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Summary
Nekrotisierende Enterokolitis (NEC) ist die schwerste gastrointestinale (GI) Erkrankung, die häufig bei Frühgeborenen auftritt, insbesondere bei Säuglingen mit sehr niedrigem Geburtsgewicht, mit hoher Mortalität und unklarer Pathogenese. Die Ursache von NEC kann mit entzündlichen Anomalien des Immunregulationssystems zusammenhängen. Ein NEC-Tiermodell ist ein unverzichtbares Werkzeug für die Immunforschung von NEC-Erkrankungen. NEC-Tiermodelle verwenden normalerweise C57BL/6J-Neugeborenenmäuse; BALB/c neonatale Mäuse werden selten verwendet. Verwandte Studien haben gezeigt, dass bei einer Infektion von Mäusen die Th2-Zelldifferenzierung bei BALB/c-Mäusen im Vergleich zu C57BL/6J-Mäusen vorherrscht. Studien haben gezeigt, dass das Auftreten und die Entwicklung von NEC mit einem Anstieg der T-Helfer-Typ-2-Zellen (Th2) verbunden sind und im Allgemeinen von einer Infektion begleitet werden. Daher verwendete diese Studie neonatale BALB/c-Mäuse, um ein NEC-Modell mit ähnlichen klinischen Merkmalen und intestinalen pathologischen Veränderungen zu induzieren, wie sie bei Kindern mit NEC beobachtet wurden. Weitere Studien sind gerechtfertigt, um festzustellen, ob dieses Tiermodell verwendet werden könnte, um Th2-Zellantworten in NEC zu untersuchen.
Abstract
Nekrotisierende Enterokolitis (NEC) ist die schwerste gastrointestinale (GI) Erkrankung, die häufig bei Frühgeborenen auftritt, insbesondere bei Säuglingen mit sehr niedrigem Geburtsgewicht, mit hoher Mortalität und unklarer Pathogenese. Die Ursache von NEC kann mit entzündlichen Anomalien des Immunregulationssystems zusammenhängen. Ein NEC-Tiermodell ist ein unverzichtbares Werkzeug für die Immunforschung von NEC-Erkrankungen. NEC-Tiermodelle verwenden normalerweise C57BL/6J-Neugeborenenmäuse; BALB/c neonatale Mäuse werden selten verwendet. Verwandte Studien haben gezeigt, dass bei einer Infektion von Mäusen die Th2-Zelldifferenzierung bei BALB/c-Mäusen im Vergleich zu C57BL/6J-Mäusen vorherrscht. Studien haben gezeigt, dass das Auftreten und die Entwicklung von NEC mit einem Anstieg der T-Helfer-Typ-2-Zellen (Th2) verbunden sind und im Allgemeinen von einer Infektion begleitet werden. Daher verwendete diese Studie neonatale BALB/c-Mäuse, um ein NEC-Modell mit ähnlichen klinischen Merkmalen und intestinalen pathologischen Veränderungen zu induzieren, wie sie bei Kindern mit NEC beobachtet wurden. Weitere Studien sind gerechtfertigt, um festzustellen, ob dieses Tiermodell verwendet werden könnte, um Th2-Zellantworten in NEC zu untersuchen.
Introduction
Nekrotisierende Enterokolitis (NEC), die schwerste gastrointestinale (GI) Erkrankung, tritt bei den meisten Frühgeborenen (>90%) auf, insbesondere bei Solchen mit sehr niedrigem Geburtsgewicht (VLBW)1. Bei VLBW-Säuglingen liegt die Inzidenz der Krankheit zwischen 10% und 12%, und die Mortalität von Kindern, bei denen NEC diagnostiziert wurde, liegt zwischen 20% und 30% 2,3. Die Ursache von NEC kann mit Schleimhautverletzungen, dem Eindringen pathogener Bakterien und der Darmfütterung zusammenhängen, die bei anfälligen Wirten zu Entzündungsreaktionen und der Induktion von Darmverletzungen führen können3. Die Pathogenese von NEC ist unklar. Relevante Untersuchungen zeigen, dass die Immunantwort des betroffenen Säuglings abnormal ist und genetische Anfälligkeit, mikrovaskuläre Spannung und bakterielle Veränderungen des Darms eine wichtige Rolle bei der Krankheit spielen können3.
