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Environment

茶叶样品中吡咯里西啶类生物碱污染的来源及途径

Published: September 28, 2022 doi: 10.3791/64375

Summary

本协议描述了茶园中产生PA的杂草的茶样中吡咯里西啶生物碱(PA)的污染。

Abstract

在茶叶样品中发现了有毒的吡咯里西啶生物碱(PAs),对人体健康构成威胁。然而,茶叶样品中PA污染的来源和途径尚不清楚。本研究采用吸附剂方法结合UPLC-MS/MS测定了松 根际土壤、圆 锥孢子草 根际土壤、新鲜茶叶和干茶样品中的15个PA。平均回收率为78%-111%,相对标准差为0.33%-14.8%。以安徽省金寨茶园为研究对象,采集了15对圆 锥苣 苔和 圆锥苣苔 根际土壤样品和60个鲜茶叶样品,并对15个茶叶进行了分析。并非所有15种PA都在新鲜茶叶中检测到,除了中间体-N-氧化物(ImNO)和Senecionine(Sn)。ImNO(34.7 μg/kg)的含量大于Sn(9.69 μg/kg)。此外,ImNO和Sn均集中在茶树的嫩叶中,而在老叶中含量较低。结果表明:茶叶中的PAs通过茶园产PA杂草-土壤-鲜茶叶的路径转移。

Introduction

作为次级代谢物,吡咯里西啶生物碱 (PA) 保护植物免受食草动物、昆虫和病原体的侵害12.到目前为止,已在全球6,000多种植物物种中发现了660多种具有不同结构的PA和PA-N-氧化物(PANO)34。产PA的植物主要分布在 菊科苜蓿科、 科和 顶生科56中。PAs易氧化成不稳定的脱氢吡咯里西啶生物碱,具有较强的亲电性,可攻击DNA和蛋白质等亲核试剂,导致肝细胞坏死、静脉闭塞、肝硬化、腹水等症状78。PA毒性的主要靶器官是肝脏。PA还可引起肺、肾和其他器官毒性以及致突变、致癌和发育毒性910

许多国家报告了人类和动物中毒的病例,原因是摄入含有PAs的传统草药、补充剂或茶,或间接污染牛奶、蜂蜜或肉类等食物(摄入含有PAs的牧场有毒)111213。欧洲食品安全局(EFSA)的调查结果显示,(草药)茶等物质是人类接触PAs/PANOs的重要来源14。茶样不产生PA,而产生PA的植物常见于茶园(例如,Emilia sonchifoliaSenecio angulatusAgeratum conyzoides15。以前怀疑茶叶可能在采摘和加工过程中被其生产植物的PA污染。然而,在一些手工采摘的茶叶中也检测到PAs(即没有产生PA的植物),这表明一定有其他途径或污染源16。对豚草(Senecio jacobaea)与Melissa(Melissa officinalis),薄荷(薄荷(薄),欧芹(Petrroselinum crispum),洋甘菊(Matricaria recutita)和金莲花(Tropaeolum majus)植物进行了共栽培实验,结果表明,在所有这些植物中都检测到PAs17。已经证实,PA确实通过土壤在活植物之间转移和交换1819。Van Wyk等人20发现路易波士茶(Aspalathus linearis)在杂草丰富的地点受到严重污染,并且含有相同类型和比例的PA。然而,在无杂草地点的路易波士茶中没有检测到PA。

目前,具有高选择性和灵敏度的超高效液相色谱串联质谱(UPLC-MS/MS)已广泛应用于农产品和食品中PAs的定性和定量分析2122。样品处理方法通常包括固相萃取(SPE)或QuEChERS(快速简便廉价坚固安全)对复杂食品基质提取物的净化,可以获得尽可能高的灵敏度1219。然而,仍然缺少能够检测和定量土壤、杂草和新鲜茶叶等复杂基质中的PA的稳健分析方法。

