Summary
Denne artikel beskriver en ny dyremodel udviklet til at studere hornhindens anatomi og histologi og dens helingsprocesser. Denne nye dyremodel bruger den mongolske gerbil, som har en hornhinde med mange ligheder med den menneskelige hornhinde.
Abstract
Hornhinde sårhelingsundersøgelser er blevet udført i lang tid og har bidraget til at reducere lidelse og udvikle behandlinger, der bidrager til at forbedre patienternes øjenhygiejne. Historisk set er hornhindeheling blevet undersøgt hos gnavere som mus og rotter, men disse modeller efterligner muligvis ikke helt menneskelige lidelser. Oplysninger om andre gnavere såsom mongolske gerbils (Meriones unguiculatus) er imidlertid sparsomme i hornhindeforskning.
Her beskriver vi en teknik til at udvikle en ny dyremodel til undersøgelse af hornhindeheling efter fotorefraktiv keratektomi. På grund af den begrænsede litteratur, der er tilgængelig om hornhinden af M. unguiculatus, beskriver vi også en histologisk analyse af den normale hornhinde. Disse forskningsteknikker kan også anvendes i studiet af øjensygdomme på grund af ligheden mellem hornhinderne hos mongolske gerbils og mennesker med hensyn til genetik, anatomi og fysiologi.
Introduction
Nogle af de vigtigste aspekter af hornhindesårheling, som er centrale bekymringer for forreste segmentkirurgi, er integriteten af epitelarkitekturen, vedligeholdelsen af hornhindestroma-gennemsigtigheden og endelig resultatet med hensyn til hornhindens brydningsegenskaber1.
Hornhinden er det yderste klare væv foran øjet og er derfor modtageligt for traumer, infektioner og forbrændinger; Den svækkede heling af disse sår kan kompromittere den visuelle sundhed2.
På nuværende tidspunkt er flere dyremodeller tilgængelige for at studere hornhindeheling, og nogle af dem er bedre end andre, afhængigt af arten og typen af mekanisme, der skal undersøges1. Der er et par optegnelser over tidligere undersøgelser på nethinden af gerbils2. Men indtil videre er der ingen offentliggjort litteratur om ardannelsesprocesserne i hornhinden hos disse gnavere.
Her præsenterer vi Meriones unguiculatus (mongolsk gerbil) som en dyremodel for sårheling i hornhinden. Procedurer til at fremkalde hornhindeheling efter fotorefraktiv keratektomi er beskrevet, som giver os mulighed for at studere de forskellige typer hornhinde ardannelsesprocesser, forstå sårheling med hensyn til de dynamiske faser af levende væv og endelig planlægge passende fremtidige behandlinger3. Fototerapeutisk keratektomi er en meget reproducerbar teknik med mulighed for præcist at kontrollere parametre som dybden og diameteren af hornhindeskaden4. Desuden kræver denne teknik ikke procedurer med kirurgiske instrumenter eller kemiske opløsninger (f.eks. Saltopløsning, formalin, alkohol osv.), Der kan tilføje variabler, der er specifikke for instrumenterne eller for den operatør, der udfører proceduren5.
Tre 6 måneder gamle mandlige gerbils af samme størrelse og vægt (ca. 90 g) blev brugt til eksperimentet præsenteret i denne artikel. Procedurerne blev kun udført i højre øjne. En gerbil (kaldet gerbil 1 eller kontrol) gennemgik ikke fototerapeutisk keratektomi og blev enukleeret til at evaluere alle de normale okulære strukturer. Fototerapeutisk keratektomi involverer kontrolleret levering af excimer lasergenereret ultraviolet lys til hornhinden og blev udviklet for at udføre brydningskirurgi6. Det er blevet brugt i andre gnavere, såsom mus7. De to andre gerbils blev udsat for fototerapeutisk keratektomi. En af dem blev enucleated på 24 timer (kaldet gerbil 2) og den anden på 96 timer efter operationen (kaldet gerbil 3).
For at udføre dette eksperiment blev en gerbil tilfældigt udvalgt for hver tilstand, der skulle undersøges, men dette eksperiment blev tidligere udført med 16 gerbils i alt for hver tilstand. Af redigeringsmæssige årsager blev det besluttet at bruge en tilfældigt udvalgt gerbil for hver tilstand (tre gerbils i alt) som et eksempel.