Das NEC-Tiermodell ist ein unverzichtbares Werkzeug für die Erforschung der Pathogenese von NEC. Die Tierarten, die für NEC-Modelle verwendet werden, sind Schweine, Ratten und Mäuse. Aufgrund der langen Tragzeit, der Wachstumszyklen und der hohen Kosten waren Schweine in den letzten Jahren jedoch nicht die erste Wahl für NEC-Modelle und wurden durch Ratten oder Mäuse ersetzt4. Da es Unterschiede im Immunhintergrund verschiedener Mausstämme5 gibt, müssen verschiedene Studien verschiedene Mäusestämme verwenden, um NEC-Tiermodelle zu erstellen. BALB/c-Mäuse haben eine wichtige Eigenschaft; Wenn sie infiziert sind oder mit äußeren Schäden fertig werden, ist die Polarisation von TH2-Zellen während der Infektion bei Mäusen signifikant stärker als bei anderen Mäusestämmen6,7,8. T-Helferzellen spielen eine entscheidende Rolle beim Auftreten und Fortschreiten von NEC, insbesondere bei der Entwicklung von TH2-Zellen3,9,10,11. Daher verwendete diese Studie BALB / c-Mäuse, um das NEC-Modell zu etablieren, das für die NEC-Krankheitsforschung an T-Zellen hilfreich sein könnte.
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Protocol
Diese Forschung wurde vom Medical Ethics Committee des Guangzhou Women and Children's Medical Center (Nr. 174A01) und dem Animal Ethical Committee des Guangzhou Forevergen Biosciences Laboratory Animal Center (IACUC-G160100) genehmigt. Alle Tiere wurden im selben Raum in einer spezifischen pathogenfreien Umgebung (SPF) gezüchtet und Experimente wurden in einer konventionellen Umgebung durchgeführt. Die zur Zucht verwendeten Mäuse waren 7-8 Wochen alt; die Mäuse zur Induktion von NEC (n = 72) wurden am Tag 4 vom Muttertier getrennt, und die Muttertiere(n=14) wurden im ursprünglichen Käfig gehalten und die Mäuse der Kontrollgruppe (Fortsetzung) (n=24) gepflegt.
1. Herstellung von Reagenzien und Produkten
- Bereiten Sie den Milchersatz für die BALB/c-Mäuse im entsprechenden Verhältnis vor (Frühgeborenenmilchpulver: Ziegenmilchpulver = 2:1).
ANMERKUNG: Die endgültigen Nährstoffzusammensetzungen der Formel Milch12 sind in Tabelle 1 aufgeführt. - LPS-Lösung (2,5 mg/ml)
- Insgesamt 10 mg LPS-Pulver in 4 ml sterilisiertem doppelt destilliertem Wasser auflösen, gut mischen und nach Aliquotierung bei -20 °C im Kühlschrank aufbewahren.
HINWEIS: Die LPS-Lösung wird im Dunkeln bei 2-8 °C zur sofortigen Anwendung oder bei -20 °C zur Langzeitlagerung gelagert.
- Insgesamt 10 mg LPS-Pulver in 4 ml sterilisiertem doppelt destilliertem Wasser auflösen, gut mischen und nach Aliquotierung bei -20 °C im Kühlschrank aufbewahren.
2. Nekrotisierende Enterokolitis bei neonatalen BALB/c-Mäusen induzieren
- Füttern Sie die neonatalen Mäuse.
- Halten Sie die neugeborenen Mäuse im selben Käfig wie die Mutter, die an den Tagen 0-4 von der Mutter gestillt wird.
- Trennen Sie in der Nacht von Tag 4 (wenn die neonatalen Mäuse 2,5-3 g wiegen) die neonatalen Mäuse in der NEC-Gruppe vom Muttertier, um NEC zu induzieren, halten Sie sie in einem tierischen Inkubator und füttern Sie sie mit Formel. Die Cont.-Gruppe darf jedoch beim Damm bleiben und von ihm gefüttert werden.
HINWEIS: Neugeborene Mäuse, die vom Muttertier getrennt sind, müssen aufgrund ihrer schwachen Körpertemperaturregulation in einem Inkubator aufgezogen werden.
- Bereiten Sie das Gavage-Röhrchen vor, indem Sie es in 75% Alkoholbehältern für 1-2 min einweichen und zweimal in sauberem, doppelt destilliertem Wasser waschen.