本研究采用UPLC-MS/MS结合吸附纯化方法分析了干茶样品、鲜茶叶、杂草和杂草根际土壤样品中的15种PA。此外,从安徽省金寨茶园的5个采样点采集了15个配对杂草和杂草根际土壤样品和60个新鲜茶叶样品,并对15个PA进行了分析。这些结果可以提供茶样中PAs(污染)来源和途径的调查方法和一些信息,以确保茶叶的质量和安全。

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Protocol

在本研究中,收集了以下杂草种类:路德维希亚匍匐罗克斯布,穆尔达尼亚特里克特拉(沃尔前C.B.克拉克)布鲁克,圆锥藜,藜,茉莉花气管(L.)莱姆,圆锥苣苔,艾米利亚松子(L.DC),圆锥苣苔L.和裂(本。S·摩尔。新鲜茶叶采摘自龙井43#茶树品种,干茶样品为市售茶叶,按绿茶制造工艺加工而成(见材料表)。

1. 样品采集

  1. 收集 40 个真实样本。
    1. 从多个茶园随机收集 10 根杂草、10 片土壤和 10 片新鲜茶叶。
      注意:对于本研究,在20厘米的深度对土壤进行取样,取样量为200克。
    2. 从超市随机收集10种干茶产品(250克)。
  2. 收集杂草,土壤和新鲜茶叶的样本,以研究茶叶中PA的污染源。
    1. 在同一茶园中设置五个采样点,每个点三个重复。
    2. 收集茶园中常见的PA含量最高的针 松柏杂草样品。
      注意:本研究的样品量为250克。
    3. 收集土壤样本。
      注:土壤样品为20厘米深度的A . conyzoides 根际土壤,样品量为200克。
    4. 从茶树的不同部位收集新鲜的茶叶,包括一个芽两叶,一个芽三叶,一个芽四叶和成熟叶。
      注意:样品量为250克。

2. 样品处理

  1. 按照以下步骤对样品进行预处理。
    1. 用研磨机研磨干燥的茶和土壤样品,将粉碎的样品通过200目筛,并将其储存在-20°C。
      注意:干茶是市售的茶产品(见 材料表),因此直接粉碎并过筛储存。将土壤样品(200 g)置于通风处避光风干约一周。
    2. 用均质机均质杂草和新鲜茶叶,并将其储存在-20°C。
  2. 对干茶产品、新鲜茶叶和杂草进行样品处理。
    1. 称取每个样品(干茶产品、新鲜茶叶和杂草)的 1.00 g,并将其放入 50 mL 离心管中。
    2. 加入 10 mL 的 0.1 mol/L 硫酸溶液并涡旋 2 分钟进行固相萃取(使用 SPE 柱,参见 材料表)和 1 分钟进行吸附剂纯化。进行超声提取2315 分钟,然后在室温下以9,390× g 的速度离心10分钟。
      注意:超声波振荡器的功率为290 W,振荡频率为35 kHz,温度设置为30°C。
    3. 将上清液转移到带有塑料尖端滴管的 50 mL 离心管中。
    4. 按照上述步骤重复提取一次。合并两个上清液。
      1. 用 5 mL 甲醇和 5 mL 去离子水激活 SPE 滤芯。向预活化的柱中加入 10 mL 上清液并进行样品净化。
      2. 样品溶液液位达到上层柱后,用5 mL 1%甲酸溶液和5 mL甲醇洗脱分析物。丢弃洗脱液。
      3. 用5 mL甲醇(含0.5%氨水)洗脱,通过0.22 μm膜过滤器过滤洗脱液,并通过UPLC-MS/MS分析(见 材料表)。
    5. 使用吸附剂进行样品净化。
      1. 取2mL上清液(步骤2.2.4)放入装有GCB:PSA:C18吸附剂(10mg:20mg:15mg,见 材料表)吸附剂的10mL离心管中,涡旋1分钟,室温下以9,390× g 离心8分钟。
      2. 在通过UPLC-MS/MS分析之前,将1 mL上清液通过0.22 μm膜过滤器。
  3. 对土壤样品进行处理。
    1. 称取 1.00 克土壤样品。将其放入50 mL离心管中,加入0.1 mL的0.1mol/L柠檬酸三钠溶液(见 材料表),将土壤pH值调节至6.0。
    2. 静置2分钟,然后加入10mL0.1mol/L硫酸甲醇溶液,涡旋2分钟,摇动30分钟,然后进行超声提取30分钟。
    3. 以 9,390 x g 离心 10 分钟,并将上清液转移到带有塑料尖端滴管的 50 mL 离心管中。
    4. 按照上述步骤重复提取并合并上清液两次。
      注:纯化方法与步骤2.2.5.1和步骤2.2.5.2相同。