Hovedformålet med denne forskning er at udforske den bedste dyremodel, der findes. Det er dog vigtigt at bemærke, at ikke alle arter har øjenegenskaber svarende til det menneskelige øje8. Denne artikel beskriver den metode, der bruges til at studere hornhinden i Meriones unguiculatus og den procedure, der udføres for at generere hornhindeskaden, som giver os mulighed for at studere helingsprocessen.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Alle forskningsprocedurer blev godkendt af "Institutional Commission for the Care and Use of Laboratory Animals" ved Universidad Católica de Córdoba og fulgte National Research Council Guide for the Care and Use of laboratory animals. Disse procedurer blev også godkendt af myndighederne i "Facultad de Ciencias de la Salud" ved Universidad Católica de Córdoba og "Instituto de la Visión Cerro".
1. Gerbil håndtering og anæstesi
BEMÆRK: Alle dyr var specifikke patogenfrie (SFP) mandlige mongolske gerbils og blev holdt i Center for Forskning og Udvikling i Immunologi og Infektionssygdomme (CIDIE) faciliteter (Córdoba, Argentina). De blev hentet fra Universidad de La Plata (Buenos Aires, Argentina).
- Hus gerbils socialt i polysulfonbure bedded med corncob sengetøj. Sørg for mad og filtreret postevand i vandflasker ad libitum. Sørg for, at rumtemperaturområdet er 18 °C til 24 °C, og at der anvendes en lys-mørk cyklus på 12:12 timer.
- Vej hver gerbil separat, og identificer hver enkelt for at undgå forvirring. Lav et mærke med en uudslettelig blækmarkør på bunden af gerbilens hale. Brug pincet til at holde gerbilens øre og lave et mærke ved hjælp af den uudslettelige markør på gnaverens øre. Hvis der er et laboratorium og et stort biotherium til rådighed, skal du tildele et unikt bur for hver gnaver med den tilsvarende identifikation.
- Desinficer den laminære flowhætte med 70% ethanolopløsning. Placer alle kirurgiske instrumenter og engangsinstrumenter inklusive nåle, sprøjter og stativer i arbejdsområdet inde i emhætten. Placer også et engangskirurgisk skum i emhætten.
- Brug en lille åben plastbeholder til at holde gnaveren på præcisionsbalancen for at lette målingen.
- Brug tre 6 måneder gamle mandlige mongolske gerbils af lignende størrelser og vægte (~ 80 g) til dette eksperiment. En ad gangen skal du placere hvert bur med gnaveren inde i den laminære strømningshætte. Åbn burene, identificer hver af gerbils, og vej dem på skalaen.
BEMÆRK: Gerbils er harmløse, men sarte dyr. Brug engangshandsker, når du håndterer gerbils. - Tag fat i gerbilen med den ikke-dominerende hånd for at holde den fast ved halen. Brug den dominerende hånd med tommelfingeren og pegefingeren bag ørerne til at holde dyret med det ventrale område opad. Brug lillefingeren til at holde halen.
- Fyld en sprøjte med en 30 G nål med 1 ml ketamin og xylazin. Administrer anæstesien intraperitonealt i gnaveren (50-100 mg/kg ketamin og 2 mg/kg xylazin)9 ved hjælp af den dominerende hånd. Varigheden af effekten vil være ca. 20-50 min (variationer kan forekomme).
- For at sikre, at gerbilen er fuldt bedøvet, skal du kontrollere med en tåspids, haleklemme og hornhinderefleksion osv., Inden du foretager snit i hornhinden.
BEMÆRK: Udfør kun alle procedurer på højre øje.
2. Optisk kohærenstomografi (OCT) af hornhinden
- Placer sterile kirurgiske gardiner for at beskytte udstyret mod sekret eller dyrehår.
- Sørg for, at en af operatørerne holder dyret, mens en anden operatør tager billederne. Operatøren skal hvile hænderne på udstyret, mens han holder gerbilen, så gerbilens øje er så stabilt og stadig som muligt at blive undersøgt. Hvil hånden, der holder gerbil på hagestøtten..
- Start den software, der styrer OCT, og tryk på Tag billede og derefter Gem ønsket billede. Udfør flere sagittale og koronale skiver af hornhinden. Forestil dig øjet under OCT, og lav flere skiver for at se det forreste segment af gnaverhornhinden.
BEMÆRK: Hvis det opnåede billede ikke er skarpt, og øjet har bevæget sig lidt, skal du gentage proceduren flere gange for at få nok billeder. - Brug OCT-softwaren til at udføre pachymetriske målinger af de centrale og perifere regioner. På softwarens hovedskærm skal du trykke på Tag billede og derefter trykke på knappen Gem ønsket billede .