HINWEIS: Um eine Kreuzkontamination zwischen den Mäusen zu vermeiden, muss der obige Vorgang nach der Fütterung jeder Maus durchgeführt werden. - Induzieren Sie das NEC-Modell.
- Nehmen Sie die neugeborenen Mäuse an Tag 4 vom Damm und fasten Sie sie für eine Nacht.
- Die Mäuse mit LPS (20-30 μL auf einmal) füttern und sie am Tag 5 mit Formel füttern (40-50 μL auf einmal).
- Ab Tag 5 unterziehen Sie die Mäuse zweimal täglich für 5 Tage einem Hypoxie-Sauerstoff-Kälte-Schock-Zyklus. Legen Sie die Mäuse in ein Hypoxie-Gerät bei 5% O2 für 90 s und reoxygenieren Sie sie für 3 min; Wiederholen Sie diesen Vorgang fünfmal. Als nächstes legen Sie die Mäuse für 15 minuten in eine 4 °C-Umgebung und geben sie dann in einen Inkubator. Siehe Abbildung 1A,B für den Induktionsprozess.
HINWEIS: Ein Zyklus von Hypoxie-Sauerstoff-Kältestimulation wurde einmal am Morgen und einmal am Nachmittag durchgeführt. Im Behälter wurde eine Mischung aus 5% O2 mit 95% N2 hergestellt und die Konzentration mit einem Sauerstoffdetektor gemessen.
- Beobachten Sie alle Mäuse genau, wiegen Sie sie jeden Tag, zeichnen Sie das Überleben der Mäuse während der Induktionsphase auf und zeichnen Sie die Stuhlmerkmale auf (mit oder ohne klebrigen Stuhl / blutigen Stuhl).
HINWEIS: Das etablierte NEC-Modell hat eine Lebensdauer von 5 Tagen. - An Tag 10 oder früher, wenn die Mäuse NEC-Symptome zeigen (Ileus, Hämatochezie, Durchfall)13, euthanasieren Sie die Mäuse durch Inhalationsanästhesie mit Isofluran und sammeln Sie dann sofort das Darmgewebe. Sammeln Sie kein Gewebe von den Mäusen, die spontan gestorben sind.
HINWEIS: In dieser Studie wurde der Endpunkt der Mauseuthenasie angepasst, wenn die Maus Hämatocheziose und Zyanose des ganzen Körpers zeigte.
3. Saugen Sie die Maus
- Fixieren Sie den Mauskopf und halten Sie den Magenschlauch in der rechten Hand. Führen Sie den Magenschlauch aus dem linken Mundwinkel der Maus ein.
HINWEIS: Der Kopf wurde mit dem Zeigefinger am Kopf der Maus befestigt und vorsichtig nach hinten und unten gedrückt, um zu verhindern, dass sich die Maus während der Operation nach vorne beugt und das Einführen des Magenschlauchs beeinträchtigt. - Bewegen Sie die Röhre langsam in die Mitte des Mundes. Nachdem Sie das Röhrchen ca. 2-3 cm eingeführt haben, drücken Sie 40-50 μL Formel oder 20-30 μL LPS in den Verdauungstrakt. Siehe Abbildung 2A,B für die Gavage.
HINWEIS: Unter normalen Umständen wird die Magensonde sanft in den Verdauungstrakt eingeführt. Wenn die Maus einen starken Erbrechensreflex hat, wurde die Magensonde versehentlich in die Luftröhre eingeführt. Die Magensonde muss vorsichtig herausgezogen werden und die Maus muss eine Weile ruhen lassen, bevor sie erneut versucht, zu fressen. Darüber hinaus wird das Gavage-Verfahren verwendet, um das Modell des NEC vor der Euthanasie von Mäusen zu induzieren.
4. Sammeln Sie frische Darmgewebeproben für die Hämatoxylin- und Eosin (H & E) -Färbung
- Tauchen Sie das frische Ileumgewebe der Maus für 24 h in 10% Formalin ein.
- Betten Sie die Gewebe in Paraffin ein und schneiden Sie sie in 4 μm Abschnitte.
