 25-28 (2010).
  38. Zhuravin, I. A., Bures, J. Extent of the tetrodotoxin induced blockade examined by pupillary paralysis elicited by intracerebral injection of the drug. Experimental Brain Research. 83 (3), 687-690 (1991).
  39. Myers, R. Injection of solutions into cerebral tissue: relation between volume and diffusion. Physiology and Behavior. 1 (2), 171-174 (1966).
  40. Gonzalez-Perez, O., Guerrero-Cazares, H., Quiñones-Hinojosa, A. Targeting of deep brain structures with microinjections for delivery of drugs, viral vectors, or cell transplants. Journal of Visualized Experiments. (46), e2082 (2010).
  41. McCluskey, L., Campbell, S., Anthony, D., Allan, S. M. Inflammatory responses in the rat brain in response to different methods of intra-cerebral administration. J Neuroimmunol. 194 (1-2), 27-33 (2008).
  42. Cunningham, M. G., O’Connor, R. P., Wong, S. E. Construction and implantation of a microinfusion system for sustained delivery of neuroactive agents. Journal of VisualizedExperiments. (13), e716 (2008).
  43. Akinori, A., Masamichi, S., Hiroshi, T. A new device for microinjection of drugs into the lower brain stem of conscious rats: Studies on site of action of morphine. Journal of Pharmacological Methods. 2 (4), 371-378 (1979).
  44. Malpeli, J. G. Reversible inactivation of subcortical sites by drug injection. Journal of Neuroscience Methods. 86 (2), 119-128 (1999).
  45. Yizhar, O., Fenno, L. E., Davidson, T. J., Mogri, M., Deisseroth, K. Optogenetics in neural systems. Neuron. 71 (1), 9-34 (2011).
  46. de Sousa, A. F., et al. Optogenetic reactivation of memory ensembles in the retrosplenial cortex induces systems consolidation. Proceedings of the Natural Academy of Sciences. 116 (17), 8576-8581 (2019).
  47. Beppu, K., et al. Optogenetic countering of glial acidosis suppresses glial glutamate release and ischemic brain damage. Neuron. 81 (2), 314-320 (2014).

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Silva, C., Bolaños-Hurtado, M., Juárez-Tapia, C., Flores, A., Arrieta-Cruz, I., Cruz, M., Domínguez, R. Unraveling the Role of Discrete Areas of the Rat Brain in the Regulation of Ovulation through Reversible Inactivation by Tetrodotoxin Microinjections. J. Vis. Exp. (163), e61493, doi:10.3791/61493 (2020).

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