- Udfør målinger på det normale eller kontroløje og umiddelbart efter fototerapeutisk keratektomi på de andre gnaverøjne.
3. Excimer laser fototerapeutisk keratektomi (PTK)
- Placer sterile kirurgiske gardiner på excimerlaserenheden for at beskytte udstyret mod sekret eller dyrehår.
- Indgyd en dråbe topisk proparakainhydrochlorid (0,5%) i øjet, der skal behandles 5 minutter før den kirurgiske procedure.
- Brug den ikke-dominerende hånd til at holde gerbilen fast. Åbn dyrets øjenlåg med den dominerende hånd, så billederne kan tages korrekt. For at kunne fokusere og få et skarpt billede skal du sikre dig, at hænderne på den person, der holder gerbilen, hviler på udstyrets hoved. Placer hænderne, der holder dyret, hvor en patient ville placere deres hals.
- Udfør PTK-ablation på højre øje. Brug følgende parametre: en ablation mellem 60 μm og 62 μm tyk, en optisk zone på 3 mm, en varighed på 4 s og i alt 1.867 impulser.
BEMÆRK: PTK udføres kun på gerbil 2 og gerbil 3. I dette trin forbereder og aktiverer den anden operatør laseren til at ablate hornhindevævet. - Umiddelbart efter proceduren skal du tage fotografier og udføre OCT-analyse for at registrere og dokumentere overfladeændringer i de behandlede øjne.
- Når proceduren er afsluttet, skal du placere gnaveren tilbage i buret, overvåge de vitale tegn (puls: 360 slag i minuttet; rektal temperatur: 37-38,5 ° C; åndedrætsfrekvens: 90 vejrtrækninger pr. Minut) og lad dyret komme sig efter anæstesi.
4. Opvågning af gerbils efter hornhinde PTK
- Buprenorphin administreres (0,1 mg/kg til 0,05 mg/kg) og atipamezol (0,1-1 mg/kg) via intraperitoneale injektioner.
- Placer hver gerbil i sit respektive hjemmebur, og overvåg de vitale tegn på normal opvågnen (den normale kropstemperatur er 37-39 °C).
- Påfør en erythromycin salve for at holde overfladen ren og forhindre infektion. Udfør denne procedure to gange om dagen.
- Buprenorphin (hver 6-12 timer) administreres subkutant (0,01-0,05 ml) til analgesi og øjensalve to på hinanden følgende dage efter PTK.
5. Eutanasi metode
- Udfør aktiv dødshjælp i hjemmeburet, når det er muligt.
- Indfør komprimeret kuldioxid (CO2) gas i hjemmeburet. En påfyldningshastighed på 30%-70% af kammerets volumen pr. minut med CO2 tilsat til den eksisterende luft i hjemmeburet er tilstrækkelig til at opnå en blanding, der opfylder målet (for et 10 L volumenkammer skal du bruge en strømningshastighed på 3-7 l / min). Brug cervikal dislokation (som en sekundær metode til eutanasi) for at sikre gnaverens død.
- Ved 24 timer og 96 timer efter operationen for henholdsvis gerbil 2 og gerbil 3 skal du fjerne dyret fra hjemmeburet for at udføre enukleationen af øjeæblet (både det normale øjeæble og det, der gennemgår kirurgi) for at observere hornhindeheling.
- Placer dyret på operationsbordet, og kontroller, om der ikke er hjerteslag i ca. 1 min.
6. Øjenoperation
- Fjern de øvre og nedre øjenlåg for at få adgang til øjeæblet. Brug kirurgisk tang og saks til at fjerne øjenlågene. Arbejdsområdets størrelse er så lille og delikat, at fjernelse af øjenlågene gør det muligt at opfange øjeæblet uden at beskadige det.
- For at enukleate øjet skal du lave et snit i den ydre canthus og styre saksen i en bageste retning. Gentag denne procedure fra den indre canthus ved at adskille øjeæblet fra kredsløbet.
- Sektion synsnerven på bagsiden af øjet. Det skal præciseres, at den bageste orbital plexus normalt genererer let blødning, når du udfører denne teknik, hvilket gør arbejdet vanskeligt.
- Indfør øjeæblet i et mikrocentrifugerør med steril saltopløsning i 30 s til 1 minut for at vaske eventuelt resterende blod ud.