- Entparaffinisieren Sie die Abschnitte in Xylol und rehydrieren Sie sie nacheinander in absolutem Ethanol, 95% Ethanol, 80% Ethanol, 70% Ethanol und destilliertem Wasser, wobei sie in jedem Schritt 5 min einweichen. Färben Sie die Abschnitte mit Hämatoxylinlösung für 5 min und differenzieren Sie sie in 1% Salzsäure in 75% Alkohol für 5 s. Zum Schluss färben Sie sie mit Eosinlösung für 1 min.
HINWEIS: Nach der Färbung mit Hämatoxylinlösung muss es mit 1% Salzsäure in Ethanol unterschieden werden, um übermäßig gebundene Hämatoxylinlösung und zytoplasmatischen Hämatoxylinfarbstoff zu entfernen. Die Konzentration von 1% Salzsäure ist für darmgewebe geeignet. - Untersuchen Sie die Histopathologie des Darmgewebes bei 40-facher Vergrößerung.
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Representative Results
Das BALB/c-Maus-NEC-Modell wurde durch Formelfütterung, LPS-Fütterung, Hypoxie und Kältestimulation induziert. Während der Induktionsphase wurden die Mäuse auf Darmpathologie, Stuhlmerkmale, Körpergewichtsveränderungen und tägliches Überleben beobachtet. Repräsentative Bilder des Dünndarms während der NEC-Induktion; Die Zahlen im Bild stellen den Darmpathologie-Score von 0 (normales Epithel) bis 4 (am schwersten) dar (Abbildung 3A). Der intestinale Pathologie-Score war in der NEC-Gruppe signifikant höher als in der Cont.-Gruppe (Abbildung 3B). Die Zahlen im Bild stellen Stuhlwerte von 0 (wohlgeformte Pellets) bis 3 (flüssiger Stuhl) dar (Abbildung 3C). An Tag 10 waren die Stuhlwerte der NEC-Gruppen in der NEC-Gruppe signifikant höher, was darauf hindeutet, dass die Darmfunktionsstörung in der NEC-Gruppe schwerwiegender war (Abbildung 3D). An Tag 5, dem ersten Tag der Induktion des NEC-Modells, gab es keinen signifikanten Unterschied in der Körpergröße zwischen den beiden Gruppen. An Tag 10 waren die Mäuse in der NEC-Gruppe jedoch von Kopf bis Schwanz signifikant dünner und kleiner als die Mäuse in der Cont.-Gruppe (Abbildung 4A).
Während der 5 Tage, in denen das Modell etabliert wurde, stieg das Gewicht der Mäuse in der NEC-Gruppe langsam an oder zeigte sogar ein negatives Wachstum, und die Überlebensrate der Mäuse in der NEC-Gruppe nahm im Vergleich zur Cont.-Gruppe allmählich ab (Abbildung 4B, C). Darüber hinaus wurde eine weitere Charge von Mäusen verwendet, um das NEC-Modell zu induzieren, ohne jedoch die Gewebe zu sammeln; Bis Tag 13 waren alle Mäuse in dieser NEC-Gruppe gestorben und die Überlebenskurve war signifikant reduziert (ergänzende Abbildung S1). Abbildung 5A zeigt die Morphologie und die pathologischen Ergebnisse (Nekrose des Darmschleimhautgewebes) des resezierten Ileozökalbereichs des Darmgewebes von NEC-Patienten in diesem Krankenhaus. In dieser Studie entwickelten die Mäuse der NEC-Gruppe (1/13) Ileozökalblutungen und Nekrose (Abbildung 5B).