3. 仪器分析

  1. 使用市售UPLC-MS/MS系统(2.1 mm x 100 mm,1.8 μm)检测干茶样品、新鲜茶叶、杂草和土壤(步骤2中的样品)中的15种PA(参见 材料表)。
  2. 将柱温设置为40°C,流速设置为0.250 mL/min,进样体积设置为3 μL。
  3. 设置流动相A:甲醇(含0.1%甲酸+1毫摩尔/L甲酸铵),流动相B:水(含0.1%甲酸+1毫摩尔/升甲酸铵)。
  4. 设置梯度洗脱程序:0.0分钟至0.25分钟为10%A,0.25分钟至6.0分钟为10%-30%A,6.0分钟至9.0分钟为30%-40%A,9.0分钟至9.01分钟为40%-98%A,保持1.9分钟,98%-100%A从11.0分钟至11.1分钟保持2.9分钟。
  5. 设置质谱仪参数:电离模式、电喷雾正离子源(ESI+);雾化器压力,7.0巴;毛细管电压,4.0 kV;锥孔反吹流量,150升/小时;溶剂气体流量,800升/小时;溶解温度,400°C;冲击气体流量,0.25 毫升/分钟

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Representative Results

建立了对干茶样品、鲜茶叶、杂草和土壤中15种PA的优化吸附纯化分析方法,并与常用的SPE滤芯纯化方法进行了比较。结果表明,使用SPE滤芯的干茶样品、杂草和鲜茶叶中15个PA的回收率为72%-120%,而使用吸附剂纯化为78%-98%(图1)。使用吸附剂纯化对土壤中15种PA的回收率为79%-111%(图1)。随机收集四十(40)个真实样品以检测PA的含量,以比较两种净化方法(补充表1-7)。使用吸附剂法在所有10个干茶样品中检测到含量为1.3-22μg/kg的Heliotrine (He),而使用SPE柱的SPE柱仅在3个干茶样品中检测到含量为1.8-24.6μg/kg(补充表3-4)。

采用吸附纯化方法(GCB:PSA:C18)检测茶园杂草、杂草根际土壤和鲜茶叶中的PA。在金寨的一个茶园中选择了五个采样点。除雅各宾(Jb)、烯茶碱(Sp)、烯茶碱N-氧化(SpNO)和森基金(Sk)外,在杂草A . conyzoides中共检测到11个PA,其中PAs含量最高的是中间体(Im)(2,006-2,970 μg/kg)、日光晶-N-氧化物(HeNO)(2,446-2,731 μg/kg)和中间体-N-氧化物(ImNO)(13,535-17,345 μg/kg)(表1)。在土壤中,在采样点5仅检测到ImNO,含量为6.05μg/kg(补充表8)。在五个采样点的新鲜茶叶中检测到ImNO和Sn(图2)。在茶树不同部位检测到ImNO,其含量在4.36—26.5 μg/kg之间,均大于Sn,但采样点1和采样点2的成熟叶片未检测到Sn。在其他采样点的茶树不同部位检测到Sn,含量范围为1.0-3.14μg/kg(图2)。