- Øjeæblet anbringes i et mikrocentrifugerør indeholdende 10% formaldehyd til efterfølgende anatomisk-patologisk analyse som beskrevet nedenfor. Tag flere billeder og fotografier.
7. Anatomisk-patologisk analyse
- Integrer hele øjet i 10% bufferet formalin i 6-24 timer.
- Skær vævet ved hjælp af et mikrotom. Sørg for, at det skårne væv har en tykkelse på 3 mm.
- Sug vævet i 96% alkohol i 30-90 minutter, og gentag denne procedure to gange.
- Placer vævet i isopropylalkohol i 30-90 minutter, og gentag denne procedure to gange.
- Sæt vævet i xylen eller xylen erstatning for 1-3 timer.
- Integrer vævet i flydende petroleum i mindst 1 time.
- Brug en blok til at placere vævet og indlejre det i flydende paraffin. Lad det størkne (læg det på et koldt sted), og skær det.
- Forbered mikrotomet til sektionering i henhold til producentens anvisninger.
- Brug derefter pletter som hæmatoxylin og eosin.
- Få billeder med kameraet føjet til mikroskopet.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
I denne undersøgelse blev hele hornhindestrukturen grundigt analyseret ved hjælp af histologiske teknikker og komplementære undersøgelser af det forreste segment, såsom optisk kohærenstomografi. Billedanalysen ved hjælp af optisk kohærenstomografi af de forreste segmentstrukturer viser et normalt epitel og stroma (figur 1) med centrale og perifere hornhindetykkelser på henholdsvis 160 μm og 106 μm ± 2 μm. Andre publikationer har også vist, at hornhinden hos andre gnavere bliver tyndere mod periferien10.
Efter PTK blev debrideringen af hornhindeepitelet observeret (figur 2). Der blev også taget makroskopiske billeder af gerbil-øjet før og efter behandlingen. Efter udførelse af PTK blev der observeret en uregelmæssig hornhindeoverflade, som blev farvet ved at indgyde en dråbe fluorescein og belyse den med violet lys (viser epitelsåret) (figur 3).
Med hensyn til den histologiske analyse viste den normale hornhinde af den ubehandlede gerbil (gerbil 1) de samme lag som hos mennesker: det stratificerede forreste epitel med fire til seks lag celler, der repræsenterer 28% af hornhindens samlede tykkelse, Bowmans lag, stroma, der repræsenterer 66% af hornhindens samlede tykkelse, Descemets membran, og endotelet (figur 4 og figur 5).
De ændringer, der blev observeret i gerbil nummer 2 (24 timer efter PTK), var et sår i hornhinden, sphacelation af det tilstødende forreste epitel, flere pletter af epitelacantholyse og isolerede diskheratocytter, akut subepitelinflammatorisk infiltrat og ødem på stroma-niveau (figur 6).
De ændringer, der blev observeret i gerbil nummer 3 (96 timer efter PTK), var tilstedeværelsen af større ødem end i gerbil nummer 2, disaggregering af stromale fibre og celler, fuldstændig regenerering af det forreste epitel og ingen inflammatorisk infiltrat (figur 7).
Sammenfattende viser histologisk farvning den normale sårhelingsproces i hornhindeepitelet og overfladisk stroma med inflammatorisk infiltrat og ødem.
Figur 1: Repræsentativ OCT-billeddannelse af den normale hornhinde. Hornhinden kan ses i sin fulde størrelse (med en tykkelsesmåling i toppen på 160 μm og tykkelsesmålinger på 108 μm og 110 μm i periferien), og det forreste kammer, iridocornealvinklen, iris og den krystallinske linse (stikker ud i det forreste kammer) kan også ses. Klik her for at se en større version af denne figur.
Figur 2: Repræsentativ OCT-billeddannelse af hornhinden før og efter PTK . (A) Billede af den normale hornhinde. (B) Hornhindebillede 10 min efter PTK. Pilen til venstre viser kanten af et sår med en ophobning af cellulært affald, og pilen til højre viser også snavs på hornhindeoverfladen, der er typisk for operationen. Klik her for at se en større version af denne figur.
Figur 3: Repræsentativt makrofotografi af gerbilens øjeæble (højre øje). (A) Regelmæssig overflade af det normale øjeæble. (B) Billede taget 5 min efter PTK blev udført, der viser uregelmæssigheder på hornhindeoverfladen. (C) Bevis for et hornhindesår farvet med 0,25% fluorescein ved hjælp af en LED-lyskilde (violet). Klik her for at se en større version af denne figur.