Abbildung 1: Induktion des BALB/c NEC-Modellprozesses. (A) Die Mäuse in der NEC-Gruppe wurden bei der Geburt von der Mutter getrennt, bis sie 4 Tage alt waren (an Tag 4) und fasteten in dieser Nacht. Das NEC-Modell wurde ab Tag 5 nach der Geburt induziert und dauerte 5 Tage. Darmgewebeproben wurden am Tag 10 oder früher gesammelt. Die Mäuse in der Cont.-Gruppe wurden mit dem Damm untergebracht und von ihm gepflegt. (B) Die Abfolge der Vorgänge für jeden Tag nach dem Induzieren des NEC-Modells. Abkürzungen: Cont. = Kontrolle; NEC = nekrotisierende Enterokolitis; LPS = Lipopolysaccharid. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
Abbildung 2: Magensonde. (A) In dieser Studie wurde ein spezielles Gavage-Gerät verwendet, das mit einem Kunststoffröhrchen und einer Spritze kombiniert wurde. (B) Das Gavage-Röhrchen, das aus dem Mundwinkel in einem Winkel von 45° zur vertikalen Linie eintritt. (C) Die Röhre wurde langsam in die Mitte des Mausmundes bewegt, um sicherzustellen, dass sich die Magensonde und die Speiseröhre auf der gleichen vertikalen Höhe befanden. Abkürzungen: D= Durchmesser. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
Abbildung 3: BALB/c-Maus-NEC-Modell. (A) Mikroaufnahmen des intestinalen Pathologie-Scores aus den beiden Gruppen, z. B. mit intakter und normaler Schleimhaut in der Cont.-Gruppe (Score 0), leichter submukösler oder Lamina propria-Schwellungstrennung in zwei Gruppen (Score 1), moderate submukösale und/oder Lamina propria-Trennung in der NEC-Gruppe (Score 2), schwere submuköse und/oder Lamina propria-Trennung in der NEC-Gruppe (Score 3), Verschwinden der Darmzotten mit Darmnekrose in der NEC-Gruppe (Score 4). (B) Die intestinalen Pathologiewerte bei den Mäusen nach NEC-Induktion waren höher als die der Cont.-Gruppe (n = 9 in der Cont.-Gruppe, n = 35 in der NEC-Gruppe, *** P < 0,001 mit Student's t-Test). (C) Mikroaufnahmen von Stuhlwerten aus zwei Gruppen, z. B. mit wohlgeformten Pellets in der Cont.-Gruppe (Score 0), geformtem Stuhl in zwei Gruppen (Score 1), halbgeformtem Stuhl in der NEC-Gruppe (Score 2) und flüssigem Stuhl in der NEC-Gruppe (Score 3). (D) Die Stuhlwerte in der NEC-Gruppe waren signifikant höher als in der Cont.-Gruppe (n = 6 in der Cont.-Gruppe, n = 13 in der NEC-Gruppe, *** P < 0,001 mit Student's t-Test). Das rote Dreieck stellt die Trennung von Schleimhaut und Lamina propria dar, und der schwarze Pfeil zeigt auf Mäusekot. Maßstabsbalken = 50 μm. Abkürzungen: Cont. = Kontrolle; NEC = nekrotisierende Enterokolitis; HE = Hämatoxylin und Eosin. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
Abbildung 4: Vergleich der Körperform und des Überlebens von Mäusen zwischen der Cont.-Gruppe und der NEC-Gruppe. (A) Das Auftreten der beiden Mäusegruppen an Tag 5 und Tag 10. (B) Dieser Abschnitt zeigt die Gewichtsveränderungen der Mäuse in zwei Gruppen im Laufe der Zeit; die x-Achse stellt die Anzahl der Tage nach der Geburt der Mäuse dar, und die y-Achse stellt die Gewichtsänderungen der Mäuse dar; **P < 0,01, ***P < 0,001 mit Student's t-Test zum Vergleich der Cont.-Gruppe (n = 10) und der NEC-Gruppe (n = 27) (C) Dieser Abschnitt zeigt die Überlebenskurven von Mäusen in der Kontrollgruppe (n = 10) und der NEC-Gruppe (n = 25). Abkürzungen: Cont. = Kontrolle; NEC = nekrotisierende Enterokolitis. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
Abbildung 5: Ileozökalblutung bei Kindern mit NEC und Mäusen mit NEC. (A) Blutung und Nekrose des Ileozökalbereichs bei Kindern mit NEC. B) Blutungen und Nekrose im Ileozökalbereich von Mäusen mit NEC (1/13); Der Darm der Mäuse in der Cont.-Gruppe war jedoch normal, ohne Blutungen und Nekrose. Das schwarze Dreieck bezieht sich auf Darmblutungen und Nekrose, und der rote Pfeil zeigt Blutungen und Nekrose des Ileozökalbereichs. Maßstabsbalken = 50 μm. Abkürzungen: Cont. = Kontrolle; NEC = nekrotisierende Enterokolitis. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Abbildung anzuzeigen.