在采样点5,显示了PAs在杂草,杂草根际土壤和新鲜茶叶之间的转移现象(图3)。11株PAs杂草中,土壤中仅检测到ImNO,含量为6.05 μg/kg,而在茶树不同部位检测到ImNO和Sn。两片叶一芽中ImNO含量最高,为12.6 μg/kg(图3)。

Figure 1
图 1:恢复比较。 比较(A)新鲜茶叶,(B)干茶样品,(C)杂草和(D)土壤样品中15种PA(吡咯里西啶生物碱)的回收率,使用吸附剂(加标水平= 0.02 mg / kg)和SPE滤芯(混合阳离子交换固相萃取柱,加标水平= 0.01 mg / kg)清理后的土壤样品。误差条显示标准差,显著性检验通过方差分析进行。 请点击此处查看此图的大图。

Figure 2
图2:从五个采样点收集的茶树不同部位PAs(吡咯里西啶生物碱)的含量和类型。)取样地点 1.()取样地点 2.()取样地点 3.()取样地点 4.()取样地点 5.误差条显示标准差,显著性检验通过方差分析进行。 请点击此处查看此图的大图。

Figure 3
图3:杂草中所含的PAs及其向土壤和新鲜茶叶的转移 。 (A)在杂草,土壤和新鲜茶叶中检测到的PA(吡咯里西啶生物碱)的含量和类型。(B)在杂草中检测到的PA的含量和类型。误差条显示标准差,显著性检验通过方差分析进行。 请点击此处查看此图的大图。

采样站点 单个PA的平均含量(±相对标准偏差),μg/kg 总PA的含量(微克/千克)
嘿嘿 Jb JbNO 雷诺 斯普 斯普
欧盟 欧盟否 斯克
1 97.4 (2.43) 2731.1 (2.04) 2424.9 (1.84) 13754 (0.56) ND 1.92 (1.54) 21.2 (10.45) 4.01 (5.72) 58.4 (2.52) 17.2 (9.03) ND ND 224.0 (1.75) 6.9 (2.02) ND 19341.03
2 83.9 (1.21) 2518.6 (0.81) 2476.5 (1.15) 13945 (0.30) ND 2.60 (2.52) 28.8 (1.51) 4.82 (3.66) 63.7 (3.52) 19.8 (10.2) ND ND 248.6 (1.48) 7.0 (1.58) ND 19399.32
3 96.6 (1.67) 2470.4 (1.08) 2969.7 (1.02) 16829 (0.36) ND 2.12 (1.08) 20.9 (9.30) 2.94 (1.08) 51.0 (7.50) 14.9 (8.25) ND ND 252.1 (3.17) 5.91 (0.35) ND 22715.57
4 91.4 (1.98) 2638.6 (2.75) 2882.4 (1.98) 17345 (0.76) ND 2.42 (10.59) 15.4 (6.99) 2.67 (10.59) 51.6 (6.73) 15.0 (0.92) ND ND 281.3 (2.36) 6.78 (2.15) ND 23332.57
5 83.4 (3.79) 2446.7 (6.0) 2005.5 (3.79) 13535 (1.96) ND 1.68 (4.94) 15.2 (0.91) 2.70 (4.94) 49.4 (8.78) 16.9 (10.7) ND ND 215.2 (2.47) 5.99 (3.76) ND 18377.67