Figur 4: Repræsentativ komplet histologisk sektion (anterior-posterior) af hele den normale hornhinde af gerbil (40x) farvet med H&E. (A) De perifere og centrale fragmenter er indrammet. Skalabjælken er 20 μm. (B-D) Hornhindens periferi viser et tyndere epitel med mindre stratificering og et nedsat antal stromale fibre. Figuren viser et let løsrevet endotel i periferien af hornhinden, hvilket skyldes en artefakt af teknikken. Derfor er den perifere hornhindetykkelse tyndere end den centrale. (C) Den målte tykkelse svarer til den tykkelse, der er beregnet med OLT-billederne. Både epitelet og stroma viser en større tykkelse på niveauet af hornhindetoppen. Skalabjælken er 40 μm. Klik her for at se en større version af denne figur.
Figur 5: Repræsentativ normal hornhinde af den mongolske gerbil farvet med H&E (gerbil nummer 1). De fem lag af hornhinden og det intakte epitel observeres. Skalabjælken er 100 μm. Klik her for at se en større version af denne figur.
Figur 6: Repræsentativ hornhinde 24 timer efter excimer laser fototerapeutisk keratektomi (PTK) (farvet med H&E). Pilen viser kanten af hornhindesår (gerbil nummer 2). Skalabjælken er 100 μm. Klik her for at se en større version af denne figur.
Figur 7: Repræsentativ hornhinde 96 timer efter excimer laser fototerapeutisk keratektomi (PTK). Farvet med H&E; Gerbil nummer 3. Det regenererede epitel og stromalt ødem observeres i denne figur. Skalabjælken er 100 μm. Klik her for at se en større version af denne figur.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Fysiologien af hornhindesårheling er en balance mellem vævsregenerering og vedligeholdelse af homeostase. Overdreven sårheling kan føre til fibrose og ardannelse, hvilket i sidste ende kan resultere i tab af organfunktion. Med den hurtige udvikling af hornhindekirurgiske procedurer kan vigtigheden af at forstå hornhindesårheling og de involverede fysiologiske og patologiske hændelser ikke overvurderes11.
Flere forskningsværker hævder, at gerbils har mange sensoriske egenskaber, der gør dem til en gunstig art for synsundersøgelser, herunder hovedsageligt daglig adfærd12 og overlegen og mere akut syn sammenlignet med mus eller rotter13. Deres nethindestruktur er mere analog med menneskers14. Af denne grund er de blevet brugt som en dyremodel til udvikling af retinale parasitære infektioner15, terapeutiske lægemidler, genlevering og til undersøgelse af retinal fysiologi. Derudover har nyligt offentliggjorte genetiske analyser vist, at de fleste af de identificerede gerbilgener (81%) deles mellem mus og mennesker16. Desuden har undersøgelser dokumenteret de genetiske ligheder mellem gerbils og både mus og mennesker og identificeret vigtige ligheder og forskelle på tværs af art17. Derfor valgte vi den nuværende dyremodel af gerbils til at studere de normale hornhindestrukturer og deres patofysiologiske processer forbundet med PTK-ardannelse.
Flere forskere hævder, at PTK er en ideel model til at studere hornhindeardannelse, fordi det tillader undersøgelse af apoptotiske processer, keratocyt vitalitet, cellemigration og lokal vævsbetændelse, blandt andre aspekter18.
Betydningen af dette arbejde vedrører ikke kun undersøgelsen af hornhindeardannelse og sårheling, men også forslaget om en ny dyremodel med det videnskabelige potentiale for, at resultaterne ekstrapoleres til andre tidligere offentliggjorte modeller.
Denne dyremodel giver på grund af sin lighed og lighed med det menneskelige øjes opførsel mulighed for reproduktion af den samme protokol med forskellige varianter og skaber præcedens for udviklingen af andre modeller, såsom modeller af infektiøs keratitis og hornhinde neovaskularisering, blandt andre.
Dette arbejde og denne dyremodel har dog nogle begrænsninger. For det første er gerbil ikke en udbredt dyremodel som mus, rotter eller kaniner. Af denne grund er der muligvis ikke så mange reagenser som ønsket. For det andet er den tilgængelige litteratur om oftalmologi i gerbils også meget begrænset.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Forfatterne har intet at afsløre.