| Zusammensetzung | Maus (g/l) | Milchersatz (g/L) |
| Protein | 69-118 | 100 |
| Fett | 93-175 | 100 |
| Kohlenhydrat | 28-37 | 50 |
| Kalzium | 0.97-6.2 | 2.84 |
| Phosphor | 1.6-2.72 | 1.62 |
| Natrium | 0.66-1.4 | 1 |
| Kalium | 1.08-1.7 | 1.2 |
| Chlorid | 1.17-1.76 | 1.76 |
| Magnesium | 0.0001-0.3 | >0,12 |
| Zink | 0.009-0.055 | 0.018 |
| Eisen | 0.004-0.007 | 0.017 |
| Kupfer | 0.0017-0.007 | 0.0018 |
Tabelle 1: Milchformel Milchzutaten.
Ergänzende Abbildung S1: Die Überlebenskurve war in der NEC-Gruppe signifikant reduziert, so dass alle Mäuse spontan starben (n = 5 in der Cont.-Gruppe, n = 10 in der NEC-Gruppe). Abkürzungen: Cont. = Kontrolle; NEC = nekrotisierende Enterokolitis. Bitte klicken Sie hier, um diese Datei herunterzuladen.
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Discussion
NEC ist der häufigste Notfall im Magen-Darm-System für Neugeborene mit einer hohen Inzidenz und Mortalität, insbesondere bei Frühgeborenen1,2,3. Seine Pathogenese ist jedoch noch unklar. Es wird derzeit angenommen, dass Schleimhautschäden, Erregerinvasion und enterale Fütterung Hochrisikofaktoren für NEC3 sind. Bis heute sind die Tiere, die für das NEC-Modell verwendet werden, hauptsächlich Schweine, Ratten und Mäuse. Die meisten Studien haben neonatale C57BL/6-Mäuse verwendet, um NEC13,14,15,16 zu induzieren, und nur sehr wenige Studien haben BALB/c neonatale Mäuse verwendet, um NEC zu induzieren. BALB/c-Mäuse haben jedoch den Vorteil der Th-Zellpolarisation6,7,8, was weitere Studien rechtfertigt, um festzustellen, ob sie ein gutes NEC-Modell für die Th-Zellforschung der Krankheit sein können.
Wir bezogen uns auf den pathologischen Nadler-Score-Standard des NEC-Modells17 und stellten fest, dass der Score der NEC-Gruppe signifikant höher war als der der Kontrollgruppe. Ein Score ≥ 2 zeigt NEC an, und die Erfolgsrate der Induktion von NEC beträgt 38-50%, was niedriger ist als die 77% Erfolgsrate der NEC-Modellierung in der Studie von Caplan et al. (DOI: 10.3109 / 15513819409037698). Wir bewerteten auch die Stuhlwerte18 der beiden Gruppen von Mäusen und fanden heraus, dass die Werte der NEC-Gruppe höher waren als die der Kontrollgruppe. Je höher der Score, desto schwerwiegender die Darmfunktionsstörung. All diese Daten zeigen, dass die Etablierung des NEC-Modells erfolgreich war. Darüber hinaus ist es ermutigend, dass das neonatale BALB/c-Mausmodell von NEC den menschlichen NEC bis zu einem gewissen Grad simulieren kann. Blutungen und Nekrose treten im Darm von Kindern mit NEC3,19 auf; ähnliche pathologische Zustände wurden in diesem Modell beobachtet.
Gavage ist der Schlüsselschritt bei der Induktion von NEC im Mausmodell. Wenn die Gavage-Operation nicht kompetent gemeistert wurde, war es leicht, den Magenschlauch versehentlich in die Luftröhre zu legen und die Maus zum Sterben zu bringen. Während der Magensonde wurden der linke Daumen, der Mittelfinger und der Ringfinger verwendet, um beide Seiten des Rumpfes der Maus zu klemmen, und der Zeigefinger wurde auf den Kopf gelegt, um die Maus an Ort und Stelle zu fixieren. Dies sollte verhindern, dass sich die Maus bewegt und die Magensonde die Speiseröhre beschädigt. Die Magensonde wurde aus dem linken Mundwinkel der Maus eingeführt. Nur wenn die Magensonde reibungslos und ohne Widerstand in die Speiseröhre gelangt, können wir sie weiter einführen. LPS oder Formelmilch sollte erst nach dem Einführen des Magenschlauchs 2-3 cm von der Unterlippe der Maus injiziert werden.