表1:五个采样点杂草的单个和总PA(吡咯里西啶生物碱)含量。 ND 表示未检测到。

补充表1:吸附法纯化的新鲜茶叶中单个和总PA的含量。ND 表示未检测到。 请按此下载此表格。

补充表2:SPE纯化的新鲜茶叶中单个和总PA的含量。ND 表示未检测到。 请按此下载此表格。

补充表3:吸附法纯化的干茶中单个和总PAs的含量。ND 表示未检测到。 请按此下载此表格。

补充表4:SPE纯化的干茶中单个和总PA的含量。 ND 表示未检测到。 请按此下载此表格。

补充表5:吸附剂法纯化的杂草中单个和总PA的含量。 ND 表示未检测到。 请按此下载此表格。

补充表6:SPE纯化的杂草中单个和总PA的含量。 ND 表示未检测到。 请按此下载此表格。

补充表7:吸附法纯化的土壤中单个和总PA的含量。 ND 表示未检测到。 请按此下载此表格。

补充表8:五个采样点土壤的单个和总PA含量。 ND 表示未检测到。 请按此下载此表格。

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Discussion

本工作旨在开发一种有效、灵敏的方法来探索茶叶样品中PA的污染途径和来源,以及PAs在茶树不同部位的分布。然而,在这项研究中,色谱柱上仅成功分离了15个PA,与植物物种34中的大量生物碱相比这是一个非常小的数字。这不仅与色谱柱本身的堆积特性有关,还与所检查茶样品的复杂基质有关。因此,更好的分离纯化方法检测多PA仍需进一步探索。

SPE滤芯和吸附剂方法已被应用于检测多种样品基质中的多PA,但在茶叶的复杂基质中,尚未报道吸附剂法24。因此,本工作开发了GCB:PSA:C18(10 mg:20 mg:15 mg)配比的吸附剂方法,15 种PA的回收率满足不同样品基质中PA的检测要求。相比之下,使用SPE滤芯净化干茶后,ImNO、Eu和Re的平均回收率分别为119%、120%和115%,显示出显著的基质效应。此外,与SPE柱相比,吸附剂(GCB:PSA:C18)方法具有更短的样品处理时间,更低的成本和更好的PA分析回收率(图1B)。建立对干茶样、鲜茶叶、杂草和土壤中15种PAs的检测方法,为探索茶样中PAs的污染源提供了一种有效的检测方法。此外,根据现有知识,本研究首次建立了土壤多PA检测方法。

研究了茶园系统中PAs的转移路线。研究表明, 寨茶园中总PA含量最高的杂草之一,生长在茶树旁边。因此,收集金寨某茶园5个采样点的松 圆锥菌 根际土壤及鲜茶叶不同部位,对15个PA进行分析。 图3 显示,在 松果苣苔中产生的11个PAs中,只有松果 苔根际土壤中检测到ImNO,而在新鲜茶叶中检测到ImNO和Sn。这表明,并非所有在 A. conyzoides 中产生的PAs含量都可以通过土壤介质 转运 到茶树中。转移到土壤中的PA的某些含量可能会被土壤微生物降解。

ImNO和Sn主要分布在一芽两叶和一芽三叶,成熟叶片PAs含量相对较低。在采样点4,两片叶的一个芽中ImNO含量达到26.5 μg/kg,而其他部分的ImNO含量在7.14-10.4 μg/kg之间。在采样点1和采样点2的成熟叶片中未检测到Sn。这表明茶树中PAs的富集部分主要集中在幼叶中,含量远低于欧盟设定的茶样PAs的最大残留限量(成人150μg/kg,婴幼儿75μg/kg)25。结果表明,茶样中的PA可能来自茶园中通过土壤 产生 PA的杂草。此外,结果证实了PAs在植物之间的转移和交换17