Acknowledgments
Vi vil gerne takke ingeniør Rodrigo de la Fuente for hans uvurderlige hjælp og tekniske support. Vi takker også María Eugenia Corbela for fortællingen og Priscilla Hazrún for udgaven af figurerne. Hugo Luján tillod os at bruge faciliteterne på Center for Forskning og Udvikling i Immunologi og Infektionssygdomme (CIDIE).
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Anesthesia | Tododrogas | ||
| Eppendorf tubes | Tododrogas | ||
| Excimer Laser | Technolas | 2022445 | |
| Fluorescein | Poen | ||
| Forceps | Ofcor | 3339 | |
| Formaldehyde | Tododrogas | ||
| Gloves | Tododrogas | ||
| Ketamine | Sigma-Aldrich | ||
| Optical coherence tomography | Optovue | 659007 | |
| Proparacaine | Poen | ||
| Scisors | Ofcor | 3336 | |
| Sterile drapes | Soporte hospitalario | ||
| Sterile gauzes | Soporte hospitalario | ||
| Syringes and needles | Tododrogas | ||
| Xylazine | Sigma-Aldrich |
References
- Kuo, I. C.
- Agrawal, V. B., Tsai, R. J.
- Lu, L., Reinach, P. S., Kao, W. W.
- Rathi, V. M., Vyas, S. P., Sangwan, V. S.
- Baumeister, M., Bühren, J., Ohrloff, C., Kohnen, T. Corneal re-epithelialization following phototherapeutic keratectomy for recurrent corneal erosion as in vivo model of epithelial wound healing. Ophthalmologica. 223 (6), 414-418 (2009).
- Fagerholm, P. Phototherapeutic keratectomy: 12 years of experience. Acta Ophthalmologica Scandinavica. 81 (1), 19-32 (2003).
- Mohan, R. R., Stapleton, W. M., Sinha, S., Netto, M. V., Wilson, S. E. A novel method for generating corneal haze in anterior stroma of the mouse eye with the excimer laser. Experimental Eye Research. 86 (2), 235-240 (2008).
- Shah, D., Aakalu, V. K. Murine corneal epithelial wound modeling. Methods in Molecular Biology. 2193, 175-181 (2021).
- Gerbil-Specific Anesthesia Guidance. Animal Resources Center. The University of Texas at Austin. , Available from: research.utexas.edu/wp-content/uploads/sites/7/2020/02/Gerbil_Anesthesia_Guidance_ARC_112519.pdf (2020).
- Zorio, D. A. R., et al. De novo sequencing and initial annotation of the Mongolian gerbil (Meriones unguiculatus) genome. Genomics. 111 (3), 441-449 (2019).
- Kalha, S., Kuony, A., Michon, F. Corneal epithelial abrasion with ocular burr as a model for cornea wound. Journal of Visualized Experiments. (137), e58071 (2018).
- Yang, S., et al. The electroretinogram of Mongolian gerbil (Meriones unguiculatus.): Comparison to mouse. Neuroscience Letters. 589, 7-12 (2015).
- Baker, A. G., Emerson, V. F. Grating acuity of the Mongolian gerbil (Meriones unguiculatus). Behavioural Brain Research. 8 (2), 195-209 (1983).
- Govardovskii, V. I., Röhlich, P., Szél, A., Khokhlova, T. V. Cones in the retina of the Mongolian gerbil, Meriones unguiculatus: An immunocytochemical and electrophysiological study. Vision Research. 32 (1), 19-27 (1992).
- Zanandréa, L. I., Oliveira, G. M., Abreu, A. S., Pereira, F. E. Ocular lesions in gerbils (Meriones unguiculatus) infected with low larval burden of Toxocara canis: Observations using indirect binocular ophthalmoscopy. Revista da Sociedade Brasileira de Medicina Tropical. 41 (6), 570-574 (2008).
- Cheng, S., et al. Enhancement of de novo sequencing, assembly and annotation of the Mongolian gerbil genome with transcriptome sequencing and assembly from several different tissues. BMC Genomics. 20 (1), 903 (2019).
- Henriksson, J. T., McDermott, A. M., Bergmanson, J. P. Dimensions and morphology of the cornea in three strains of mice. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 50 (8), 3648-3654 (2009).
- Panagiotopoulos, M., Gan, L., Fagerholm, P. Stroma remodelling during healing of corneal surface irregularities induced by PTK. Acta Ophthalmologica Scandinavica. 85 (4), 387-394 (2007).