Die Länge der Hypoxie sollte sorgfältig überwacht werden. In dieser Studie dauerte die Hypoxie jedes Mal 90 s. Wenn die Hypoxie zu lang ist, können die Mäuse sie nicht tolerieren und sterben. Dieses Modell kann verwendet werden, um NEC-bezogene Immunzellen zu erforschen, insbesondere TH1- und TH2-Zellen3,9,10,11,20. In Zukunft wollen wir untersuchen, ob dieses Modell nützlich ist, um Th2-Zellantworten in NEC zu untersuchen. Darüber hinaus wurde in dieser Studie auch eine neue Methode des Stuhl-Scorings eingeführt, um Darmfunktionsstörungen bei Mäusen mit NEC18 zu bewerten. Es gibt jedoch einige Einschränkungen für diese Studie. Zum Beispiel war die Erfolgsquote des Modells nicht sehr hoch. Es werden Anstrengungen unternommen, um die Methode der BALB/c NEC-Modellierung zu verbessern, um die Erfolgsrate zu erhöhen, indem das Hypoxieniveau von 5% O2 auf 1% O2 angepasst wird, wie zuvor beschrieben15.
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Disclosures
Die Autoren haben keine Interessenkonflikte offenzulegen.
Acknowledgments
Die Autoren danken der Clinical Biological Resource Bank des Guangzhou Women and Children's Medical Center für die Bereitstellung der klinischen Probe und dem Guangzhou Forevergen Biosciences Laboratory Animal Center für die Bereitstellung von Mäusen. Diese Forschung wurde durch das Stipendium der National Natural Science Foundation of China 81770510 (R.Z.) unterstützt.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Absolute ethanol | Sinopharm Chemical Reagent Co., LTD. | 100092683 | |
| Goat Milk powder | Petag | 71795558417 | |
| HE dye solution | Sinopharm Chemical Reagent Co., LTD. | G1003 | |
| Isoflurane | RWD, Shenzhen Reward Life Technology Co., LTD. | R510 | |
| LPS | Sigma-Adrich | L2880 | |
| Medical oxygen | various | various | |
| Microscope | NIKON | NIKON imaging system (DS-Ri2) | |
| Neutral resin | Sinopharm Chemical Reagent Co., LTD. | 10004160 | |
| Paraffin | various | various | |
| Premature baby milk powder | Abbott | 57430 | |
| Xylene | Sinopharm Chemical Reagent Co., LTD. | 10023418 | |
| 1% Hydrochloric acid | various | various | |
| 10% Formalin | LEAGENE | DF0110 |
References
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Medizin Ausgabe 177 Nekrotisierende Enterokolitis BALB/c-Mäuse Immunologie T-Helfer Typ-2-ZellenErratum
Formal Correction: Erratum: A Neonatal BALB/c Mouse Model of Necrotizing Enterocolitis
Posted by JoVE Editors on 03/07/2022.
Citeable Link.
An erratum was issued for: A Neonatal BALB/c Mouse Model of Necrotizing Enterocolitis. The Representative Results section was updated.
Figure 1 was updated from:
Figure 1: Induction of the BALB/c NEC model process. (A) The mice in the NEC group were separated from the dam at birth until they were 4 days old (on Day 4) and fasted that night. The NEC model was induced from Day 5 onwards after birth and lasted for 5 days. Intestinal tissue specimens were collected on Day 10 or earlier. The mice in the Cont. group were housed with and nursed by the dam. (B) The sequence of operations for each day after inducing the NEC model. Abbreviations: Cont. = control; NEC = necrotizing enterocolitis; LPS = lipopolysaccharide. Please click here to view a larger version of this figure.
to:
Figure 1: Induction of the BALB/c NEC model process. (A) The mice in the NEC group were separated from the dam at birth until they were 4 days old (on Day 4) and fasted that night. The NEC model was induced from Day 5 onwards after birth and lasted for 5 days. Intestinal tissue specimens were collected on Day 10 or earlier. The mice in the Cont. group were housed with and nursed by the dam. (B) The sequence of operations for each day after inducing the NEC model. Abbreviations: Cont. = control; NEC = necrotizing enterocolitis; LPS = lipopolysaccharide. Please click here to view a larger version of this figure.