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Disclosures

作者没有什么可透露的。

Acknowledgments

这项工作得到了中国国家自然科学基金(32102244),国家农产品质量安全与风险评估项目(GJFP2021001),安徽省自然科学基金(19252002)和美国农业部(HAW05020H)的支持。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Acetonitrile (99.9%) Tedia Company,Inc. 21115197 CAS No:75-05-8
Ammonia (25%-28%) Wuxi Zhanwang Chemical Reagent Co., Ltd. 181210 CAS No:1336-21-6
Ammonium formate (97.0%) Anpel Laboratory Technoiogies (shanghai) G0860050 CAS No:540-69-2
Carbon-GCB CNW B7760030 120-400 MESH, 10g. per box 
Centrifuge Z 36 HK HERMLE Z36HK 30000 rpm (min:10 rpm), Dimensions (W x H x D): 71.5 cm× 42 cm × 51 cm
Commercially available tea product Lvming, Qingshan, Luyuchun, Changling, Huixing, Wuyunjian, Heshengchun loose tea Green tea
Europine N-oxid (EuNO) (98.0%) BioCrick 323256 CAS No:65582-53-8
Europine (Eu) (98.0%) BioCrick 98222 CAS No:570-19-4
Formate (98.0%) Aladdin E2022005 CAS No:64-18-6
HC-C18 CNW D2110060 40-63 μm,100g.per box
Heliotrine (He) (98.0%) BioCrick 906426 CAS No:303-33-3
Heliotrine-N-oxide (HeNO) (98.0%) BioCrick 22581 CAS No:6209-65-0
High speed centrifuge TG16-WS cence 203158000 Max:16000 r/min, 330 × 390 × 300 mm (L × W × H), Capacity: 6 × 50 mL
HSS T3 column Waters 186004976 ACQUITY UPLC HSS T3 (2.1 × 100 mm 1.8 μm)
Intermedine (Im) (98.0%) BioCrick 114843 CAS No:10285-06-0
Intermedine-N-oxide (ImNO) (98.0%) BioCrick 340066 CAS No:95462-14-9
Jacobine (Jb) (98.0%) BioCrick 132282048 CAS No:6870-67-3
Jacobine-N-oxide (JbNO) (98.0%) ChemFaces CFN00461 CAS No:38710-25-7
Methyl Alcohol (99.9%) Tedia Company,Inc. 21115100 CAS No:67-56-1
PSA Agela P19-00833 40-60 μm, 60 Å 100g.per box
Retrorsine (Re) (98.0%) BioCrick 5281743 CAS No:480-54-6
Retrorsine-N-oxide (ReNO) (98.0%) BioCrick 5281734 CAS No:15503-86-3
Senecionine (Sc) (98.0%) BioCrick 5280906 CAS No:130-01-8
Senecionine-N-oxide (ScNO) (98.0%) BioCrick 5380876 CAS No:13268-67-2
Seneciphylline N-oxid (SpNO) (98.0%) BioCrick 6442619 CAS No:38710-26-8
Seneciphylline (Sp) (98.0%) BioCrick 5281750 CAS No:480-81-9
Senkirkine (Sk) (98.0%) BioCrick 5281752 CAS No:2318-18-5
SPE PCX Agilent Technologies 12108206 Cation Mixed Mode, 6 mL
Sulfuric acid (97%) Wuxi Zhanwang Chemical Reagent Co., Ltd. 1003019 CAS No:7664-93-9
Trisodium citrate Sinpharm Chemical Reagent Co., Ltd. 20121009 CAS No:6132-04-3
Ultrasonic cleaner Supmile KQ-600B Inner slot size: 500 × 300 × 150 mm; Capacity: 22.5 L
UPLC-xevoTQMS Waters ZPLYY-003 Triple four-stage rod mass analyzer, Waters Alliance 2695/Waters ACQUITY UPLC Liquid Phase System
Water bath thermostat oscillator Guoyu instrument SHY-2AHS Oscillation times:  60-300 times/min, Constant temperature range: room temperature to 100 °C

DOWNLOAD MATERIALS LIST

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茶叶样品中吡咯里西啶类生物碱污染的来源及途径
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Jiao, W., Shen, T., Wang, L., Zhu,More

Jiao, W., Shen, T., Wang, L., Zhu, L., Li, Q. X., Wang, C., Chen, H., Hua, R., Wu, X. Source and Route of Pyrrolizidine Alkaloid Contamination in Tea Samples. J. Vis. Exp. (187), e64375, doi:10.3791/64375 (2022).

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